Plasmodiophora brassicae

H E R N I A D E L A S C R U C Í F E R A S

Introducción: Plasmodiophora brassicae es el agente causal de la enfermedad de la hernia de las

crucíferas. La enfermedad fue reportada por primera vez en los Estados Unidos de América en

1852. Los informes históricos de la fecha de la raíz club de nuevo a la 13 ª siglo en Europa. A

finales del 19 º siglo, una epidemia grave de hernia destruye grandes proporciones del cultivo de

repollo y otras cruciferas. En un intento de obtener más información sobre la enfermedad, el ruso

Sociedad Jardinería ofreció un premio a cualquiera que pudiera identificar la causa, y sugerir un

control para la hernia de la col. Woronin, un científico ruso identificó con éxito la causa de la raíz

del club como un "organismo plasmodiophorous" en 1875, y le dio el nombre Plasmodiophora

brassicae.

http://www.cals.ncsu.edu/course/pp728/Plasmodiophora/clubroot.JPG

RESUMEN: Clubroot puede causar pérdidas significativas a nabo, nabo, col, la coliflor y el brócoli, las coles de Bruselas, coles, repollo chino, y el rábano. Además, las malas hierbas más crucíferas son susceptibles y pueden servir como reservorios del patógeno de un año a otro

Ocurre en todo el mundo, pero con mayor frecuencia en Europa y América del Norte.

Síntomas de tierra anteriormente incluyen marchitas y las hojas amarillentas y plantas raquíticas. Hojas más bajas pueden dejar. Las plantas afectadas no crecen producto aceptable. El síntoma característico es el agrandamiento anormal (clubes) de raíces, incluyendo las raíces finas, raíces secundarias, o la raíz principal, o incluso en el tallo subterráneo

Distribución y hospederos: Plasmodiophora brassicae se puede encontrar en todo el mundo en todas las zonas templadas. Infecta más de 300 especies en 64 géneros de crucíferas y se puede encontrar tanto en las crucíferas cultivadas y silvestres. Anfitriones económicamente importantes incluyen la col, col rizada, la mostaza, las coles de Bruselas, el rábano, nabo, coliflor, brócoli y el colinabo.

Aislamientos: Los quistes se producen en el tejido de las raíces en palillo de tambor. Raíces frescas que han sido infectados durante al menos 5 semanas se pueden utilizar para el aislamiento de Plasmodiophora brassicae. Estos deben ser limpiados, picado, mezclado con agua, y se mezcla a alta velocidad en una licuadora hasta lograr una consistencia pulposa suave. Se filtra la solución a través de estopilla. Centrifugar el filtrado durante 7 minutos, o hasta tres capas distintas se pueden ver. La capa inferior es más escombros, la capa blanca media es principalmente almidón, y el fluido de gris superior contiene quistes de P. brassicae. Vierta quistes y repetir proceso de centrifugación para purificar aún más los aislamientos.

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Identificación: El síntoma más característico de P. brassicae dentro de un huésped, es Una amplia variedad de patógenos de la raíz, sin embargo, producen síntomas similares, incluyendo nematodo del nudo de la raíz y la vesícula hongos inducir y bacterias. Presencia de P. brassicae dentro de un huésped se verifica a través de la disección de las raíces en palillo de tambor. Los racimos de células huésped agrandados contienen plasmodium y amebas a continuación se pueden observar con la tinción adecuada.

SINTOMAS: El primer síntoma de la enfermedad en el cultivo es el marchitamiento de las hojas en días cálidos. Durante la noche estos síntomas desaparecen, luciendo frescas las plantas en la mañana. Antes del marchitamiento aparentemente estas presentan un normal crecimiento, pero la rata de este no se mantiene, por tal motivo las plantas enfermas quedan pequeñas, se tornan amarillas y finalmente mueren. Cuando el marchitamiento ocurre nos Lleva a pensar que el mecanismo para la absorci6n y transporte de agua por la planta ha sufrido por interferencia y cuando las raíces son examinadas se ve que ha ocurrido hipertrofia de las mismas. El grade de desarrollo de esta anormalidad es determinado por varios factores, de los cuales los más importantes son: tiempo de infestaci6n, la especie, la rata de crecimiento de la planta y condiciones del suelo tales como humedad y temperatura.Cuando el ataque ocurre temprano y es severo la planta puede morir.Ataques menos severos en plantas j6venes 0 ya desarrolladas producen deformaciones en las raices.Cuando la infecci6n es tardía la planta es pequeña, pero puede sobrevivir.

Ecología y Ciclo de Vida: Plasmodiophora brassicae es un parásito obligado. Sobrevive en el suelo en quistes latentes. Los quistes pueden sobrevivir hasta 6-8 años sin la presencia de un huésped, y germinan en respuesta a la presencia de exudados de las raíces de las crucíferas. Zoosporas primarias liberados de quistes germinan infectan pelos radiculares acogida por encysting en la superficie de la raíz y entrando por el desarrollo de células de la

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epidermis en forma de una ameba como celular. Raíces mayores también pueden ser infectadas si la herida está presente para proporcionar una entrada al patógeno.

En los pelos de la raíz, las células ameboideas del patógeno se unen para formar un plasmodium multinucleadas. Este plasmodium divide y forma múltiples zoosporas secundarias, que se liberan en el suelo. Zoosporas secundarias infectan las partes sanas del anfitrión inicial o infectan a las plantas cercanas. Estas zoosporas también entran a través de los pelos radiculares de acogida, pero las células que infectan ameboidea migran en las células corticales del hospedero.

Una vez en la corteza, el patógeno ameboide infecta un host de células corticales donde puede multiplicar o unirse a otras células ameboides para formar un plasmodio. Medida que se desarrolla el plasmodium, libera hormonas vegetales (IAA) que causan las células huésped para ampliar hasta 20 veces su tamaño normal. A medida que el plasmodium crece, se divide e infecta las células vecinas haciendo que se agrandan. Las agrupaciones de estas células agrandadas son responsables de la hernia en las raíces y se les conoce como 'Kankheitsherd'. Estos son Kankheitsherd de diagnóstico de P. brassicae y puede ser observado en las secciones transversales de raíces infectadas.

No todas las células ameboides infectan las células corticales. Algunos se mueven en el tejido vascular e infectan las células del cambium del huésped. Las suaves paredes de las células no desarrolladas de las células del cambium permite P. brassicae viajar fácilmente arriba y abajo de la raíz, que infecta las células corticales, células de los radios vasculares y células del cambium como va. La infección y la resultante hinchazón de las células de los radios vasculares es responsable de los síntomas de marchitez característicos asociados con P. brassicae. Como las células de los radios se hinchan hasta tamaños anormales, las secciones de xilema son empujados a un lado, y la continuidad de la columna de agua se rompe.

Plasmodium en todas las células huésped finalmente someterse a la meiosis y se desarrollan en quistes de reposo. Estos nuevos quistes


se darán a conocer en el suelo como otros microorganismos del suelo descomponen la raíz del club.

BIOLOGÍA

P. brassicae pasa el invierno como descansando esporas. Cuando las condiciones ambientales son favorables, unos descansan espora germina y produce un solo zoosporas que infecta a un pelo de raíz anfitrión y produce un plasmodio dentro de la raíz. Después de unos días, los unirá plasmodium en porciones multinucleadas, cada uno de los cuales se desarrolla en un zoosporangium. Los zoosporangios se descargan desde el host, donde cada comunicados de cuatro a ocho zoosporas (a veces conocido como zoosporas secundarias). Zoosporas secundarias entran raíces, tejidos tubérculos o tallos subterráneos. Cada zoospora se desarrolla en un plasmodio que se propaga a través de las células huésped, produciendo el efecto de la raíz en palillo. Las formas de Plasmodium que descansan las esporas que se liberan en el suelo como el tejido huésped decae. Esporas en reposo pueden sobrevivir en el suelo de forma indefinida, a pesar de que sólo crecen y se multiplican en un número limitado de hosts.

Suelos frescos, húmedos y ácidos proporcionan el ambiente más favorable para el patógeno. En suelos ácidos, el rango de temperatura para la infección es de entre 50 y 95 F, el bienestar óptimo entre 68 y 77 F. En suelos alcalinos, el rango de temperatura es más baja (Sherf y MacNab, 1986).

Al menos nueve razas o patotipos de fisiológicas P. brassicae se sabe que existen y se han registrado en Alemania, Canadá, Inglaterra, Holanda y Estados Unidos. Las carreras pueden ser identificados a partir de las reacciones de la enfermedad especies crucíferas observados (Sherf y MacNab, 1986).

EPIDEMIOLOGÍA

Descansar esporas de P. brassicae puede difundirse a través del transporte de suelo infestado por medio de herramientas, equipos, animales y seres humanos. Campos limpios pueden estar infestados con material de trasplante infectado, y el escurrimiento de los campos infectados. Datnof et al. (1984) demostraron que las esporas


en reposo puede estar presente en los sedimentos del agua del estanque, especialmente aquellos alimentados por la escorrentía, donde se usa que el agua para el riego. El bombeo de agua de los estanques con descansando esporas presentes es probable que se propague el patógeno en semilleros y campos libres de patógenos.

GESTIÓNCONTROL CULTURAL

Una serie de prácticas culturales se deben seguir para ayudar a frenar P. brassicae infestación incluyendo la compra o el uso libre de la enfermedad trasplantes, utilizando bien drenado y libre de patógenos del suelo, la eliminación de malezas crucíferas cercanas, la incorporación de una rotación de 7 años de cultivos no crucíferas, ajustando el pH del suelo de 7.2 o más alto, y el uso de variedades de cultivos resistentes. Se existen variedades resistentes para los rábanos, colinabos (Suecos), y los nabos. No hay variedades resistentes aceptables de la col, la coliflor y el brócoli y las coles de Bruselas.

El aumento de pH del suelo puede proporcionar un buen control de P. brassicae porque las esporas germinan mal o no en absoluto y zoosporas secundarias no se producen en absoluto, por lo tanto no hay clubes desarrollan. El pH del suelo se debe ajustar por lo menos 6 semanas antes de la siembra del cultivo. La cal hidratada (1500 libras por acre) proporciona un buen control en suelos pesados y cal adicional, si es necesario, se puede añadir en forma de piedra caliza molida o cal apagada aire. Rotación de cultivos deben ser seleccionados con el suelo alcalino en cuenta, ya que algunos cultivos pueden ser afectados negativamente por un alto pH. Hay informes de que tanto el calcio y el magnesio afectan P. brassicae, pero que sus efectos son dependientes de pH del suelo (Myers y Campbell, 1985). Mientras pH es probablemente el factor más importante, altas concentraciones de calcio y magnesio pueden dar un control adecuado a pH <7,2.

Además de las medidas de control cultural, control de P. brassicae se ha demostrado con el uso de la mezcla de SH, un agente de control biológico, en ambos ensayos de invernadero y de campo.SH mezcla se cree que inhiben la formación de zoosporangium, y es probable


que eleva el pH del suelo un poco ya que la mezcla tiene un valor de pH de 8,0 (Lin et al., 1990)

CONTROL QUÍMICO

Si hay alguna pregunta sobre la contaminación del suelo, el tratamiento de la cama de siembra con cloropicrina, bromuro de metilo, metam-sodio, di-TRAPEX o dazomet 14 a 21 días antes de la siembra. Cuando se utiliza correctamente estos agentes matan semillas de malas hierbas, así como el organismo clubroot (Sherf y MacNab, 1986).

Benomilo y trichlamide siempre una buena protección contra P. brassicae en plántulas de col china (Naiki y Dixon, 1987). Tan poco como 100 mg ai / kg era necesaria para provocar una disminución del 50% en el desarrollo de la enfermedad, y 250 mg ai / kg era necesaria para inhibir infecciones pelo de raíz. Cianamida de calcio también proporciona la protección adecuada, aunque las concentraciones más altas requeridas de fungicida (1000 a 2000 mg ia / kg para provocar una disminución del 50% en el desarrollo de la enfermedad y para inhibir las infecciones de la raíz del cabello).

Bibliografía: http://www.cals.ncsu.edu/course/pp728/Plasmodiophora/Plasmodiophora.html


http://www.cals.ncsu.edu/course/pp728/Plasmodiophora/Plasmodiophora.html

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