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0 0.2 0.4 0.6 0.8 1 1.2 1.4 0 50 100 150 200 250 300 Relative fluorescence Tobramycin μg/ml 50 25 12,5 6,25 3,125 0 Miconazol Materiales y métodos 1- Placas de microtitulación: o Cultivo puro (24h,36 ºC, agitación) en medio Muller-Hinton o Formación de biopelículas a las 24h en placas de microtitulación a 36 ºC, en medio Muller-Hinton. o Añadir tratamientos : o Tobramicina 0-8192 μM o Azoles 0-400 μM o Cuantificación celular con resarzurina 2- Diluciones seriadas sucesivas y cultivo en Placas de Petri o Cultivo puro (24h,36 ºC, agitación) en medio Muller-Hinton o Dividir bacteria en 12 tubos de Falcon y añadir tratamientos : Tobramicina ½ CMI + Azole 50 μM o 3 tubos sin tratamiento (Control de Infección) o 3 tubos con Azoles (Control de azoles) o 3 tubos con Tobramicina (control de tobramicina) o 3 tubos con Tobramicina + Azoles o Cultivo en placas de Petri con medio TSA tras dilución seriada sucesiva o 48 horas : recuento 3-Protocolo con Galleria Mellonella o Infectar larvas con Burkholderia cenocepacia LMG 16656 y tratarlos con : o Tobramicina o Azoles o Tobramicina 512 μg/ml + Azoles 50 μM o Establecer controles : No Infectadas, Infectadas y no tratadas, de tobramicina y azoles o Incubar 24h a 36º o Contar supervivientes /muertas tras 24, 48 y 72 horas o Triturar, cultivo en placas de Petri con medio BCC tras dilución seriada sucesiva o Contar tras 48 horas Objetivos 1. Demostrar el efecto sinérgico de la Tobramicina junto con distintas combinaciones de Azoles sobre biopelículas de E.Coli 2. Determinar si el sinergismo podría ser extensible a células planctónicas de Burkholderia cenocepacia LMG 16656, cuyos resultados en el biopelículas se han determinado en publicaciones anteriores 3. Confirmar resultados in vivo empleando células planctónicas de Burkholderia cenocepacia LMG 16656 empleado el protocolo de Galleria mellonella Resultados 1-Placas de microtitulación Tobramicina + Miconazole en biopelículas de E.Coli T Tobramicina + Econazole en biopelículas de E.Coli 2-Diluciones seriadas sucesivas y cultivo en placas de Petri con células planctónicas de Burkholderia cenocepacia LMG 16656 3-Protocolo con Galleria Mellonella % de supervivencia (24-48-72h) Recuento de colonias en placas de Petri Conclusiones 1- Estudios anteriores con biopelículas de diferentes especies de Burkholderia cenocepacia han demostrado un sinergismo entre la Tobramicina + Azoles 2- Hemos observado que este sinergismo, a falta de ensayos en placas de microtitulación, podría ser extensible a células planctónicas de Burkholderia cenocepacia LMG 16656 3- Hemos confirmado el sinergismo en otras biopelículas de bacterias Gram negativas, como E.Coli 4- Los resultados en los modelos in vivo no fueron significativos para concluir que la combinación Tobramicina + Azoles se traduzca en un mayor % de supervivencia en las larvas de Galleria Mellonella. No obstante en una segunda fase de cuantificación se demostró la combinación Tobramicina + Azole como más eficaz frente a la Tobramicina de forma aislada (menos UFC/ml) 5- Combinaciones de Tobramicina + Azoles podrían suponer una nueva estrategia farmacológica en el tratamiento de las infecciones pulmonares en pacientes con fibrosis quística Resistencia bacteriana por formación de biopelículas en pacientes con fibrosis quística. Nuevas perspectivas de tratamiento Ruiz Sanz J **Facultad de Farmacia UCM Agradecimientos a Freija Van den Driessche y Tom Coenye, Dpto. de Microbiología UGent 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1 1.2 0 50 100 150 200 250 300 Relative fluorescence Tobramycin μg/ml 50 25 12,5 6,25 3,125 0 Econazole 1.00E+00 1.00E+01 1.00E+02 1.00E+03 1.00E+04 1.00E+05 1.00E+06 1.00E+07 1.00E+08 1.00E+09 - ECO - TOB ECO GC 100 CFU/ml 0 20 40 60 80 100 120 NI+FW I+T I+O I+O+T I+FW Percent of survival 0 20 40 60 80 100 120 NI+FW I+O I+O+T I+FW I+T Percent of survival -20 0 20 40 60 80 100 120 NI+FW I+T I+O I+O+T I+FW Percent of survival 1.00E+00 1.00E+01 1.00E+02 1.00E+03 1.00E+04 1.00E+05 1.00E+06 1.00E+07 1.00E+08 I T E T+E K K+T CFU/larvae 24 p.i. Bibliografía 1- Alejandro A.Pezzuelo, Xiao Xiao Tang, Mark J. Hoegger, Mahmoud H.Abou Alaiwa, Shyam Ramachandran, Thomas O.Moninger , Philipp H. Karpp, Christine L. Wohlford-Lenane,. Rediuced airway surface pH impairs bacterial killing in the porcine cystic fibrosis lung . Nature 2012 ; 487 : 109-113 2- Isabelle Sermet-Gaudel us , Jacques de Blic, Muriel LeBourgeois, Iwona Pranke, Aleksander Edelman and Bonnie W. Ramsey. Potentiating and correcting mutant CFTR in patients with cystic fibrosis. Faculté de Medicine René Descartes, Paris, France, 2014 ; 64 :129-149 3- Gilles Brackman Paul Cos, Louis Maes, Hans. J Nelis and Tom Coenye. Quorum sensing inhibitors increase the suceptibility of Bacterial biofilms to antibiotics. In vitro and in vivo . American Society of Microbiology 2011 ; 81 : 774-782

Poster\JAVIER RUIZ SANZ.pdf - 147.96.70.122147.96.70.122/Web/TFG/TFG/Poster/JAVIER RUIZ SANZ.pdf · 2- Diluciones seriadas sucesivas y cultivo en Placas de Petri o Cultivo puro (24h,36

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Miconazol

Materiales y métodos1- Placas de microtitulación:

o Cultivo puro (24h,36 ºC, agitación) en medio Muller-Hintono Formación de biopelículas a las 24h en placas de microtitulación a 36 ºC, en medio Muller-Hinton.o Añadir tratamientos :

o Tobramicina 0-8192 μMo Azoles 0-400 μM

o Cuantificación celular con resarzurina

2- Diluciones seriadas sucesivas y cultivo en Placas de Petrio Cultivo puro (24h,36 ºC, agitación) en medio Muller-Hintono Dividir bacteria en 12 tubos de Falcon y añadir tratamientos : Tobramicina ½ CMI + Azole 50 μM

o 3 tubos sin tratamiento (Control de Infección)o 3 tubos con Azoles (Control de azoles)o 3 tubos con Tobramicina (control de tobramicina)o 3 tubos con Tobramicina + Azoles

o Cultivo en placas de Petri con medio TSA tras dilución seriada sucesivao 48 horas : recuento

3-Protocolo con Galleria Mellonella o Infectar larvas con Burkholderia cenocepacia LMG 16656 y tratarlos con :

o Tobramicinao Azoleso Tobramicina 512 μg/ml + Azoles 50 μMo Establecer controles : No Infectadas, Infectadas y no tratadas, de tobramicina y azoles

o Incubar 24h a 36ºo Contar supervivientes /muertas tras 24, 48 y 72 horaso Triturar, cultivo en placas de Petri con medio BCC tras dilución seriada sucesivao Contar tras 48 horas

Objetivos1. Demostrar el efecto

sinérgico de la

Tobramicina junto con

distintas combinaciones

de Azoles sobre biopelículas de E.Coli

2. Determinar si el sinergismo

podría ser extensible a

células planctónicas de

Burkholderia

cenocepacia LMG 16656,

cuyos resultados en el

biopelículas se han

determinado en

publicaciones anteriores

3. Confirmar resultados in

vivo empleando células

planctónicas de

Burkholderia

cenocepacia LMG 16656

empleado el protocolo

de Galleria mellonella

Resultados1-Placas de microtitulación

Tobramicina + Miconazole en biopelículas de E.Coli

T

Tobramicina + Econazole en biopelículas de E.Coli

2-Diluciones seriadas sucesivas y cultivo en placas de Petri con células planctónicas de

Burkholderia cenocepacia LMG 16656

3-Protocolo con Galleria Mellonella% de supervivencia (24-48-72h)

Recuento de colonias en placas de Petri

Conclusiones1- Estudios anteriores con biopelículas de diferentes especies de Burkholderia cenocepacia

han demostrado un sinergismo entre la Tobramicina + Azoles2- Hemos observado que este sinergismo, a falta de ensayos en placas de microtitulación,

podría ser extensible a células planctónicas de Burkholderia cenocepacia LMG 166563- Hemos confirmado el sinergismo en otras biopelículas de bacterias Gram negativas, como

E.Coli4- Los resultados en los modelos in vivo no fueron significativos para concluir que la

combinación Tobramicina + Azoles se traduzca en un mayor % de supervivencia en las larvas de Galleria Mellonella. No obstante en una segunda fase de cuantificación se demostró la

combinación Tobramicina + Azole como más eficaz frente a la Tobramicina de forma aislada (menos UFC/ml)

5- Combinaciones de Tobramicina + Azoles podrían suponer una nueva estrategia farmacológica en el tratamiento de las infecciones pulmonares en pacientes con fibrosis

quística

Resistencia bacteriana por formación de biopelículas en pacientes con fibrosis quística. Nuevas perspectivas de tratamiento

Ruiz Sanz J **Facultad de Farmacia UCM

Agradecimientos a Freija Van den Driessche y Tom Coenye, Dpto. de Microbiología UGent

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Bibliografía1- Alejandro A.Pezzuelo, Xiao Xiao Tang, Mark J. Hoegger, Mahmoud H.Abou Alaiwa, Shyam

Ramachandran, Thomas O.Moninger , Philipp H. Karpp, Christine L. Wohlford-Lenane,. Rediuced airwaysurface pH impairs bacterial killing in the porcine cystic fibrosis lung . Nature 2012 ; 487 : 109-113

2- Isabelle Sermet-Gaudel us , Jacques de Blic, Muriel LeBourgeois, Iwona Pranke, Aleksander Edelmanand Bonnie W. Ramsey. Potentiating and correcting mutant CFTR in patients with cystic fibrosis. Faculté de

Medicine René Descartes, Paris, France, 2014 ; 64 :129-1493- Gilles Brackman Paul Cos, Louis Maes, Hans. J Nelis and Tom Coenye. Quorum sensing inhibitors

increase the suceptibility of Bacterial biofilms to antibiotics. In vitro and in vivo . American Society of Microbiology 2011 ; 81 : 774-782