UJI KESESUAIAN SUBSTRAT ORGANIK TERHADAP … · Pada garis besamya pengendalian jamur akar putih dapat dilakukan secara langsung dan tidak langsung. Pengendalian secara langsung dilakukan

i

UJI KESESUAIAN SUBSTRAT ORGANIK TERHADAP STREPTOMYCES SPP.

(MIKROORGANISME ANTAGONIS JAMUR AKAR PUTIH)

Oleh

Ml MADE PUSPAWATI Nl NENGAH DARMKATI

ANAK AGUNG AYU AGUNG SRI SUNARI KONSENTRASI HAMA DAN PENYAK1T TUMBUHAN

PROGRAM STUDI AGROEKOTEKNOLOGI FAKULTAS PERTANIAN UNIVERSITAS

UDAYANA 2016

ii

DAFTAR ISI

Halaman

JUDUL ........................................................................................................... i

ABSTRAK ..................................................................................................... ii

RINGKASAN ................................................................................................ iii

KATA PENGANTAR ................................................................................... vi

DAFTARISI ................................................................................................... vii

DAFTAR TABEL ......................................................................................... ix

DAFTAR GAMBAR ..................................................................................... x

DAFTAR LAMPIRAN ................................................................................. xi

I. PENDAHULUAN .............................................................................. 1

1.1 Latar Belakang ........................................................................... 1

1.2 Tujuan Penelitian ....................................................................... 5

1.3 Manfaat Penelitian ..................................................................... 5

1.4 Hipotesis .................................................................................... 5

II. TINJAUAN PUSTAKA .................................................................... 6

2.1 Pengendalian Hayati .................................................................. 6

2.2 Pertumbuhan dan Kebutuhan Nutrisi Streptomyces spp ........... 9

2.3 Substrat Organik ........................................................................ 13

III. BAHAN DAN METODE .................................................................. 15

3.1 Tempat dan Waktu penelitian .................................................... 15

3.2 Bahan dan Alat ........................................................................... 15

3.3 Metode Penelitian ....................................................................... 15

iii

3.3.1 Perbanyakan Isolat Antagonis Streptomyces spp .......... 15

3.3.2 Penyiapan Substrat Organik ........................................... 16

3.3.3 Inokulasi Antagonis ke dalam Substrat Organik ........ 16

3.3.4 Uji Kesesuaian Substrat terhadap Antagonis

Streptomyces spp ........................................................ 17

3.3.5 Analisis Komposisi Kimia dan Pengujian Beberapa Sifat

Fisika Substrat Organik ............................................... 18

3.3.6 Pengamatan 18

3.3.6.1 Pengukuran Diameter Koloni ......................... 19

3.3.6.2 Pengukuran Ketebalan dan Meratanya Miselium 19

3.3.6.3 Penghitungan Jumlah Streptomyces spp ............ 19

IV. HASIL DAN PEMBAHASAN ...................................................... 20

4.1 Pengaruh Substrat Organik terhadap Diameter Antagonis

Streptomyces spp ........................................................................ 20

4.2 Pengaruh Substrat Organik terhadap Ketebalan dan Meratanya

Miselium Antogonis Streptomyces spp ...................................... 24

4.3 Pengaruh Substrat Organik terhadap Jumlah Spora Antagonis

Streptomyces spp ........................................................................ 25

4.4 Komposisi Kimia dan Sifat Fisika Substrat Organik .............. 27

4.5 Pengaruh Komposisi Kimia dan Sifat Fisika Substrat Organik

terhadap Diameter Koloni Antagonis Streptomyces spp ........... 31

4.6 Pengaruh Komposis Kimia dan Sifat Fisika Substrat Organik

4.7 terhadap Jumlah Spora Antagonis Streptomyces spp ................ 32

iv

V. KESIMPULANDANSARAN .......................................................... 34

5.1 Kesimpulan ............................................................................. 34

5.2 Saran ........................................................................................ 34

DAFTAR PUSTAKA .................................................................................. 35

LAMPIRAN ................................................................................................... 39

v

DAFTAR TABEL

No. Judul Halaman

1. Rata-rata diameter Streptomyces spp. (cm) pada berbagai substrat

Organic ...................................................................................................... 21

2. Ketebalan dan meratanya miselium antagonis Streptomyces spp. pada

berbagai substrat organik ....................................................................... 24

3. Rata-rata jumlah spora antagonis Streptomyces spp. 31 hari setelah

inokulasi pada berbagai substrat organik ................................................. 26

4. Komposisi kimia dan sifat fisika substrat organik .................................. 28

5. Pengaruh komposisi kimia dan sifat fisika substrat organik terhadap

diameter koloni Streptomyces spp ............................................................. 75

6. Pengaruh masing-masing komposisi kimia dan sifat fisika substrat organik

terhadap diameter koloni Streptomyces spp .............................................. 75

7. Pengaruh komposisi kimia dan sifat fisika substrat organic terhadap jumlah

spora Streptomyces spp ............................................................................. 76

8. Pengaruh masing-masing komposisi kimia dan sifat fisika substrat organik

terhadap jumlah Spora Streptomyces spp .................................................. 76

vi

DAFTAR GAMBAR

No Judul Halaman 1. Pertumbuhan Streptomyces spp. pada berbagai substrat organic ............. 22 2. Kontribusi masing-masing koraposisi kiraia dan sifat fisika terhadap

diameter koloni Streptomyces spp ........................................................... 31 3. Kontribusi masing-masing komposisi kimia dan sifat fisika terhadap

jumlah spora Streptomyces spp ................................................................ 33 4. Ketebalan dan meralanya miselium Streptomyces spp. pada substrat

BS, DJ, RK, DKdan SG ........................................................................... 71 5. Ketebalan dan meratanva miselium Streptomyces spp. pada substrat

DJDK, RKDJ, SGDK dan SGRK ............................................................ 72 6. Ketebalan dan meratanya miselium Streptomyces spp. pada substrat

SGBS, BSDK, RKBS dan SGDJ ............................................................ 73 7. Ketebalan dan meratanya miselium Streptomyces spp. pada substrat

BSDJ dan DKRK ..................................................................................... 74

vii

DAFTAR LAMPIRAN

No. Judul Halaman 1. Diameter antagoms Streptomyces spp. 5 hari setelah inokulasi ............... 42 2. Diameter antagoms Streptomyces spp. 7 liari setelah Inokulasi .............. 45 3. Diameter antagoms Streptomyces spp. 9 hari setelah Inokulasi .............. 47 4. Diameter antagoms Streptomyces spp. 11 han setelah Inokulasi ............. 49 5. Diameter antagoms Streptomyces spp. 13 hari setelah Inokulasi ............ 52 6. Diameter antagoms Streptomyces spp. 15 hari setelah Inokulasi .......... 53 7. Diameter antagoms Streptomyces spp. 17 ivari setelah Inokulasi ........... 55 8. Diameter antagoms Streptomyces spp. 19 hn setelah Inokulasi ............... 57 9. Diameter antagoms Streptomyces spp. 21 hari setelah Inokulasi ............ 59 10. Diameter antagonis Streptomyces spp. 23 hari setelah Inokulasi ............ 61 11. Diameter antagonis Streptomyces spp. 25 hari setelah Inokulasi ............ 63 12. Diameter antagoms Streptomyces spp. 27 hari setelah Inokulasi ............ 65 13. Diameter antagonis Streptomyces spp. 29 hari setelah inokulasi ............. 67 14. Diameter antagoms Streptomyces spp. 31 hari setelah inokulasi ............. 69 15a. Jumlah spora antagoms Streptomyces spp. 31 hari setelah inokulas ........ 71

15b. Hasil perhitungan seteiah ditrasformasi ke 5,0x .......................... 72

15. Gambar ketebalan dan rneratanya misehum pada berbagai substrat organic ..................................................................................................... 74

16. Pengaruh komposisi kimia dan sifat fisika substrat organic terhadap diameter koloni Streptomyces spp ............................................. 76

17. Pengamh komposisi kinua dan sifat fisika substrat orgamk terhadap jumlah spora Strepiomvces spp ................................................................ 78

viii

ABSTRAK

Penelitian “Uji Kesesuaian Substrat Organik terhadap Streptomyces spp.

(Mikroorganisme Antagonis Jamur Akar Putih) “bertujuan untuk menemukan

substrat organik terbaik yang mana bahannya murah dan mudah didapat Pada

langkah selanjutnya diharapkan substrat organik ini dapat dipergunakan sebagai

media untuk pembiakan massal dalam pengendalian hayati di lapangan.

Hasil penelitian menujukkan tiga substrat organik yang menampakkan

pertumbuhan terbaik dilihat dari variabel diameter koloni dan jumlah spora serta

ketebalan dan meratanya miselium, substrat tersebut : residu kacang tanah + daun

jambu mete (RKDJ), daun jambu mete + dedak kasar (DJDK) dan serbuk gergaji

+ daun jambu mete (SGDJ). Substrat organik menunjukkan pengaruh sangat nyata

teitiadap variabel diameter koloni dan jumlah spora, begjtu pula dengan komposisi

kimia dan sifat flsika substrat menunjukkan pengaruh sangat nyata terhadap kedua

variabel tersebut.

Diantara ketiga substrat tersebut, campuran residu kacang tanah dan daun

jambu mete mengakibatkan pertumbuhan Streptotnyces spp paling baik,

disamping itu baharmya murah dan mudah didapat.

ix

RINGKASAN

Penyakit akar putih merupakan penyakit hama utama pada pengembangan

jambu mete lima tahun terakhir. Penyakit ini disebabkan oleh Rigidoporus

microporus (Swartz ; Fr.) van Overeem sehingga mengakibatkan penurunan

produksi dan kerugian cukup besar.

Penelitian “Uji Kesesuaian Substrat Organik terhadap Streptomyces spp.

(Mikroorganisme Antagonis Jamur Akar Putih)”, bertujuan untuk menemukan

substrat organik yang sesuai bagi pertumbuhan Streptomyces spp. Yang berasal

dari bahan yang murah dan mudah didapat. Selanjutnya keberhasilan pembiakan

massal tersebut berguna untuk memudahkan pengendalian hayati di lapangan.

Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan Fakultas

Pertanian Universitas Udayana, Denpasar. Penelitian berlangsung dari bulan

November 2014 sampai rcian Januari 2015. Rancangan yang digunakan adalah

Rancangan Acak Lengkap (RAL) jengan 15 perlakuan dan 3 kali ulangan.

Variabel yang diamati yaitu : diameter koloni, ketebalan miselium, meratanya

miselium dan jumlah spora. Guna mengetahui komposisi kimia dilakukan analisis

komposisi kimia dan pengujian beberapa sifat fisika substrat. Bahan substrat

organik diambil dari beberapa bagian tanaman meliputi : buah semu jambu mete,

serbuk gergaji (kayu kamper), dedak kasar, daun jambu mete dan residu kacang

tanah (batang dan daun).

Hasil penelitian menunjukka substrat organik berpengaruh sangat nyata

terhadap dnmeter koloni dan jumlah spora. Substrat yang menunjukkan diameter

x

terpanjang dan spora tertinggi adalah residu kacang tanah + Pada konsentrasi

rendah 6,95 ppm, pertumbuhan antagonis kurang baik, sedangkan pada

konsentrasi tinggi 115,35 ppm pertumbuhan antagonis cukup baik. Komposisi

kimia dan sifat fisika lain (NO3, PO4, DHL, K, C dan N) tidak berpengamh nyata,

tetapi memberikan kontribusi terhadap pertumbuhan Streptomyces spp.

Berdasarkan hasil pengujian terhadap 15 substrat organik didapatkan 3

substrat yang menunjukkan pertumbuhan paling baik yaitu : residu kacang tanah +

daun jambu mete (RKDJ), daun jambu mete + dedak kasar (DJDK) dan serbuk

gergaji + daun jambu mete (SGDJ). Disamping itu dengan pertimbangan mudah

dan murahnya bahan maka, dipilih substrat campuran residu kacang tanah dan

daun jambu mete sebagai substrat untuk membiakkan antagonis Streptomyces spp.

xi

KATA PENGANTAR

Fuji syukur penulis panjatkan kehadirat Ida Sanghyang Widi Wasa/Tuhan

Yang Maha Esa, karena berkat rahmat-Nyalah, keseluruhan penelitian ini

terselesaikan.

Penelitian berjudul “Uji Kesesuaian Substrat Organik terhadap

Streptomyces spp. Mikroorganisme Antagonis Jamur Akar Putih) “dilaksanakan

di Laboratorium Ilmu Penyakit Tumbuhan. Fakultas Pertanian Universitas

Udayana.

Pada kesempatan ini penulis ingin menyampaikan terima kasih yang

sedalam - dalamnya kepada :

1. Prof. Dr. Ir. I Nyoman Rai, MS. Selaku Dekan Fakultas Pertanian

Universitas Udayana yang telah mengijinkan penelitian ini.

2. Prof. Dr. Ir. I Made Sudamia, MS., selaku Ketua Jurusan/Program Studi

Agroekoteknologi Fakultas Pertanian Universitas Udayana.

3. Semua pihak yang tidak dapat penulis sebutkan satu persatu atas

segala bantuannya selama penelitian ini berlangsung sampai selesai.

Penulis mengharapkan segala saran dan kritik yang bersifat konstruktif

dari pembaca sangatlah penulis harapkan demi kemajuan selanjutnya. Semoga

tulisan ini bermanfaat bagi yang memerlukannya.

Denpasar, Januari 2016

Penulis

1

I. PENDAHULUAN

1.1. Latar Belakang

Pengembangan jambu mete secara komersial di Bali telah dilakukan

sejak tahun 1974 dan terus meningkat, hingga tahun 1993 tercatat mencapai

luas areal 16.325 ha yang tersebar di lima kabupaten yaitu : Karangasem,

Buldeng, Klungkung, Badung dan Bangli (Dinas Perkebunan Propinsi

Daerah Tk. 1 Bali 1994).

Produktivitas jambu mete di Bali mengalami peningkatan antara

tahun 1989 sampai tahun 1991 dari 82 kg/ha tahun 1989 menjadi 387 kg/ha

pada tahun 1991 tetapi pada tahun-tahun berikutnya produktivitas ini

meraimn karena adanya hambatan dalam pengembangan jambu mete, salah

satunya adalah penyakit akar putih. Pada tahun 1992 dilaporkan bahwa

tanaman jambu mete yang terserang sebanyak 1.298 pohon (6,5 ha),

kemudian menjadi 6.604 pohon (333 ha) pada tahun 1993 dan sampai bulan

Oktober 1994 mencapai 24.450 pohon (122 ha). Penyakit akar putih

disebabkan oleh Rigidoporus microporus (Swartz : Fr.) van Overeem,

merupakan suatu jenis jamur yang tergolong kelas Basidiomycetes (Basuki,

1985). Jamur ini mempunyai tiga puluh lima sinonim dan ada beberapa

yang sering dipakai diantaranya : Fomes lignosus Klotzsch, Leptoporus

lignosus (Klotzsch) Heim et Pat Fomes semitosus Petch, dan Rigidoporus

lignosus (Klotzsch) Imazeki (Overeem, 1924). Perkembangan jamur akar

2

putih didukung oleh kondisi lingkungan tertentu seperti musim kemarau

yang terlalu kering dan pH tanah netral sampai basa.

Infeksi jamur akar putih lebih mudah terjadi melalui luka atau lenti

sel dan selanjutnya jamur masuk ke dalam jari-jari empulur (John, 1985).

Menurut Young, (1954) ada dua jenis infeksi yaitu : 1) Infeksi akut, yang

menyebabkan gejala yang jelas ; 2) Infeksi kronis (laten, menahun), gejala

yang ditimbulkan tidak jelas.

Pada garis besamya pengendalian jamur akar putih dapat dilakukan

secara langsung dan tidak langsung. Pengendalian secara langsung

dilakukan dengan menentukan pohon sakit dan kemudian mengobatinya,

sedangkan secara tidak langsung dengan menghilangkan sumber infeksi

secara mekanis, biologjs maupun kimiawi (Semangun, 1989).

Pengendalian jamur akar putih sampai saat ini masih mengalami

hambatan diakibatkan mudahnya penularan penyakit tersebut melalui

kontak antara akar tanaman sakit dengan akar tanaman sehat ataupun sisa-

sisa akar tanaman yang merupakan sumber inokulum di lapangan. Ada

beberapa cara yang sudah dilakukan untuk mengendalikan penyakit tersebut

antara lain : 1) Kultur teknis dengan pemupukan yang seimbang, perbaikan

drainase kebun dan pengendalian gulma; 2) Pengendalian secara mekanis

dengan menghilangkan dan memotong bagian akar yang terserang pada

tanaman muda yang masih dapat dipertahankan dan untuk yang terserang

berat atau mati, bagian tunggul serta akamya dibongkar dan dibakar di

3

tempat ; 3) Mengaplikasikan fungisida khususnya pada tanaman yang

menunjukkan gejala terserang ringan dan sedang.

Penerapan cara tersebut seringkali tidak memberikan hasil yang

memuaskan dan hanya bersifat sementara, pengendalian secara kimiawi

sering meninggalkan residu pestisida yang dapat menimbulkan dampak

negatif bagi lingkungan.

Pengendalian hayati dengan memanfaatkan mikroba antagonis

diharapkan dapat menggantikan pengendalian secara kimia. Pemanfaatan

mikroba antagonis dapat dilakukan dengan 2 cara yaitu : 1) Memanipulasi

lingkungan untuk meningkatkan aktivitas dan perkembangan mikroba

antagonis yang ada; 2) Dengan mengintroduksi secara massal mikroba

antagonis yang telah terbukti dan teruji kemampuannya (Sinaga, 1986).

Usaha pengendali penyakit jamur akar putih menggunakan mikroba

antagonis untuk tanaman jambu mete di daerah Bali saat ini sedang

dilakukan.

Beberapa mikroba telah ditemukan dan mempunyai potensi sebagai

agen pengendali hayati bagj patogen yang menyerang perakaran tanaman.

Kebanyakan yang telah diuji adalah jamur dari genus Trichoderma spp.

seperti T. honingii ( Basuki, 1985) T. hamatum (Lewis dan Papavizas, 1986)

T. harzianum, T. polysorium dan T. viridae (Mulya dan Manohara, 1988)

dan dari genus Gliocladium spp. (Sinaga, 1994), juga telah diuji

kemampuan bakteri Pseudomonas khususnya yang mempunyai kemampuan

membentuk siderofor. Pada penelitian terakhir dari Tim Peneliti

4

Pengendalian Biologi Penyakit Akar Putih Jambu Mete Fakultas Pertanian

Universitas udayana, telah menemukan satu genus yang mampu menekan

pertumbuhan jamur akar putih pada jambu mete, yaitu Streptomyces.

Melalui pengujian, Steptomyces memiliki daya tekan yang cukup tinggi.

Genus ini menghasilkan banyak sekali jenis antibiotika, baik yang memiliki

spektrum luas maupun yang sempit dan spesifik. Antibiotika yang

dihasilkan oleh beberapa spesies atau strain dari Streptomyces spp. memiliki

spektrum yang paling luas dibandingkan dengan beberapa genus lainnya.

Beberapa antibiotika yang dihasilkan mampu aktif pada jamur, bakteri,

tumor, riketsia dan virus secara luas, sedangkan beberapa spesies memiliki

keaktifan yang sempit dan spesifik (Waksman, 1959).

Keberhasilan penggunaan mikroba yang metnpunyai daya

antagonistik yang kuat sangat ditentukan oleh kondisi lingkungan yang baru

dan juga harus ditunjang oleh keberhasilan pembiakan massal inokulum

agen tersebut (Sinaga, 1994). Untuk membiakkan agen hayati secara massal

memerlukan substrat yang diharapkan berasai dari bahan yang mudah

didapat dan murah secara ekonomis, sehingga nantinya dapat menekan

biaya pengendalian dan mudah dalam penerapannya. Keberhasilan dalam

pembiakan massal sangat ditentukan oleh substrat dan antagonis, dimana

bila substrat sesuai dengan yang dibutuhkan oleh antagonis, maka antagonis

tersebutakan mampu tumbuh dengan baik. Beberapa antagonis memiliki

kemampuan beradaptasi yang berbeda-beda terhadap media Kandungan

nutrisi dan komposisi beberapa substrat organik diharapkan dapat

5

memenuhi kebutuhan mikroba antagonis sehingga dapat beradaptasi dan

terangsang pertumbuhannya. Jika kedua faktor tersebut dapat saling

mdengkapi maka antagonis dapat berhasil dibiakkan secara massal, pada

langkah selanjutnya mikroba antagonis dapat diaplikasikan di lapangan

dengan tingkat keberhasilan lebih besar. Temaja (1994) menyatakan substrat

pendukung tersebut dapat berupa bahan organik atau residu tanaman yang

cocok bagi mikroba, sehingga mikroba yang tdah diaplikasikan secara

massal akan mempunyai cadangan makanan yang cukup sampai mempunyai

kemampuan untuk beradaptasi dengan lingkungan. Menurut Johnson dan

Curl (1972) residu tanaman tua menghasilkan pengaruh yang lebih baik

dibandingkan dengan tanaman yang masih hijau. Sisa tanaman yang

dipotong-potong sampai 3 mm atau lebih kecil, memberikan pengaruh lebih

efektif pada pertumbuhan organisme dari pada yang kasar (Maier, 1959).

Berdasarkan hal tersebut penulis berkeinginan untuk membuat

substrat organik yang sesuai bagi isolat antagonis Streptomyces spp.

Diharapkan substrat ini bisa digunakan dalam pembiakan massal antagonis

tersebut

1.2. Tujuan Penelitian

Penelitian ini bertujuan untuk rnenemukan substrat organik yang

cocok bagi pertumbuhan dan perkembangan antagonis Streptomyces spp.

6

1.3. Manfaat Penelitian

Ditemukannya substrat organik yang sesuai dengan Streptomyces

spp, akan memudahkan pembiakan massal untuk kebutuhan aplikasi di

lapangan.

1.4. Hipotesis

Pertumbuhan dan perkembangan mikroba antagonis Streptomyces

spp, dipengaruhi oleh substrat yang mengandung residu kacang tanah.

7

II. TINJAUAN PUSTAKA

2.1. Pengendalian Hayati

Pengendalian hayati adalah meliputi setiap usaha pengurangan atau

penurunan penyakit atau potensi inokulum patogen dengan cara

menggunakan agensia biologi yang lain secara langsung maupun tidak

langsung (Johnson dan Curl, 1972). Garret (1965) mengartikan agensia

biologi yang lain secara lebih spesifik yaitu membatasi pada

mikroorganisme atau makroorganisme selain tanaman dan patogennya

sendiri. Dalam hal ini penggunaan varietas tahan, prainokulasi tanaman

dengan strain avirulen dan manusia sebagai peiaku pengendali tidak

termasuk sebagai agensia biologi yang lain menurut konsep ini.

Satu konsep tentang pengendali hayati dilontarkan oleh Baker dan

Cook (1983) sebagai hasil penggabungan berbagai definisi sebelumnya

sebagai berikut: Pengendalian hayati adalah pemanfaatan organisme untuk

menekan jumlah inokulum atau “disease-producing activity yang meliputi

pertumbuhan, agresivitas dan virulensi dari suatu patogen dalam keadaan

aktif atau dorman.

Pengendalian hayati dipilih karena pengendali ini dapat menjawab

beberapa problema pertanian diantaranya : meningkatkan produksi tanaman

tanpa terlalu banyak menggunakan energi, menghindari terbentuknya

resistensi patogen terhadap bahan kimia, mencegah terjadinya polusi

8

lingkungan dan metode ini nuatibel dengan konsep pertanian berkelanjutan

(Arya, 1995).

Menurut Arya (1994) konsep dasar dari pengendali hayati adalah

berwawasan ekosistem artinya pengendali ini tidak melenyapkan patogen

penyebab penyakit secara total, tetapi membavva mereka ke dalam

keseimbangan biologi. Hal tersebut dapat dilakukan dengan memanfaatkan

agens hayati untuk menyelaraskan hubungan dari komponen ekosistem guna

menghindari munculnya spesies dominan yang pada akhirnya merupakan

patogen tanaman.

Salah satu metode yang memberikan harapan dan sering digunakan

untuk menanggulangi patogen dalam tanah secara hayati ialah dengan

pengaturan kandungan residu tanaman dan bahan organik dalam tanah.

Penurunan intensitas penyakit akibat penambahan substansi ke dalam tanah

terjadi melalui pengaruh antagonisme. Mekanisme penekanan

perkembangan patogen terjadi melalui proses kompetisi, predasi,

parasitisme, antibiosis atau mekanisme lain yang bersifat merugikan bagi

patogen (Patrick dan Tousson, 1970).

Hadi et al. (1975) mengemukakan bahwa bahan organik cukup

efektif untuk mengurangi intensitas penyakit. Juga diketahui efisiensi

pergiliran tanaman untuk pengendalian berbagai jenis penyakit yang

disebabkan oleh patogen dalam tanak Keuntungan cara ini mungkin tidak

hanya karena “kelaparan” dari patogen disebabkan karena tiadanya inang,

9

tetapi juga karena perangsangan sifat antagonistik dari flora mikro dalam

tanah dengan adanya tanaman bukan inang dan sisa tanaman bukan inang.

Akibat kompetisi akan substrat dan lingkungan yang

memberikan kemungkinan hidup, sangatlah berat. Dalam kompetisi untuk

makanan dan ruang, semua jasad berinteraksi secara langsung maupun tidak

langsung dengan jasad lain yang ada didekatnya. Kompetisi yang sangat

berat mengakibatkan jasad yang memiliki pengaruh tidak menguntungkan

terhadap jasad lain yang ada didekatnya, menang dalam kompetisi.

Makanan dalam tanah umumnya terbatas persediaannya, akumulasi

dari hasil sampingan proses metabolisme, kerap kali berpengaruh tidak baik

untuk kelangsungan pertumbuhan jasad renik. Oleh karena itu penambahan

inokulum harus disertai dengan perubahan lingkungan itu sedemikian rupa

sehingga menguntungkan antagonis yang kita berikan. Mungkin sekali

bahwa dengan menanam residu tanaman ke dalam tanah dapat pula

menyebabkan populasi antagonis menjadi lebih besar.

Pengendalian hayati terhadap berbagai penyakit tumbuhan akibat

jamur dalam tanah diarahkan pada memodifikasi tanah sehingga

perkembangan antagonis saprofitik mencapai populasi maksimum.

Pengendalian ini digambarkan sebagai keseimbangan dinamik suatu

populasi hayati dalam tanah (Waksman, 1959). Salah satu usaha yang dapat

dilakukan dengan mengembangankan metode pengendalian patogen secara

biologi yaitu dengan mencampurkan antagonis dan bahan organik yang

10

cocok dengan tujuan mempercepat pemantapan antagonis dalam tanah

(Baker dan Cook, 1974).

Meraksi antara inang, patogen dan lingkungan ternyata lebih

kompleks danpada yang disangka semula. Sehingga ke dalam segitiga

penyakit perlu ditambahkan peranan mikroorganisme lain yang dapat

digunakan sebagai pengendali hayati secara tepat dan efektif (Modjo, 1991).

Baker (1983) menggambarkan suatu mekanisme pengedalian hayati

sebagai segitiga yang menghubungkan inang, patogen dan agen pengendali

hayati, dimana mekanisme pengendalian hayati berlangsung berupa

interaksi di dalam tanaman inang yang meliputi : 1) Ketahanan terimbas

(proteksi silang) ; 2) Inhibitor atau kompetisi ; 3) Hipovirulen. Mekanisme

pengendalian hayati di luar tanaman dilakukan oleh antagonis. Hal tersebut

terjadi melalui proses : 1) Antibiosis ; 2) Kompetisi; 3) Eksploitasi (meliputi

predasi dan hiperparasitisme).

Ada beberapa agens antagonis yang dilaporkan memiliki potensi

untuk menekan perkembangan jamur akar. Diantaranya dari genus

Trichoderma, Gliocladuim (Sinaga, 1994) dan Pseudomonas khususnya

yang mempunyai kemampuan membentuk siderofor. Beberapa species dari

genus Trichoderma yang ditemukan mampu berperan sebagai pengendali

penyakit tanaman adalah T. koningii (Basuki, 1985 ), T. hcanatum (Lewis

dan Papavizas, 1986) T. liarzianum, T. polysorium dan T. viridae (Mulya

dan Manohara, 1988). Penelitian terakhir dari Tim Peneliti Pengendalian

Biologi Penyakit Akar Putih Jambu Mete Fakultas Pertanian Universitas

11

Udayana, telah memukan satu genus yang memiliki daya tekan yang tinggi

terhadap jamur akar putih jambu mete yaitu Streptomyces.

2.2. Pertumbuhan dan Kebutuhan Nutrisi Streptomyces spp.

Streptomyces merupakan salah satu genus dari Divisio

Actinomycetes. Telah diketahui bahwa Actinomycetes merupakan

organisme transisi (peralihan) antara jamur dan bakteri. Menurut Waksman

(1959) klasifikasi Streptomyces sebagai berikut:

Divisio : Actinomyces

Kelas : Actinomycetes

Ordo : Aetinomycetales

Famiii : Streptomycetae

Genus : Streptomyces

Organisme ini dianggap kebanyakan peneliti sebagai organisme

transisi berdasarkan hubungannya dengan jamur dan bakteri. Peneliti

terdahuiu yang mengklasifikasikan Actinomycetes ke dalam jamur

diantaranya : Harz, Gasperini, Sauvageau dan Radais.

Selanjutnya ada kelompok peneliti yang lebih cenderung

memasukkan Actinoraycetes kedalam kelompok transisi, hal ini didasarkan

adanya perbedaan nyata dari penyusun Actinomycetes khususnya

morfologi alamiah sehingga sebagian besar menempatkannya antara bakteri

dan jamur.

12

Beberapa penelitian menunjukkan bahwa Streptomyces spp yang

diisolasi dari dalam tanah dan perrnukaan memiliki keunggulan lebih

banyak dari pada jamur dan bakteri umumnya. Waksman (1959)

memperkirakan Streptomyces spp. menjadi sangat beriiasil diantara selumh

mikroorganisme, karena memiliki keseimbangan sifat yang menguntungkan

seperti : 1) Kecepatan perkembangbiakan dan mekanisme eflsiensi; 2) Lama

hidup dari organisme (yiabilitas) ; 3) Resistensi organisme tertiadap

pengaruh luar.

Seperti halnya organisme lain, fisiologi pertumbuhan dan kebutuhan

nutrisi dari Streptomyces sangat menarik untuk diketahui. Beberapa hal

yang menyangkut fisiologi Streptomyces meliputi studi tentang

pertumbuhan, nutrisi, proses metabolismenya dan reaksinya terhadap

kondisi lingkungan.

Pertumbuhan Streptomyces griseus sangat maksimal pada media

yang padat dalam sepuluh hari dan media terendam 3 sampai 5 hari, diikuti

oleh lisis miselium Pertumbuhan mikroba tersebut diikuti meningkatnya pH

media, kandungan amonia dan kebutuhan nitrogen. Jumlah nitrogen dalam

miselium setara dengan tingkat pertumbuhan. Produksi dan penyebaran

streptomisin setara dengan perturnbuhan organisme. Sebelum aktivitas

maksimum tercapai, terjadi penurunan kecepatan pertuinbuhan khususnya

pada media terendarn. Produksi dari streptomisin memerlukan adanya

substansi organik yang komplek pada media, salah satu akan menjalankan

prekursor dari molekul streptomisin atau semua kelompok penting dalam

13

molekul atau berfungsi sebagai kelompok prostetik pada mekanisme dasar

untuk sintesis antibiotika Substansi ini menunjukkan aktivitas, yang dapat

dilakukan oleh organisme dalam media yang lengkap. Pada ekstrak daging

atau jagung rendam proses sintesis antibiotik sangat mudah berlangsung

(Waksman, 1959).

Penelitian metabolisme S. aureofacien dalam media komplek berisi

sukrose dan protein, Biffi et al, ((-), dalam Waksman 1959) menemukari

sintesis miselium tumbuh cepat pada 24 jam pertama kanudian

kecepatannya berkurang pada 24 jam berikutnya. Pada waktu 12 jam

pertama konsumsi gula dapat diabaikan, saat kandungan NH3 meningkat

pada media, protein digunakan sebagai sumber energi. Meningkatnya

pertumbuhan mengakibatkan penggunaan gula dan konsumsi amoniak

meningkat cepat, nilainya setara dengan meningkatnya berat kering

organisme.

Proses metabolisme terbagi menjadi 2 fase, crescene dan senescene.

Pada fase pertama, terjadi penyerapan nitrogen terlarut, karbon dan fosfat ke

dalam miselium, keperluan oksigen tinggi dan penggunaan glukose sangat

cepat tetapi produksi antibiotika sangat kecil. Pada fase kedua berat miselia

berkurang, penyerapan fosfat dan nitrogen menurun, keperluan oksigen

terhenti dan produksi streptomisin meningkat. Beberapa laktat juga

terbentuk pada waktu tingkat awal tetapi lambat (Dulaney dan Perlman,

1956 dalam Waksman, 1959).

14

Ada beberapa pernyataan dari para peneliti yang mengungkapkan

kebutuhan in sumber karbon dari Streptomyces diantaranya: Stapp dan

Spicher (1958 dalam Waksman, 1959) menyatakan beberapa spesies

Streptomyces mampu tumbuh pada media yang memiliki sumber karbon

dengan konsentrasi yang tinggi.

Dalam proses metabolisme diperlukan mineral dan unsur lain yang

merupakan komponen dari proses metabolisme tersebut. Elemen mineral

menempati peran yang sangat penting dalam pertumbuhan organisme.

Fungsinya sebagai pengatur mekanisme dari berbagai transformasi yang

terdapat didalam sistem kehidupan. Komposisi sebagian besar media

sintetik yang digunakan pada pertumbuhan actinomycetes, memerlukan

fosfor, belerang, besi, kalium, magnesium dan juga elemen organik dalam

beberapa keadaan, seperti dalam produksi dari beberapa antibiotik, pigmen

dan vitamin, begitu pula elemen seperti, kalium, kalsium, cWorin, mangan,

cobalt dan seng menempati bagian yang sangat penting pada reaksi biokimia

yang rumit.

Thornberry dan Anderson ( dalam Waksman, 1959) meneliti media

sintetik untuk memproduksi streptomisin yang mengandung karbon,

beberapa nitrogen, kalium, magnesium, seng, besi, copper dan mangan.

Pengaruhrrya dilihat dengan menghilangkan unsur tersebut dari media,

kemudian hasil pengamatan dibandingkan dengan media komplek, sehingga

dapat disimpulkan bahwa kalium, magnesium, seng dan besi dibutuhkan

untuk memproduksi streptomisin. Unsur lain seperti mangan dapat

15

merangsang produksi antibiotik tetapi tidak berpengaruh terhadap

pertumbuhan, sedangkan kalsium tidak berpengaruh pada produksi

antibiotik ataupun pertumbuhan.

Protein, pepton dan beberapa asam amino adalah merupakan sumber

nitrogen terbaik untuk Actinomycetes diikuti oleh nitrat, garam amonium

dan urea. Actinomycetes tidak mampu mengikat nitrogen dan hanya dapat

bergantung kepada mayoritas jamur dan bakteri, dalam mengikat komponen

nitrogen untuk sintesis selnya.

Lieske (1921 dalam Waksman, 1959).Sumber nitrogen yang sangat

baik untuk beberapa Actinomycetes pada substrat organik yaitu nitrat dan

nitrit Nitrat dan nitrit direduksi menjadi amoniak kemudian diasimilasi

untuk seluruh sintesa Proses reduksi menjadi nitrogen (amoniak dan

hydroxylamme) sangat mudah pada konsentrasi rendah (tidak lebih dari 10-

12 persen). Kondisi ini memungkinkan bila rasio dari C : N tidak lebih dari

20 : 1.

2.3. Substrat Organik

Penggunaan residu tanaman atau bahan organik dalam

penanggulangan patogen telah banyak dilakukan, antara lain terhadap busuk

akar kacang buncis, tembakau dan wijen yang disebabkan Thielaviopsis

basicola (Berk & Br.) dengan menggunakan residu alfalfa dan jagung

(Adam dan Papavizas, 1969), busuk akar pada apokat yang disebabkan

Phytophthora cirmamoni Rands, dengan menggunakan tepung alfalfa

16

(Zentmyer, 1963), dan busuk akar jeruk yang disebabkan P. parasitica Dast

dengan menggunakan residu dari tanaman kubis-kubisan. Penggunaan

residu tanaman tersebut menyebabkan menurunnya tingkat serangan

patogen tanah. Kasim (1985) menyatakan bahwa residu berbagai tanaman

(padi, jagung, kacang kedelai, kacang tanah dan kacang hijau) dengan cara

dicampur dengan tanah dan yang diberikan dipermukaan tanah (sebagai

mulsa) pada percobaan pot di rumah kaca, mempunyai pengaruh yang

berbeda terhadap perryakit busuk pangkal batang lada (Phytophihora

palmivora (Butler) Butler). Pemberian residu sebanyak 2 persen dengan cara

dicampur tanah telah dapat menurunkan intensitas penyakit busuk pangkal

batang lada {Phytophlhora palmivora) beddsar antara 20 sampai 58 persen,

sedangkan pemberian sebagai mulsa temyata meningkatkan serangan

sebesar 27 persen.

Berdasarkan kenyataan di atas, residu tanaman atau bahan organik

memiliki potensi untuk dijadikan substrat yang dapat merangsang

pertumbulian mikro organisme antagonis, sehingga populasinya meningkat

dan dapat menekan patogen tanah

17

III METODE PENELITIAN

3.1. Tempat dan Waktu Penelitian

Penelitian dilakukan di Laboratorium Ilmu Penyakit Tumbuhan,

Fakultas Pertanian Universitas Udayana, Denpasar. Penelitian berlangsung

selama tiga bulan yaitu bulan November 2014 sampai dengan Januari 2015.

3.2. Alat dan Bahan Penelitian

Peralatan yang digunakan dalam penelitian terdiri dari pH meter,

mesin penggiling, centrifius, timbangan, gelas ukur, gelas beker, cawan

petir, pinset, tabung reaksi, elemeyer, pipet Pasteur, pipet 10 ml, pipet 1 ml,

bor gabus, lampu spritus, autoclave, mikroskop, hemasitometer, ent cast,

selotip, label, kain lap dan ember. Bahan yang digunakan dalam penelitian

ini adalah media potato dextrose agar (PDA), biakan antagonis

Streptomyces spp, aluminium foil, dedak kasar, serbuk gergaji (kayu

kamper), residu kacang tanah (batang dan daun), buah semu jambu mete,

daun jambu mete, alcohol 70%, tissue dan aquades.

3.3. Metode Penelitian

3.3.1 Perbanyakan Isolat Antagonis Streptomyces spp.

Guna mendapatkan biakan Streptomyces spp, yang cukup untuk

penelitian, maka dilakukan perbanyakan pada media PDA dalam cawan

petri.

18

Biakan yang sudah murni dipindahkan ke media PDA secara aseptik

dengan menggunakan jarum isolasi di dalam ruang suci hama. Biakan

tersebut kemudian dinkubasikan pada suhu ruang selama 7 hari untuk

mendapatkan sumber inokulum yang homogeny.

3.3.2 Penyiapan Substrat Organik

Substrat organik yang digunakan adalah yang murah dan mudah

didapat. Bahan tersebut terdiri dari buah semu jambu mete, dedak kasar,

residu kacang tanah (batang dan daun), serbuk gergaji (kayu kamper) dan

daun jambu mete. Bahan tersebut dihaluskan dengan mesin penggiling

kecuali buah semu jambu mete. Buah tersebut djblender terlebih dahulu,

diperas dan dianginkan, baru nudian dikeringkan dengan oven selarna dua

hari pada suhu 50°C. Setelah kering, dihaluskan dengan mesin penggiling

Selanjutnya bahan-bahan tersebut direndam secara terpisah selarna 24 jam,

kemudian diperas sampai kadar airnya ± 45%. Masing-masing bahan

ditimbang seberat 5 gram dan dimasukkan ke dalam cawan petri. Setelah

substrat diratakan, kemudian dibungkus dengan alumunium foil

Selanjutnya disteril 3 kali dengan auto clave selarna 60 menit 15 psi

dengan jelang waktu 2 hari. Hal ini dilakukan untuk meyakinkan substrat

tersebut steril.

3.3.3 Inokulasi Antagonis ke dalam Substrat Organik

Biakan yang sudah disipkan di atas diinokulasikan pada substrat

organik yang sudah disiapkan. Biakan Streptomyces spp. dipindahkan

secara aseptik dengan menggunakan bor gabus berdiameter 0,5 mm dan

19

diletakkan dengan jarum isolasi pada bagian tengah substrat pada setiap

cawan petri. Isolasi tersebut dilakukan secara aseptik dalam ruang suci

hama dan menggunakan lampu sepritus untuk aga kesterilan alat-alat yang

digunakan. Substrat yang sudah diinokulasi kemudian ditutup rapat

dengan selotip untuk menghindari kontaminasi.

3.3.4 Uji Kesesuaian Substrat Organik terhadap Antagonis Strfptomyces

spp.

Guna mengetahui kemampuan pertumbuhan Streptomyces spp.

pada berbagai substrat maka, dilakukan pengujian dengan menggunakan

Rancangan Acak Lengkap (RAL), yang terdiri dari 15 perlakuan dengan 3

kali ulangan. Substrat yang diuji:

BS = buah semu jambu mete

DJ = daun jambu mete

SG = serbuk gergaji

DK = dedak kasar

RK = residu kacang tanah

SGBS = serbuk gergaji + buah semu jambu mete

BSDK = buah semu jambu mete + dedak kasar

RKBS = residu kacang tanah + buah semu jambu mete

SGDJ = serbuk gergaji + daun jambu mete

DJDK = daun jambu mete-t-dedak kasar

RKDJ = residu kacang tanah + daun jambu mete

SGDK = serbuk gergaji + dedak kasar

20

SGRK = serbuk gergaji + residu kacang tanah

BSDJ = buah semu jambu mete + daun jambu mete

DKRK = dedak kasar + residu kacang tanah

3.3.5 Analisis Kompoxisi Kimia dan Pengujian Bdberapa Sifat Fisika

Substrat Organik

Pengkuran dan analisis komposisi kimia dan sifat fisika yang

dikerjakan pada penelitian ini adalah : pH substrat, C7 N, NH3, PO4, NG3

K dan daya hantar listrik (DHL).

Substrat yang akan diukur pH-nya ditimbang sebanyak 50 gram

kemudian diencerkan dengan aquades hingga menjadi 50 ml, dimasukkan

dalam tabung reaksi kemudian dikocok dengan mesin pengocok selama 30

menit Setelah dilakukan pengocokan diukur dengan menggunakan pH

meter.

Analisis C dan N substrat dilakukan di Laboratorium jurusan tanah

Fakultas Pertanian Universitas Udayana. Analisis C menggunakan metode

Kejedalh (Anon, 1958) dan analisis N menggunakaan metode pengabuan

kering (Anon, 1958)

Analisis NH3, PO4, NO3, K dan DHL (daya hantar listrik) substrat

dilakukan di Laboratorium Analitik Fakultas MTPA Universitas Udayana

Analisis daya hantar listrik dilakukan dengan alat conductivity meter kit,

analisa NO3 dengan metode standar nitrat, PO4 dengan metode asam

sulfat-asam nitrat, NH3 dengan metode Nessler dan K dengan metode

Pengabuan basah (Saeni dan Darusman, 1989).

21

3.3.6 Pengamatan

Variabel yang diamati antara lain diameter koloni, ketebalan

miselium, meratanya miselium dan jumlah spora yang terbentuk pada

substrat.

3.3.6.1 Pengukuran Diameter Koloni

Pengukuran terhadap diameter koloni dllakukan 5 hari seteiah

mokulasi, ukuran dilakukan dengan menggunakan plastik trasparan

bersekala. Selang waktu pengukuran adalah dua hari sampai salah satu

petri dipenuhi oleh antagonis.

3.3.6.2 Pengukuran Ketebalan dan Meratanya Miselia

Pengukuran ketebalan dan meratanya miselia antagonis dilakukan

dengan pengamatan visual terhadap miselia antagonis dengan skala

kualitatif sebagai benkut :

Tebal dan merata : ++++

Ketebalan sedang dan agak merata : +-H-

Ttpis : ++

Sangat tipis : +

Tidak mengalami pertumbuhan : -

Pengamatan dilakukan pada saat salah satu cawan petri sudah

dipenuhi oleh antagonis Streptomyces spp (akhir penelitian).

22

3.3.6.3 Penghitungan Jumlah Spora Steptomyces spp.

Untuk menghitung jumlah spora antagonis ini digunakan metode

Hitungan Mikroskopis Langsung (Direct Microscopic Count). dengan

menggunakan hemasitometer.

23

IV HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1. Pengaruh Substrat Organik terhadap Diameter Koloni Streptomyces

spp.

Tingkat pertumbuhan antagonis Streptomyces spp. pada berbagai

substrat organik terlihat pada perkembangan diameter antagonis.

Berdasarkan Lampiran 1-15 dapat dilihat bahwa substrat organik

memberikan pengaruh sangat nyata (p<0,01) terhadap diameter antagonis

Streptomyces spp. pada semua pengamatan. Untuk membandingkan masing-

masing perlakuan, dilakukan uji jarak berganda Duncant (Tabel 1.).

Setelah inokulasi pertumbuhan Streptomyces spp. terus meningkat,

kecuali pada empat substrat yaitu : buah semu (BS), buah semu + daun

jambu mete (BSDJ), serbuk gergaji + buah semu (SGBS), buah semu +

dedak kasar (BSDK) dari awal inokulasi sampai akhir pengamatan tidak

memperlihatkan gejala pertumbuhan. Hal ini disebabkan pH pada substrat

tersebut rendah (dibawah 4,0), dimana pH substrat berpengaruh sangat nyata

(p<0,01) terhadap diameter Streptomyces spp. Diameter terpanjang terlihat

pada substrat residu Kacang tanah + daun jambu mete (RKDJ) dengan pH

7,05 yang mendekati kisaran pH optimum (7,1 - 8,0) dari Streptomyces spp.

Tingkat pertumbuhan Streptomyces pada masing-masing perlakuan

ditampilkan pada Gambar 1. Grafik pertumbuhan Streptomyces spp.

meningkat cukup tinggi pada awal penelitian (7 dan 9 hari setelah inokulasi)

seperti pada : residu kacang tanah (RK), residu kacang tanah + buah semu

24

(RKBS), serbuk gergaji + daun jambu mete (SGDJ), daun jambu mete +

dedak kasar (DJDK), RKDJ, serbuk gergaji + residu kacang tanah (SGRK)

dan dedak kasar + residu kacang tanah (DKRK). Unsur yang merupakan

pendorong pertumbulian yang baik

25

Tabel 1. Rata – Rata diametr Streptomyces spp. (cm) pada berbagai substrat organik

Hasil Setelah Inokulasi Perlakuan 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 31

BS 05.c DJ 06.bc SG 06.bc DK 07.b RK 0.8 a

SGBS 0.5 c BSDK 0.5.c RKBS SGDJ DJDK RKDJ SGDK SGRK BSDJ

DKRK

26

Gambar 2. Pertumbuhan Streptomyces spp, pada berbagai substrat organik

27

bagi Streptomyces adalah kalium, hasil analisis regresi menunjukkan kalium

memberikan kontribusi sebesar 0,95 persen. Konsentrasi kalium yang tinggi

pada substrat diatas dapat memacu pertumbuhan pada masa awal ini.

Sedangkan pada substrat yang kaliumnya rendah seperti pada serbuk gergaji

(SG) dan daun jambu mete (DJ), pertumbuhannya mengalami sedikit

peningkatan. Pada substrat BS, BSDJ, SGBS dan BSDK, konsentrasi

kaliumnya tinggi tetapi pH-nya rendah, sehingga tidak mengalami

pertumbuhan. Pada subMrat dedak kasar (DK) konsentrasi kalium tinggi,

tetapi tingkat pertumbuhannya rendah, hal ini disebabkan konsentrasi NH3

substrat ini rendah, dimana NH3 berpengamh nyata terhadap diameter

antagonis (p<0,05) dan memberikan kontribusi sebesar 9,21 persen.

Komponen tersebut saling terkait karena masing-masing memiliki

kontribusi terhadap pertumbuhan antagonis, disamping itu peningkatan

pertumbuhan antagonis sangat dipengaruhi oleh kemampuan adaptasinya

pada substrat yang berbeda komposisi kimia dan sifat fisikanya. Pada

pengamatan selanjutnya peningkatan diametemya bervariasi seperti terlihat

pada Gambar 1.

Pada akhir pengamatan (31 hari setelali inokulasi) semua substrat

yang diuji mengalami sedikit peningkatan, kecuali pada substrat BS, BSDK,

BSDJ dan SGBS yang memang tidak tumbuh sejak awal.

Hampir semua substrat mengakibatkan aktivitas maksimum pada

waktu tertentu, bahkan ada yang sampai 2 kali dalam periode 31 hari

inokulasi, kecuali substrat SG tidak mengalami masa peningkatan

28

maksimum dibandingkan substrat yang lainnya. Disamping mengalami

aktivitas maksimum antagonis juga mengalami masa penurunan aktivitas,

seperti pada substrat daun jambu mete + dedak kasar (DJDK) pada 19-21

hari setelah inokulasi dan SG sedikit sekali mengalami peningkatan

diameter pada 21-23 hari setelah inokulasi.

4.2. Pengaruh Substrat Organik terhadap Ketebalan dan Mcratanya

Misdium Antagonis Strept&myces spp.

Hasil pengamatan visual terhadap ketebalan dan meratanya

miselia Streptomyc.es spp. dengan menggunakan skala kualitatif disajikan

pada Tabel 2.

Tabel 2. Ketebalan dan meratanya miselia antagonis Streptomyces spp. pada berbagai substrat organik

Perlakuan Ketebalan dan Meratanya

Miselia

BS -

DJ ++

SG +

DK ++

RK +++

SGBS -

BSDK -

RKBS ++++

29

SGDJ ++

DJDK ++

RKDJ +-H-

SGDK ++

SGRK ++++

BSDJ -

DKRK +++

Keterangan :

++++ : tebal dan merata

+++ : ketebalan sedang dan agak merata

++ : tipis

+ : sangat tipis

- : tidak mengalami pertumbuhan

Pertumbuhan koloni tebal dan merata terlihat pada substrat RKBS

dan SGRK, ketebalan sedang dan agak merata pada substrat RKDJ RK5

DKRK, tipis pada substrat DJ, DK, SGDJ, SGDK dan DJDK, sangat tipis

pada substrat SG (Garnbar 4, 5, 6 dan 7 pada Lampiran 16). Pada media

yang mengandung bahan daun jambu mete dan dedak kasar rniselia tarnpak

sangat tipis sampai finis, hal ini disebabkan pH substrat tersebut rendah

berkisar 5,33 6.96, sedangkan Sireptomyces mernbutuhkan kisaran pH yang

optimal. (7,1 - 8,0) untuk dapat tumbuh dengan baik.

30

Faktor yang juga berpengaruh kemungkinan besar kandungan nutrisi

dari masing-masing substrat. Substrat yang padat nutrisi persatuan luasnya

terutama nutrisi yang banyak dibutuhkan oleh antagonis, cenderung

membentuk miselium yang lebih tebal. Sebaliknya pada substrat yang

kandungan nutrisi persatuan luasnya sedikit maka antagotiis cenderung

bergerak mencari sumber nutrisi yang lebih iuas permukaannya sehingga

pertumbuhan kearah vertikai kurang berkembang.

4.3. Pengaruh Substrat Organik Terhadap Jumlah Spora Antagonls

Streptomyees spp.

Jumlah spora pada masing-masing palakuan tersaji pada Tabel 3.

Lima substrat. yang memiliki jumlah spora tertinggi seperti yang terlihat

pada Tabel 3 yaitu : RKDJ (18,75 x 106 ), DJDK (8,83 x 106), DJSG (8,67 x

10), RK (7,75 x 10°) dan DJ (7,67 x 106).

Jumlah spora Sireptomyces spp juga dipengaruhi oleh ketebalan dan

meratanya miselium serta panjang diameter koloni. Substrat RKDJ yang

jumlah sporanya menempati urutan pertama dari 15 substrat, memilik

diameter terpanjang (8,97 cm) sedangkan ketebalan dan meratanya sponi

menempati urutan ke dua (ketebalan sedang dan agak merata). Substrat yang

menempati urutan ke dua jumlah spora tertinggi yaitu DJDK, memiliki

panjang diameter 7,47 cm densan ketebalan dan meratanya spora termasuk

daiain skala tipis begitu pula dengan DJSG.

31

Tabel 3. Rata-rata jumlah spora antagonss Sireptomyc.es spp. 31 hari setelah inokulasi pada substrat organik

Perlakuan Rata-rata Jumlah

Spora (dalarn 10*)

Notasi

RKDJ 18,75 a

DJDK 8,83 b

SGDJ 8,67 b

RK 7,75 c

DJ 7,67 c

RKBS 6,50 d

DK 6,00 e

SGRK 5,83 e

SGDK 5,33 f

DKRK 4,83 f

SG 3,67 £

BS 0,00 h

BSDJ 0,00 h

SGBS 0,00 h

BSDK 0,00 h

Keterangan :

1. Data dianalisis setelah ditransformasi ke 5,0x

2. Huruf yang berbeda pada kolom yang sama menunjukan berbeda nyata (p<0,05) berdasarkan uji jarak berganda Duncant.

32

Substrat residu kacang tanah (RK) dengan panjang diameter

koloninya menempati posisi ke enam (6,37 cm) akan tetapi termasuk

memiliki skala ketebalan sedang dan agak merata memiliki jumlah spora

terbanyak setelah RKDJ, DJDK dan SGDJ yaitu 7,75 x 106. Substrat DJ

diameternya lebih panjang dari RK tetapi skala ketebalannya termasuk tipis

memiliki jumlah spora lebih sedikit dibandingkan dengan RK yaitu 7,67 x

106. Jumlah spora juga diduga dipengaruhi oleh fase vegetatlf dan generatif

seperti pada substrat RM yang menempati urutan ke empat (7,75 x 106) pada

jumlah spora dari 15 substrat, tetapi diameternya menempati urutan ke enarn

(6,37 cm) menunjukkan fase generatifnya lebih menonjol daripada fase

vegetatif sedangkan pada substrat SGDK yang menempati urutan ke empat

(6,52 cm) dari diameter miselia, rnenempati urutan ke sembilan (5,33 x 106)

dalarn jumlah spora, ini menunjukkan pertumbuhan vegetatifnya lebih

menonjol.

4.4. Komposisi Kimia dan Sifat Fisika Substrat Organik

Analisis dan pengukuran terhadap komposisi kimia dan fisika media

tumbuh disajikan pada Tabel 4. Hasil pengukuran menunjukkan pH

tertinggi pada substrat RK : 8,05, sedangkan pH terendah pada perlakuan

BS : 3,52. Pada pH dibawah 4,0 Streptomyc.es spp. tidak mampu tumbuh,

hal ini terlihat pada substrat, BS, BSDJ, SGBS dan BSDK. Semuanya

mengandung buah semu jambu mete, hal ini disebabkan buah semu pH-nya

rendah, sehingga menghambat bahkan mematikan pertumbuhan

33

Streptomyces spp, sedangkan antagonis ini membutuhkan kisaran pH yang

cukup tinggi untuk dapat tumbuh.

Pada substrat RKBS yang juga mengandung buah semu, antagonis

ini mampu tumbuh cukup baik, hal ini disebabkan kandungan komporien ke

dua yaitu residu kacang tanahyang memiliki pH tinggi, yang dapat

meningkatkan pH menjadi 4,53, sehingga tidak menghambat pertumbuhan

Streptomyces spp.

Pertumbuhan paling baik dari antagonis ini terlihat pada substrat

RKDJ dengan pH 7,05, yang mendekati pH optimum bagi Streptomyces

spp. (Waksman 1959). Antagonis ini tumbuh paling lambat pada pH 5,48

pada substrat SG, hal ini disebabkan konsentrasi nitrogen dan kalium pada

substrat ini rendah disamping itu

34

Tabel 4. Komposisi kimia dan sifat fisika substrat organik

Komposis Kimia dan Fisika

Perlakuan PH C (ppm) N (ppm) DHL (ms) N03 (ppm) P04 (ppm) NH3 (ppm) K (ppm)

BS 3,52 46,86 1,05 1,15 0,30 33,09 14,00 412,50

DJ 5,23 46,89 0,35 0,92 0,37 17,04 115,35 35,70

SG 5,48 46,08 0,07 0,34 0,72 31,93 11,85 22,05

DK 6,96 39,12 0,28 0,88 7,05 18,94 6,95 211,70

RK 8,05 50,97 1,61 3,55 0,12 45,60 112,10 1747,50

SGBS 3,86 56,62 0,42 0,71 0,31 30,61 24,55 212,10

BSDK 3,88 40,47 0,63 1,07 0,82 20,57 13,25 352,80

RKBS 4,53 50,48 0,84 2,94 0,44 33,73 47,20 1176,30

SGDJ 5,33 45,15 0,49 0,66 0,41 41,20 71,55 176,50

DJDK 5,75 48,25 0,49 0,94 1,08 14,48 37,55 172,70

RKDJ 7,05 53,11 1,12 2,39 0,17 18,74 75,90 805,90

SGDK 6,30 44,23 0,28 0,61 2,38 17,17 12,85 152,40

SGRK 7,53 49,59 0,49 2,80 0,14 22,68 62,80 941,10

BSDJ 3,79 53,85 0,84 1,02 0,50 22,68 40,30 239,10

DKRK 7,26 48,04 0,70 2,88 0,21 25,86 59,55 1085,10

Keterangan : DHL - daya hantar listrik

35

substrat ini diduga mengandung fenol, yang dapat mengharnbat

pertumbuhan organisme.

Substrat yang mengandung C paling tinggi yaitu SGBS : 56,62 ppm,

terendah pada substrat DK : 39,12 ppm sedangkan pada substrat RKDJ yang

menunjukkan pertumbuhan paling baik karbormya 53,11 ppm. Pada

konsentrasi yang lebih kecil dari konsentrasi ini, antagonis menunjukkan

pertumbuhan yang lebih rendah.

Konsentrasi nitrogen tertinggi dari substrat terlihat pada RK : 1,61

ppm, terendah pada substrat SG : 0,07 ppm. Pada substrat dimana

Streptomyces spp. tumbuh dengan baik yaitu RKDJ konsentrasi nitrogennya

1,12 ppm. Kelihatanrrya konsentrasi rendah merupakan penghambat

pertumbuhan antagonis ini, begitu juga pada konsentrasi tinggi

pertumbuhannya agak terhambat.

Daya hantar listrik berhubungan dengan ketersediaan unsur hara bagi

antagonis. Pada penelitian ini DHL 2,39 ms pada substrat RKDJ

memperlihatkan pertumbuhan yang paling baik, hal ini menunjukkan pada

DHL 2,39 ms kebutuhan antagonis tersedia dan dapat digunakan. Pada

substrat SG, DHL terlihat paling rendah yaitu 0,34 ms dimana pertumbuhan

antagonis terlihat paling rendah. Hal ini mungkin disebabkan ketersediaan

beberapa nutrisi rendah sehingga kebutuhan antagonis terhadap nutrisi tidak

terpenuhi dan mengakibatkan peltumbuhan kurang baik.

36

Tabel 4 menunjukkan, substrat yang konsentrasi NO3-nya tertinggi

pada substrat DK : 7,05 ppm sedangkan terendah pada substrat residu

kacang tanah : 0,12 ppm. Peltumbuhan terbaik dari Streptomyces spp.

terlihat pada konsentrasi NO3 : 0,17 ppm yaitu pada substrat RKDJ. Pada

konsentrasi yang lebih rendah dan konsentrasi ini (0,17 ppm) aniagonis

masih dapat tymbuh tdapi tidak sebaik pada konsentrasi ini, sedangkan pada

konsentrasi yang lebih tinggi diduga dapat menghambat proses rnetabolismc

sehingga mengurangi tingkat pertumbuhan.

Konsentrasi PO4 tertinggi terdapat pada substrat RK : 45,60 ppm,

sedangkan terendah pada substrat DKDJ : 14,48 ppm. Pada substrat RKDJ

konsentrasi PO4 18,74 ppm, Streptomyces spp. memmjukkan pertumbuhan

yang paling baik. Kalium dan fosfat merupakan komponen yang penting

dalam pembentukan antibiotik, pigmen dan vitamin, hal ini memungkinkan

unsur ini dibutuhkan dalam jumlah cukup banyak. Kelebihan atau

kekurangannya dapat mengakibatkan terhambatnya pertumbuhan antagonis.

Sumber nitrogen terbaik setelah protein, peptone dan asam amino

adalah NH3 diikuti oleh NCX Pada 15 substrat yang diuji, konsentrasi NH3

tertinggi terdapat pada substrat DJ : 115,35 ppm, sedangkan yang terendah

pada substrat SG : 6,95 ppm. Konsentrasi dimana antagonis dapat tumbuh

dengan baik yaitu : 75,90 ppm yang terdapat pada substrat RKDJ. NH3

merupakan sumber nitrogen yang lebih baik dari NO3 sehingga

ketersediaanya pada substrat organik dalam jumlah tertentu akan

merangsang pertumbuhan antagonis.

37

Kahum merupakan salah satu senyawa yang dibutuhkan untuk

produksi dan pendorong pertumbuhan yang baik sekali disamping unsur

lainya. Konsentrasi kalium tertinggi terdapat pada substrat RKDK : 1085,1

ppm, sedangkan terendah pada substrat SG : 22,05 ppm. Konsentrasi

dimana antagonis Streptofftyces dapat tumbuh dengan baik adalah pada

konsentrasi 805,9 ppm yaitu pada substrat RKDJ. Pada konsentrasi rendah

22,05 ppm Streptomyces spp. tidak dapat tumbuh dengan baik, sedangkan

pada konsentrasi yang terlalu tinggi 1085,1 ppm pertumbuhannya juga agak

terhambat.

Secara urnum organisme memerlukan keseimbangan komposisi

kimia dan sifat fisika untuk mencapai pertumbuhan yang baik, jika salah

satu komponen unsumya kekurangan atau kelebihan maka akan terjadi

gangguan terhadap tingkat pertumbuhannya sesuai dengan tingkat

kekurangan atau kelebihan suatu komponen dan penting tidaknya komponen

itu bagi pertumbuhan mikroba tersebut

4.5. Pengaruh Komposisi Kimla dan Sifat Fisika Substrat Organik

terhadap Diameter Koloni Streptomyces spp.

Hasil analisis sidik ragam komposisi kimia dan fisika substrat

organik, menunjukkan pengaruh sangat nyata terhadap diameter antagonis

(Tabel 5 Lampiran 17). Berdasarkan persamaan regresi YK = 2,06 + 1,29

pH - 0,0528 C + 1,88 DHL + 0,066 NO, + 0,0248 PO4 + 0,0287 NH3 -

38

0,00524 K maka, dicari pengaruh masing-masing komponen komposisi

kimia dan sifat fisika terhadap diameter koloni Streptomyces spp.

Analisis regresi terhadap masing-masing komposisi kimia dan fisika

menunjukkan pengaruh pH sangat nyata terhadap diameter koloni antagonis,

NH3 berpengaruh nyata, sedangkan DHL, NO3, PO4, K, C dan N

berpengaruh tidak nyata terhadap diameter antagonis (label 6 Lampiran 17).

Gambar 2. Kontribusi masing-masing komposisi kimia dan sifat fisika terhadap diameter koloni Streptomyces spp.

Walaupun komponen substrat organik tersebut tidak nyata

pengaruhnya terhadap diameter koloni tetapi sangat diperlukan untuk

pertumbuhan antagonis.

Hal tersebut dapat dilihat pada kontribusi masing-masing komposisi

kimia dan fisika substrat organik pada pada Gambar 2.

Gambar 2 menunjukkan kontribusi terbesar diberikan oleh pH

(52,87%), diikuti oleh NH3: 9,21% NO3: 1,35%N : 0,96% K : 0,95% PO4 :

0,45% DHL : 0,15% dan kontribusi terkecil diberikan oleh C sebesar 0,11%.

39

4.6. Pengaruh Komposisi Kimia dan Sifat Fisika Substrat Organik

terhadap Jumlah Spora Streptomyces spp.

Hasil analisis menunjukkan komposisi kimia dan sifat fisika substrat

organik berpengaruh sangat nyata terhadap jumlah spora Streptomyces spp.

(Tabel 7 Lampiran 18). Berdasarkan persamaan regresi YK = 2,06 + 0,544

pH - 0,058 C + 1,24 DHL + 0,0251 NO3+ 0,0183 PO4 + 0,00786 NH3 -

0,00349 K maka, dicari pengaruh masing-masing komponen komposisi

kimia dan sifat fisika terhadap jumlah spora Streptomyces spp.

Analisis regresi terhadap masing-masing komposisi kimia dan sifat

fisika menunjukkan pengaruh pH sangat nyata terhadap jumlah spora,

sedangkan NH3, DHL, NO^ PO4, K, C dan N berpengaruh tidak nyata

terhadap jumlah spora (Tabel 8 Lampiran 18).

Komponen yang menunjukkan pengaruh sangat nyata hanya pH

substrat sedangkan yang lainya berpengaruh tidak nyata. Walaupun

pengaruhnya tidak nyata tetapi komponen-komponen tersebut memiliki

kontribusi terhadap jumlah spora (Gambar 3).

Gambar 3 menunjukkan pH memberikan pengaruh tertinggi yaitu

52,8% kemudian NH3 sebesar 8,41% NO3 1,45% persen dan seterusnya.

Pengaruh terendah adalah C sebesar 0,27% hal ini tidak terlihat pada

analisis regresi, tetapi komponen tersebut memegang peranan terhadap

jumlah spora Streptomyces spp walapun persentasenya kecil.

40

Gambar 3. Kontribusi masing-masing komposisi kimia dan sifat fisika

terhadap jumlah spora Streptomyces spp.

Uraian di atas menunjukkan perlakuan substrat organik berpengaruh

sangat nyata terhadap pertumbuhan antagonis pada variabei jumlah spora

dan diameter koloni, sedangkan komposisi kirnia dan sifat fisika juga

menunjukkan pengaruh sangat nyata terhadap kedua variabei tersebut

Pengujian terhadap 15 substrat, didapatkan tiga substrat yang

menunjukkan pertumbuhan paling baikyaitu : residu kacang tanah ditambah

daun jambu mete (RKDJ), daun jambu mete ditambah dedak kasar (DJDK)

dan serbuk gergaji ditambah daun jambu mete (SGDJ). Berdasarkan

pertimbangan mudah dan murahnya bahan maka, dipilih campuran residu

kacang tanah dan daun jambu mete (RKDJ) sebagai substrat untuk

membiakkan antagonis Streptomyces.

41

V. KESIMPULAN DAN SARAN

5.1. Kesimpulan

Berdasarkan hasil penelitian dan uraian pada pembahasan dapat

disimpuikan bahwa media yang paling cocok digunakan untuk mernbiakkan

Streptomyces spp. adalah campuran residu kacang tanah dan daun jambu

mete (RKDJ).

5.2. Saran

Perlu pengujian perlakuan substrat organik campuran residu kacang

tanah dan daun jambu mete pada perbandingan yang berbeda selain 1 : 1

(v/v), sehingga kemungkinan didapatkan komposisi yang lebih memacu

peruimbuhan Streptomyces spp.

42

DAFTAR PUSTAKA

Adam, P. B., J.A Lewis and G.C. Papavizas. 1968. Survival of Foot Infecting Fungi in Soil IV : The Nature of Fungistatis in Nature and Cellulose-Amendement Soil on Chlamidospores of Fusarium solani f. sp phaseoli Phytopathology 59 (3) : 379 - 383.

Adam, P. B., J. A. Lewis and G. C. Papavizas. 1969. Survival of Root Infecting

Fungi in soil and Sensitivity of Propagules of Thielaviopsis basicola to soil Fungistatis in Nature and Alfalfa amended soil. Phytopathology. 59 : 135-138

Adam, P. B. 1971. Effect of Soil Temperature and Soil Amendements on

Thielaviopsis Root Rot of Sesame. Phytopathology. 61 : 93 - 97. Anonimus. 1978. Penuntun analisis Tanaman Departemen Pertanian. Badan

Penelitian dan Pengembangan Pertanian Bagian Kesuburan Tanaman. Lembaga Penelitian Tanaman. 112p.

Arya, N. 1994. Pengendalian Terpadu Penyakit Busuk Batang Vanili (Fusarium

batatatis var vanillas} di Daerah Bali. Laporan Penelitian I. UNUD. 7-8.

Arya, N. 1995. Explorasi, Penanganan dan Aplikasi Agens Hayati pada Tanaman

Hortikultura. Bahan. Seminar. Strategi Perlindungan Tanaman Hortikultura dan Pertamanan di Daerah Pariwisata. Fak. Pertanian UNUD. 9p.

Baker, R and R.J. Cook. 1974. Biological Control of Plant Pathogens. W. R

Freeman and Co. San Fransisco. 433p. Baker, R and RJ. Cook. 1983. Biological Control of Plant Pathogenes. The APS

Publ. St Paul, Minnesota 433 p. Basuki. 1985. Peranan Belerang Sebagai Pemicu Pengendalian Biologi Penyakit

Akar Putih pada Karet Desertasi S3 UGM, Yogyakarta. 169 p. Chet, I. and R Baker. 1980. Introduction of Supressiveness to Khizoctortia solani

in Soil. Pythopatkology 70 : 994 - 996. Dhingra, O.K. and IB. Sinclair. 1987. Basic Plant Pathology Methods. CRC Press,

Inc. Boca Raton, Florida. 355p. Dwidjoseputro, D. 1990. Dasar-dasar Mikrobiologi. Penerbit Djambatan,

Bandung. 209p.

43

Garet, S. D. 1956. Biology of Root-infecting Fungi. Cambrige University Press. Sydney. 23 9p.

Hadi, S., R Suseno dan J. Sutakaria. 1975 . Patogen Tanarnan dalam Tanah dan

Perkembangan Perryakit IPB, Bogor. 196p. Herr, L. J. 1959. A Method of Assaying Soil for Number of Actynomycetes

Antagonistic to Fungal Pathogens. Phytopathology. 49 (6): 273-276. John, K.P. 1966 Two Experiments on The Control of White Root Disease of

Hevea Rubber Caused by Forms llgnosus Klotzsch, Leading to a revision of Established Methods. J. Kubb. Res. Inst Md. 19(13) : 153 -157.

John, K. P. 1985. Inoculation Experiment with Pomes lignoxus, Klotzsch. J.

Rtibh. Jter. Jtt& Mil 223-240 Johnson, L. F. and E. A Curl. 1972. Methods for Research on The Ecology of

Soil-Borne Plant Patogens Burgess Pub. Co., Minnesota 247 p. Kasim, R. 1985. Pengaruh Residu Tanaman terhadap Perkembangan Perryakit

Busuk pangkal Batang (Phytopfahora palmivora (Butler) Butler) pada Tanaman Lada. Tesis S2 IPB. Bogor. 52p.

Lewis, J. A. and G. C. Papavizas. 1986. Reduction of Inoculum of Rhizoctonia

solard by germling of Trichoderma. hamatum. Soil Eiol. Bio chem. 19 (2) :195-201.

Maier, C. R. 1959. Effect of Cistein Crop residues on Bean Root Rot Pathogens.

Plcuit Diseases Dept. 43 : 1027 -1030. Modjo, H. S. 1991. Mikrobia Berguna dalam Pertanian. Usaha Menjadikan

Pengendalian Hayati terhadap Patogen Tumbuhan sebagai Tulang Punggung Pengendalian Hama Terpadu. Pros. Sem Penmgkatan Pemanfaatan Serangga sebagai Mikrobia Berguna dalam Usaha Menaikkan Pendapatan Petani. Fak. Pertanian UNSUD. 27p.

Muiya, KL dan Manohara. 1988. Penyebaran Triclioderma spp. dan Penicillium

spp. dan Sifat Antagonismenya terhadap Phytophthora palmivora BuL Littro. 3(1) :12-17.

. Patrich, Z. A. and T. A. Toussoun. 1970. Plant Residues and Organik

Amandements in Relation to Biological Control, in K. F. Baker dan W. C. Snyder (Ed.). Ecology of Soil Bome Pilant Pathogens. Univ. California. Press, Barkiey, Los Angeles and London. 68-69p.

44

Racle, F. A. 1965. The Effect of pH and Trace Element Concentration on Certain Metabolic Presses in Triclioderma spp. Ph. D. Thesis, Ohio State University. 124p.

Rismunandar, 1990. Memperbaiki Lingkungan dengan Bercocok Tanam Jambu

Mete dan Advokat. Sinar Baru Bandung.49p. Saeni, M. S. dan L. K. Darusman. 1989. Penuntun Analisa Kimia Jurusan Kimia

Fakultas Matematika dan Hmu Pengetahuan alam IPB. Bogor. 103p. Sasatrahidayat I. Rdan DS. Soemarno. 1991. Jambu Mete (Atiacardium

occiaemale) dan Masalahnya. Penebar Swadaya.54p. Semangun, H. 1989. Penyakit-penyakit Tanaman Perkebunan di Indonesia.

Gad?all Mada Univ. press, Yogyakarta. SOSp. Smaga, M. S. 1986. Biological Control of Some Soil Borne Funaal Pathogens of

Soybean with Gliocladium spp. Ph. D. desatation (Unpublished). 1 62p.

Sinaga, M.S. 1994. Pbtensi Gliocladium spp. Sebagai Agen Pengendali beberapa

CmdawanPatogenTumbuhanyangBersifatTuSarTanah. J. II. Pert. Indon. Vol. 4(1)6-11.

Soepena, H. 1980. Pengaruh Residu Tanaman terhadap Perkembangan Penyakit

Cendawan Akar Putih (Rigidoporus ligtiosus (Klot.) Imazeki) pada Tanaman Karet Tesis S2 IPB, Bogor. 51p.

Temaja, I G.R.M. 1994. Pengaruh Residu Tanaman pada Antagonisme

Trichoderma koningii terhadap Pertumbuhan Ektotrofik Jamur Akar Putih Tanaman Karet Tesis S2 UGM, Yogyakarta. 75p.

Overeem, V. C. and J. Weese. 1924. Polyporaceas : Rigidopoms tnicropoms.

Incones Fungorum Malanesium, Heft V. Weia 128p. Waksman, S. A. 1959. The Actinonrycd.es, Vol. L Nature, Occurrence, and

Activities. The Williams and Wilkins Company. Baltimore. 322p. Young, R E. 1954. White Root Disease of Hevea, Leptoporus lignosus (Fomes

lignosus) Rubb. Jfess. InsL Ceylon, Adv. Cire. 43p. Zentmeyer, G. A 1963. Biological Control of Phytophthora Root Rot of Avocado

with Alfalfa Meal. Phytopathology. 53 : 1383 -1387.

45

LAMPIRAN

46

Lampiran 1. Diameter antragonis Streptomyces spp 5 hari setelah inokulasi

Perlakuan Ulangan

Total

Rata – rata I II III

BS DJ SG DK RK

SGBS BSDK RKBS SGDJ DJDK RKDJ SGDK SGRK BSDJ DKRK

0,5 0,6 0,6 0,6 0,8 0,5 0,5 0,6 0,7 0,5 0,8 0,6 0,6 0,5 0,6

0,5 0,7 0,6 0,7 0,9 0,5 0,5 0,7 0,8 0,5 ,07 0,6 0,7 0,5 0,6

0,5 0,6 0,6 0,7 0,7 0,5 0,5 0,8 0,9 0,5 0,9 0,6 0,6 0,5 0,7

1,5 1,9 1,8 2,0 2,4 1,5 1,5 2,1 2,4 1,5 2,4 1,8 1,9 1,5 1,9

0,5 0,6 0,6 0,7 0,8 0,5 0,5 0,7 0,8 0,5 0,8 0,6 06 0,5 0,6

Daftar Sidik Ragam SK DB JK KT F Hit

F Tabel 5% 1%

Perlakuan 14 0,53644 0,038832 10,76** Acak 30 0,10667 0,00356 Total 44 0,64311

2,04 2,74

47

Contoh perhitungan statistika :

1. Faktor Koresi (FK) = 45

)1,28( 2

= 45

61,789

= 17,54689

2. JK Total = (0,5)2 + (0,5)2 + (0,5)2 + ….. + (0,7)2 – FK

= 18,19 – 17,54689 = 0,64311

3. JK Perlakuan = FK

3)9,1(.....)9,1()5,1( 222

= 18,083333 – 17.54689 = 0,53644

4. JK Acak = JK. Total – JK Perlakuan = 0,64311 – 0,54689 = 0,10667

5. Uji Duncant

SX = u

AcakKT

= 3

00356,0

= 0,03

Keterangan :

P = Jarak antara dua perlakuan yang dibandingkan rp = Jarak nyata terkecil pada tabel staristika Rp = rp X SX

48

Daftar Uji Duncant

P rp Sx Rp Perlakuan Rata-rata Notasi

- - 0,03 - RK 0,8 a

2 2,89 0,03 0,09 SGDJ 0,8 a

3 3,04 0,03 0,09 RKDJ 0,8 a

4 3,12 0,03 0,09 RKBS 0,7 b

5 3,20 0,03 0,10 DK 0,7 b

6 3,25 0,03 0,10 DJ 0,6 be

7 3,29 0,03 0,10 SG 0,6 be

8 3,32 0,03 0,10 SGDK 0,6 be

9 3,35 0,03 0,10 SGRK 0,6 be

10 3,37 0,03 0,10 DKRK 0,6 be

11 3,39 0,03 0,10 BS 0,5 c

12 3,40 0,03 0,10 BSDJ 0,5 c

13 3,42 0,03 0,10 SGBS 0,5 c

14 3,43 0,03 0,10 BSDK 0,5 c

15 3,44 0,03 0,10 DJDK 0,5 , c

49

Lampiran 2. Diameter Antragonis Streptomyces spp 7 hari setelah inokulasi

Perlakuan Ulangan

Total


BS DJ SG DK RK


0,5 1,0 0,8 0,8 1,5 0,5 0,5 1,5 1.4 0,7 1,5 0,9 1,3 0,5 1,2

0,5 1,0 0,7 0,8 1,4 0,5 0,5 1,6 1,3 0,8 1,6 0,8 1,5 0,5 1,1

0,5 0,9 0,7 0,9 1,3 0,5 0,5 1,6 1,2 0,7 0,7 0,9 1,4 0,5 1,3

1,5 2,9 2,2 2,5 4,2 1,5 1,5 4,7 3,9 2,2 4,8 2,6 4,2 1,5 3,6

0,5 0,97 0,73 0,83 1,40 0,5 0,5 1,57 1,30 0,73 0;8

1,60 0,87 0,5 1,20


F Tabel 5% 1%


2,04 2,74

50

Daftar Uji Duncant


- - 0,04 - RKDJ a

2 2,89 0,04 0,12 RKBS a

3 3,04 0,04 0,12 SGRK b

4 3,12 0,04 0,12 RK b

5 3,20 0,04 0,13 SGDJ bc

6 3,25 0,04 0,13 DKRK c

7 3,29 0,04 0,13 DJ d

8 3,32 0,04 0,13 DK de

9 3,35 0,04 0,13 SGDK ef

10 3,37 0,04 0,13 DJDK f

11 3,39 0,04 0,14 SG f

12 3,40 0,04 0,14 BS 0,5 g

13 3,42 0,04 0,14 BSDJ 0,5 g

14 3,43 0,04 0,14 SGBS 0,5 g

15 3,44 0,04 0,14 BSDK 0,5 , g

51


Perlakuan Ulangan

Total


BS DJ SG DK RK


0,5 1,5 0,9 1,2 2,3 0,5 0,5 2,1 2,0 1,3 2,3 2,5 1,7 0,5 2,0

0,5 1,4 0,9 1,3 2,1 0,5 0,5 2,2 2,2 1,5 2,5 2,2 1,9 0,5 2,2

0,5 1,3 0,8 1,2 2,1 0,5 0,5 2,0 2,0 1,2 2,4 2,2 1,7 0,5 2,0

1,5 4,2 2,6 3,7 6,5 1,5 1,5 6,3 6,2 4,0 78,2 6,9 5,3 1,5 6,2

0,50 1,40 0,87 1,23 2,17 0,50 0,50 2,10 2,10 1,33 2,40 2,30 1,77 0,50 2,07


F Tabel 5% 1%


2,04 2,74

52

Daftar Uji Duncant


- - 0,06 - RKDJ 2,40 a

2 2,89 0,06 0,17 RKBS 2,30 ab

3 3,04 0,06 0,18 SGRK 2,17 bc

4 3,12 0,06 0,19 RK 2,10 c

5 3,20 0,06 0,19 SGDJ 2,10 c

6 3,25 0,06 0,19 DKRK 2,07 c

7 3,29 0,06 0,19 DJ 1,77 d

8 3,32 0,06 0,19 DK 1,40 e

9 3,35 0,06 0,20 SGDK 1,33 e

10 3,37 0,06 0,20 DJDK 1,23 e

11 3,39 0,06 0,20 SG 0,87 f

12 3,40 0,06 0,20 BS 0,50 g

13 3,42 0,06 0,20 BSDJ 0,50 g

14 3,43 0,06 0,20 SGBS 0,50 g

15 3,44 0,06 0,20 BSDK 0,50 g

53


Perlakuan Ulangan

Total


BS DJ SG DK RK


0,5 1,8 0,9 2,3 2,8 0,5 0,5 2,2 2,3 1,6 2,7 2,5 1.7 0,5 2,2

0,5 1,8 0,9 2,1 2,5 0,5 0,5 2,2 2,5 1,8 2,8 2,3 1,9 0,5 2,4

0,5 1,7 0,9 2,0 2,4 0,5 0,5 2,0 2,2 1,7 2,9 2,4 1,8 0,5 2,3

1,5 5,3 2,7 6,4 7,7 1,5 1,5 6,4 7,0 5,1 8,4 7,2 5,4 1,5 6,9

0,50 1,77 0,90 2,13 2,57 0,50 0,50 2,13 2,33 1,70 2,80 2,40 1,80 0,50 2,30


F Tabel 5% 1%


2,04 2,74

54

Daftar Uji Duncant


- - 0,06 - RKDJ 2,80 a

2 2,89 0,06 0,17 RKBS 2,57 b

3 3,04 0,06 0,18 SGRK 2,40 bc

4 3,12 0,06 0,19 RK 2,33 c

5 3,20 0,06 0,19 SGDJ 2,30 cd

6 3,25 0,06 0,19 DKRK 2,13 d

7 3,29 0,06 0,19 DJ 2,13 d

8 3,32 0,06 0,19 DK 1,80 e

9 3,35 0,06 0,20 SGDK 1,77 e

10 3,37 0,06 0,20 DJDK 1,70 e

11 3,39 0,06 0,20 SG 0,90 f

12 3,40 0,06 0,20 BS 0,50 g

13 3,42 0,06 0,21 BSDJ 0,50 g

14 3,43 0,06 0,21 SGBS 0,50 g

15 3,44 0,06 0,21 BSDK 0,50 g

55


Perlakuan Ulangan

Total


BS DJ SG DK RK


0,5 2,8 1,2 2,6 3,2 0,5 0,5 2,3 2,6 1,9 3,3 3,0 1,9 0,3 2,9

0,5 3,0 1,1 2.7 3,1 0,5 0,5 2,4 2,6 2,0 2,4 2,9 2,0 0,5 3,0

0,5 2,9 1,2 2,5 3,0 0,5 0,5 2,5 2,5 U»- 3,4 2,9 2,0 0,5 3,2

1,5 8,7 3,5 7.8 9,3 1,5 1,5 7,2 7,7 5,8 10,1 8,8 5,9 1,5 9,1

0,50 2,90 1,17 2,60 3,10 0,50 0,50 2,40 2,57 1,93 3,38 2,93 1,97 0,50 3,0


F Tabel 5% 1%


2,04 2,74

56

Daftar Uji Duncant


- - 0,39 - RKDJ 3,38 a

2 2,89 0,39 1,13 RKBS 3,10 ab

3 3,04 0,39 1,19 SGRK 3,03 ab

4 3,12 0,39 1,22 RK 2,93 ab

5 3,20 0,39 1,25 SGDJ 2,90 ab

6 3,25 0,39 1,27 DKRK 2,60 ab

7 3,29 0,39 1,28 DJ 2,57 ab

8 3,32 0,39 1,29 DK 2,40 ab

9 3,35 0,39 1,31 SGDK 1,97 bc

10 3,37 0,39 1,31 DJDK 1,93 bc

11 3,39 0,39 1,32 SG 1,17 bc

12 3,40 0,39 1,33 BS 0,50 d

13 3,42 0,39 1,33 BSDJ 0,50 d

14 3,43 0,39 1,34 SGBS 0,50 d

15 3,44 0,39 1,34 BSDK 0,50 d

57


Perlakuan Ulangan

Total


BS DJ SG DK RK


0,5 4,0 1,6 3,7 39 0,5 0,5 3,1 3,6 2,7 4,0 3,9 2,7 0,5 4,0

0,5 4,2 1,6 3,8 3,8 0,5 0,5 3,0 3,5 2,9 4,0 4,0 2,5 0,5 4,2

0,5 4,2 1,7 3,6 3:7 0,5 0,5 3,0 3,5 3,5 4,2 3,8 2,4 0,5 4,3

1,5 12,47 4,9 11,1 11,4 1,5 1,5 9,1 10,6 8,4 12,2 11,7 7,6 1,5 12.5

0,50 4,13 1,63 3,70 3,80 0,50 0,50 3,03 3,53 2,80 4,07 3,90 2,53 0,50 4,17


F Tabel 5% 1%


2,04 2,74

58

Daftar Uji Duncant


- - 0,06 - RKDJ 4,417 a

2 2,89 0,06 0,17 RKBS 4,13 a

3 3,04 0,06 0,18 SGRK 4,07 ab

4 3,12 0,06 0,19 RK 3,90 bc

5 3,20 0,06 0,19 SGDJ 3,80 cd

6 3,25 0,06 0,19 DKRK 3,70 de

7 3,29 0,06 0,19 DJ 3,53 e

8 3,32 0,06 0,19 DK 3,03 f

9 3,35 0,06 0,20 SGDK 2,80 g

10 3,37 0,06 0,20 DJDK 2,53 h

11 3,39 0,06 0,20 SG 1,63 i

12 3,40 0,06 0,20 BS 0,50 j

13 3,42 0,06 0,21 BSDJ 0,50 j

14 3,43 0,06 0,21 SGBS 0,50 j

15 3,44 0,06 0,21 BSDK 0,50 j

59

Daftar Uji Duncant


- - 0,04 - RKDJ 4,57 a

2 2,89 0,04 0,12 RKBS 4,47 ab

3 3,04 0,04 0,12 SGRK 4,40 b

4 3,12 0,04 0,12 RK 4,07 c

5 3,20 0,04 0,13 SGDJ 4,07 c

6 3,25 0,04 0,13 DKRK 4,03 c

7 3,29 0,04 0,13 DJ 3,97 c

8 3,32 0,04 0,13 DK 3,17 d

9 3,35 0,04 0,13 SGDK 3,00 e

10 3,37 0,04 0,14 DJDK 2,70 f

11 3,39 0,04 0,14 SG 1,70 g

12 3,40 0,04 0,14 BS 0,50 h

13 3,42 0,04 0,14 BSDJ 0,50 h

14 3,43 0,04 0,14 SGBS 0,50 h

15 3,44 0,04 0,14 BSDK 0,50 h

60


Perlakuan Ulangan

Total


BS DJ SG DK RK


0,5 5,0 1,8 4,5 4,9 0,5 0,5 3,5 5,0 3,7 5,0 4,6 2,9 0,5 4,6

0,5 5,0 1,9 4,5 5,0 0,5 0,5 3,4 4.9 4,0 5,1 4,7 3,0 0,5 4,7

0,5 4,9 1,9 4,4 4.8 0,5 0,5 3,7 4.8 3,8 5,0 4,8 2.8 0,5 4,8

1.5 14,9 5,6 13,4 14.7 1,5 1,5 10,6 14.7 11,5 15.1 34,1 8,7 1.5 14,1

0.50 4,97 1,37 4.47 4,90 0,50 0,50 3,53 4,90 3,83 5,03 4,70 2,90 0,50 4,70


F Tabel 5% 1%


2,04 2,74

61

Daftar Uji Duncant


- - 0,03 - RKDJ 5,03 a

2 2,89 0,03 0,09 RKBS 4,97 ab

3 3,04 0,03 0,09 SGRK 4,90 b

4 3,12 0,03 0,09 RK 4,90 b

5 3,20 0,03 0,09 SGDJ 4,90 c

6 3,25 0,03 0,10 DKRK 4,70 c

7 3,29 0,03 0,10 DJ 4,47 d

8 3,32 0,03 0,10 DK 3,83 e

9 3,35 0,03 0,10 SGDK 3,53 f

10 3,37 0,03 0,10 DJDK 2,90 g

11 3,39 0,03 0,10 SG 1,87 h

12 3,40 0,03 0,10 BS 0,50 i

13 3,42 0,03 0,10 BSDJ 0,50 i

14 3,43 0,03 0,10 SGBS 0,50 i

15 3,44 0,03 0,10 BSDK 0,50 i

62


Perlakuan Ulangan

Total


BS DJ SG DK RK


0,5 5,6 2.2 5,3 5,1 0,5 0,5 4,0 5,8 3,7 6,9 5,5 3,2 0,5 5.6

0,5 5,5 2,3 5,2 5,0 0,5 0,5 4,1 5,7 4,0 7,0 5.6 33 0,5 5,5

0,5 5,3 2,1 5,2 5,2 0,5 0,5 4,2 5,6 3,8 6,9 5.4 3,1 0,5 5,5

1,5 16,4 6,6 15,7 15,3 1,5 1,5 12,6 17,1 13.5 20,1 16,5 9,6 1,5 16,6

0,50 5,97 2,20 5,23 5,10 0,50 0,50 4,10 5,70 3,83 6,93 5,50 3,20 0,50 5,53


F Tabel 5% 1%


2,04 2,74

63

Daftar Uji Duncant


- - 0,05 - RKDJ 6,93 a

2 2,89 0,05 0,14 RKBS 5,70 b

3 3,04 0,05 0,15 SGRK 5,53 c

4 3,12 0,05 0,16 RK 5,50 c

5 3,20 0,05 0,16 SGDJ 5,47 c

6 3,25 0,05 0,16 DKRK 5,23 d

7 3,29 0,05 0,16 DJ 5,10 e

8 3,32 0,05 0,17 DK 4,10 d

9 3,35 0,05 0,17 SGDK 3,83 e

10 3,37 0,05 0,17 DJDK 3,20 f

11 3,39 0,05 0,17 SG 2,20 g

12 3,40 0,05 0,17 BS 0,50 h

13 3,42 0,05 0,17 BSDJ 0,50 h

14 3,43 0,05 0,17 SGBS 0,50 h

15 3,44 0,05 0,17 BSDK 0,50 h

64


Perlakuan Ulangan

Total


BS DJ SG DK RK


0.5 6,0 2,2 5,3 5,1 0,5 0,5 4,1 5,9 5,0 7,1 5,8 3,2 0,5 5,5

0,5 6,0 2,3 5,4 5,3 0,5 0,5 4,1 6,0 5,3 7,2 6,1 3,3 0,5 5,6

0,5 5,9 2,2 5,3 5,2 0,5 0,5 4,2 5,9 5,2 7,0 6,0 3,2 0,5 5,5

1,5 17,9 6,7 16,0 15,6 1,5 1,5 12,4 17,8 15,5 21,3 17,9 9.7 1,5 16,7

0,50 5,97 2,23 5,33 5,20 0,50 0,50 4,13 5.93 5,17 7,10 5,97 3,23 0,50 5,57


F Tabel 5% 1%


2,04 2,74

65

Daftar Uji Duncant


- - 0,04 - RKDJ 7,30 a

2 2,89 0,04 0,12 RKBS 6,57 b

3 3,04 0,04 0,12 SGRK 6,43 c

4 3,12 0,04 0,12 RK 6,40 c

5 3,20 0,04 0,13 SGDJ 5,60 d

6 3,25 0,04 0,13 DKRK 5,60 d

7 3,29 0,04 0,13 DJ 5,53 e

8 3,32 0,04 0,13 DK 5,23 f

9 3,35 0,04 0,13 SGDK 4,30 g

10 3,37 0,04 0,13 DJDK 3,40 h

11 3,39 0,04 0,14 SG 2,83 j

12 3,40 0,04 0,14 BS 0,50 j

13 3,42 0,04 0,14 BSDJ 0,50 j

14 3,43 0,04 0,14 SGBS 0,50 j

15 3,44 0,04 0,14 BSDK 0,50 j

66


Perlakuan Ulangan

Total


BS DJ SG DK RK


0.5 6,6 3,2 5,6 5,8 0,5 0,5 4,8 6^9 6.5 8,5 6,5 3.8 0,5 5,6

0,5 6,8 3,3 5,7 6,0 0,5 0,5 4,7 7,0 6,7 8,6 6,5 3.7 0,5 5,7

0,5 6,6 3,2 5,7 5.8 0,5 0..5 4,8 6,8 6,6 8,7 6,5 3.6 0,5 5,7

1,5 20,0 9,7 17,0 17,6 1,5 1,5 14,3 20;7 19,8 25,8 19,5 11,1 1,5 17,0

0,50 6,67 3,23 5,67 5,87 0,50 0,50 4,7? 6,90 6,60 8,60 6,50 3,70 0,50 5,67


F Tabel 5% 1%


2,04 2,74

67

Daftar Uji Duncant


- - 0,04 - RKDJ 8,60 a

2 2,89 0,04 0,12 RKBS 6,90 b

3 3,04 0,04 0,12 SGRK 6,67 c

4 3,12 0,04 0,12 RK 6,60 c

5 3,20 0,04 0,13 SGDJ 6,50 d

6 3,25 0,04 0,13 DKRK 5,87 e

7 3,29 0,04 0,13 DJ 5,67 f

8 3,32 0,04 0,13 DK 5,67 f

9 3,35 0,04 0,13 SGDK 4,77 g

10 3,37 0,04 0,13 DJDK 3,70 h

11 3,39 0,04 0,14 SG 3,23 j

12 3,40 0,04 0,14 BS 0,50 j

13 3,42 0,04 0,14 BSDJ 0,50 j

14 3,43 0,04 0,14 SGBS 0,50 j

15 3,44 0,04 0,14 BSDK 0,50 j

68


Perlakuan Ulangan

Total


BS DJ SG DK RK


0,5 6,7 3,7 5,7 6,2 0,5 0,5 5,4 7,3 7,0 8,8 6,5 4:9 0,5 5,7

0,5 6,8 3,8 5,8 6,2 0,5 0,5 5,5 7,5 7,0 8,7 6,6 5.0 0,5 5,8

0.5 6,6 3,7 5,7 6,2 0,5 0,5 5,4 7,4 7,1 8,9 6,6 5,1 0,5 5,8

1,5 20,1 11,2 17,2 18,6 1,5 1,5 16,3 22,2 21,1 26,4 19,7 15,0 1,5 17,3

0,50 6,70 3,73 5,70 6,20 0,50 0,50 5,43 7,40 7,03 8,80 6,57 5,00 0,50 5,77


F Tabel 5% 1%


2,04 2,74

69

Daftar Uji Duncant


- - 0,04 - RKDJ 8,60 a

2 2,89 0,04 0,12 RKBS 7,40 b

3 3,04 0,04 0,12 SGRK 7,03 c

4 3,12 0,04 0,12 RK 6,70 d

5 3,20 0,04 0,13 SGDJ 6,57 e

6 3,25 0,04 0,13 DKRK 6,20 f

7 3,29 0,04 0,13 DJ 5,70 g

8 3,32 0,04 0,13 DK 5,77 h

9 3,35 0,04 0,13 SGDK 5,43 i

10 3,37 0,04 0,13 DJDK 5,00 j

11 3,39 0,04 0,14 SG 3,73 k

12 3,40 0,04 0,14 BS 0,50 i

13 3,42 0,04 0,14 BSDJ 0,50 i

14 3,43 0,04 0,14 SGBS 0,50 i

15 3,44 0,04 0,14 BSDK 0,50 i

70


Perlakuan Ulangan

Total


BS DJ SG DK RK


0,5 6,7 4,0 5,8 6,3 0,5 0,5 6,0 7.4 7,3 9,0 6,5 5,4 0,5 5,8

0.5 6,8 4,0 5,8 6.4 0,5 0,5 6,0 7.5 7,5 8,9 6,6 5,4 0,5 5,9

0,5 6,7 4,1 5.8 6.4 0,5 0,5 6,1 7.5 7,4 9,0 6,6 5,5 0,5 6,0

1.5 20,2 12,! 17,4 19.1 1,5 1,5 18,1 22.4 22,2 26,9 19,7 16,3 1,5 17,7

0.50 6,73 4,03 5,80 6,37 0,50 0,50 6,03 7.47 7,40 8,97 6,57 5,43 0,50 5,90


F Tabel 5% 1%


2,04 2,74

71

Daftar Uji Duncant


- - 0,03 - RKDJ 8,97 a

2 2,89 0,03 0,09 RKBS 7,47 b

3 3,04 0,03 0,09 SGRK 7,40 b

4 3,12 0,03 0,09 RK 6,73 c

5 3,20 0,03 0,09 SGDJ 6,57 d

6 3,25 0,03 0,10 DKRK 6,37 e

7 3,29 0,03 0,10 DJ 6,03 f

8 3,32 0,03 0,10 DK 5,90 g

9 3,35 0,03 0,10 SGDK 5,80 h

10 3,37 0,03 0,10 DJDK 5,43 i

11 3,39 0,03 0,10 SG 4,03 j

12 3,40 0,03 0,10 BS 0,50 k

13 3,42 0,03 0,10 BSDJ 0,50 k

14 3,43 0,03 0,10 SGBS 0,50 k

15 3,44 0,03 0,10 BSDK 0,50 k

72

Lampiran 15.a . Diameter Antragonis Streptomyces spp 31 hari setelah inokulasi

Perlakuan Ulangan

Total


BS DJ SG DK RK


0 7,75 3,50 5,75 7,75

0 0

6,50 8,50 9,00 18,50 5,25 6,00

0 4,50

0 7,50 3,75 6,25 8,00

0 0

6,75 8,75 8,50 18.75 5,50 5,75

0 4,47

0 7.75 3,75 6,00 7,50

o 0

6,75 8,75 9,00 19.00 5,25 5,75

0 5,25

0 23,00 11,00 18,00 23,25

0 0

19,50 26,00 26,50 56,25 16,00 17,50

0 14,50

0 7,67 3,67 6,00 7,75

0 0

6,50 8;67 8,83 18.75 5,33 5,83

0 4,83

73

Lampiran 15.b. Hasil Perhitungan setelah ditransformasi ke 5,0x

Perlakuan Ulangan

Total


BS DJ SG DK RK


0,71 2,87 2,00 2,50 2.87 0,71 0,71 2,65 3,00 3,08 4,36 2,39. 2,55 0,71 2,24

0,71 2,83 2,06 2,60 232 0,71 0,71 2,60 3,04 3,00 4,39 2,45 2,50 0,71 2,29

0,71 2,87 2,06 2,55 2.83 0,71 0,71 2,69 3,04 3,08 4,42 2,39 2,50 0,71 2,39

2,13 8,57 6,12 7,65 8,62 2,13 2,13 7,94 9,08 9,16 13,17 7,23 7.55 2,13 6,92

0,71 2,86 2,04 2,55 2,87 0,71 0,71 2,65 3,03 3,05 4,39 2,41 2,52 0,71 2,31


F Tabel 5% 1%


2,04 2,74

74

Daftar Uji Duncant


- - 0,02 - RKDJ 4,39 a

2 2,89 0,02 0,06 RKBS 3,05 b

3 3,04 0,02 0,06 SGRK 3,03 b

4 3,12 0,02 0,06 RK 2,87 c

5 3,20 0,02 0,06 SGDJ 2,86 c

6 3,25 0,02 0,07 DKRK 2,65 d

7 3,29 0,02 0,07 DJ 2,55 e

8 3,32 0,02 0,07 DK 2,52 e

9 3,35 0,02 0,07 SGDK 2,41 f

10 3,37 0,02 0,07 DJDK 2,31 f

11 3,39 0,02 0,07 SG 2,04 g

12 3,40 0,02 0,07 BS 0,17 h

13 3,42 0,02 0,07 BSDJ 0,71 h

14 3,43 0,02 0,07 SGBS 0,71 h

15 3,44 0,02 0,07 BSDK 0,71 h

75

Lampiran 16 Gambar 4. Ketebalan dan Meratanya Miselia Streptomyces spp, pada Substrat

BS (buah semu jambu mete), DJ (daun jambu mete), RK (residu kacang tanah), (DK) dedak kasar dan SG (serbuk gergaji).

76

Gambar 5. Ketebalan dan Meratanya Miselia Streptomyces spp, pada Substrat

DKDJ (dedak kasar + daun jambu mete), RKDJ (seridu kacang tanah + daun jambu mete), SGDK (serbuk gergaji + dedak kasar) dan SGRK (serbuk gergaji + residu kacang tanah)

77


SGBS (serbuk gergaji + buah semu jambu mete), BSDK (buah semu + dedak kasar), RKBS (seridu kacang tanah + buah semu jambu mete) dan SGDJ (serbuk gergaji + daun jambu mete)

78


BSDJ (buah semu + daun jambu mete) dan DKRK (dedak kasar + residu kacang tanah)

79

Lampiran 17. Tabel 5. Pengaruh komposisi kimia dan sifat fisika substrat organic terhadap

diameter koloni Streptomyces spp.

Sumber DB JK KT F P Perlakuan

Acak Total

8 36 44

236,239 121,433 357,672

29,530 3,373

8,75** 0,000

Daftar keragaman

Sumber DB JK pH C N

DHL NO3 PO4 NH3

K

1 1 1 1 1 1 1 1

25,6091 0,1343 0,0675 0,3713 0,5538 0,5805 4,1457 1,5103

Tabel 6. Pengaruh masing – masing komposisi kimia dan sifat fisika substans

organic terhadap diameter koloni.

Penduga Koefisien Standar deviasi

t-hitung p

Konstanta pH C N DHL NO3 PO4 NH3 K

-2,064 1,2909

-0,05282 -0,099 1,883

0,0664 0,02479 0,02868

-0,0005237

4,866 0,3379

0,07901 1,496 2,183

0,2511 0,06026 0,01374

0,005208

-0,42 3,82**

-0,67 -0,07 0,86 0,26 0,41

2,09* -1.01

0.674 0.001 0.508 0.948 0.394 0.793 0.683 0.044 0.321

80

Lampiran 18. Tabel 7. Pengaruh komposisi kimia dan sifat fisika substrat organik teriiadap

jumlah spora Streptomyces spp.

Sumber DB JK KT F P

Perlakuan 8 32,9725 4,1216 9,10 ** 0,000

Aeak 36 16,3103 0,4531

Total 44 49,2828

Daftar keragaman

Sumber DB JK pH C N

DHL N03 P04 NH3

K

1 1 1 1 1 1 1 1

189,102 0,378 3,438 0,534

4313 1,621 32,944 3,410

Tabel 8. Pengaruh masing-masing komposisi kimia dan sifat fisika substrat

organik terhadap jumlah spora Streptomyces spp.

Penduga Koefisien Standar deviasi t-hitung P

Konstanta -1,932 1,783 -1,08 ' 0,286 pH 0,5437 0,1238 4,39 ** 0,000 C -0,00579 0,02896 -0,20 0,843 N 0,6281 0,5482 1,15 0,259 DHL 1,2404 0,8001 1,55 0,130 NO3 0,02513 0,09204 0,27 0,786 P04 0,01831 0,02209 0,83 0,412 NH3 0,007859 0,005035 1,56 0,127 K -0,003485 0,001909 -1,83 0,076

Documents

UJI KESESUAIAN SUBSTRAT ORGANIK TERHADAP … · Pada garis besamya pengendalian jamur akar putih dapat dilakukan secara langsung dan tidak langsung. Pengendalian secara langsung dilakukan