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UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE CIUDAD JUÁREZ
INSTITUTO DE CIENCIAS BIOMÉDICAS
DEPARTAMENTO DE CIENCIAS QUÍMICO-BIOLÓGICAS
PROGRAMA DE BIOLOGÍA
MANUAL DE PRÁCTICAS
INVERTEBRADOS NO ARTRÓPODOS
1
MANUAL DE PRÁCTICAS DE INVERTEBRADOS NO ARTRÓPODOS
COMPILADORES:
Principales: Biol. Alejandra Aguirre Terrones; M. en C.S.P. Abraham Aquino Carreño
Revisado por: M. en C.S.P. Abraham Aquino Carreño
Ciudad Juárez, Chihuahua
Universidad Autónoma de Ciudad Juárez
2009
p. 180
Complemento práctico del curso de Invertebrados no Artrópodos del Programa de Licenciatura en Biología
M. en C. S.P. Abraham Aquino Carreño
Coordinador de la Academia de Biología
D. Ph. Antonio de la Mora Covarrubias
Coordinador del Programa de Biología
Dr. Alejandro Martínez Martínez
Jefe del Departamento de Ciencias Químico-Biológicas
M.C. Hugo Staines Orozco
Director del Instituto de Ciencias Biomédicas
Comité editorial
M. en C. S. P. Abraham Aquino Carreño
M. en C. Ana Gatica Colima
M. en C. Guillermo Bojórquez Rangel
Dra. Helvia Rosa Pelayo Benavides
3
INDICE
PRESENTACIÓN ................................................................................................ 5
AMBIENTE MARINO .......................................................................................... 6
LA ZOOLOGIA COMO CIENCIA ........................................................................ 8
CONCEPTO DE ZOOLOGIA .............................................................................. 9
METODO CIENTIFICO ..................................................................................... 10
LAS OBSERVACIONES CIENTIFICAS ............................................................ 10
FORMULACION DE LA HIPOTESIS ................................................................ 11
LA EXPERIMENTACIÓN .................................................................................. 11
CONCLUSIONES Y TEORIAS ......................................................................... 12
PRÁCTICA 1. TAXONOMIA Y CLASIFICACION .............................................. 14
Practica 2. ELABORACIÓN Y MANEJO DE CLAVES DICOTOMICAS ............ 22
Practica3. ECOSISTEMAS ACUÁTICOS DE AGUA DULCE ........................... 28
Practica4. FAUNA INTERSTICIAL .................................................................... 32
Practica 5. ZONA LITORAL .............................................................................. 38
Practica 6. PLANCTON ..................................................................................... 54
Practica 7. ARQUITECTURA ANIMAL .............................................................. 66
Practica8. CARACTERÍSTICAS GENERALES DE LOS PORÍFERA ............... 73
Practica 9. PHYLUM PORIFERA ...................................................................... 80
Practica 10. CARACTERÍSTICAS GENERALES DEL FILO CNIDARIA ........... 91
Practica 11. CNIDARIOS Y CTENOFOROS ..................................................... 97
Practica 12. CLASES DEL FILA PLATHYHELMINTHA .................................. 115
4
Practica 13. CARACTERÍSTICAS GENERALES DEL FILA PLATYHELMINTHES
………………………………………………………………………………………….120
Practica 14. GENERALIDADES DEL FILA ROTIFERA .................................. 125
Practica 15. GENERALIDADES DEL FILA NEMÁTODA ................................ 131
Practica 16. CLASES DEL PHYLA ANNELIDA ............................................... 139
Practica 17. PHYLA MOLLUSCA .................................................................... 147
Practica 18. RÁDULA DE MOLUSCOS .......................................................... 157
Practica 19. GENERALIDADES DEL PHYLA EQUINODERMATA ................. 167
Practica 20. EQUINODERMOS ...................................................................... 174
5
PRESENTACIÓN
El presente Manual de Laboratorio para la materia Invertebrados no Artrópodos
de la carrera de Biología de la Universidad Autónoma de Ciudad Juárez (UACJ),
pretende ser una guía práctica para la iniciación de los alumnos de Biología en el
estudio de los muchos y muy diversos grupos de invertebrados acuáticos y
terrestres, con un enfoque evolutivo progresivo, que le proporcione al alumno las
herramientas integradoras para el estudio de la diversidad animal; iniciando con el
conocimiento de los grupos de metazoarios mas “sencillos” tales como las
esponjas y cnidarios, hasta llegar a grupos tan adaptados y diversos como los
moluscos.
A medida que el estudiante de Biología se va adentrando en el estudio y
conocimiento de los invertebrados, la tarea puede parecer más ardua y difícil, pues
además de que cada grupo tiene sus particularidades anatómicas, fisiológicas y
etológicas (de comportamiento), con cada uno de ellos se utiliza terminología
diferente para identificar sus estructuras anatómicas particulares. Además de que
la clasificación taxonómica presenta una dinámica muy particular en muchos
grupos de invertebrados.
Lo anterior no debe ser un obstáculo para el estudiante, y si por el contrario,
deberá motivarlo a interesarse aún más en esta área del conocimiento. A pesar de
que en el presente trabajo no se hace una revisión y compilación exhaustiva, este
manual cubre la mayoría de los Phyla considerados más importantes para el curso,
con el fin de que el estudiante de Biología los comprenda de una manera integral,
clara y sencilla.
6
AMBIENTE MARINO
Es aceptado generalmente que la vida animal se origino en los océanos
arqueozoicos, mucho tiempo antes de que comenzara el registro fósil. Todos y
cada uno de los principales Phyla animales tienen por lo menos algunos
representantes marinos; ciertos grupos como los Cnidarios y Equinodermos son
exclusivamente marinos. A partir del ambiente marino ancestral, diferentes grupos
animales han invadido los ambientes dulceacuícolas y los otros grupos han
invadido también la tierra.
A diferencia de los ambientes dulceacuícolas y la tierra, el ambiente marino es
relativamente uniforme. Por ejemplo casi siempre hay Oxígeno disuelto y la
salinidad del mar abierto es relativamente constante, pues va de 34 a 36 ppm (3.4
a 3.6 %), según la latitud. Sin embargo, la luz y la temperatura varían de manera
considerable, sobre todo con la profundidad. Por tal razón la vida no tiene una
distribución uniforme en toda la profundidad y extensión de los océanos del
planeta, cubren aproximadamente el 71% de la corteza terrestre. Los márgenes de
los continentes se prolongan dentro del mar en formas de plataformas submarinas
con profundidades de 150 a 200 Mts, pero luego se ahonda en forma abrupta hasta
alcanzar profundidades de 3000 Mts. o más.
Antes de llegar al fondo oceánico, el talud continental está interrumpido por una
terraza o pendiente gradual formada por el talud continental. El fondo o suelo de
las cuencas oceánicas denominadas planicie abisal, tiene una profundidad de
3000 a 5000 Mts, y presentan características orográficas diversas como:
montañas, cordilleras y fosas submarinas. Las distintas plataformas continentales,
tienen diferentes anchuras; por ejemplo, el límite de la plataforma occidental del
Atlántico mide unos 120 Kms. a partir de la costa, en tanto la plataforma americana
del Pacífico es muy estrecha.
Las aguas situadas por encima de las plataformas continentales reciben el nombre
de Zona Nerítica, mientras que las colocadas más allá de la plataforma continental
7
constituyen la Zona oceánica; el límite costero de los mares, que asciende y
desciende con la marea, se conoce como Zona Litoral (o de mareas); la zona
ubicada por arriba del nivel promedio del mar es la Zona Supralitoral, y la que
está debajo es la Infralitoral; los taludes continentales forman lo que se denomina
Zona batial; las planicies abismales reciben el nombre de Zona Abisal, y las
zonas submarinas constituyen la Zona Hadal.
La distribución vertical de los organismos marinos depende en gran medida de la
profundidad de la penetración de la luz. Las cantidades de luz necesarias para que
la tasa de fotosíntesis rebase la de respiración solo penetra una corta distancia
bajo la superficie, cuando mucho 200 Mts. Según la turbidez del agua. Por debajo
de la Zona eufórica hay una zona de transición donde aún ocurre la fotosíntesis,
pero a una velocidad inferior a la de pérdida respiratoria. Luego, desde la zona de
transición hasta el fondo oceánico prevalece la oscuridad total. Esta región se
llama Zona afótica. Los animales que habitan de modo permanente en las zonas
afótica y de transición son carnívoros o detritófagos, consumidores de materia en
suspensión o sedimentada, que dependen de la actividad fotosintética de las algas
microscópicas de la zona eufórica.
Los organismos que nadan o flotan en las aguas oceánicas se conocen como
fauna pelágica; los que habitan en contacto con el fondo integran la fauna
bentónica. Los habitantes del fondo marino pueden vivir sobre este (epifauna) o
debajo de él (infauna), y por lo general reflejan de modo sorprendente las
características del sustrato, se trate de fondo duro de coral o roca, o de un fondo
suave de arena o lodo. Muchos animales están adaptados para vivir en los
espacios que hay entre las partículas de arena y constituye lo que se denomina
fauna intersticial o meiofauna. En esta fauna hay representantes de prácticamente
todos los filos animales de importancia y de ellos se han descubierto en la
actualidad varios grupos de animales nuevos. En todas las zonas horizontales hay
animales pelágicos y bentónicos.
Muchos hábitats de la zona litoral y de las aguas someras contienen una rica
diversidad de especies (diversidad específica). También pertenecen a estos
8
hábitats algunos de los invertebrados mejor estudiados, ya que los investigadores
tienen fácil acceso a ellos. Desde luego, las playas de arena y las playas rocosas
son los hábitats marinos de aguas someras con que el hombre está familiarizado,
aunque hay otros que también constituyen ricas zonas biológicas de recolección y
estudio. Por ejemplo en todas las bahías y zonas protegidas hay extensiones de
arena y lodo poco profundas que quedan expuestas durante la bajamar y
totalmente cubiertas por el agua durante la pleamar. En dichas extensiones habitan
muchos animales que no se ven, debido a que casi siempre están enterrados,
aunque en la superficie se aprecian signos de su existencia, como son las entradas
de sus galerías.
Así mismo los pastizales marinos de las aguas sublitorales someras son hábitats
de muchos invertebrados. Por otro lado, los manglares son comunidades de varias
especies de árboles relativamente pequeños, adaptados para tolerar condiciones
de salinidad y que albergan una gran cantidad de invertebrados (además de peces,
aves, mamíferos, reptiles, etc.). Los manglares ocupan la zona litoral y en general
poseen raíces adventicias o aéreas especiales (neumatóforos) que sobresalen en
la superficie del agua. Por su importancia como ecosistema de manglar y por
sostener una gran diversidad la mayoría de las especies de mangle están dentro
de las especies sujetas a protección especial de acuerdo a la NOM-059-
SEMARNAT, 1999).
LA ZOOLOGIA COMO CIENCIA
La ciencia es un método para obtener conocimientos acerca de la naturaleza. La
tierra, el espacio, las cosas no vivientes y los seres vivientes son parte de la
naturaleza. La ciencia incluye el examen de la naturaleza con el propósito de
entenderla y de describir algunos de sus aspectos. La ciencia busca la respuesta a
ciertas interrogantes acerca de la naturaleza. Algunos ejemplos de estas
interrogantes son: Porque migran las aves?, puede un ser humano vivir durante
9
largo tiempo con un corazón artificial? Las respuestas que se obtengan pueden dar
origen a más preguntas. Por ejemplo a medida que los científicos van aprendiendo
acerca de la migración, se preguntarán cómo encuentran su camino las aves
migratorias.
CONCEPTO DE ZOOLOGIA
Se da el nombre de Zoología a la ciencia que tiene por objeto el estudio de los
animales, la palabra Zoología procede de dos voces griegas que expresan con
toda precisión este concepto; Zoo = animal y Logos = tratado o estudio.
La Zoología no es una ciencia independiente y aislada, sino que forma parte de
otra rama científica más amplia y extensa: la Biología, que como se sabe, se ocupa
de las manifestaciones generales de la vida y de las actividades de los seres vivos
u orgánicos en todos sus aspectos. Su etimología responde también a esta
definición (BIOS = vida y logos = tratado o estudio).
Una idea muy extendida entre los que tienen conocimientos someros en Zoología o
la desconocen, es que se limita a dar nombres a los animales de acuerdo con
ciertas normas establecidas por los zoólogos o a ordenarlos con arreglo a
clasificaciones complejas de aridez extraordinaria. La zoología está muy lejos de
tener tan estrecho horizonte y propósitos tan limitados; esta ciencia estudia los
animales desde los más diversos e interesantes puntos de vista; nos habla de la
vida y costumbres de los insectos, de cómo nidifican y emigran las aves, de los
animales de las selvas, de los que viven en los desiertos, pueblan los mares y las
cavernas y por lo tanto están acomodados a las mas contrapuestas condiciones;
en ambientes muy variados; se ocupa también del interesante proceso
embriológico que los animales siguen desde el huevo hasta que nacen, de su
metamorfosis, de cómo heredan sus rasgos y caracteres o realizan sus funciones,
de cómo están constituidos anatómicamente; de su historia a través de los tiempos
geológicos, de su distribución sobre el planeta y de sus relaciones con el hombre.
En resumen, la Zoología estudia el reino animal, los grupos zoológicos y cada uno
10
de los animales en particular de un modo integral y completo, en todas sus
modalidades y aspectos posibles en las cuales se puedan obtener nuevos datos o
nuevos conocimientos científicos.
METODO CIENTIFICO
El método científico es una manera de recopilar información y comprobar ideas. Es
la forma en que un científico trata de hallar respuestas a sus interrogantes sobre la
naturaleza. A pesar de que el procedimiento puede variar, el método científico
consta de los siguientes pasos generales: a) hacer observaciones, b) formular
hipótesis, c) someter a prueba las hipótesis y d) llegar a conclusiones. El método
científico es lo que distingue a la ciencia de los otros campos de estudio.
LAS OBSERVACIONES CIENTIFICAS
El microscopio que se utiliza en este curso, es un microscopio compuesto. Las
lentes de un microscopio de luz aumentan el tamaño del objeto que se está
observando. Para aumentar todavía más el tamaño de las cosas, los científicos
utilizan otros tipos de microscopios.
Un científico debe cuidarse de que sus opiniones y sus emociones no influyan en lo
que observa. Una idea o una opinión que influye una observación, es una idea
viciada porque es parcial o prejuiciado. Por ejemplo puede ser que un científico le
tenga miedo a las serpientes. La “observación” del científico de que el
comportamiento de la serpiente es siempre agresivo está viciada, porque su
prejuicio influye en ella. Se sabe, sin embargo, que la mayor parte del
comportamiento de las serpientes es defensivo.
11
Las observaciones de un científico, además de ser exactas, deben también constar
de un registro escrito o en película o en cinta magnetofónica o en otra forma. Este
registro de sus observaciones, esa información, constituye los datos del
experimento.
FORMULACION DE LA HIPOTESIS
Una observación o una serie de observaciones muy a menudo llevan a un científico
a hacer una o más preguntas. Por ejemplo; con relación a los murciélagos que
cazan durante la noche, un científico puede preguntarse: ¿En qué forma detectan
los murciélagos a los pequeños insectos que cazan? Para contestar esta pregunta,
el científico puede leer acerca de los murciélagos y su comportamiento. Si el
científico no encuentra la respuesta en los escritos de otros científicos, debe hacer
observaciones propias adicionales muy cuidadosas acerca de los murciélagos.
Después que se ha formulado la pregunta, el científico la contesta formulando una
hipótesis. Una hipótesis es una posible contestación a una pregunta acerca de la
naturaleza, basada en observaciones, lecturas y los conocimientos del propio
científico. Para el caso anterior, una hipótesis es que los murciélagos utilizan su
vista para cazar en la noche. El siguiente paso en el método científico es probar la
hipótesis.
LA EXPERIMENTACIÓN
Un científico debe diseñar un experimento para probar la hipótesis que propone.
Un experimento incluye, generalmente, dos grupos sobre los que se van a hacer
observaciones. A uno se le llama el grupo control. El otro es el grupo experimental.
El grupo experimental difiere del grupo control solamente en un factor o condición:
12
la que se está probando en el experimento. La condición que distingue al grupo
experimental del grupo control se conoce como el factor variable.
Mientras se realiza un experimento, deben anotarse las observaciones exactas,
tanto del grupo experimental como del grupo control. Las observaciones anotadas
son los datos que el experimento provee. Para asegurarse de lo que se obtiene en
un experimento es confiable, y no algo que ocurre una sola vez, debe obtenerse
información suficiente. Por ejemplo, al tratar de determinar si los ratones necesitan
Vitamina C para crecer, se debe trabajar con grupos de ratones. No puede obtener
datos útiles con un solo ratón sin Vitamina C. Una muestra más grande asegura
que lo que se está observando es lo que ocurre normalmente bajo las condiciones
que existen en el experimento. Una vez anotados los datos deben organizarse y
analizarse. Hasta hace poco tiempo, los científicos tenían que estar organizando y
analizando los datos durante largo tiempo. Hoy en día contamos con computadoras
que reducen notablemente el tiempo que toma esta tarea.
CONCLUSIONES Y TEORIAS
La información que se obtiene de un experimento se estudia con el fin de
determinar si confirma o no la hipótesis original. Si apoya la hipótesis, se ha
obtenido la evidencia de que la hipótesis es válida. Si no la apoya, se llega a la
conclusión de que la hipótesis es incorrecta.
Una teoría es una explicación de algo en la naturaleza que la evidencia ha
apoyado repetidas veces. La teoría de la reacción entre los gérmenes y las
enfermedades, por ejemplo, dice que ciertas enfermedades son causadas por unos
organismos muy pequeños (microbios). Dice también que una enfermedad se
puede transmitir de una persona a otra por medio de estos organismos. Una teoría
sirve generalmente, como base para experimentación adicional o posterior. La
teoría de que los microbios causan enfermedades resultó en el desarrollo de las
vacunas.
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En ciencia una teoría es una explicación que tiene un alto grado de confiabilidad.
Las teorías científicas pueden cambiar. En algunos casos aparecen nuevas teorías
que las sustituyen. En otros casos, se encuentran nuevos datos que obligan a
modificarlas. Las teorías científicas están sujetas a comprobación.
Además de teorías, la ciencia tiene leyes o principios. Una ley científica es una
descripción de algún aspecto de la naturaleza. Por ejemplo la ley de Allen dice que
algunas partes del cuerpo de un animal, como las orejas, son más pequeñas en los
climas fríos que en los climas cálidos. Así como un conejo que vive en la región
polar tiene las orejas más cortas que un conejo que vive en el desierto. Una ley no
explica el porqué de un aspecto de la naturaleza, como lo hace una teoría. Una ley
describe algún aspecto de la naturaleza.
14
PRÁCTICA 1. TAXONOMIA Y CLASIFICACION
Introducción
La clasificación de los animales y el uso de las claves es el conocimiento básico
para la ciencia de la taxonomía. Taxonomía (del griego Taxis, orden y nomos,
ley), es la ciencia de la identificación, nombramiento y descripción, clasificación y
relaciones filogenéticas de las vidas presentes y extintas.
Las reglas zoológicas son nombradas por el Código Internacional de Nomenclatura
Zoológica (C.I.N.Z.) y las reglas vigentes fueron adoptadas por el XV Congreso
Internacional de Nomenclatura de Zoología en 1961. El CINZ es un sistema de
reglas o leyes y recomendaciones establecidas para promover estabilidad y
universalidad en los nombres científicos de los animales y es independiente de
otros sistemas de nomenclatura.
Los estudios en los campos de la morfología, fisiología, ecología y genética revelan
que los animales se agregan en grupos naturales sobre una escala jerárquica, un
grupo incluido dentro de otro (como una cajita china). El grupo más bajo es la
especie, la cual se define como “población natural la cual es morfológica,
fisiológica, ecológica o genéticamente distinta y aislada reproductivamente de otras
poblaciones”. El CINZ establece que todas las especies deben tener nombre
binominal (Nombre científico), el cual consiste en un nombre específico del animal
(especie) y el nombre de a categoría próxima a la cual pertenece; el Género.
Por ejemplo. El nombre binominal de la jaiba común es Callinectes bellicosus y
fue descrita por un hombre llamado Stimpson en 1860. Jaiba común es el nombre
vernacular o común, ambos nombres son locales y varían de lugar a lugar, lo cual
no permiten ser utilizados zoológicamente. El CINZ establece que los nombres
científicos deben escribirse en latín, el nombre de quien los describe o descubre y
la fecha de publicación. El nombre científico puede ser escrito subrayado,
15
resaltado en negritas del resto del texto o bien escrito en cursivas o itálicas. El
nombre binominal de la jaiba común escrita correctamente es Callinectes
bellicosus, Stimpson, 1860.
Los nombres binominales son usualmente descriptivos, como es el caso de
Octopus bimaculatus, Verril, 1833. Octopus se deriva de la palabra latina octipes
la cual significa que tiene 8 pies y bimaculatus de las palabras latinas bis y
maculata con lo cual se señala que porta dos manchas.
Algunos nombres denotan la localidad de la cual el animal fue descrito
originalmente. El cangrejo porcelana Petrolisthes sanfelipenesis Glassell. 1936,
fue descrito para San Felipe, Baja California y Aplysia californica (Cooper, 1863)
fue descubierta primero en California.
Otros nombres pueden ser patronímicos o nombrados en honor de alguien. La
almeja Tresus nuttalli (Conrad, 1837) fue nombrada en honor a un científico
estudioso de las conchas llamado Thomas Nuttalli. Cuando el nombre del autor y la
fecha se encuentra encerrada entre dos paréntesis eso indica que el nombre de la
especie estaba asociada originalmente con otros nombres genéricos y ha sido
transferido a una nueva combinación, por ejemplo, Tresus nuttalli fue descrita por
Conrad en 1837 como perteneciente al género Lutraria Lamarck, 1799 y estudios
posteriores revelaron que las afinidades de las especies no eran con Lutraria sino
con los miembros del género Tresus Gray, 1853.
Algunas veces podrán encontrar organismos con nombre trinomial, tal es el caso
de la estrella de dos colores del sureste Pisaster giganteus capitatus, este
animal es una subespecie (=raza geográfica) de la estrella Pisaster giganteus
giganteus del norte de California. Una subespecie es una subdivisión de una
especie y puede ser definida como “población natural la cual es morfológicamente
distinta y geográficamente localizada, pero no reproductivamente aislada de otras
poblaciones de la misma especie”.
16
Algunas especies son agrupadas en géneros, algunos géneros en familias, las
familias se agrupan en órdenes, etc. Y su respectiva posición de algún animal en la
jerarquía taxonómica puede ser expresada por 6 categorías principales:
Phyllum
Clase
Orden
Familia
Género
Especie
En la mayoría de los taxa animal (Taxón), se define como todos los animales
incluidos en una categoría taxonómica), una definición precisa es necesaria y esta
se ayuda acompañada de categorías suplementarias, adicionando categorías entre
aquellas con los sufijos súper, sub. e infra.
IDENTIFICACION
Las claves taxonómicas son usadas para establecer la identidad de un animal o un
taxón de animales.
Estas claves son dicotómicas y ofrecen solamente DOS alternativas en un punto.
Una alternativa se agrega con el organismo que se determinó e indicará el grupo
de alternativas que se consultará.
Procediendo de un grupo de alternativas hasta las próximas, el animal será
identificado hasta el taxón al cual pertenece. Dos, tres y más características
adicionales serán tomadas en cuenta para la identificación, en caso de que uno de
ellos no esté disponible (roto, dañado, muy pequeño, etc.), los demás caracteres
17
tiene un status igual a los caracteres primarios, pero si el carácter expresado en la
primera alternativa nos lleva con el nombre y grupo del organismo, no será
necesario consultar las otras opciones.
El número entre paréntesis después del número, se refiere a la opción anterior y
hace posible regresarnos a través de la clave para aclarar alguna duda. El paso
para seguir adelante en la clave nos lo indica el numero que se localiza al final de
la línea punteada o bien habremos terminado si encontramos el nombre del grupo
mayor o nombre específico.
Objetivos
Conocer la utilidad de los sistemas de clasificación.
Conocer los elementos de un sistema de clasificación.
Conocer los principales fila de invertebrados del reino animal.
Describir los invertebrados del reino animal proporcionados.
Materiales
Ejemplares diversos de invertebrados preservados.
Estereoscopio
Procedimiento
Observe y maneje cuidadosamente el material biológico proporcionado.
Seleccione cuatro ejemplares de diferente Fila y haga un dibujo de cada uno en la
tabla de abajo.
Describa cada uno de los ejemplares proporcionados.
NOTA: EL MATERIAL BIOLÓGICO DEBE MANEJARSE CON CUIDADO, PARA
NO DAÑAR ALGUNAS ESTRUCTURAS DELICADAS.
18
De acuerdo a las características de los ejemplares observados, clasifíquelos en el
Fila correspondiente. Complemente la información con una investigación
bibliográfica.
Esquema Tipo de simetría Características generales
Fila 1:
De los ejemplares proporcionados escoja uno e investigue de él su clasificación
taxonómica partiendo de la especie, hasta llegar a la clase a la que pertenece.
Fila 2:
Fila 3:
Fila 4:
19
Fila_______________________
Clase______________________
Orden_____________________
Familia____________________
Género____________________
Epiteto específico_____________________
Bibliografía
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20
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Resultados
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Cuestionario
1.- Cuál es la importancia de tener un sistema de clasificación de los animales? __________________________________________________________________________
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21
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2.- Cuantos fila de animales existen?
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3.- Cual es el fila que le parece más interesante y por qué? __________________________________________________________________________
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Conclusiones
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Bibliografía consultada
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Practica 2. ELABORACIÓN Y MANEJO DE CLAVES DICOTOMICAS
Introducción
Las claves dicotómicas son herramientas muy valiosas para las personas
interesadas en conocer la identidad de algún organismo (vegetal y animal), así
como su posición taxonómica. Estas claves se basan en una serie de
características generales de algún grupo de organismos, lo que permite que dichos
caracteres se vayan disgregando hasta que solamente algún organismo posea una
característica particular que no comparte con ningún otro; esta disgregación se da
en dos opciones y los caracteres (ya sean cualitativos o cuantitativos) se acumulan
de opción en opción hasta dar con el nombre específico de cada ejemplar.
La mayoría de las claves taxonómicas se basan en pares de aseveraciones
opuestas. Para un organismo dado solamente una de cada par de aseveraciones
puede ser cierta. Hay que seleccionar la que describe al organismo la aseveración
seleccionada lo dirige hacia otro par de aseveraciones en donde se tiene que hacer
otra selección. Cada par de aseveraciones sucesivas es más específico en la
descripción del organismo. Siga seleccionando hasta que se identifique al
organismo.
Generalmente las claves taxonómicas llaman la atención hacia pequeños detalles
característicos o propios del organismo que se quiere identificar. La clave puede
referirse a estructuras internas del organismo o a cambios de color estacionales.
Puede referirse a partes del organismo que pueden estar presentes cuando se
colecta o se estudia el organismo. Es por ello que conviene estar familiarizado con
los organismos a identificar.
Objetivos
Elaborar una clave dicotómica.
Aprender a utilizar dichas claves como herramienta de la identificación
taxonómica.
23
Materiales
Claves dicotómicas.
Organismos para identificación
Procedimiento
Se revisan las características del organismo, comparándolas en una clave
dicotómica, y se van segregando el conjunto de características hasta llegar a la
categoría taxonómica deseada.
Para la elaboración de la clave dicotómica, se elige un organismo, y se listan sus
características más conspicuas, y se elabora un sistema de 2 opciones.
Bibliografía
Abbot, I.A.1978.How to know the seaweeds. Wm.C. Brown Co. Pub. Dubuque,
Iowa.
Aladro Lubel, M.A.1985. Algunos Ciliados Intersticiales de Isla de Enmedio,
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24
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Vegas-Veles, M. 1980. Introducción a la Ecología del Bentos Marino. O.E.A.
Washington, D.C.
Villalpando-Canchola, E. 1986. Diversidad y Zonación de Moluscos en Facie
Rocosa Isla Roqueta, Acapulco, Guerrero. TESIS PROFESIONAL Fac. Ciencias.
UNAM.
25
Resultados (Clave dicotómica)
1. A
1. B
2. A
2. B
3. A
3. B
4. A
4. B
5. A
5. B
6. A
6. B
7. A
7. B
8. A
8. B
9. A
9. B
10. A
10. B
26
Cuestionario
1.- Que ventaja (s) representa la utilización de las claves dicotómicas en la
taxonomía?
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
________________________________________________________________
2.- Defina con sus propias palabras lo que entiende por los siguientes términos:
a. Taxonomía
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
b. Sistemática
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
c. Cladismo
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
27
d. Taxa
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
3.- Explique las dificultades que tuvo al realizar la clave. __________________________________________________________________________
__________________________________________________________________________
__________________________________________________________________________
__________________________________________________________________________
Conclusiones
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
_______________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
_______________________________________________________________________
Bibliografía consultada
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
_______________________________________________________________________
________________________________________________________________________
28
Practica3. ECOSISTEMAS ACUÁTICOS DE AGUA DULCE
Introducción
En los ecosistemas acuáticos de agua dulce, las características físicas y químicas
son relativamente restrictivas. Los arroyos pueden ser muy diferentes unos a otros,
en términos de profundidad, tipo de sustrato, velocidad de corriente. La
característica más evidente de los arroyos es la corriente, los animales que viven
en ellos deben buscar la forma de mantenerse o buscar un refugio que los proteja
del agua en movimiento. El agua en movimiento provee nutrientes y oxígeno
disuelto y ayuda a la dispersión de los animales. Otra característica física que
influye en la vida de los animales en los arroyos es la temperatura, ya que
interviene en su ciclo de vida, y la disponibilidad de oxígeno. También existen
características químicas como el pH y la dureza. Los animales que viven en
arroyos, muestran estructuras morfológicas que son adaptaciones para la vida en
estos ecosistemas. El propósito de las siguientes actividades es estudiar la
ecología de los arroyos. Primero se estudiarán las características físicas y
químicas y después se estudiarán las adaptaciones de los animales que viven en
estos ambientes.
Objetivos
Que el alumno sea capaz de describir las características físicas y químicas de los arroyos donde se desarrolla la vida animal.
Que describa algunas adaptaciones de los invertebrados que viven en arroyos.
Materiales
Cinta métrica
Correntómetro
Potenciómetro
29
Conductímetro
Frascos
Red de fitoplancton
Procedimiento
Cuando arribe al lugar donde se encuentra el arroyo que va a estudiar, eche una
mirada alrededor, que tan ancho es el arroyo, que tal profundo, que animales
invertebrados puede observar?
Utilice la red de fitoplancton para capturar algunos representantes de la microfauna
que hay en el lugar. Busque en las orillas del arroyo, levante las piedras para que
localice algunos otros invertebrados no artrópodos que viven ahí.
Llene las siguientes tablas de características físico-químicas y de adaptaciones de
los animales del arroyo.
En el caso de los micro invertebrados, obsérvelos bajo el estereoscopio cuando
llegue al laboratorio.
Bibliografía
Miller, S. 2002. Generalo zoology laboratory manual. McGraw-Hill. Quinta edición. Pp.337
Wallace, R.,W. Taylor. 2003. Invertebrate zoology. A laboratory manual. Sexta edición. Prentice Hall. Estados Unidos. Pp. 356
Resultados
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
_______________________________________________________________________
30
Cuestionario
1. Mencione tres características químicas que influyan en la vida animal __________________________________________________________________________
__________________________________________________________________________
__________________________________________________________________________
__________________________________________________________________________
__________________________________________________________________________
__________________________________________________________________________
__________________________________________________________________________
__________________________________________________________________________
2. Describa un factor que cause una reducción natural en los niveles de oxígeno disuelto __________________________________________________________________________
__________________________________________________________________________
__________________________________________________________________________
__________________________________________________________________________
3. Describa un factor que cause una reducción en los niveles de oxígeno disuelto por causas antropogénicas __________________________________________________________________________
__________________________________________________________________________
__________________________________________________________________________
__________________________________________________________________________
31
Conclusiones
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
_______________________________________________________________________
Bibliografía consultada
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
_______________________________________________________________________
32
Practica4. FAUNA INTERSTICIAL
Introducción
La fauna que vive en la arena se le conoce con el nombre de psamófila (psammon = arena).
Un gran número de protozoarios (especialmente ciliados) y micrometazoarios viven
en los espacios intergranulares del sedimento, por lo que se les conoce como
organismos intersticiales.
La distribución vertical de la fauna intersticial, está dada por una interacción de
varios factores, tanto físicos como químicos entre los que se pueden mencionar;
las propiedades mecánicas de; sedimento ya que de esto depende el
comportamiento del agua en el intersticio y por lo tanto la disponibilidad del oxigeno
y de las substancias disueltas en ella, la luz, la materia orgánica y el alimento.
Objetivos
Conocer técnicas de muestreo para fauna intersticial
Colecta de ejemplares para colección científica.
Materiales
Triángulos de vidrio
Dos tubos de plástico pequeños con malla (ver apéndice).
Hielo triturado
Un embudo de plástico
Tres círculos de papel filtro
Portaobjetos
Cubreobjetos
Pipetas Pasteur
Una cuchara de plástico
Libreta de campo
Lápiz
Tres frascos de boca ancha
*Cinta métrica * Material indispensable para llevar al campo.
33
Procedimiento
Actividad Práctica (en el campo).
Recorrer la zona de trabajo y procurar observar con detenimiento todos los detalles
que puedan servir de referencia para el diseño de un mapa. Elaborar el mapa.
- Seleccionar un área de muestreo y ubicar las zonas de estudio en el mapa.
- Cada equipo recolectará tres muestras de sedimento en cada estación haciendo
un arrastre directamente con los frascos de boca ancha.
-Recolectar cada muestra desde la playa hacia el mar, calcular más o menos a tres
metros de distancia entre cada una de las zonas de muestreo de la estación.
- Agregar a las muestras recolectadas un poco de agua del medio previamente
filtrada. Transportar al lugar de trabajo.
- En otro frasco traer una poca de agua del medio anotando su procedencia.
Actividad Práctica (en el sitio de hospedaje).
- Poner en una caja de Petri mas o menos 30 ml. de agua del medio previamente
filtrada y un triangulo de vidrio.
- Con ayuda de la cuchara de plástico poner en el tubo que tiene la malla parte de
la muestra de los frascos más o menos 205 cm. y la misma cantidad de hielo
triturado.
- Colocar el tubo de plástico sobre el triangulo de vidrio en la caja de Petri,
UNICAMENTE tocando el nivel del agua. Observar que se forme un menisco.
Hacer lo mismo para cada muestra.
34
- Mantener esta posición durante 20 ó 30 minutos, hacer un cambio de caja a los
15 minutos. La segunda caja también deberá tener agua del medio filtrada.
- Observar la caja de Petri bajo el microscopio estereoscópico, sacar con ayuda de
una pipeta Pasteur los organismos encontrados, hacer preparaciones temporales y
observarlos en el microscopio óptico para su reconocimiento.
- También se pueden hacer observaciones directas de la muestra del sedimento
haciendo preparaciones temporales con ayuda de una pipeta Pasteur.
Bibliografía
Abbot, I.A.1978.How to know the seaweeds. Wm.C. Brown Co. Pub. Dubuque, Iowa.
Aladro Lubel, M.A.1985. Algunos Ciliados Intersticiales de Isla de Enmedio, Veracruz, México. An. Inst. Biol. Univ. Nal.Autón. México 55, Ser. Zoología (I): 1-59
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Tait, R.V. 1971.Elementos de Ecología Marina. Acribia. Zaragoza, España.
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Resultados
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
_______________________________________________________________________
Cuestionario
1.- ¿Qué organismos se identificaron en las muestras? Señala su posición
taxonómica y su abundancia relativa para cada uno de los muestreos.
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
2.- Explica cuales son las adaptaciones morfológicas que presentan los
organismos para poder vivir entre los granos de arena.
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
37
3.- ¿Qué factores interviene en la distribución de los organismos de la fauna
intersticial?
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
Conclusiones
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
_______________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
_______________________________________________________________________
Bibliografía consultada
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
_______________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
_______________________________________________________________________
38
Practica 5. ZONA LITORAL
Introducción
Una costa rocosa al constituir un sustrato firme, permite la fijación y desarrollo de
gran cantidad de organismos y de algún modo se delimitan franjas de coloración
diferencial debido al arreglo de las algas e invertebrados sésiles que aquí crecen.
Al presentarse una gran diversidad de organismo se desarrollan una serie de
interacciones bióticas como son: la competencia por el sustrato debido a la
presencia de animales herbívoros y filtradores, una fuerte presión ejercida por los
consumidores (primarios y secundarios) llegando hasta la competencia por la presa
entre los depredadores especializados.
En este ambiente, se presentan dos fuentes de energía, el de la energía del
fitoplancton y la materia orgánica en suspensión y el de la producción primaria de
fitobentos permitiendo una gran diversidad de componentes de la cadena
alimenticia.
La distribución de los organismos de una costa rocosa, es el resultado de la
interacción de diversos factores, en las regiones superiores los más importantes
son los factores abióticos, que delimitan una zona de amplias variaciones en los
parámetros ambientales como son: la temperatura, la irradiación solar, los vientos,
la salinidad, etc. permitiendo el desarrollo de organismos con capacidad de
desplazamiento, conductas cíclicas de protección, resistencia a la desecación,
fuertes estructuras de fijación.
39
En la región meso e infralitoral las franjas de organismos son producto del
desarrollo de especies condicionadas por el microambiente del sitio y reguladas
por la competencia del alimento considerándose en general que en las regiones
inferiores los factores determinantes son las interacciones bióticas al estar en un
medio más estable en cuanto a factores físicos..
Aunque no se puede dar un patrón general de zonación de sustrato rocoso, se
puede ejemplificar de la siguiente manera:
a) Zona Supralitoral. Caracterizada por incrustaciones de algunas clorofilas y
cianofitas que contiene por lo general moluscos de la familia Littorinidae (Littorina
aspersa y modesta).
b) Zona Mesolitoral. En la cual se encuentran representantes de moluscos como
Nerita, Chitón, moluscos pateliformes, Collisella, Fisurilla, Púrpura patula,
Pseudochamainerrmis, Thais speciosa, Balanus y algas como: Sargassum,
Ulva, Padina y Dictyota.
c) Zona Infralitoral o Pendiente Superior de la Zona Infralitoral, caracterizada
principalmente por la presencia de algas feofíceas y una franja de erizos.
Debido a la constancia de estas zonas en los diferentes mares se han propuestos
una gran cantidad de patrones de zonación, siendo los más aceptados los de
Stephenson & Stephenson, 1949 y el propuesto por Pérez 1961, basándose el
primero en la presencia de las franjas y cinturones de organismos, y el segundo
por la delimitación física de los niveles de variación de mareas.
Objetivos
Realizar cuadrantes de muestreo
Colecta de especímenes para colección científica.
Describir cuantitativamente una comunidad
40
Materiales
2 estacas de 1.70 m.
1 estaca de 2.10 m.
Hilo de cáñamo o nylon
Metro o cinta métrica
Espátula o cuchillo
Marcos de madera de 20 x 20ccms.
10 bolsas de plástico y ligas para cerrarlas
Libreta
Lápiz plomo
Cubetas
Plomada
Etiquetas de colgar
Cincel y martillo
Guantes de lona
Material para llevar al campo
Actividad práctica (en el campo)
- Observar la zona de estudio. Hacer un mapa y ubicar el área de trabajo en él.
-Seleccionar la zona: Se recomienda escoger una zona de roca en bloque y NO de
cantos rodados porque se altera la zonación.
-Colocar las estacas. La primera se sitúa donde se inicia la franja de las litorinas, la
última debe quedar donde aparecen los erizos o hasta donde las condiciones del
trabajo lo permitan, la segunda estaca se coloca en un punto intermedio entre las
dos estacas ya colocadas.
-Tener hilo nylon lo más recto posible; si se puede, nivelar con respecto a la línea
de costa
- Con ayuda de la plomada tomar la medición entre el hilo y el sustrato cada 20
cms. Anotarlas en la libreta. No olvidar la primera medición en la estaca que se ha
colocado sobre la franja de las litorinas.
41
- Con los marcos de 20 x 20 cms. contar los organismos encontrados en forma
continua; desde la estaca una hasta la tres para elaborar el esquema de zonación
del sustrato rocoso.
NOTA.- Se estudiaran tantos cuadrantes como se necesiten para abarcar la
longitud total del transecto, p. ej. Si el transecto tiene una longitud de 4.0 m. se
estudiarán 20 cuadrantes de 20 cm. anotar los datos en la libreta de campo.
Cuadrante No. 1
Organismos No. total Recolectado *
(si o no)
sp 1 10 SI
Sp 2 20 NO
Sp 3 20 SI
* Anotar el número de clave o etiqueta.
- Al terminar cada cuadrante, checar que todos los datos están completos y
correctamente anotados en la libreta.
- Sólo se RECOLECTARA UN ORGANISMO de cada una de las especies
encontradas que no se reconocieron.
- Observar detalles de los organismos (coloración, asociación, etc.)
Actividad práctica (en el sitio de hospedaje)
- Registrar e interpretar los datos.
- Graficar en papel milimétrico puntos de muestreo (cada 20 cms) contra altura del
hilo para obtener el perfil de la zona rocosa.
- Para obtener la distribución de los organismos a lo largo del transecto (zonación)
manejar los datos de la siguiente manera:
42
1.- Obtener el total de organismos de la especie X en todos los cuadrantes del
transecto que representará el 100%, contar los organismos de esta especie en
cada cuadrante y obtener su porcentaje respecto al total de la especie
correspondiente.
Esto se hará para cada especie de organismos encontrados por orden de
aparición,
Por ejemplo:
Por lo tanto si:
50----- 100%
20----- x
Y así cada una de las especies en cada uno de los cuadrantes.
ORGANISMOS No DE
ORGANISMOS
PORCENTAJE
ENCONTRADOS
Cuadrante No. 1
Littorina 20 40%
Nerita
Acmaea
Cuadrante No. 2
Nerita
Littorina 20 40%
Acmaea
Cuadrante No. 3
Littorina 10 20%
43
-Trazar una escala arbitraria para presentar el porcentaje de cada especie por
transecto.
- Representarlo en gráficas de barras.
- Graficar en papel milimétrico, puntos de muestreo (cuadrante) 1, 2, 3, etc. contra
porcentaje de organismos de cada especie en ORDEN DE APARICION.
-Trabajar los datos obtenidos en el transecto rocoso de la siguiente manera:
No. de
cuadrante
Área
acumulativa
(cm.)
No. de sp
No. de sp nuevas que se
van presentando en cada
cuadrante
No. acumulativo
de sp nuevas
1 20 1 1 1
2 40 2 1 2
3 60 4 2 4
4 80 5 3 7
5 100 6 2 9
6 120 7 1 10
7 140 8 0
Graficar: En el eje de las abscisas el área acumulativa (cm.) y en eje de las
ordenadas el número acumulativo de especie
44
ZONA LITORAL
ROCA SUELTA INFRALITORAL.
Es un tipo de hábitat que representa una gradación entre la costa rocosa y la playa
arenosa.
Las características de esta zona varían por las condiciones del oleaje y el tamaño
de las piedras.
La roca suelta no se encuentra sobre sustratos lodoso, presenta una circulación
adecuada lo que permite la colonización de una fauna especial en su cara inferior,
representada por diferentes organismos entre los cuales se pueden encontrar
animales de los Phyla Mollusca, Arthropoda, Echinodermata y Annelida entre otros.
Nota. Dependiendo de las características de la zona, del estado del tiempo y del
criterio del profesor se pueden utilizar dos métodos de muestreo: por cuadrante y/o
transecto.
1.- Cuadrante (por equipo)
Material
* 4 estacas
* Hilo nylon
* 2 frascos de boca ancha
* 3 bolsas de plástico con sus ligas
* 3 cuadrantes de 20 x 20 cm.
* Cinta métrica
45
2.- Transecto: (por equipo)
MATERIAL
* 4 estacas
* 5 bolsas de plástico con sus ligas
* Una pala de albañilería
* 2 cubetas
* Libreta decampo
* Material para llevar al campo
Procedimiento
Actividad Práctica (en el campo).
Cuadrante:
- En la libreta de campo llevar un cuadrante dibujado a escala para poder ubicar a
los organismos encontrados.
- Seleccionar el área de estudio.
- Recorrer la zona de trabajo. Elaborar un mapa y ubicar la zona. Hacer un
cuadrante de 2 m. por lado con las estacas y el hilo nylon (puede variar el área de
estudio de acuerdo al criterio del profesor), subdividirlo en cuadrantes más
pequeños (se pueden utilizar los cuadrantes del sustrato rocoso), contar con los
organismos encontrados. Observar su hábitat y comportamiento.
Anotarlo en la libreta.
- Para observar a los organismos, con fototropismo negativo es necesario levantar
la roca suelta que se encuentre con fototropismo negativo; regresándolas con
cuidado donde se encontraban.
46
- En caso de escoger transecto, seleccionar el áreas de estudio de acuerdo al
criterio del profesor, variara la longitud del transecto; se seguirá la misma
metodología señalada para costa rocosa.
Actividad Práctica (sitio de hospedaje).
- Graficar como en sustrato rocoso % contra área.
- Aplicar índice de diversidad de Simpson.
- Indicar de acuerdo al resultado el grado de diversidad de la comunidad estudiada.
INDICE DE DIVERSIDAD
El índice de diversidad propuesto por Simpson es la probabilidad de seleccionar
aleatoriamente dos organismos de especies diferentes en un mismo sitio o zona
muestreada por la formula:
D = 1- ∑ (pi)²
і = 1
Donde D = índice de diversidad de Simpson.
pi = proporción de individuos de la especie і en la comunidad.
El índice de Simpson concede relativamente poca importancia a las especies no
abundantes y mayor significancia a las abundantes. Los valores van de 0
(diversidad baja) hasta un máximo 1 – 1/S (donde S es el número de especies).
Por ejemplo:
Si hallamos en un transecto dado las siguientes cantidades de individuos:
- 25 individuos de Littorina sp.
- 10 individuos de Nerita sp.
- 15 individuos de Turbo sp.
- 50 individuos de Acmea sp.
- 100 individuos en total
47
Por lo tanto a cada especie le corresponde las siguientes proporciones
Acmea = 0.50
Littorina = 0.25
Turbo = 0.15
Nerita = 0.10
Y aplicando la formula de Simpson:
D = 1- ∑ (pi)²
і = 1
D = 1 – [(0.50)² + (0.25)² + (0.15) ² + (0.10) ²]
D = 0.655
El valor máximo del índice se Simpson en este caso es de:
1 -1/S (donde S es el número de especies).
O sea
1 – 1/4 = 0.75
Al comparar los resultados obtenidos con las diferentes zonas de estudio se podría
hacer una interpretación del estado de la comunidad en cuanto a su riqueza y
diversidad de especies.
48
Bibliografía
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49
Krebs, C.J.1985 Ecología. Estudio de la Distribución y la Abundancia. Harla. México.
Lindrer, G.1978. Field Guide to Seashells of the World. Van Nostrand Reinhold Co. New York.
Margalef, R. 1974.Ecología. Omega, Barcelona, España.
Massuti, M. y Margalef, R. 1950. Introducción al Estudio del Plancton marino. Con. Sup. Invest. Scientific. Barcelona, España.
Meinkoth, N. A. 1981. The Audubon Society Field Guide to North American Seashore Creatures. Alfred A. Knopf, Inc., New York.
Miner, W.R. 1950. Field Book of Seashore Life G.P. Putnam’s sons. New York.
Odum, E. 1972. Ecología. Interamericana, México.
Sevilla, M.L. 1977.Introducción a la Ecología marina. Inst. Pol. Nal. México.
Sherman, I.W. and Sherman, V.G. 1970. The Invertebrates Function and Form. A Laboratory Guide. Mc. Millan Pub. Co. Inc. New York.
Tait, R.V. 1971.Elementos de Ecología Marina. Acribia. Zaragoza, España.
Vegas-Veles, M. 1980. Introducción a la Ecología del Bentos Marino. O.E.A. Washington, D.C.
Villalpando-Canchola, E. 1986. Diversidad y Zonación de Moluscos en Facie Rocosa Isla Roqueta, Acapulco, Guerrero. TESIS PROFESIONAL Fac. Ciencias. UNAM.
50
Resultados
Tabla para registro de organismos.
Organismos No. total Recolectado * (si o no)
Tabla para abundancia.
ORGANISMOS No DE
ORGANISMOS
PORCENTAJE
ENCONTRADOS
Cuadrante 01
52
Tabla para área mínima.
No. de
cuadrante
Área
acumulativa
(cm.)
No. de sp
No. de sp
nuevas que se
van
presentando
en cada
cuadrante
No.
acumulativo de
sp nuevas
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Conclusiones
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________________________________________________________________________
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_______________________________________________________________________
Bibliografía consultada
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Practica 6. PLANCTON
Introducción
Es la comunidad que se encuentra en la masa de agua cuyo desplazamiento esta
dado por los movimientos acuáticos, está constituido por organismos fotosintéticos
que forman el fitoplancton y por organismos de naturaleza animal, que constituyen
el zooplancton, representado principalmente por los protozoarios, larvas de
diferentes grupos de invertebrados medusas y sifonóforos, algunos grupos de
moluscos y poliquetos, quetognatos, crustáceos y otros artrópodos acuáticos así
como huevos de peces.
En sentido muy amplio, a los organismos que conforman el plancton, se les
denomina holoplanctónicos (plancton permanente), aquellos cuya vida es
totalmente planctónica y meroplanctónicos (plancton temporal) aquellos
organismos planctónicos que pasan por una fase pelágica que es solamente parte
de su vida.
Las migraciones que realiza el plancton son migraciones verticales de tipo
periódico como son las diurnas y las estacionales.
Una de las principales cadenas alimenticias, productoras de energía la proporciona
el plancton, por lo que son muy importantes en la productividad marina.
Entre los factores que interviene en la distribución del plancton está: la intensidad
de la luz, la turbidez del agua y las corrientes, etc.
A pesar de la gran diversidad que se presenta en los organismos que forman el
plancton, existe entre ellos una serie de características comunes como son:
a) La flotabilidad. Los organismos planctónicos suprimen o reducen al mínimo las
estructuras pesadas y desarrollan apéndices para aumentar el área de superficie e
incluye en los tejidos materias más ligeras que el agua, como son gotas de grasa o
burbujas de gas.
55
b) La transparencia que favorece su defensa.
c) el desarrollo de órganos de los sentidos.
d) La gran capacidad reproductora que desarrollan algunos organismos.
Objetivos
Aprender técnica de colecta de plancton
Identificar grupos característicos.
Materiales
Red de plancton
Frasco de boca ancha (deberá tener el diámetro del extremo inferior de la red).
Una abrazadera de presión o ligas para sujetar el frasco a la red.
Cordel de plástico (15m.)
Una cubeta
Material para llevar al campo
Procedimiento
Actividad Práctica (en el campo)
- Recolectar plancton por arrastre
a) efectuar un arrastre de aproximadamente 10 minutos a velocidad mínima de la lancha, el cable debe tener por lo menos unos 15 m. de extensión. b) Recolectar la muestra y tapar el frasco c) Transportarla al lugar de trabajo d) Nota.- Si no se dispone de una lancha, el arrastre se hará manualmente. La red
debe LAVARSE PERFECTAMENTE con agua dulce después de usarse para
evitar su deterioro.
56
Actividad Práctica (sitio de hospedaje).
- Dejar sedimentar la muestra y hacer 10 preparaciones de cada una de las
muestras de plancton, recorrerla en zigzag usando el mismo tamaño de
cubreobjetos, contar todos los organismos por grupos, anotar el número de
individuos de cada uno de los grupos encontrados, anotarlos en una tabla:
GRUPOS CANTIDAD
Dinoflagelados 50
Quetognatos 15
Diatomeas 80
Crustáceos 25
Y así sucesivamente, deben incluirse también los estadios larvarios cuando se
reconozcan.
Nota: Esta técnica NO es la utilizada en investigaciones sobre plancton,
únicamente se sugiere como método didáctico para poder reconocer la diversidad
y la abundancia relativa de los organismos planctónicos.
- Dar valores porcentuales al total de individuos para cada grupo y así poder indicar
su abundancia relativa y poderlo relacionar con los diferentes niveles tróficos,
elaborando la pirámide ecológica.
- Con estos datos elaborar en papel milimétrico una gráfica de barras poniendo en
el eje de las abscisas los diferentes grupos y en el eje de las ordenadas los
porcentajes. Es recomendable, si es posible se identifique las especies de cada
uno de los grupos de organismos.
- Elaborar un esquema de los organismos encontrados en la muestra y con ayuda
de la bibliografía adecuada señalar donde sea posible la posición taxonómica.
57
Bibliografía
Abbot, I.A.1978.How to know the seaweeds. Wm.C. Brown Co. Pub. Dubuque, Iowa.
Aladro Lubel, M.A.1985. Algunos Ciliados Intersticiales de Isla de Enmedio, Veracruz, México. An. Inst. Biol. Univ. Nal.Autón. México 55, Ser. Zoología (I): 1-59
Barnes, R.D.1998. Zoología de Invertebrados. Interamericana, 6ª Edición, México. D.F. 957 pp.
Beck, E.D. and Brathwait, L.F. 1968. Invertebrate Zoology Laboratory Workbook.-Burgess Pub. Co. Minnesota.
Bullough, W.S. 1958. Practical Invertebrate Anatomy. Mc. Millan and Co. LTD. New York.
Brower, J.E. and Jerrold,H.Z. Field and Laboratory Methods for general Ecology. Wm. C. Brown Co. Pub. Dubuque, Iowa.
Candelaria-Silvia, C.F.1985. Caracterización de la Ficoflora de la Localidad de Puerto Escondido, Guerrero. TESIS PROFESIONAL. Fac. Ciencias. UNAM.
Carefoot, T.1982. Pacific Seashores. A Guide to Intertidal Ecology. Univesity of Washinton Press Seattle.
Gaviño de la T., G.C.L. Juárez y H.H. Figueroa. 1977. Técnicas selectas de laboratorio y de campo, Editorial Limusa, México, D.F. 251 pp.
Jahn, T.L.; Bovee, Z.C. y Jahn, F.F.1979. How to Know the Protozoa. Wm. C. Brown Co. Pub. Dubuque, Iowa.
Johnson, M.E. and Snook, H.J.1967. Seashore Animals of the Pacific Coast. Dover. Pub. Inc. New York.
58
Kudo, R.R.1979. Protozoología C.E.C.S.A. México.
Krebs, C.J.1985 Ecología. Estudio de la Distribución y la Abundancia. Harla. México.
Lindrer, G.1978. Field Guide to Seashells of the World. Van Nostrand Reinhold Co. New York.
Margalef, R. 1974.Ecología. Omega, Barcelona, España.
Massuti, M. y Margalef, R. 1950. Introducción al Estudio del Plancton marino. Con. Sup. Invest. Scientific. Barcelona, España.
Meinkoth, N. A. 1981. The Audubon Society Field Guide to North American Seashore Creatures. Alfred A. Knopf, Inc., New York.
Miner, W.R. 1950. Field Book of Seashore Life G.P. Putnam’s sons. New York.
Odum, E. 1972. Ecología. Interamericana, México.
Sevilla, M.L. 1977.Introducción a la Ecología marina. Inst. Pol. Nal. México.
Sherman, I.W. and Sherman, V.G. 1970. The Invertebrates Function and Form. A Laboratory Guide. Mc. Millan Pub. Co. Inc. New York.
Tait, R.V. 1971.Elementos de Ecología Marina. Acribia. Zaragoza, España.
Vegas-Veles, M. 1980. Introducción a la Ecología del Bentos Marino. O.E.A. Washington, D.C.
Villalpando-Canchola, E. 1986. Diversidad y Zonación de Moluscos en Facie Rocosa Isla Roqueta, Acapulco, Guerrero. TESIS PROFESIONAL Fac. Ciencias. UNAM.
62
Cuestionario
1.- Analiza y discute cuales son los factores que limitan la producción en el
plancton.
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2.- Menciona los aspectos más importantes de la distribución espacial y temporal
del fitoplancton y del zooplancton.
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3.- Discute los resultados de la excursión en relación a las dos preguntas
anteriores.
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Conclusiones
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Bibliografía consultada
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APENDICE
MATERIAL
Material General por Equipo:
Portaobjetos
Cubreobjetos
Cajas de Petri desechables (3)
Una jeringa de 3 c.c.
Frascos de boca ancha de 500 ml. (3)
Frascos de boca ancha de 250 ml. (3)
Goteros
Pipetas Pasteur (3)
Estuche de disección
Un pincel de pelo fino N0. 0.0
Navajas de rasurar
Alfileres
Hojas de tamaño carta blancas
Hojas de papel milimétrico (10)
Regla y escuadra
Calculadora
Extensión eléctrica de 5 m. y un ladrón
Lámpara de mano (1)
Libreta (1)
Maskingtape de una pulgada de ancho
Cinta métrica o un metro
Bolsas de plástico medianas (10)
Ligas (10)
Etiquetas de colgar
Cubetas (2)
Tubos de plástico pequeños (2) (pueden servir las botellas de alcohol de 250 ml. con diámetro de 3 a 4 cm. y altura de 15 a 20 cm.) los cuales se cortan en ambos extremos, en uno de los extremos se coloca una malla muy fina de más o menos 125 micrómetros teniendo cuidado de que quede perfectamente estirada y sujeta al extremo con ayuda del maskingtape o tela adhesiva.
Embudo de plástico (1)
Círculos de papel filtro (3)
Cuchara de plástico (1)
Estacas de 1.70 m. de largo con uno de los extremos afilado (3)
estaca de 2.10 m. de largo con uno de los extremos afilado (1)
Hilo de cáñamo o nylon
Espátula
65
Marcos de alambre, madera etc. de 20 cm. x 20 cm. (deberá tenerse cuidado de que queden bien firmes) (3)
plomada
Abrazadera de presión (1)
Frascos para ajustar a la red de plancton (2)
Cordel de plástico (aproximadamente 15 m.)Cincel y martillo
MATERIAL PERSONAL
SALVAVIDAS OBLIGATORIO
Visor
Snorkel
Tenis
Cuchillo de campo
Guantes de lona
mochila pequeña
Se recomienda usar ropa de trabajo con pantalón grueso en el mar y un paliacate para evitar lesiones
66
Practica 7. ARQUITECTURA ANIMAL
Introducción
Los Phyla del reino animal, han sido agrupados de acuerdo con su nivel de
organización, patrón corporal, caracteres del desarrollo embrionario y relaciones
filogenéticas. Estos fila integran aproximadamente 1,400,000 especies actuales, de
los cuales el 90 % o más son invertebrados.
El análisis y el estudio de la Morfofisiología de los animales, aunada a los
caracteres moleculares-genéticos, celulares, paleontológicos, etc. son de gran
importancia para entender los procesos evolutivos, las adaptaciones del hábitat, las
relaciones tróficas que se establecen tanto de manera interespecíficas como
intraespecífica y el impacto ecológico, entre otros.
La mecánica de obtención del alimento y del oxígeno, mantenimiento del equilibrio
osmótico, eliminación de los desechos, respuesta a diversos estímulos,
perpetuación de la especie, etc., están íntimamente relacionados con la
Morfofisiología de los animales. El diseño arquitectónico de los metazoarios abarca
desde la organización y especialización de diferentes tipos de células, hasta la
conformación de sofisticados aparatos y sistemas. Las diferencias en estos
patrones corporales provee la base para la separación de los metazoarios en
alrededor de 32 Phyla.
El patrón estructural funcional puede ser definido como la suma de caracteres
propios de un organismo que permiten su éxito en el ambiente al cual se han
adaptado a través de una serie de presiones de selección, por ende, cada
componente del metazoarios refleja una especialización. Dentro de la diversidad de
animales, es factible determinar una serie de características generales y básicas
que permiten analizar, definir e integrar el conocimiento de la biología de los
miembros de este reino. Características como la simetría del cuerpo, el tipo de
67
cavidad del cuerpo (o su ausencia), número de capas germinales, origen de la
boca y del ano a partir del blastoporo, entre otros, ubican, agrupan y separan a
estos conjuntos de organismos.
Objetivos
Se definirán los caracteres generales de la arquitectura corporal de los metazoarios.
Visualizar la diversidad animal a través del estudio de algunos de los phyla.
Materiales
Ejemplares de:
Esponjas
Cnidarios
Nematodos
Platelmintos
Equinodermos
Ejemplares vivos de:
Caracol de jardín
Lombriz de tierra
Microscopio óptico
Estereoscopio
Portaobjetos
Cubreobjetos
Cajas petri
Pinceles
Procedimiento
Seleccione cuatro diferentes organismos para su observación, y en un cuadro
comparativo señale las siguientes características. Complete la información con el
apoyo de bibliografía.
68
Fila Morfología
externa
Disposición
órganos
sentidos
Órganos de
locomoción
Aparatos y
sistemas
presentes
Desarrollo
embrionario
69
Bibliografía
Brusca, R. C. y G. J. Brusca. 2003. Invertebrates. Sinauer Inc. Pub.,Sunderland.
Pp. 936
Mayen, R. Vega F. 2005. Manual de prácticas de biología de animales I. CD Room.
Universidad Nacional Autónoma de México. Facultad de Ciencias.
Pechenik, J. 2005. Biology of the invertebrates. Quinta edición. McGraw-Hill. Pp.
590
70
Resultados
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Cuestionario
1. Defina el concepto de Bauplan
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2. Cuáles de las características observadas en los ejemplares son propias de su
adaptación al ambiente donde habitan.
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3. Mencione para los organismos que no poseen aparatos y sistemas, cómo se
lleva a cabo las diferentes funciones propias de un metazoario.
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Conclusiones
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Bibliografía consultada
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Practica 8. CARACTERÍSTICAS GENERALES DE LOS PORÍFERA
Introducción
El fila Porífera, las esponjas, son organismos con una organización muy primitiva
en tejidos que carecen de verdaderas capas germinales. La mayoría de sus células
son totipotenciales. A pesar de ser multicelulares, funcionan como organismos
unicelulares.
Son organismos cosmopolitas desarrollándose en cualquier medio con sustrato
duro y muy pocas especies en fondo lodoso o arenoso, principalmente marinas en
su mayoría incrustantes con simetría radial, aunque en las más complejas, ésta
simetría se pierde y son asimétricas.
Su cuerpo está cubierto por poros, formados por células especiales llamadas
pinacocitos y en la parte central llevan una cavidad, el esponjo cele, la cual está
revestida por células flageladas denominadas coanocitos; entre estas dos capas de
células se encuentra una intermedia, la mesoglea o mesohilo, con células móviles
y material esquelético constituido de carbonato de calcio, dióxido de silicio y/o
fibras colágenas que forman las espículas.
El cuerpo presenta tres tipos estructurales básicos, ascón, sicón y leucón.
Las esponjas están soportadas internamente por un esqueleto calcáreo o silíceo de
espículas o por fibras de una proteína llamada espongina. Esto previene que se
colapsen los sistemas de canal de los que dependen para conseguir alimento,
oxígeno y para deshacerse de los productos de desecho.
Se han descrito una gran variedad de formas y tamaños de espículas. Por su
tamaño las espículas son: megascleras, grandes y son el soporte principal y
microscleras, pequeñas y tienen una amplia terminología (para la clasificación
taxonómica).
74
Los esqueletos de cada uno de los grupos principales de los poríferos son
distintivos y se han utilizado para reconstruir sus relaciones evolutivas.
Objetivos
El alumno reforzará sus conocimientos sobre características generales del fila Porífera.
Podrá diferenciar entre los tres tipos estructurales básicos de las esponjas.
Materiales
Microscopio estereoscopio
Portaobjetos
Cubreobjetos
Caja Petri
Muestras de esponjas
Charola de disección
Estuche de disección
Procedimiento
Tome un pequeño trozo de esponja proporcionada por el instructor. Trate de hacer
un corte longitudinal, lo más fino que pueda para observar la estructura del sistema
de canales que posee. Observe al microscopio estereoscopio. Compare lo que
está observando con una preparación fija de la sección longitudinal de esa misma
esponja. Trate de identificar el pinacodermo, coanocitos, espongocele, cámaras de
coanocitos, mesohilo.
¿Qué tipo de esponja es de acuerdo al sistema de canales que presenta?
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Haga un esquema de lo que observa
PROCEDIMIENTO B
Tome un trozo de esponja de baño, note lo liviana y flexible que es. Utilice el
estereoscopio para observar las fibras de espongina que la componen. Esto es
todo lo que queda después de que todas las células que forman a la esponja han
muerto.
Moje el trozo de esponja y bajo un estereoscopio observe la película de agua
retenida entre las fibras. Debido a que las fibras por sí mismas no pueden embeber
grandes cantidades de agua, ¿cómo puede una esponja retener tal cantidad de
líquido?
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Llene el siguiente cuadro comparativo
Especie Esqueleto formado por: Clase a la que pertenece
Leucosolenia
Spongia
Euplectela
Bibliografía
Jessop, N. 1990. Invertebrados. Zoología. Teoría y problemas. Interamericana, McGraw-Hill.España. Pp. 294.
Mille, S. A. Pérez, R. Villaseñor. 2001. Biología de protozoarios e invertebrados no artrópodos. Primera edición. Instituto Politécnico Nacional. México. Pp. 208
Wallace, R.,W. Taylor. 2003. Invertebrate zoology. A laboratory manual. Sexta edición. Prentice Hall. Estados Unidos. Pp. 356
Resultados
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Cuestionario
¿Cuáles son las características que definen al fila Porífera?-
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2. ¿Cuáles son las clases en las que se divide el phyla porífera y que diferencia a
una clase de otra?
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3. Como se realiza la reproducción en las esponjas?
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4. Cuál es la estructura corporal de las esponjas asconoides, siconoides,
leuconoides? Hága un esquema comparando cada uno. ¿Cual es más eficiente y
por qué?
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5.-Por qué las espículas son de interés taxonómico?
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Conclusiones
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Bibliografía consultada
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Practica 9. PHYLUM PORIFERA
Introducción
Los ejemplares del Phyllum Porífera o “Esponjas” son considerados los organismos
pluricelulares del reino Animal más primitivos, apenas con una organización de
células muy similares (estructuralmente) a los protozoarios coanoflagelados, por lo
que no presentan una organización de tejidos como tal.
Todos los miembros del Phyllum Porífera son sésiles, y sus movimientos son
apenas perceptibles, encontrándose principalmente en el ambiente marino,
excepto la familia Spongillidae que es de agua dulce. Todas las esponjas requieren
de un sustrato adecuado para su fijación, que pueden ser rocas, conchas, maderas
sumergidas y corales; a su vez proveen un hábitat conveniente, tanto temporal
como permanente, a una gran variedad de organismos, viviendo algunos en sus
sistemas de canales y otros sobre su superficie.
Algunas presentan forma sacular o tubular, pero la gran mayoría carece de una
forma definida. Su superficie externa se encuentra perforada, lo cual le permite el
flujo de grandes cantidades de agua hacia la cavidad principal llamada atrio o
espongocele, que está revestida por células flageladas con collar (coanocitos),
encargadas de producir las corrientes de agua y captar el alimento. El agua es
expulsada a través del ósculo.
El esqueleto puede estar compuesto de espículas calcáreas o silíceas con fibras
de espongina o de una combinación de ambas. Las principales fuentes de alimento
son bacterias, protozoarios y otros microorganismos que ingresan por filtración.
La reproducción puede ser asexual y sexual, en el primer caso se lleva a cabo por
gemación, o bien por formación de gémulas que son agregados de células
totipotenciales (arqueocitos) protegidos por una cubierta dura de espículas. La
81
reproducción sexual involucra formación de gametos femeninos y masculinos,
existiendo esponjas dioicas y hermafroditas.
Excepto unas 150 especies de agua dulce, las esponjas son animales marinos.
Abundan en todos los mares, dondequiera que haya rocas, conchas, maderos
sumergidos o corales que le sirvan de sustrato. Una minoría de especies viven
sobre arenas blandas o en fondos lodosos. La mayor parte de esponjas prefieren
aguas relativamente someras, pero algunos grupos, como las esponjas vítreas,
viven a grandes profundidades.
Objetivos
Que el alumno conozca la estructura básica de las Esponjas.
Identificar las estructuras de sostén del organismo (espongina y espículas).
Identificar a nivel de Clase a cada ejemplar.
Materiales
Ejemplar de laboratorio
Microscopio estereoscopio
Microscopio compuesto
Estuche de disección
Bibliografía de referencia
Procedimiento
A partir de un ejemplar del Phyllum Porífera previamente fijado en formol al 10 %
realizar la observación directa tratando de localizar los sitios donde se encuentren
gémulas con apariencia de bolitas claras, las que son estructuras reproductoras
asexuales, importantes en taxonomía. Los ejemplares que se observen
independientemente de su especie, deben estar en un medio húmedo para
mantener sus características originales.
82
PRESERVACIÓN
Existen 2 formas para preservar las esponjas: en líquidos o secas.
Para conservar las esponjas en líquidos, primero se deben lavar; después,
ponerlas en alcohol en concentraciones desde un 60% hasta 96%. Si son
especimenes aislados y pequeños, se pueden utilizar una solución más débil. Si
las esponjas son grandes o están apiñadas, se debe cambiar el alcohol al día
siguiente de la fijación. Otros autores prefieren fijar las esponjas en alcohol
absoluto durante 24 horas, y después almacenarlas en alcohol de 90%. No se
recomienda usar formol, porque ablanda los tejidos y destruye las espículas
calcáreas.
Si las esponjas se van a secar para su conservación, primero se debe de lavar con
agua dulce y dejarse en sitios calientes y ventilados, pero no a la luz directa del sol.
Amarre a las esponjas los rótulos respectivos, con todos los datos necesarios.
Algunos autores recomiendan la fijación en una mezcla alcohólica de Bouin,
siempre y cuando el material no permanezca en ella por mucho tiempo. La
mezcla, que ofrece buenos resultados para los estudios histológicos, es las
siguientes:
Esqueleto. Las estructuras esqueléticas del cuerpo de las esponjas están formadas
por fibras de espongina o por espículas silíceas o calcáreas.
SUBSTANCIA CANTIDAD
Formol de 80% 150ml
Formol comercial (40%) 60ml
Ácido acético glacial 15ml
Ácido pícrico 1 g
83
Las esponjas que contienen espongina se deben de lavar en agua dulce y
voltearlas al mismo tiempo para desprender las células de sus tejidos. Una vez
lavadas se dejan secar. Desprenda pequeñas porciones y tíñalas con safranina,
eosina o verde luz; deshidrate y monte en bálsamo.
Los estudio s de las espículas se deben hacer muchas veces in situ, para mostrar
su disposición en el individuo. Para ello se seca una porción pequeña de la
esponja, se empapa con xilol; se pone en una mezcla de xilol-bálsamo; se pasa a
un portaobjetos y se monta en bálsamo. Para estudiar las espículas de sílice, se
selecciona un pedazo de esponja y se desprenden los tejidos agregando varias
gotas de ácido nítrico concentrado, haciendo que hierva la preparación sobre la
flama. Cuando este seca, se puede montar en bálsamo.
Otra técnica consiste en colocar, durante unas 8 horas, un trozo de esponja en un
tubo de ensayo con algunos centímetros cúbicos de ácido nítrico. Después, se
decanta el ácido y se lavan las espículas con varios cambios de agua, dejándolas
que se asienten en cada lavado. Se deshidrata en alcoholes graduales, se
transfiere una gota de la mezcla espículas-alcohol, dejándola secar completamente
y se monta en bálsamo.
Para las espículas calcáreas se sigue el mismo proceso que para las silíceas, pero
en vez de ácido nítrico se usa hidróxido de potasio al 10%, o bien, ácido clorhídrico
diluido y ayudándose con una aguja de disección para tratar de desbaratar, en lo
posible, los pequeños trozos de esponja.
84
TAXONOMIA
La identificación de esponjas en el campo es difícil, se requiere de 1 o más
procedimientos de laboratorio como son:
a). Determinar si la esponja es calcárea o silícea; esto se hace mediante el uso de
ácido sobre la superficie del organismo, si hace espuma o burbujea indica que es
una esponja calcárea, ya que las espículas de carbonato de CaC son disueltas por
el ácido.
** NOTA ** se debe tener precaución cuando se utilice el ácido sobre la esponja
porque si el espécimen esta sobre un sustrato de naturaleza calcárea, este podría
burbujear con el ácido, por lo cual se debe poner la gota directamente sobre la
esponja.
La taxonomía de este grupo está basada en las espículas y la anatomía de las
fibras de la esponja. Las determinaciones exactas de especies puede ser muy
difícil.
Bibliografía
Abbot, I.A.1978.How to know the seaweeds. Wm.C. Brown Co. Pub. Dubuque, Iowa.
Aladro Lubel, M.A.1985. Algunos Ciliados Intersticiales de Isla de Enmedio, Veracruz, México. An. Inst. Biol. Univ. Nal.Autón. México 55, Ser. Zoología (I): 1-59
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Vegas-Veles, M. 1980. Introducción a la Ecología del Bentos Marino. O.E.A. Washington, D.C.
Villalpando-Canchola, E. 1986. Diversidad y Zonación de Moluscos en Facie Rocosa Isla Roqueta, Acapulco, Guerrero. TESIS PROFESIONAL Fac. Ciencias. UNAM.
Resultados
1. Observación de espículas, dibujando e indicando al tipo que pertenecen
basándose en su tamaño y número de ejes o radios. Para identificar espículas y
realizar preparaciones permanentes de ello; hervir un trozo de esponja en ácido
nítrico concentrado, decantar y añadir agua de la llave, repita el lavado varias
veces. Deshidratar en alcoholes graduales (en cada caso dejar sedimentar), hasta
alcohol absoluto. Tomar una muestra, colocar en un portaobjetos, dejar secar el
alcohol y montar.
87
2. Para identificar fibras de espongina: realizar un corte sagital y otro transversal de
la esponja, tendiendo cuidado de que sean cortes finos. Colocar el corte en un
portaobjetos y agregar agua o una gota de rojo neutro. Cubra la preparación y
observe si existen o no fibras de espongina.
88
Cuestionario
1.- Esquematice los tipos estructuras que se presentan en el filo.
2.- Mencione los tipos celulares que se localizan en la capa pinacodérmica y
mesohilo; señale la función de cada una de ellas.
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3.- Indique que importancia presentan algunos organismos de este grupo, desde el
punto de vista: económico, medico y ecológico.
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4.- ¿A que grupos de invertebrados dieron origen las esponjas? ¿Por qué?
Explique cualquier respuesta.
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5.- Describa el comportamiento alimenticio de las esponjas.
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Conclusiones
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Bibliografía consultada
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Practica 10. CARACTERÍSTICAS GENERALES DEL FILO
CNIDARIA
Introducción
Los Cnidarios poseen organelos llamados nematocistos, la característica más
distinguible del Filo. Cada nematocisto surge de una célula especializada llamada
cnidocisto. Existen dos tipos básicos de cuerpo, la forma de pólipo y la forma de
medusa. El pólipo es sésil y tubular con la boca orientada hacia arriba y rodeada
de tentáculos. La medusa es libre nadadora con forma de campana. Su cuerpo se
compone de tres capas, la capa externa es el epitelio dermal (epidermis) derivada
del ectodermo, la capa mas interna es la gastrodermis, derivada del endodermo y
que le sirve en la digestión y la absorción, entre la epidermis y la gastrodermis se
encuentra la tercer capa, la mesoglea, que puede ser celular o acelular y deriva
tanto del endodermo como del ectodermo.
Objetivos
El alumno conocerá un ejemplar de cada clase que conforman el Filo Cnidarios.
Conocerá la morfología externa de algunos géneros representativos del Filo.
Conocerá la biodiversidad del Filo.
Materiales
Material biológico
Estereoscopio
92
Procedimiento
Observe el ejemplar proporcionado de Aurelia aurita. Destaque los caracteres
propios de la forma medusa, reconociendo la región oral (subumbela) y la aboral
(exumbela); señale la posición de los tentáculos, manubrio, boca y los brazos
orales, las gónadas y las ropalias.
Haga un esquema del espécimen.
A que clase pertenece?
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PROCEDIMIENTO B
Observe el ejemplar proporcionado de Physalia physalis, identifique cada una de
las partes que componen a este cnidario, observe la cresta, el pneumatóforo,
¿puede identificar los gonóporos, los gastrozoides, dactilozoides y nematocistos?
Haga un esquema con las partes que pudo identificar. ¿A qué clase
pertenece?_________________________________________________________
93
PROCEDIMIENTO C
Observe la anémona proporcionada. Señale la posición de los tentáculos, disco
oral, boca, columna y disco pedal. Haga un esquema de lo observado. ¿A qué
clase
pertenece?_________________________________________________________
Bibliografía
Jessop, N. 1990. Invertebrados. Zoología. Teoría y problemas. Interamericana, McGraw-Hill.España. Pp. 294.
Mille, S. A. Pérez, R. Villaseñor. 2001. Biología de protozoarios e invertebrados no artrópodos. Primera edición. Instituto Politécnico Nacional. México. Pp. 208
Wallace, R.,W. Taylor. 2003. Invertebrate zoology. A laboratory manual. Sexta edición. Prentice Hall. Estados Unidos. Pp. 356
94
Resultados
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Cuestionario
1.- Cuales son las características de los cnidarios
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2.- Explique el mecanismo de acción de los nematocistos
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3. Documente la importancia ecológica, económica y médica que tienen los
cnidarios. No olvide reverenciarlo bibliográficamente.
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Conclusiones
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Bibliografía consultada
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Practica 11. CNIDARIOS Y CTENOFOROS
Introducción
Los celenterados son animales acuáticos, en su mayor parte de aguas marinas,
aunque existen algunas especies que habitan en aguas dulces. Presentan un
aspecto de plantas por su simetría radial y porque muchos de ellos forman colonias
ramificadas y sésiles.
La mayoría de los celenterados marinos viven cerca de las costas a poca
profundidad y frecuentemente sobres substratos rocosos, encontrándose mucho de
ellos en la zona de las mareas o por debajo de esta. Otros se distribuyen a
grandes profundidades. Los corales duros de exoesqueletos calizos habitan en las
aguas tropicales. En agua moderadamente profundas de substratos rocosos
existen abundantes corales blandos (comeos) como los abanicos de mar, además
de las plumas de mar. En este mismo hábitat pueden encontrarse numerosas
anémonas o flores marinas. Algunas anémonas se encuentran adheridas a las
rocas de las playas en la zona de las mareas.
Entre los celenterados de cuerpo muy blando, gelatinosos, casi transparentes, con
muy comunes las medusas. En su mayoría son formas pelágicas que ocupan
desde la superficie de las aguas hasta las grandes profundidades donde la luz no
existe; penetran en las bahías y estuarios, donde abunda en los meses de verano.
Muchos de estos celenterados de cuerpo blando son urticantes y entre los
pescadores se les conoce como “aguas malas “debido a que el estar en contacto
con la piel provocan irritaciones graves.
Los hidroides de tipo colonial viven en las zonas de abundante plancton marino.
Se encuentran en las playas adheridos a rocas, a los talos de las algas o bien
debajo de la superficie, pegados a diversos substratos fijos o a objetos flotantes.
98
En las aguas dulces, los celenterados son poco numerosos. Además de algunos
hidroides, se pueden encontrar con frecuencia las hidras de agua dulce, cuyos
hábitats preferidos son los lagos pequeños, canales y arroyos prevenientes de los
lagos.
El pequeño filo Ctenofora está integrado por animales marinos generalmente
conocidos como linternas de mar. El filo contiene aproximadamente 50 especies,
algunas de las cuales abundan en las aguas costeras; otras son oceánicas.
Estos tienen simetría radial y el plan general de su cuerpo es algo semejante al de
las medusas; los ctenóforos tienen 8 filas meridionales de peines ciliados, que
impulsan al organismo cuando nada, lo que hace con el extremo oral hacia delante.
Objetivos
Observar mediante la realización de esta práctica, la diversidad morfológica de los celenterados.
Conocer algunas estructuras de estos por medio de disecciones anatómicas.
Identificar taxonómicamente los organismos colectados en la zona costera o bien de los integrantes de la colección de prácticas.
Materiales
Ejemplares de laboratorio.
Microscopio estereoscópico
Microscopio compuesto
Cajas de petri
Estuche de disección
99
Procedimiento
COLECTA Y FIJACIÓN.
Por su tamaño pequeño, las hidras son difíciles de observar. Debe revisarse
cuidadosamente la superficie de las rocas y la vegetación acuática. Las manchas
grisáceas o parduscas sobre la superficie de las rocas pueden indicar su presencia
en grandes cantidades. Después de colectar estos substratos, se ponen en bolsas
de plástico o en recipientes con agua del medio y, sin molestarlos, se espera unos
minutos para comprobar su existencia. Al cabo de ese tiempo, comenzaran a
contraerse y distenderse; esto se puede ver con facilidad a contraluz y con una
lupa.
Antes de fijar las hidras, se recomienda anestesiarlas, hasta que estén
completamente bien extendidas e insensibles. Después, se peden fijar. Para
anestesiarlas se puede usar painodol o nicotina, o bien, la solución de Gray muy
útil para hidras, cuyos componentes son:
SUBSTANCIA CANTIDAD
Mentol 48 g
Hidrato de cloral 52 g
Un colorante que se puede usar para preparaciones permanentes es el carmín-
bórax con la siguiente fórmula:
Mezcle el carmín, el bórax y el agua. Déjelo hervir durante 30 minutos. Agregue
alcohol. Deje reposar durante 2 días y filtre. Este colorante es recomendable en
SUBSTANCIA CANTIDAD
Carmín 1.5 g
Bórax 2 g
Agua 50 ml
Alcohol de 70% 50 ml
100
general para pequeños invertebrados. Para preparaciones temporales use rojo
neutro o azul de metileno.
OBSERVACIÓN DE NEMATOCISTOS
Estas células de defensa pueden observarse a partir de hidras vivas o anémonas,
poniéndolas sobre un portaobjetos y cubriéndolas con una solución de ácido nítrico
al 1% mezclado con azul de metileno diluido. También se puede utilizar yodo
diluido.
Para la observación de nematocistos a partir de preparaciones fijas, siga la
siguiente técnica:
1.- Fije la hidra durante 10 minutos en una solución saturada de bicloruro de
mercurio en alcohol de 70%. Esta solución debe agregarse caliente.
2.- Lave en alcohol de 70%.
3.- Tiña con una solución de azul de metileno poco diluida.
4.- Deshidrate.
5.- Aclare en aceite de cedro (dos cambios).
6.- Monte en bálsamo.
HIDROIDES COLONIALES Y OTROS CELENTERADOS
Al igual que las hidras, es conveniente dejar que los pólipos se expandan para
fijarlos en seguida. Se pueden anestesiar con sales de sulfato de magnesio que se
agregan periódicamente (cada 20 minutos, por ejemplo) al agua del medio, durante
varias horas. Cuando queden insensibles se fijan en formal al 5%, en Bouin o en
alcohol de 70%.
Otro método consiste en dejar que se expanda y luego extraer el agua hasta
dejarlos solo con lo indispensable, y agregar sublimado corrosivo o Bouin caliente
(50 a 60ºC). Se enfría la solución y se lava varias veces en agua dulce. Finalmente
se fija.
101
Los especímenes fijados en formol en formol pueden cambiarse al alcohol,
lavándolos y colocándolos en alcoholes de 30%, 50%, hasta 70%. Utilice el
colorante carmín-bórax para preparaciones permanentes.
Las formas frágiles, como las medusas, conviene capturarlas directamente con un
bote o cubeta o con una red para no romperles los tentáculos. Se pueden fijar
directamente, agregando formol al agua de mar hasta hacer una solución al 5%.
Las anémonas de mar pueden colectarse con un cuchillo, arrancándolas
directamente de las rocas, donde se adhieren. Los ejemplares de aguas poco
profundas se obtienen mediante el buceo o usando una draga; los de aguas
profundas solo con una draga. Estos animales se deben tener en agua de mar y a
la sombra sin juntarlos con otros organismos.
Para fijarlas se deben de expandir previamente, narcotizándolas con aceite de
clavo o cloretona. La anémona se coloca en un frasco pequeño agregando, cada
hora hasta completar doce, varias gotas de aceite de clavo, aumentando cada vez
más la cantidad. Una vez que el ejemplar queda insensible, se agrega formol
hasta hacer una solución al 5%.
Si van a prepara tejidos, se debe matar con Bouin caliente al 20%, o F.A.A.
caliente, agregándolo al ejemplar expandido que solo tenga una cantidad mínima
necesaria de agua.
Todos los llamados corales, ya sea córneos o duros (abanicos, cerebros de mar,
corales propiamente dichos, etc.), pueden extraerse con una draga. Algunos
abanicos que se encuentran sobre las rocas en la zona de mareas basta
despegarlos directamente con las manos o con un cuchillo.
El uso de ganchos en el extremo de una cuerda es efectivo para extraer algunos
corales, aunque a veces se atoran en piedras o en corales grandes. Los corales
pueden conservarse por lo general en seco. Los corales blandos como los
abanicos, basta fijarlos en formol neutro durante unos quince minutos y luego
dejarlos secar en un sitio sombreado. Así se pueden guardar en cajas donde no
penetre la luz, junto con sus datos respectivos, notas de coloración, etc.
102
Las plumas de mar y corales blandos pueden preservarse en líquidos (formol
neutro al 5%, alcohol de 70%, etc.) narcotizándolos previamente del mismo modo
que las anémonas. Antes de fijarlos se debe tomar nota de la coloración, ya que la
luz o el alcohol pueden alterarla. Guárdense en lugares obscuros.
Para preservar el coral se lava con agua dulce para quitar el moco y todas las
partes blandas y se deja secar en un lugar ventilado, pero no a la luz solar directa.
Otro método que los deja más limpios consiste en ponerlos en agua durante varios
días (4, por ejemplo) y lavándolos a presión con una manguera. Después se pone
en una solución blanqueadora al 10% (blanqueador casero de ropa). Se enjuagan
varias veces y se dejan secar. Si se piensa conservarlos en líquidos, pueden
narcotizarse como las anémonas y fijarse en alcohol de 70% o formol neutro al 5%.
El formol fuerte destruye el exoesqueleto de cualquier coral.
Bibliografía
Abbot, I.A.1978.How to know the seaweeds. Wm.C. Brown Co. Pub. Dubuque, Iowa.
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Odum, E. 1972. Ecología. Interamericana, México.
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Vegas-Veles, M. 1980. Introducción a la Ecología del Bentos Marino. O.E.A. Washington, D.C.
Villalpando-Canchola, E. 1986. Diversidad y Zonación de Moluscos en Facie Rocosa Isla Roqueta, Acapulco, Guerrero. TESIS PROFESIONAL Fac. Ciencias. UNAM.
Resultados
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Cuestionario
1.- Los cnidarios y ctenóforos son radialmente simétricos, en tanto que los pila
animales superiores a ellos tienen por lo regular simetría bilateral, Cuales son
algunas de las posibles ventajas de la simetría bilateral?
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2.- Como es el polimorfismo en cnidarios? Explique
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3.- Que son lo cnidocistos, su ubicación y función?
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4.- En los ctenóforos, Que significa que tengan estructura corporal diploblástica?
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Conclusiones
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Bibliografía consultada
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107
CLAVE DE IDENTIFICACIÓN PARA LAS CLASES DEL PHYLUM CNIDARIA
(COELENTERATA) Y PARA EL PHYLUM CTENOFORA
1.-Boca o la superficie oral con tentáculos blandos no ramificados, quienes portan nematocistos microscópicos.................................................................................................Phyllum coelenterata
2.-Tentáculos no rodean la boca; 8 rayas meridionales de peines ciliados, no poseen nematocistos.................................................................................................Phyllum Ctenofora
2(1) Pólipos sésiles, casi siempre cilíndricos (algunas veces en colonias) con boca sobre el hipóstoma o medusas gelatinosas con velo.......................................................Clase Hydrozoa
Formas no medusioides; con una faringe tubular dentro de la boca y septos dividiendo la cavidad digestiva; organismos sésiles y sus pólipos también…………………….............Clase Anthozoa
CLAVE PARA CNIDARIOS COMUNES INTERMAREALES
1. a Animal flotando libremente.................................................................................................2
1. b Animal sesil o sedentario...................................................................................................3
2. a Animal aplanado y en forma de disco, con un flotador visible........................................................................................................................Porpita sp.
2. b Animal no aplanado ni en forma de disco, con un gran flotador.....................................................................................................................Physalia sp.
3. a Animal colonial, en forma de plumas, o colonias ramificadas como arbustos, o tallos erectos con zooides secundarios.......................................................................Clase Hydrozoa..........4
108
3.b Animal solitario o colonial pero sin la forma de arriba, o si es como plumas, el tallo principal es mucho más ancho que las ramas secundarias (corales, anémonas, alcionarios……………………………………………..………..……..Clase Anthozoa...............8
4a. Gastrozoides (hidrantos) atecados, no encasillados en una cubierta eterna quitinosa.............................................................................................................Eudendrium sp.
4b. Gastrozoides (hidrantos) tecados, encasillados en una cubierta externa protectora opaca.........................................................................................................................................5
5a. Hydroteca (perisarco) con anulaciones o anillos debajo de los pólipos, colonias usualmente en forma de arbusto. Altura grande.............................................................................Obelia sp.
5b. Hydroteca sin anillos, colonias no arbustivas, pero si en forma de pluma o hileras de zooides....................................................................................................................................6
6a. Pólipos en ambos lados de las ramas, usualmente se encuentra creciendo sobre hojas de algas u otras plantas.......................................................................................................Sertularia sp.
6. b Pólipos sobre uno de los lados de las ramificaciones solamente, raramente se encuentran creciendo sobre plantas............................................................................................................7
7a. Colonia formada de un grupo de ramas como plumas, el tallo flexible, con hidrotecas cerradas, colonia de color café o verdoso...............................................................................................................Aglaophenia sp.
7. b Colonia delgada, no posee un grupo de plumas, el tallo es flácido, colonia sin color.....................................................................................................................Plumularia sp.
109
8a. Animal con 8 tentáculos alrededor de la boca, todos coloniales, pero no encerrados en un exoesqueleto rígido calcáreo, más bien en un esqueleto externo flexible (alcionarios: pluma de mar, abanicos y pensamiento de mar)...............................................................................................Subclase Alcyonaria.........9
8. b Animales con más de 8 tentáculos alrededor de la boca, tentáculos no pinados, animales solitarios y sin un esqueleto rígido (anémonas), o coloniales con pólipos embebidos en una masa calcárea dura (corales verdadero)...................................................Subclase Zoantharia..........16
SUBCLASE ALCYONARIA
9a. Pólipos no embebidos en una matriz rígida, cuerpo con un tallo flácido simple con pliegues como hojas que portan los pólipos (plumas de mar)........................................................................................................................................10
9.b Pólipos embebidos en una matriz rígida, cuerpo altamente ramificado, estructura rígida (gorgonidos)............................................................................................................................11
10a. Pedúnculo basal ancho (3-35 mm de grueso) y carnoso.............................Ptylosarcus sp.
10b. Pedúnculo basal angosto (2-8 mm de grueso) y rígido...................................Stylatula sp.
11a. Ramificaciones de la colonia entrelazadas, anostomosadas y fusionadas para formar una gran estructura como abanico.................................................................................Gorgonia sp.
11. b Ramificaciones de la colonia no anostomosadas ni fusionadas (el cuerpo como árbol o arbusto)..................................................................................................................................12
12a. Gorgonio anaranjado o blanco........................................................................................13
110
12.b Gorgonio rojo o rojo con amarillo..................................................................................14
13a. Gorgonio blanco, ramas terminadas en puntas angostas y delgadas..........................................................................................................Lophogorgia alba
13. b Gorgonio anaranjado, ramificaciones terminadas en puntas romas..........Eugorgia aurantica
14a. Gorgonio rojo y amarillo.......................................................................Eugorgia aurantica
14b. Gorgonio rojo (o rojo con pólipos blancos)...................................................................15
15a. Superficie suave (pero con muchos hoyos pequeños donde están los pólipos), el extremo de las ramificaciones es redondo pero sin ser angosto............................Psammogorgia arbuscula
15b. Superficie muy hinchada e irregular, extremos de las ramificaciones terminadas en puntas agudas.........................................................................................................Muricea californica
16a. Animal solitario o si es colonial, no encasillado en una masa calcárea......................................................................ORDEN ACTINARIA...........................17
16b. Animal Casi siempre colonial, siempre incluido en una masa calcárea (corales verdaderos o pétreos)..........................................................................................ORDEN MADREPORARIA
ORDEN ACTINARIA
17a. Anémonas siempre adheridas a conchas de gasterópodos, habitadas por caracoles o cangrejos ermitaños................................................................................................................18
17 b. Anémonas no adheridas a conchas................................................................................19
111
18a. Anémona con rayas grises y blancas, sobre concha de caracol....................................................................................................Anthothoe carcinophila
18b. Concha de gasterópodo con cangrejo ermitaño, anémona no del color descrito arriba..........................................................................................................Calliactis variagatus
19a. Animal con collar o rizo serrado abajo del anillo tentacular (el fruncido o rizo parece un circulo de tentáculos cortos fusionados).................................................................................20
19b. Animal sin collar o rizo serrado como arriba....................................................................21
20a. Columna rosa o blanca, tentáculos sin rayas longitudinales cafés........Phyllactis coccinata
20b. Columna anaranjada, tentáculos con rayas longitudinales cafés................Phyllactis bradleyi
21a. Animales sin disco basal, usualmente se encuentra excavando en la arena o lodo, la columna entera con frecuencia está cubierta por un tubo de mucus.......................................................22
21b. Animal con un disco basal, usualmente adherido a rocas u otros objetos sólidos, la columna está expuesta o cubierta con granos de arena pero no en tubo con mucus.....................................................................................................................................27
22a. Columna blanca, con o sin acontios.................................................................................23
22b. Columna gris, café o de algún otro color, pero no blanca, sin acontios............................25
23a. 16 tentáculos, sifonoglifo tubular y elevado, distinto del resto del disco oral y actinofaringe......................................................................................................Metapeachia sp.
112
23b. Más de 16 tentáculos, sifonoglifo bajo e indistinto, no como arriba…............................24
24a. Animal extremadamente delgado y en forma de gusano o hilo............Isarachnanthus penamensis
24b. Animal elongado pero fuerte, no como hilo....................................Calamactis praelongus
25a. Anémonas robustas y viviendo en un tubo de mucus grueso, usualmente se encuentran en hábitats lodoso o arenosos, en esteros o lagunas tranquilas..............................................................................................................Cerianthus sp.
25b. Anémonas pequeñas y delgadas, viviendo en tubos de mucus delgados y frágiles en los cuales los granos de arena y fragmentos de conchas están embebidas, se encuentra comúnmente bajo rocas grandes o sustratos arenosos o en arena fina o lodosa..............................................26
26a. Tentáculos con rayas longitudinales cafés, columna verde.............Pachycerianthus insignis
26b. Tentáculos sin rayas longitudinales cafés, columna corta...................................P. aestuari
27a. Anémonas coloniales, individuos fusionados en las bases, tentáculos muy cortos y fuertes, disco oral expuesto enteramente............................................................................................28
27b. Anémonas solitarias, no fusionadas en las bases, tentáculos usualmente lagos, parcial o enteramente oscureciendo el disco oral..................................................................................29
28a. Tentáculos cafés, pólipos usualmente de más de 20 mm de largo; región bucal café o verde; disco oral café o verdoso...................................................................................Paythoa ignota
28b. Tentáculos verdes, pólipos menores de 20 mm de largo, región bucal amarilla, disco oral verde................................................................................................................Zoanthus danae
113
29a. Anémonas pequeñas, columna de menos de 13 mm de diámetro, sin hileras longitudinales de verrugas.............................................................................................................................30
29b. Anémonas grandes, columnas de más de 13 mm de diámetro, columna con numerosas hileras longitudinales de verrugas...........................................................................................32
30a. Tentáculos muy delgados y finos, bandeados; columna no translucida.................................................................................................Epizoanthus grabrieli
30b. Tentáculos fuertes, no bandeados, columna con frecuencia translucida..............................................................................................................................31
31a. Columna diferenciada en 2 porciones, una superior, delicada, con pared delgada y una superior con pared gruesa, columna café-amarilla.....................................................................................................Diadumene leucolena
31b. Columna no diferenciada como arriba; columna blanca a café verdusco......................................................................................................Aiptasia californica
32a. Verrugas no adhesivas (así que arena y pedazos de conchas no se adhieren a la columna), arreladas en hileras solamente cerca del disco pedal, volviéndose más esparcidas en toda la columna, tentáculos rojos, verdes, ocasionalmente con marcas amarillas alrededor de la boca.....................................................................................................Bonodosoma californica
32b. Verrugas adhesivas (arenas y pedazos de conchas adheridos a la columna), verrugas en diferentes hileras en toda la longitud de la columna; tentáculos verdes o transparentes con marcas blancas, sin marcas amarillas alrededor de la boca................................................................33
33a. Tentáculos verdes, sin partes blancas, anémonas usualmente con el tallo de más de 40 mm; hileras de protuberancias sobre la columna algunas veces blancos, marcas fusiformes en la base de cada tentáculo interno...........................................................................Bunodactis mexicana
33b. Tentáculos transparentes con marcas blancas, anémona usualmente de menos de 30 mm en el tallo; hileras de protuberancias ampliamente espaciados,
114
sin marcas blancas en la base del tentáculo interno.............................................................................................Anthopleura dowii
115
Practica 12. CLASES DEL FILA PLATHYHELMINTHA
Introducción
Los miembros del Filo Platyhelmintha, son gusanos no segmentados, aplanados
dorsoventralmente, llamados comúnmente planarias, duelas y solitarias. Existen
caso 20,000 especies, que comprenden animales microscópicos, hasta con una
longitud de 10 metros o más. La mayoría de las especies son parasíticas. Estos
representan a los primeros animales bilaterales, con una cabeza que domina al
cuerpo. Son triblásticos y son los primeros animales que presentan sistemas
orgánicos bien desarrollados. Los órganos internos están embebidos en una masa
mesodérmica de parénquima que tiene la función de secreción, almacenamiento y
regeneración. Debido a que el celoma está ausente, son llamados animales
acelomados. La mayoría de los gusanos planos presentan sistema digestivo, sin
embargo es incompleto porque carecen de ano. Los miembros de la clase céstoda
carecen de este sistema, y son endoparásitos de vertebrados.
Objetivos
El alumno diferenciará las cuatro clases del Filo Platyhelminthes.
Reconocerá las estructuras morfológicas de algunos miembros del Filo.
Materiales
Material biológico
Estereoscopio
116
Procedimiento
CLASE TURBELARIA
Observe la planaria proporcionada por el instructor, distinga los ocelos, aurículas,
aparato digestivo. Elabore un esquema e indique estructuras observadas.
¿Qué características poseen los miembros de la clase Turibularía?
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Procedimiento B. Clase Tremátoda
Observe el espécimen de Fasciola hepatica que le fue proporcionado, trate de
distinguir las ventosas, el aparato digestivo. Realice un esquema de lo observado.
Procedimiento C. Clase Céstoda
Señale el escólex, observe el estróbilo, distinga los proglotides, ¿qué estructuras
de fijación puede distinguir? Haga un esquema señalando cada parte que compone
al cestodo.
118
Bibliografía
Hickman, C.; L. Roberts; and A. Larson. 2001. Integrated principles of zoology. 11ava Edición. Estados Unidos. McGraw Hill. Pp. 899.
Mayen, R. Vega F. 2005. Manual de prácticas de biología de animales I. CD Room. Universidad Nacional Autónoma de México. Facultad de Ciencias.
Resultados
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Cuestionario
1. Señale cuales son las adaptaciones morfofisiológicas que presenta cada clase
del Fila a la vida parasitaria.
Clase Adaptación morfofisiológicas
Tremátoda
Monogenea
Céstoda
119
2.- Explique los ciclos de vida de Taenia solium y Fasciola hepática, y señale los
principales problemas que causan en nuestro país.
Conclusiones
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Bibliografía consultada
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Practica 13. CARACTERÍSTICAS GENERALES DEL FILA
PLATYHELMINTHES
Introducción
Los miembros del Fila Platyhelmintha, exhiben una simetría bilateral y una
organización triblástica. Tres de las cuatro clases que conforman el Fila, son
parásitas. La clase Monogenea, representada por ectoparásitos de vertebrados
principalmente, la clase Tremátoda, conocidos como duelas, representados por
gusanos aplanados en forma de hoja, usualmente con un succionados oral o
ventral. Por último la clase Céstoda, son conocidos como solitarias, cuyo cuerpo
consiste en un escólex con ganchos o succionadores y un largo estróbilo formado
por varias proglotides, sin tracto digestivo.
Objetivos
Determinar las historias de vida de algunos representantes de cada clase del fila Platyhelmintha
Describir la función de algunas de las estructuras que forman parte de cada clase de platelmintos.
121
Procedimiento
Complete los siguientes cuadros Indique con una √ cual característica está asociada a la clase particular de platelmintos.
Característica Turibularios Trematodos Monogenea Cestodos
Cercaria
Cisticerco
Miracidio
Oncomiracidio
Opistaptor
Ventosa oral
Faringe
Proglotides
Proaptor
Rabdito
Escólex
Estróbilo
Células
flamígeras
122
Realice una tabla comparativa entre las cuatro clases de platelmintos
CLASE TURBELARIA TREMATODA MONOGENEA CESTODA SISTEMA DIGESTIVO
ALIMENTACION
FORMA DE VIDA
REPRODUCCIÓN
CICLO DE VIDA
123
Complete el cuadro para las formas parásitas de los platelmintos listados.
Especie Huésped Modo de infección
Localización del adulto en el
huésped
Clonorchis sinensis
Fasciola buski
Taenia solium
Gyrodactylus
Schistosoma
Prosthogonimus
Echinococcus granulosus
Fasciola hepatica
Taeniarhynchus saginatus
Bibliografía
Hickman, C.; L. Roberts; and A. Larson. 2001. Integrated principles of zoology. 11ava Edición. Estados Unidos. McGraw Hill. Pp. 899.
Wallace, R y W. Taylor. 2003. Invertebrate zoology. A laboratory manual. Sexta edición. Prentice Hall. Pp. 356.
124
Resultados
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Conclusiones
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Bibliografía consultada
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Practica 14. GENERALIDADES DEL FILA ROTIFERA
Introducción
Se trata de un pequeño filum de unas 2000 especies de simetría bilateral, son
animales microscópicos que tienen dos características distinguibles: una región
apical ciliada llamada corona usada para locomoción y para alimentación y una
faringe muscular (mástax) equipada con mandíbulas.
La mayoría de los rotíferos son pequeños (50 a 200 µm) y de forma cilíndrica. Son
encontrados típicamente en hábitats de agua dulce donde son abundantes, aunque
existen especies que son exclusivamente marinas.
Son de vida libre en su mayoría, aunque existen diversas formas sésiles, coloniales
y algunas parásitas.
Su patrón estructural básico es vermiforme. El cuerpo está dividido en cuatro
regiones: cabeza, cuello, tronco y pie; destaca en la parte anterior de la cabeza la
corona ciliada asociada a la boca, que por sus movimientos similares a ruedas le
da el nombre a éste fila. Debido a que son transparentes, en el interior de su
faringe se puede observar una estructura movible formada por varias piezas (trofi)
conocida como mástax. La región posterior de su cuerpo se caracteriza, en las
formas de vida libre, por poseer un pie compuesto por dos dedos con glándulas
adhesivas y cuya función es la de sujeción al sustrato. La clasificación de los
rotíferos está basada principalmente en la forma del cuerpo, presencia o ausencia
de lórica, estructura de la corona ciliada, pie, el tipo de mástax, los órganos
reproductores y su forma de vida. Estos animales, aún cuando no son muy
abundantes, son integrantes primordiales en los diferentes hábitats donde se les
encuentra y forman parte de la alimentación de otros organismos.
126
Objetivos
El alumno reconocerá el patrón estructural de los rotíferos.
Reconocerá estructuras externas del cuerpo de estos animales.
Observará sus movimientos.
Procedimiento
Con una pipeta Pasteur tome una gota de agua de río y coloque en un
portaobjetos, cubra cuidadosamente y añada unos trozos de tabaco a un lado del
cubreobjetos, de tal forma que el tabaco se moje; observe al microscopio, trate de
identificar a un rotífero. Observe la forma de su cuerpo, la lórica, corona, si posee
pies y el número de dedos
Con claves identifique los ejemplares observados. Haga un esquema de lo que
observa.
Esquemas
¿De qué especie se trata? ¿Cuáles son las características que lo llevaron a esta
especie?
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Que otros miembros del reino animal identifica en el agua, además de los
rotíferos? Describalos
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Bibliografía
Hickman, C.; L. Roberts; and A. Larson. 2001. Integrated principles of zoology. 11ava Edición. Estados Unidos. McGraw Hill. Pp. 899.
Mayen, R. Vega F. 2005. Manual de prácticas de biología de animales I. CD Room. Universidad Nacional Autónoma de México. Facultad de Ciencias.
Wallace, R y W. Taylor. 2003. Invertebrate zoology. A laboratory manual. Sexta edición. Prentice Hall. Pp. 356.
Resultados
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Cuestionario
1.- Cuales son las características diagnósticas del Fila Rotifera?
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2.- Cuales son las diferentes clases en las que se divide el filum Rotifera y en que
se diferencía una de otra?
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2.- Que significa rotífera, y a que se debe que los llamen así?
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3.- Explique que es el ciclo de vida míctico y amíctico en los monogontos.
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4.-Mencione cuáles son las líneas de investigación, relacionadas con rotíferos, que
actualmente se estén llevando a cabo en el país.
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Conclusiones
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Bibliografía consultada
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Practica 15. GENERALIDADES DEL FILA NEMÁTODA
Introducción
El Fila Nemátoda es un grupo de 20,000 especies de gusanos pseudocelomados,
conocidos comúnmente como gusanos redondos. Las especies de vida libre se
han encontrado en casi todos los hábitats desde zonas árticas, hasta manantiales
termales.
Objetivos
Conocer el patrón estructural funcional de los miembros del fila Nemátoda.
Evaluar la importancia biológica, económica, médica del grupo.
Aplicar técnicas de colecta, fijación y procesamiento.
Materiales
Ejemplares de Áscaris sp.
Charola de disección
Cajas petri
Estuche de disección
Estereoscopio
Preparaciones permanentes de cortes transversales de nematodos
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Procedimiento
OBSERVACIÓN DE EJEMPLARES DE ASCARIS SP.
Observe la anatomía externa del ejemplar y diga si se trata de un macho o de una
hembra. Trate de localizar bajo el microscopio estereoscopio los labios, el
gonoporo, ano, espículas.
Haga un esquema de lo observado.
Procedimiento B. Observación de corte histológico de un nematodo.
Distinga las siguientes estructuras: cutícula, musculatura, intestino, testículos,
ovario, útero.
Haga un esquema de lo observado.
133
Procedimiento C. Obtención y observación de nemátodos edafícolas y/o
fitoparásitos.
a) Coloque el embudo en el anillo del soporte universal.
b) En el embudo coloque la manguera de látex.
c) Sobre el embudo coloque una malla de alambre y sobre esta un pañuelo
desechable.
d) Agregue una muestra de suelo (aproximadamente 50 g) y añada agua tibia
hasta que cubra toda la muestra, e incluso permita que la manguera se llene.
Mantengalo durante 48 horas, cubriendo con una bolsa para evitar desecación.
e) Después de ese tiempo, tome una muestra y observe con ayuda de un
estereoscopio.
f) Extraiga los nematodos con una pipeta Pasteur y elabora una preparación
permanente. Observe al microscopio óptico los caracteres morfológicos y elabore
esquemas con énfasis en la forma del cuerpo y órganos internos.
Esquema
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Bibliografía
Mayen, R. Vega F. 2005. Manual de prácticas de biología de animales I. CD Room.
Universidad Nacional Autónoma de México. Facultad de Ciencias.
Resultados
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Cuestionario
1. Mencione al menos cuatro características distintivas del phyla
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2. Señale cuatro de las principales enfermedades producidas por nematodos
parásitos en el hombre, sus síntomas, sus efectos y la distribución geográfica que
presenta en México.
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3. Describa el proceso de penetración de los nematodos en las raíces
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4. ¿Cuáles son los principales daños que ocasionan los nematodos en las
plantas.
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5. Compare las características de la cutícula de nematodos con la de
artrópodos, así como el proceso de la muda.
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Conclusiones
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Bibliografía consultada
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Practica 16. CLASES DEL PHYLA ANNELIDA
Introducción
El Filum Anélida (L. annelus, anillo, _ ida, pl. sufijo) está compuesto de unas
15,000 especies, de las cuales, las más familiares son las lombrices de tierra y las
sanguijuelas. Los anélidos son gusanos que tienen el cuerpo dividido en anillos
similares o segmentos. Esta fila se compone de tres clases: los Oligoquetos, los
Poliquetos y los Hirudineos.
Los Oligoquetos ("pocas sedas"), tienen la cabeza reducida, carece de ojos o
palpos y en su extremo anterior está situada la boca. Existen casi 3,000 especies,
terrestres y de agua dulce.
Los Poliquetos son organismos marinos, pero existen especies de agua dulce y
especies terrestres cada uno de los segmentos provisto de un par de apéndices
laterales carnosos (párpados) con sedas o sin ellas.
Los Hirudineos carecen de sedas, los segmentos de ambos extremos se han
modificado en ventosas, la ventosa anterior es más pequeña y con frecuencia
rodea la boca, la ventosa posterior tiene forma de disco y está orientada
ventralmente.
Objetivos
Distinguir las características principales para diferenciar a un anélido de cualquier otro organismo del reino animal.
Distinguir las características que diferencian a una clase de otra.
Determinar por medio de la consulta bibliográfica, la importancia de los anélidos.
140
Materiales
Muestras biológicas
Microscopio estereoscopio
Procedimiento
Observe cada uno de los especímenes proporcionados por el instructor y diga a
que clase pertenece cada animal observado.
Haga un esquema de cada espécimen y señalando las estructuras que lo
componen. Anote las características que diferencian a una clase de otra.
Esquema Clase:
Características:
Esquema Clase:
Características:
141
Esquema Clase:
Características:
Bibliografía
Jessop, N. 1990. Invertebrados. Zoología. Teoría y problemas. Interamericana, McGraw-Hill.España. Pp. 294.
Mille, S. A. Pérez, R. Villaseñor. 2001. Biología de protozoarios e invertebrados no artrópodos. Primera edición. Instituto Politécnico Nacional. México. Pp. 208
Wallace, R.,W. Taylor. 2003. Invertebrate zoology. A laboratory manual. Sexta edición. Prentice Hall. Estados Unidos. Pp. 356
Resultados
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Cuestionario
1. Señales las principales características distintivas que definen al phyla Annelida
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2. Defina la metamerización y describa las ventajas adaptativas que proporciona a
los anélidos
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3. ¿Para qué les sirven los parápodos a los anélidos? ¿En todas las clases se
presentan estas estructuras?
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4. ¿Cuál es la función del clitelo? ¿En todas las clases se presenta?
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5. ¿Cuál es la función de las cedas? ¿Todos los anélidos poseen cedas?
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6. ¿Cuál es la importancia ecológica, económica, médica y científica de los
anélidos?
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7. De lo que usted vió en clase y de lo que ha leído sobre los anélidos indique una
cosa que le haya perecido interesante de ellos.
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Conclusiones
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Bibliografía consultada
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Practica 17. PHYLA MOLLUSCA
Introducción
Los moluscos (L. mollis, suave) poseen cuerpos suaves, no segmentados,
consisten típicamente de una cabeza anterior y una masa visceral posterior. El
cuerpo está más o menos rodeado por un manto que es comúnmente por una
concha externa. Los moluscos tienen una amplia distribución en tiempo y espacio,
teniendo un registro continuo desde el Cámbrico con casi 45000 especies vivas y
casi un número igual de fósiles. Son mayormente marinos, viviendo a lo largo de
las costas o en aguas poco profundas, pero algunos pueden ocurrir por debajo de
los 10,000 metros.
Objetivos
Reconocer el patrón estructural funcional de los moluscos.
Reconocer los diferentes tipos de conchas y la relación de su anatomía con el hábitat.
Identificar las características primitivas y avanzadas en las clases de moluscos a revisar.
Materiales
Ejemplares de laboratorio.
Microscopio estereoscópico
Microscopio compuesto
Cajas de petri
Estuche de disección
148
Procedimiento
Procedimiento A. Observación de ejemplares de las clases Polyplacofora,
Gastropoda, Cephalopoda, Bivalvia y Scaphopoda.
Identifique los ejemplares y elabore un cuadro comparativo atendiendo los
siguientes caracteres: forma de la concha, tipo de superficie y hábitat. Esquematice
e identifique las marcas de inserción de tejidos blandos. Complemente
bibliográficamente la tabla con el tipo de aparato circulatorio, sistema nervioso,
presencia de rádula, sistema respiratorio y reproducción.
Esquemas
149
Clase Forma
de la
concha
Hábitat Aparato
circulatorio
Aparato
respiratorio
Presencia
de rádula
Reproducción
Polyplacofora
Gastropoda
Cephalopoda
Bivalvia
Scaphopoda
150
PROCEDIMIENTO B. DISECCIONES
Helix sp.
Ahogue a los caracoles en un frasco con agua hasta el tope 48 horas antes de la
práctica, esto permitirá que mueran extendidos.
Extienda a los organismos sobre la caja petri con cera y fije los bordes del pie con
alfileres, colocando al molusco en posición dorsal.
Con ayuda de unas tijeras de punta fina, perfore levemente la concha desde la
región anterior a la posterior de tal forma que sea posible abrirla en dos partes.
Remueva los fragmentos de la concha y con ayuda de las tijeras de punta fina,
corte el borde del manto, a fin de observar la cavidad del manto transformada en
pulmón.
Con las mismas tijeras haga un corte en sentido antero-posterior.
Fije los bordes del manto a la caja de petri con alfileres. Observe la masa bucal y
extraiga la rádula, cuya forma es triangular y de color café oscuro. Coloque la
rádula en un portaobjetos, añada solución salina al 10 %, y observe al microscopio
óptico a fin de observar los dientes. Continúe con el corte en sentido posterior,
cuidado de no romper el aparato reproductor ni el digestivo. Una vez realizado el
corte hasta la glándula hepática, reconozca y esquematice las siguientes
estructuras: gónada, glándula de albúmina, glándula digestiva, oviducto, pene,
saco del dardo, flagelo, ciego gástrico, intestino, glándulas salivales, anillo
periesofágico y riñón.
Tome una pequeña muestra de gónada, anillo periesofágico, oviducto y glándulas
salivales, coloque las muestras en un portaobjetos con una gota de solución salina
y una pequeña cantidad de azul de metileno. Use cubreobjetos, a fin de elaborar
preparaciones temporales por el método de squash y poder observar diferentes
tipos histológicos.
151
Esquema de disección
Esquema de tipos histológicos
Loligo sp.
Extienda el organismo en posición dorsal sobre una charola de disección. Observe
cromatóforos, tentáculos, hectocótilos, ventosas, mandíbulas pico de loro, embudo
y aletas.
Coloque al organismo en posición ventral. Elabore un corte a nivel de embudo,
para posteriormente cortar el manto de la cavidad paleal. Extienda el manto para
observar branquias, corazones branquiales, saco de tinta, ciego gástrico, intestino,
gónada y componentes del aparato reproductor. Elabore un pequeño corte en el
manto dorsal, a fin de extraer la pluma o concha vestigial. Haga una incisión con el
bisturí en la región cefálica a fin de exponer las mandíbulas de pico de loro, la
rádula, glándulas salivales, masa encefálica y globos oculares.
152
Tome una pequeña muestra de gónada, masa encefálica, glándula salival y
branquia. Coloque las muestras en un portaobjetos, añada solución salina y azul
de metileno para observar diferentes tipos histológicos bajo el microscópio
Esquema de disección
Esquema de tipos histológicos
Curbicula sp.
Abra las valvas en una charola de disección. Observe ligamento, charnela, pie,
boca, branquias, músculos aductores anterior y posterior y sifones como fusión del
manto en la región posterior. Realice un corte en la pared del manto en la parte
superior del pie, a fin de observar gónada e intestino, así como ganglios pedales.
Haga una incisión por debajo de la boca o en el tercio posterior, con el propósito de
observar ganglios bucales y viscerales. Observe metanefridios en la región dorsal
del cuerpo. Tome una pequeña muestra de gónada, branquia, ganglios e intestino.
153
Coloque las muestras en portaobjetos, añada solución salina y azul de metileno
para observar diferentes tipos histológicos bajo el microscopio.
Esquema de disección
Esquema de tipos histológicos
Bibliografía
Mayen, R. Vega F. 2005. Manual de prácticas de biología de animales I. CD Room.
Universidad Nacional Autónoma de México. Facultad de Ciencias.
Storer, T., y R. Usinger. 1957. General Zoology. McGraw-Hill. . Pp. 664
154
Resultados
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Cuestionario
1. Señale cual clase de molusco es anatómicamente más complejo y porqué?
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2. Cuál fue el tipo histológico que pudo observar de forma más clara?
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3. Discuta las ventajas de la cefalización y la reducción de concha en los moluscos
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4. Cuál es la función del dardo en Hélix sp.?
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5. Como se lleva a cabo la cópula en el pulpo y en el calamar?
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Conclusiones
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Bibliografía consultada
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Practica 18. RÁDULA DE MOLUSCOS
Introducción
Los moluscos (del latín mollis = suave), tienen cuerpos no segmentados,
usualmente protegidos por una concha calcárea de 1, 2 u 8 piezas. El cuerpo
consiste típicamente en un pie ventral, de una cabeza anterior con boca, ojos
tentáculos y un órgano bucal raspador llamado “rádula”, presenta un manto que es
el órgano que secreta la concha.
Objetivos
Conocer y familiarizarse con las formas y clases más comunes de moluscos
Identificar taxonómicamente a las clases presentes, así como a géneros y especies.
Materiales
Ejemplares de laboratorio.
Microscopio estereoscópico
Microscopio compuesto
Cajas de petri
Estuche de disección
Procedimiento
A partir de la observación de la anatomía externa de los organismos se puede dar
inicio para distinguir las diferentes clases de moluscos. Sin embargo el taxónomo
que realiza estudios más profundos, necesita además identificar a detalle diversos
órganos como: branquias, sistema nervioso, aparato reproductor, órganos
sensoriales, tamaño, coloración, etc., es por eso que se debe conservar en líquidos
parte del material colectado para ser utilizado en futuros trabajos de investigación,
tales como: taxonómicos, de distribución, de ecología de poblaciones, evolutivos,
etc
158
FIJACIÓN
Es muy importante que los moluscos estén totalmente relajados y extendidos, ya
que sólo así se pueden estudiar y disertar. Para tener especímenes fijados en
estas condiciones, es necesario anestesiarlos antes de matarlos. A pesar de los
numerosos métodos, ninguno puede decirse que sea totalmente efectivo.
Los caracoles pueden ponerse, por lo general, en un recipiente con agua de su
medio natural, agregándole gota a gota alcohol hasta formar una solución de 10%.
Si es necesario, deben utilizarse muchas horas o días hasta lograrlo. Cuando
queden completamente insensibles se deben fijar con formol al 10%. Solo en
ocasiones, el calentamiento lento da buenos resultados.
Los nudibranquios y otros gasterópodos marinos se pueden congelar lentamente.
Para ello se depositan en frascos con agua de su medio y cuando estén
distendidos se meten al congelador. Una vez congelados se desprende el hielo que
los rodea y se fijan temporalmente en formol concentrado. Tambien pueden
anestesiarse con mentol o benzocaína durante varias horas y matarse luego en
ácido glacial concentrado o en formol a 5%.
Los gasterópodos matados en formol al 5%, se deben lavar con agua dulce y
ponerse en alcoholes graduales hasta el de 70%, donde pueden conservarse.
Los pelecípodos marinos mueren al ser depositados en agua dulce. Ya muertos se
pueden fijar en alcohol de 70%, después de haberlos deshidratado en alcoholes
graduales. Se pueden narcotizar con agua alcoholizada o con mentol. Y matarse
con calor o relajados por congelación. Finalmente se deshidratan con alcoholes de
35, 50 y 75%. Para que los fijadores penetren bien, se deben mantener abiertas las
valvas introduciendo un pedacito de madera. Los quitones se pueden fijar con un
pie musculoso bien distendido si se les anestesia durante media hora con varias
gotas de aceite de clavo. Otro método consiste en amarrar 2 ejemplares por el lado
ventral (pie con pie) y depositarlos en formol al 10% o alcohol de 35% para
matarlos. No se recomiendan las ligas para sujetarlos. Después, se pueden pasar
hasta alcohol de 70% para su conservación.
159
Cualquier espécimen que vaya a ser estudiado histológicamente se debe fijar con
F.A.A. o con Bouin.
Los caracoles de tierra (Hélix) y los babosos terrestres (Limax) se usan con
frecuencia para estudios en las escuelas.
TECNICA PARA PREPARAR LA RADULA
1. Obténgala por disección de los tejidos del caracol.
2. Hiérbala en una solución de KOH hasta que quede limpia o deposítela durante
24 horas en KOH a la temperatura del laboratorio.
3. Lávela en varios cambios de agua.
4. Sujétela entre 2 portaobjetos
5. Cuando la haya sujetado, pásela a través de alcoholes graduales de 35, 50, 70
y 96% para que permanezca 20 minutos en cada uno.
6. Pásela a alcohol absoluto, aclare en xilol, afloje los portaobjetos para sacar la
rádula y montarla en bálsamo.
7. Antes de deshidratarla puede teñir con carmín-bórax usando alcohol acidulado,
para desteñir el exceso de colorante.
Esquemas
Dibuje los organismos vistos e identificados en la presente práctica señalando sus
partes principales.
160
Bibliografía
Abbot, I.A.1978.How to know the seaweeds. Wm.C. Brown Co. Pub. Dubuque, Iowa.
Aladro Lubel, M.A.1985. Algunos Ciliados Intersticiales de Isla de Enmedio, Veracruz, México. An. Inst. Biol. Univ. Nal.Autón. México 55, Ser. Zoología (I): 1-59
Barnes, R.D.1998. Zoología de Invertebrados. Interamericana, 6ª Edición, México. D.F. 957 pp.
Beck, E.D. and Brathwait, L.F. 1968. Invertebrate Zoology Laboratory Workbook.-Burgess Pub. Co. Minnesota.
Bullough, W.S. 1958. Practical Invertebrate Anatomy. Mc. Millan and Co. LTD. New York.
Brower, J.E. and Jerrold,H.Z. Field and Laboratory Methods for general Ecology. Wm. C. Brown Co. Pub. Dubuque, Iowa.
Candelaria-Silvia, C.F.1985. Caracterización de la Ficoflora de la Localidad de Puerto Escondido, Guerrero. TESIS PROFESIONAL. Fac. Ciencias. UNAM.
Carefoot, T.1982. Pacific Seashores. A Guide to Intertidal Ecology. Univesity of Washinton Press Seattle.
Gaviño de la T., G.C.L. Juárez y H.H. Figueroa. 1977. Técnicas selectas de laboratorio y de campo, Editorial Limusa, México, D.F. 251 pp.
Jahn, T.L.; Bovee, Z.C. y Jahn, F.F.1979. How to Know the Protozoa. Wm. C. Brown Co. Pub. Dubuque, Iowa.
Johnson, M.E. and Snook, H.J.1967. Seashore Animals of the Pacific Coast. Dover. Pub. Inc. New York.
Kudo, R.R.1979. Protozoología C.E.C.S.A. México.
161
Krebs, C.J.1985 Ecología. Estudio de la Distribución y la Abundancia. Harla. México.
Lindrer, G.1978. Field Guide to Seashells of the World. Van Nostrand Reinhold Co. New York.
Margalef, R. 1974.Ecología. Omega, Barcelona, España.
Massuti, M. y Margalef, R. 1950. Introducción al Estudio del Plancton marino. Con. Sup. Invest. Scientific. Barcelona, España.
Meinkoth, N. A. 1981. The Audubon Society Field Guide to North American Seashore Creatures. Alfred A. Knopf, Inc., New York.
Miner, W.R. 1950. Field Book of Seashore Life G.P. Putnam’s sons. New York.
Odum, E. 1972. Ecología. Interamericana, México.
Sevilla, M.L. 1977.Introducción a la Ecología marina. Inst. Pol. Nal. México.
Sherman, I.W. and Sherman, V.G. 1970. The Invertebrates Function and Form. A Laboratory Guide. Mc. Millan Pub. Co. Inc. New York.
Tait, R.V. 1971.Elementos de Ecología Marina. Acribia. Zaragoza, España.
Vegas-Veles, M. 1980. Introducción a la Ecología del Bentos Marino. O.E.A. Washington, D.C.
Villalpando-Canchola, E. 1986. Diversidad y Zonación de Moluscos en Facie Rocosa Isla Roqueta, Acapulco, Guerrero. TESIS PROFESIONAL Fac. Ciencias. UNAM.
162
Resultados
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Cuestionario
1.- ¿Cuales son las posibles ventajas y desventajas de poseer una concha en los
moluscos?
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2.- Menciona y explica, al menos tres mecanismos de defensa de los moluscos, da
ejemplos de cada uno de ellos.
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3.- Menciona las principales clases de moluscos y que características presenta
cada una.
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Conclusiones
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Bibliografía consultada
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CLAVE PARA LAS CLASES MÁS COMUNES DE MOLUSCOS
1a. Animal con una serie de tentáculos y ventosas; sin concha externa…………….....…..5
1b.Animal sin tentáculos y cubiertos por una concha de 1, 2 u 8 piezas calcáreas……….2
2a. Animal cubierto por 8 placas dorsales…………………..………..Clase Polyplacophora
2b. Animal encerrado en una concha de una pieza, en un tubo calcáreo o encerrado en dos valvas articuladas……..……………………………………..……..…………………………3
3a. Animal encerrado entre dos valvas ……………………………………..Clase Pelecypoda
3b. Animal encerrado en una concha de una pieza o en un tubo calcáreo……………….…4
4a. Concha en forma de colmillo de elefante y abierto en ambos extremos, animal submareal, pero frecuentemente llevado a la costa durante las tormentas, formando parte del sedimento conchífero litoral ……………………………………………….Clase Escafopoda
4 b. Conchas variables en formas, pero abiertas solo en uno de los extremos, animales intermareales y de hábitat variable ………………………………………..Clase Gasterópodo (incluye solo a los órdenes Archeogasterópoda, Mesogasterópoda y Cephalaspidea).
5 a. Animal con 8 tentáculos y dos hileras de ventosas………..………Clase Cephalopoda
5 b. Animal sin tentáculos largos …………………………………………Clase Gasterópoda (incluye solo los órdenes Anaspidea, Nudibranquia Gymnophila)
Las clases Monoplacophora y Aplacophora no se incluyen en esta clave, ya que son organismos de profundidades mayores (2000 a 9000 Mts. Aproximadamente).
165
GLOSARIO DE TERMINOS TECNICOS DE BIVALVOS
ALAS.- Parte triangular terminal del gozne como grupos en las familias
Pectinaceae.
BISO.- Un mechón de filamentos largos y fuertes, los cuales son secretados por
una glándula en el pié de algunos bivalvos y por el cual se adhieren ellos mismos a
las rocas o a otros objetos sólidos, como en la familia Mytilidae.
CAVIDAD DEL MANTO.- El espacio entre el manto y el cuerpo del bivalvo en el
cual se encuentran las branquias.
CRENULADO.- Que tiene un margen con muescas o regularmente dentado. Como
en la Familia Cándiidae.
DIENTES CARDENALES.- Dientes situados más o menos en la parte central de la
charnela o gozne inmediatamente abajo del umbo. Como en la Familia Veneridae.
DIENTES TAXODONTES.- Dientes cortos y numerosos de forma más o menos
similares y localizados en ángulo recto con respecto a la charnela. Ejemplos:
Familia Nuculidae, Arcudae, Glycymeridae.
ESCULTURA RADIAL.- Líneas externas sobre la concha las cuales se extienden
desde el umbo hacia el margen ventral de la concha. Ejemplos: Géneros: Cardita,
Anadara, Pecten, Trachycardium.
ESCULTURA CENTRICA.- Líneas externas sobre la concha con dirección muy
semejante a la línea de crecimiento. Ejemplo: Géneros: Pitar, Nuculana, Mactra,
Polymesoda.
ESCULTURA CANCELADA O RETICULADA.- Líneas concéntricas y radiales en
una misma concha. Géneros: Prothothaca, Chione.
HUELLAS DE LOS MUSCULOS ADUCTORES.- Depresiones, usualmente
circulares u ovaladas en el interior de la concha; es la marca del área de adhesión
de los músculos que los bivalvos usan para cerrar sus conchas.
166
LAMELA.- Placas como hojas delgadas las cuales están en una parte o en toda la
escultura de la concha. Ejemplos: Géneros: Pseudochama.
LINEAS PALEAL.- Una impresión conectada a la huellas de los músculos
aductores, marcando la fijación del margen del manto a la concha.
LANULA.- Un área deprimida en forma de corazón anterior al umbo.
MANTO.- Un par de lóbulos de la pared corporal y porta las glándulas que secretan
la concha.
PERIOSTRACO.- El estrato más externo y delgado de la concha el cual protege la
parte calcárea de la concha del daño por erosión.
PIE.- Un órgano carnoso de locomoción, usualmente a lo largo de la línea media
del bivalvo, lo cual se especializa según el tipo de locomoción, arrastran y nada.
SENO PALEAL- Una impresión curvada en la línea paleal, cerca del margen
posterior de la concha, la cual marca la adhesión del sifón.
SIFONES.- Estructuras tubulares en el margen posterior de la concha donde entra
y sale el agua al cuerpo del bivalvo.
UMBO.- Una prominencia o pico lateral justo encima del gozne o ligamento. Es la
primera parte que se forma en la concha de un bivalvo.
VALVA IZQUIERDA.- Cuando se sostiene al espécimen con el área del gozne
hacia arriba y el seno paleal o sifones apuntan hacia el observador.
167
Practica 19. GENERALIDADES DEL PHYLA EQUINODERMATA
Introducción
Los equinodermos son formas marinas que incluyen a las estrellas de mar, los
erizos de mar, las estrellas quebradizas, pepinos de mar y margaritas de mar. Su
nombre (Gr. echinos, erizo de mar, hedgehog, _ derma, piel, _ ata,caracterizado
por) se deriva de sus espinas externas o protuberancias. Un endoesqueleto
calcáreo es encontrado en todos los miembros del Phyla, ya sea en forma de
placas o representado por pequeños oscículos dispersos. Las características más
notables de este Phyla son: un endoesqueleto espinoso de placas, sistema
vascular acuífero, pedicelarios, branquias dermales y simetría radial o bilateral.
Objetivos
Distinguirán las características principales que diferencian aun equinodermo
de cualquier otro organismo del reino animal.
Los alumnos identificarán las características que diferencian a las clases del
Phyla Equinodermata.
Procedimiento
Observe cada uno de los ejemplares proporcionados, distinga sus características
morfológicas externas, presencia de surcos ambulacrales, presencia de pies
ambulacrales, pedicelarios, espinas, posición de la boca y el ano, posición del
madreporito. Haga el esquema de cada uno de ellos.
169
Esquema Equinoideo regular
Parte oral Parte aboral
Esquema de Equinoideo irregular
Parte oral Parte aboral
170
Esquema de Holoturoideo
Haga un cuadro comparativo con de las clases del Phyla con las siguientes
características: posición del ano y del madreporito, aparato respiratorio, hábitos
alimenticios, reproducción, tipo de larva.
Clase Posición
madreporito y ano
Aparato respiratorio
Hábitos alimenticios
Reproducción
Tipo de larva
Asteroidea
Equinoidea
171
Ophiuroidea
Holoturoidea
Concentrici- cloidea
Crinoidea
Bibliografía
Hickman, C.; L. Roberts; and A. Larson. 2001. Integrated principles of zoology.
11ava Edición. Estados Unidos. McGraw Hill. Pp. 899.
Mayen, R. Vega F. 2005. Manual de prácticas de biología de animales I. CD Room.
Universidad Nacional Autónoma de México. Facultad de Ciencias.
Resultados
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Cuestionario
1. Cuál es la función del madreporito
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2. Cuál es la función de los pies ambulacrales
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3. Que son las branquias dermales?
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Conclusiones
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Bibliografía consultada
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Practica 20. EQUINODERMOS
Introducción
Todos los equinodermos son animales marinos, cuyas formas de simetría radial se
pueden conocer con facilidad. Entre los equinodermos más comunes están las
estrellas de mar, las galletas de mar los ofiúridos o “estrellas serpiente” de largos
brazos, los erizos los pepinos y los lirios o plumas de mar.
La mayoría de ellos viven en las zonas rocosas poco profundas de las mareas; sin
embargo algunas especies viven sobre el fango, en las regiones profundas de alta
mar.
La colecta en la zona de mareas puede ser manual, para ello es indispensable un
cuchillo y bolsas de plástico en cantidad suficiente, y una cubeta sobre todo para
los erizos. Muchos erizos viven por lo común sobre las rocas o piedras sumergidas,
o sobre aquellas que son bañadas por las olas a la orilla de la playa. Allí viven
también pepinos de mar, ocultos entre las grietas o hendeduras de las rocas, pero
dejando ver sus finos tentáculos. Las estrellas y galletas de mar se posan sobre los
fondos fangosos o arenosos.
La colecta con draga puede dar excelentes resultados y proveer abundante
material; sin embargo no se debe colectar más de lo necesario y de lo que se
pueda conservar en buen estado.
Objetivos
Conocer las diferentes clases que integran a este grupo y sus estructuras características
Identificar taxonómicamente los organismos colectados.
175
Materiales
Ejemplares de laboratorio.
Microscopio estereoscópico
Microscopio compuesto
Cajas de petri
Estuche de disección
Procedimiento
CONSERVACION
Los equinodermos se pueden conservar secos o en líquidos. Si se conservan en
líquidos es recomendable anestesiarlos previamente, ya que algunos, por ejemplo
los ofiúridos, se pueden fragmentar con facilidad al colocarlos directamente en el
fijador, o bien contraer sus tentáculos o sus pies ambulacrales. Para anestesiarlos
se colocan en agua de mar que apenas los cubra, agregando un poco de sal de
higuera (sulfato de magnesia) cada hora hasta que el animal quede insensible.
También se puede utilizar Cloruro de Magnesio, cristales de mentol, agregando
gota a gota alcohol al 70%, o simplemente colocando los especímenes en agua
dulce. Una vez insensibles se fijan en formol al 5% o con alcohol al 70%,
inyectándolos en las partes internas del animal para asegurar su fijación. Si se
utiliza formol, se deja actuar durante un día y después se lava con agua dulce y se
transfiere a alcohol al 70%, donde se puede conservar indefinidamente. Por tener
esqueletos calcáreos, la conservación en líquidos y sobre todo en formol no es
buena para los equinodermos; sin embargo, muchas veces es necesaria para
clasificar las especies. Los equinodermos que se vayan a utilizar para disecciones,
deben conservarse en líquidos. Para estudios histológicos, se pueden fijar en
Bouin o en sublimado corrosivo.
Muchos ejemplares, sobre todo erizos, estrellas de mar, galletas de mar y ofiúridos,
se pueden conservar secos y guardarse por tiempo indefinido en estas
condiciones. Para ello después de haberlos fijado por unos momentos, se secan al
ambiente caliente evitando los rayos directos del sol, o bien, utilizando algún cajón
176
o aparato secador improvisado en forma sencilla. La temperatura a unos 37 º C es
suficiente para obtener un buen secado. Se debe conservar a los especímenes en
muebles adecuados, con todos sus datos y fumigarse periódicamente para evitar
que se destruyan.
PREPARACIONES FIJAS DE PEDICELARIOS TEÑIDOS
1. Desprenda cuidadosamente del Equinodermo algunos de los pedicelarios
2. Colóquelos en un portaobjetos y agregue agua destilada.
3. Sustituya el agua por una solución a l0% de hidróxido de Potasio a la que haya
agregado algunas gotas de una solución alcohólica de rojo de alizarina S.
4. Déjelos teñir durante 15 minutos.
5. Deshidrate a través de alcoholes de mayor concentración gradual
6. Póngalos en alcohol absoluto
7. Aclare en Xilol
8. Monte en bálsamo de Canadá
9. Obsérvelos bajo el estereoscopio.
Esquemas
177
Bibliografía
Hickman, C.; L. Roberts; and A. Larson. 2001. Integrated principles of zoology. 11ava Edición. Estados Unidos. McGraw Hill. Pp. 899.
Mayen, R. Vega F. 2005. Manual de prácticas de biología de animales I. CD Room. Universidad Nacional Autónoma de México. Facultad de Ciencias.
Resultados
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Cuestionario
1.- Menciona las características distintivas de los equinodermos.
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2.- Menciona y describe en qué consiste el sistema vascular acuífero.
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3.- Explica que son y qué función desempeñan los pedicelarios.
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4.- Investiga los siguientes términos: cuerpo de Tiedmann y vesícula de Poli.
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Conclusiones
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Bibliografía consultada
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CLAVE TAXONOMICA PARA LAS CLASES DEL PHYLUM ECHINODERMATA
1 a. Animal con 4 o más brazos……………………………………………………..…..2
1 b. Animal sin brazos…………………………………………………….…………….3
2 a. Brazos con hendiduras ambulacrales; animal sin disco central
distinguible………………………...…………………………………………….Clase
Asteroidea
2 b. Brazos sin hendiduras ambulacrales; animal con un disco central
distinguible………………………………………………….………………...Clase
Ophiuroidea
3 a. Cuerpo cubierto con espinas móviles; sin tentáculos alrededor de la boca;
cuerpo con un rígido esqueleto interno
……………………………….…………………..…. Clase Equinoidea
3 b. Cuerpo sin espinas; boca rodeada por tentáculos; cuerpo no cubierto por un
esqueleto rígido externo
……………………..………………………………..……………….Clase Holoturoidea