UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO …embriologia.facmed.unam.mx/documentos/practi12017.pdf · Laminillas con cortes de ovario fetal y adulto 3. Se observarán al microscopio

UNIVERS IDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO

FACULTAD DE MEDICINA

DEPARTAMENTO DE EMBRIOLOGÍA

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PRÁCTICA No.1

OBSERVACIÓN HISTÓLOGICA DE TESTÍCULO Y OVARIO.

Dra. María Dolores González Vidal, Biol. Rosalba Granillo Núñez

Revisado por: Dr. Enrique Pedernera Astegiano

Firma y nombre del profesor que evalúa _________________________________________ Fecha de entrega _____________________ CALIFICACIÓN__________________

MARCO TEÓRICO

El testículo inicia su desarrollo en la etapa embrionaria, presentando cordones testiculares, con abundantes

espermatogonias, células intersticiales o de Leydig y precursoras de las células de Sertoli. La espermatogénesis

se inicia en la pubertad y continúa durante toda la vida reproductiva del individuo.

En el hombre, la testosterona producida por las células intersticiales o de Leydig es necesaria para la

diferenciación fenotípica del embrión y la adquisición de las características sexuales secundarias en la pubertad.

La fertilidad del individuo puede verse alterada cuando factores genéticos, hormonales o ambientales afectan

la espermatogénesis.

OBJETIVO

Identificar la espermatogénesis normal en los humanos, su regulación hormonal y la influ encia de factores

ambientales, así como los problemas médicos relacionados con la alteración de la misma.

PARTE 1: OBSERVACIÓN DE CORTES DE TESTÍCULO FETAL, ADULTO Y ESPERMATOZOIDES.

MATERIAL

1. Microscopio óptico.

2. Laminillas de cortes de testículo fetal y adulto de humano con tinción H-E.

3. Laminillas con espermatozoides de humano, teñidas con Klüver -Barrera y Feulgen.

MÉTODO

I. Observación de preparaciones histológicas

A continuación, observa las laminillas con cortes histológicos de testículo fetal y de adulto humano, e

identifica en las fotografías los tipos celulares encontrados.




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a) Identifica los componentes en corte de testículo fetal de humano.

Corte de testículo fetal teñido con H-E. 20X

b) Identifica los componentes celulares en los cordones seminíferos.

Corte de testículo fetal teñido con H-E. 40X




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1. ____________________________________________ 2. ____________________________________________

3. ____________________________________________ 4. ____________________________________________

c) Identifica los componentes celulares en un túbulo seminífero de un corte de

testículo adulto de humano.

Corte de testículo humano teñido con H-E. 20X




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1. _______________________________________ 2. _______________________________________

3. _______________________________________ 4. _______________________________________

5. _______________________________________ 6. _______________________________________ 7. _______________________________________

8. _______________________________________

d) Observación de espermatozoides al microscopio óptico.

Espermatozoides teñidos con la técnica de Kluver-Barrera 40X

e) Identifica lo observado al microscopio óptico.

1) ________________________________________________________________

________________________________________________________________




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Espermatozoides teñidos con la técnica de Kluver-Barrera 100X

2) Encontraste espermatozoides anormales _______________________________ 3) ¿Qué anormalidades presentaban?______________________________________

f) Investiga:

Hay una gran variabilidad en los límites de “normalidad” del semen eyaculado.

Busca y escribe los valores normales del semen en el humano, anota al final la bibliografía consultada.

1) Número de espermatozoides por ml. __________________________________ 2) Cantidad en mililitros de líquido seminal por eyaculado __________________

3) Tipo de movimiento de los espermatozoides ____________________________ 4) Velocidad habitual del espermatozoide_________________________________

5) % de espermatozoides anormales compatible con fertilidad _________________ 6) pH del semen.___________________________________________________

II. Define los siguientes términos: 1. Azoospermia ____________________________________________________________ __

2. Astenozoospermia__________________________________________________________




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3. Oligozoospermia___________________________________________________________

4. Teratozoospermia __________________________________________________________

5. Discinesis_________________________________________________________________




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PARTE 2: OBSERVACIÓN DE OVARIO FETAL Y ADULTO

Firma y nombre del profesor que evalúa ______________________________________ Fecha de entrega ________________ CALIFICACIÓN__________________

MARCO TEÓRICO

El ovocito humano fue observado por primera vez en el siglo XIX, descubrimiento que dio

lugar a investigaciones que fueron aclarando los cambios morfológicos que cíclicamente presentan los ovarios de las mujeres en edad reproductiva y su relación con los cambios

endometriales descritos a principios del siglo XX. La ovogénesis se inicia en la vida intrauterina cuando la ovogonia se diferencia en ovocito

primario, que entra en la primera división meiótica, experimentando la primera detención meiótica por el factor inhibidor de la meiosis (FIM), el cual es producido por las células

foliculares. La ovogénesis se reinicia en la pubertad de la mujer por el estímulo hormonal de la adenohipófisis.

La foliculogénesis se lleva a cabo en el ovario, bajo la regulación de las gonadotrofinas (FSH y LH), el folículo primordial, se desarrolla pasando por primario secundario y terciario y simultáneamente el ovario produce las hormonas 17 beta estradiol y la progesterona que

regulan el ciclo sexual femenino.

Fases de maduración folicular




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Imagen que muestra el desarrollo folicular, hasta el folículo terciario, maduro o de Graaf. OBJETIVO

Reconocer el aspecto y las características de los folículos en desarrollo, primordia les,

primarios, secundarios y terciarios, preovulatorios o de Graaf. MATERIAL Y MÉTODO

1. Microscopio óptico 2. Laminillas con cortes de ovario fetal y adulto

3. Se observarán al microscopio cortes histológicos de ovarios fetal y del adulto, para reconocer los componentes celulares y relacionarlos con las fotografías.

I. Identifica los componentes celulares en un folículo primordial.

II. Identifica los componentes celulares en un folículo primario.




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Corte de ovario de gata con tinción tricrómica de Mallory. 40X 1. _______________________________________________________________

2. _______________________________________________________________ 3. _______________________________________________________________

4. _______________________________________________________________ 5. _______________________________________________________________




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III. Identifica en este folículo sus componentes celulares.

Corte de ovario de gata con tinción tricrómica de Mallory. 40X

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Anota la bibliografía consultada de acuerdo al formato APA ( http://normasapa.com/).

Agradecimientos: A la Bióloga Martha Martínez Cisneros por las preparaciones histológicas.

A la C. D. María José Gómora Herrera por las micrografías. A la Dra. María Cristina Márquez Orozco por las preparaciones histológica de ovario.

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http://normasapa.com/

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