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Manuel de prélèvement
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MANUEL DE PRELEVEMENT
Laboratoire de
Biologie Médicale
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SOMMAIRE
Sommaire................................................................................................... 1
Résumé des modifications……………………………………………….2
Présentation du laboratoire……………………………………………..3
Traitement des demandes d’examens…………………………………..4
1-Demandes traitées au laboratoire
2-Gestion de l’urgence médicale
3-Informations obligatoires
Prélèvement ……………………………………………………………..9
1-Fiche de prélèvement / Fiche de suivi médical
2-Prélèvements sanguins
3-Recueils urinaires
4-Prélèvements destinées à la microbiologie et autres
Identification des prélèvements…………………………………….….21
Transport ……………………………………………………….………22
1-Conditions de transport
2-Délais d’acheminement
3-Température d’acheminement
Hygiène & Sécurité……………………………………….…………….23
1-Gestion des déchets
2-Incidents de prélèvements
3-Conduite à tenir en cas d’accidents d’exposition au sang
Rendu des résultats................................................................................ 26
Catalogue des examens ………………………………..………………27
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Les modifications sont annotées dans la marge à gauche par un trait vertical
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Résumé des modifications
Modification de l’adresse du site de Fréjus LOU GABIAN (p3)
Correction de l’erreur de signe pour le temps de pose du garrot pour l’Hémostase (p27)
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Présentation du laboratoire
Site de Montauroux :
Dr BARTOLO Aurore Le plan oriental - Bâtiment B – RD 562 – 83440 MONTAUROUX
Coordonnées : Tel : 04.94.50.28.43 / Fax : 04.94.99.15.69
Site de Fayence :
Dr TREIL Antoine 104 Chemin de Draguignan – 83440 FAYENCE
Coordonnées : Tel : 04.94.39.22.22 / Fax : 04.94.84.17.54
Site de Fréjus LOU GABIAN:
Dr ZANCHI Romain 364 LOU GABIAN 83600 Fréjus
Coordonnées : Tel : 04.94. 85.76.64 / Fax : 04.94.85.76.61
Site de Peymeinade :
Dr ALEX Stéphanie 13 avenue Fréderic Mistral - 06530 Peymeinade
Coordonnées : Tel : 04.93.66.34.07 / Fax : 04.93.66.02.42
Site Fréjus Vinci :
Dr ARNAUD Roger 359 avenue de Triberg - 83600 FREJUS
Coordonnées : Tel : 04.94.51.83.51 / Fax : 04.94.53.03.53
Site de Nice :
Dr COLLET Guillaume 36 boulevard Paul Montel - Résidence l’Alandier - 06200 Nice
Coordonnées : Tel : 04 93 83 46 46 / Fax : 04 93 18 86 43
Site internet du laboratoire :
ilab-analyses.fr
Pour les préleveurs externes, consultation du présent manuel sur le site
http://www.labzero.fr/ilab
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Traitement des demandes d’examens
1. Demandes traitées au laboratoire
Type de demande Documents nécessaires Infos nécessaires
Patients venant au laboratoire
Carte vitale à jour* Au nom du patient
Mutuelle *(le cas échéant) En cours de validité
Ordonnance*
Ou
-Identification univoque du patient (Nom/Prénom/Date de naissance à
minima) -Nom ou identification unique du
prescripteur -Type d’échantillon (plasma, sérum,
urine…) -Examens prescrits
-Signature du médecin
Enregistrement des demandes formulées
oralement et hors nomenclature
Remplie et visée par le patient, scannée dans son dossier
Patient prélevé à l’extérieur par
professionnel de santé (IDE, médecin…)
Coordonnées sécu + mutuelles (le cas échéant) *
Pareil que précédemment
Ordonnance * Pareil que précédemment
Fiche de suivi médical
Complétée avec à minima les données suivantes : Nom + Nom de naissance, Prénom patient, Date de naissance, Sexe, Identité préleveur,
Date et heure de prélèvement, notion d’urgence (le cas échéant)
Demande provenant d’un laboratoire partenaire (sous-
traitance)
Feuille de transmission Numéro de l’échantillon + Nom +
Prénom patient + examens demandés
* En cas de non-présentation de ces documents, au plus tard à l’occasion de la remise des résultats,
le laboratoire sera amené à facturer tout ou partie du dossier.
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2. Gestion de l’urgence médicale
Les urgences sont traitées en priorité dans le cas où la mention est formalisée par le
prescripteur sur l’ordonnance, sur demande justifiée du patient ou à l’initiative du préleveur
et/ou du biologiste s’il juge l’état de santé du patient préoccupant.
Pour les prélèvements hors du laboratoire, les préleveurs sont priés d’attirer l’attention du
secrétariat sur la notion d’urgence associée au prélèvement déposé (en plus de la notification
sur la fiche de prélèvement.)
Pour toute demande urgente, une « Fiche d’urgence » est identifiée et suit le prélèvement
jusqu’à la validation des résultats.
3. Informations obligatoires
Certains examens demandent d’être effectués dans des conditions particulières :
Jeun (glycémie, bilan lipidique)
Renseignements particuliers
Consentements
Ces conditions, à respecter scrupuleusement, conditionnent la qualité du résultat.
Elles sont rappelées systématiquement à tout patient au moment de l’accueil ou en salle de
prélèvement.
Les renseignements cliniques sont en général recueillis par le préleveur en salle de
prélèvement (ex : interférences avec des médicaments ou des aliments, dosage de
médicaments, interférence de certains médicaments avec la thyroïde, interférences de certains
aliments dans les traitements anticoagulants, notion de voyage, origine géographique, etc.)
Enfin certaines demandes d’examens doivent être accompagnées de feuilles de consentement
(voir exemples ci-après) co-signées par le médecin et le patient, le plus souvent destinées à
des laboratoires spécialisés (tri-test, recherche d’anomalie chromosomique, etc.). Le
laboratoire se charge d’entreprendre toute démarche à postériori (en cas de prélèvement hors
du laboratoire).
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Le JEUN :
Un jeun strict est obligatoire pour les examens suivants :
Glycémie
Bilan lipidique : Cholestérol total, HDL, Triglycérides
Des conditions non à jeun peuvent être acceptées pour ces examens lorsque :
Il s’agit d’une demande urgente,
Le prescripteur l’exige
Le patient souhaite quand même réaliser l’examen
Dans ces cas, un commentaire « Patient non à jeun » est mis sur le dossier patient (par le code
« OBSERV »). Celui-ci sera présent sur le compte-rendu de résultat.
Examens nécessitant renseignements :
Catégorie d’analyses Renseignements à obtenir
Bactériologie et virologie Traitement en cours
Heure de prélèvement ou recueil/ Heure de réception au laboratoire
Parasitologie et mycologie
Heure de prélèvement ou recueil/ Heure de réception au laboratoire
Origine géographique
Voyage ? Dans quel pays ?
Immuno-dépression
Antécédents pathologiques
Principaux signes cliniques, traitements en cours
Dosage de médicaments
Posologie et nombre de prise quotidienne
Date et heure de dernière prise
Nom du médicament
Hormonologie Date des dernières règles et/ou absence de règles et/ou traitement
Hémostase Nature des anticoagulants
Biochimie : Calcul de
Crokcroft Poids du patient
Biochimie : CKD-EPI Age, Sexe
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Biochimie : MDRD Couleur de la peau, âge et sexe
Marqueurs Est-ce pour un suivi ? Traitement en cours ?
Consentements :
Certains examens nécessitent le consentement éclairé du patient pour leur réalisation.
Ils sont réalisés dans les laboratoires de biologie spécialisée et concernent pour la plupart les
diagnostics génétiques (dépistage T21, HLA B27…) et le dosage des marqueurs spécifiques.
Pour chaque demande, le laboratoire s’assure de la présence du consentement signé par le
patient et le médecin.
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Figure 1: Feuille de consentement CERBA, dépistage T21
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Prélèvements
1. Fiche de prélèvement / Fiche de suivi médical
Une fiche de prélèvement (exigence de la norme NF EN ISO 15189) est éditée pour chaque
prélèvement au laboratoire. Elle doit contenir les informations nécessaires pour identifier le
patient et le prescripteur autorisé. Elle doit également fournir des données cliniques
pertinentes. Elle comprend les items suivants :
Nom, prénom, date de naissance (et éventuellement nom de jeune fille), adresse,
téléphone ;
Nom du ou des prescripteurs
La liste codée des examens prescrits avec séparation des examens effectués au
laboratoire des examens sous-traités
Les éléments cliniques pertinents (raisons de l’ALD, notion de traitement lors du
dosage des hormones thyroïdiennes ou de marqueurs tumoraux, notion de prise de
médicaments et/ou posologie, contexte de la demande, etc.)
Le paraphe du préleveur
Cette fiche est éditée en même temps que des étiquettes de marquage des différents
échantillons. Chaque étiquette doit être constituée à minima :
Du sexe, nom, prénom, nom de jeune fille en cas de groupe, date de naissance
Du jour et de l’heure du prélèvement
Du numéro de dossier.
Lorsque le prélèvement est effectué à l’extérieur du laboratoire, les préleveurs externes
disposent de fiche de suivi médical. Il s’agit là d’un document primordial, dont la rédaction
va conditionner l’acceptation ou le refus des échantillons par le laboratoire.
Les éléments suivants sont à renseigner:
Identification du préleveur, date et heure de prélèvement
Identification minimaliste du patient : nom, prénom, nom de jeune fille, date de
naissance, sexe, adresse, téléphone et numéro de sécurité sociale
Renseignements cliniques minimalistes
Notion de transmission des résultats et d’urgence
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2. Prélèvements sanguins
Déroulement d’un prélèvement sanguin
Etape Informations IMPORTANT
Appel et installation du patient dans la salle de
prélèvement
Vérification Identité + Prescription
Demander au patient Nom + Prénom + Date de naissance
Nom du prescripteur +
concordance examens prescrits / examens saisis
Visa du préleveur sur la fiche de prélèvement attestant les vérifications suivantes
Recueil des informations nécessaires à la réalisation de
l’examen
Etat de jeun Renseignement cliniques
Contexte de la prise de sang Date de dernières règles
…
Noter les informations nécessaires sur la fiche de prélèvement
Désinfection des mains Solution hydro alcoolique
Choix des tubes en fonction de la demande et préparation
du matériel de ponction
Se référer au paragraphe suivant
Pose du garrot
Choix de la veine et désinfection de la zone de
prélèvement Alcool 70° + coton
Réalisation du prélèvement Suivre l’ordre de prélèvement
des tubes (se référer au paragraphe suivant)
Desserrer le garrot dès le premier jet de sang
Retrait du dispositif de prélèvement, faire réaliser un point de compression et poser
le pansement
Elimination des déchets : l’aiguille et corps de pompe (si usage unique) dans les DASRI
Attention : RECAPUCHONNAGE INTERDIT
Identification et vérification des tubes
Avec les étiquettes sorties à la saisie du dossier ou au stylo
avec le Nom + Prénom + Date de naissance
Transmettre les tubes selon les recommandations de conservation, ainsi que le
dossier patient pour analyse
Heure de dépôt des échantillons pour les
prélèvements externes
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L’ensemble de ces éléments (à l’exception du 1er
) sont communs aux prélèvements à domicile
et au laboratoire.
Choix des tubes :
Sur le guide de prélèvement fourni avec le manuel et dans le catalogue d’examens
Ordre de prélèvement des tubes :
Figure 2: Ordre de prélèvement des tubes - Recommandations BD
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Protocoles de prélèvements particuliers
Prélèvements pour une hémoculture :
Noter les renseignements nécessaires sur la fiche de renseignement : l’heure du
prélèvement, température du patient au moment du prélèvement ainsi que le
traitement éventuel (antibiotique).
Prendre 1 flacon aérobie et 1 flacon anaérobie ; noter l'heure
Réaliser le prélèvement de préférence lors d'un pic fébrile, à l’aide du dispositif à
ailettes de préférence (ou à défaut à la seringue après une désinfection soignée du site
et des bouchons de chaque flacon) à l’alcool iodé ou à la Bétadine) :
Technique classique au dispositif à ailettes : Prélever la veine avec l’aiguille à
ailettes. Passer les flacons l’un après l’autre (remplir environ 10 ml par flacon).
Prélèvement à la seringue : si veine difficile : Prélever de façon aseptique 20ml de
sang. Introduire stérilement 10ml de sang à travers le centre du bouchon en
caoutchouc de chacun des flacons, en respectant l’ordre suivant : N°1 : Anaérobie, N°
2 : Aérobie.
A la fin du prélèvement, pendant le temps de contention, désinfecter à nouveau les
flacons et repositionner les capsules de protection.
Homogénéiser les flacons par 2 ou 3 retournements.
Conserver à 37°C.
Tests de tolérance au glucose :
Le patient doit être strictement à jeun pour le premier prélèvement.
Pour tous ces tests, les prélèvements peuvent se faire sur :
tube fluoré (à utiliser obligatoirement pour les prélèvements réalisés par les
préleveurs externes)
tube sec avec gel accepté si centrifugation rapide des tubes (c'est-à-dire < 2 heures
après le prélèvement)
Glycémie à jeun et post-prandiale
Réaliser le premier prélèvement
Puis réaliser un deuxième prélèvement 1h30 à 2 heures après le début d’un déjeuner
ou un petit déjeuner riche en sucre.
Hyperglycémie provoquée
Lorsque le patient est à jeun, réaliser le premier prélèvement
Le patient ingère la quantité de glucose prescrite par le médecin. En absence de
prescription donner au patient 1 g de glucose par kg de poids.
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Réaliser à nouveau un prélèvement sur tube sec ou fluoré selon la prescription et
pratiquer en parallèle une prise d’urines au même temps.
Il peut être demandé de faire en même temps un dosage d’insuline : Prélever aux
mêmes temps que précédemment un tube sec avec gel ou héparine lithium.
Dépistage diabète gestationnel (consensus gynécologique)
Réaliser le premier prélèvement
Le patient ingère 75 g de glucose.
Réaliser à nouveau un prélèvement après 60 et 120 minutes le patient étant resté au
repos dans l’intervalle de temps.
Dosage de Cortisol
Sans précision sur la prescription, un prélèvement sur tube sec (bouchon jaune) est réalisé
entre 7h et 9h.
Lorsqu’une analyse est transmise, se reporter au guide du laboratoire spécialisé pour
prendre connaissance des conditions de prélèvement, choix des tubes et conditions de
conservation des échantillons.
3. Recueils urinaires
Préconisations prélèvement pour ECBU :
Se laver les mains.
Faire une toilette intime soigneuse à l’aide de la lingette antiseptique fournie.
Recueillir la fin des urines dans le flacon
Identifier le flacon avec le nom et prénom si cela n'a pas été fait par le laboratoire et date
et heure du recueil.
Le flacon doit être acheminé au laboratoire dans les plus brefs délais
Cas particulier :
Le sac collecteur pour les enfants :
Nettoyer soigneusement la peau qui doit être propre et sèche.
Détacher et jeter la découpe centrale de la poche et retirer le revêtement qui protège
l'adhésif.
Appliquer en massant pour garantir une bonne adhérence.
Ne pas dépasser 30 min de pose du sac collecteur.
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Pour enlever la poche soulever un coin et détacher doucement. Pour assurer
l'étanchéité coller l'adhésif face contre face, renforcer éventuellement avec un
sparadrap. Éviter le transfert de l'urine dans un autre flacon dans le cas de recueil ne
pouvant être transmis immédiatement au laboratoire.
Rapporter les urines dans les plus brefs délais (< 2h)
Le sondage pour ECBU chez les patients incontinents :
Respecter les règles d'asepsie (gants et compresses stériles, champ…).
Utiliser une sonde courte à extrémité arrondie.
Recueillir l’urine en milieu de jet.
Enlever la sonde
Bien préciser sur la fiche de suivi « Sondage »
Rapporter les urines dans les plus brefs délais (< 2h)
Préconisations pour un prélèvement ADDIS :
3 heures avant le lever habituel :
-Vider la totalité de la vessie dans les toilettes
-Boire ¼ Litre d’eau
-Noter la date et l’heure sur le flacon fourni par le laboratoire
Se recoucher et rester allongé et au repos pendant 3 heures.
3 heures après (le plus exactement possible):
-Uriner dans le flacon fourni par le laboratoire pour recueillir la totalité des urines.
-Noter l’heure sur le flacon.
Identifier le flacon avec les nom et prénom si cela n'a pas été fait par le laboratoire.
Rapporter les urines dans les plus brefs délais
Préconisations pour un prélèvement d’urines sur 24h :
Au lever :
Vider la totalité de la vessie dans les toilettes
Noter sur le flacon : Nom, Prénom, date et heure de début du recueil
Pendant 24h :
Recueillir la totalité des urines émises dans le flacon jusqu’au lendemain à la même
heure du premier recueil.
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La totalité des urines de 24 heures doit être acheminée au laboratoire dans les plus brefs
délais (maximum 6 heures après la fin du recueil).
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Guide pour le recueil et le pré-traitement des urines pour ECBU
Délai de stabilité < 2h à T°C ambiante < 2h à T°C ambiante 48h à T°C ambiante
Pré-traitement
Délai de stabilité Chimie En fonction des
paramètres : Cf Manuel de prélèvement
48h à T°C ambiante 48h à T°C ambiante
Chimie En fonction des paramètres : Cf Manuel de prélèvement
48h à T°C ambiante
48h à T°C ambiante
+ Feuille de transmission avec renseignements + Heure de recueil et heure de réception
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4. Prélèvements destinés à la microbiologie et autres
Préconisations et renseignements pour un prélèvement de selles pour une parasitologie
ou une coprologie :
Préconisations :
Recueillir les selles dans un flacon stérile fourni par le laboratoire.
Identifier le flacon avec le nom et prénom et noter la date et l’heure du recueil
Renseigner la fiche de préconisation remise par le secrétariat.
Ramener dans l’heure
Renseignements à obtenir :
Raison de l'examen ?
Voyage récent ?
Traitement antibiotique en cours ?
Préconisations et renseignements pour un prélèvement pour un SCOTCH TEST :
Préconisation :
A effectuer au lever avant la toilette et les premières selles :
Décoller le scotch de son support.
Appliquer le coté adhésif sur les plis de la marge anale et le maintenir en appuyant
quelques secondes.
Retirer le scotch et l’étaler sur la lame support.
Renouveler l’opération avec le second scotch.
Replacer les 2 lames dans l’étui.
Identifier l'étui avec les nom et prénom si cela n'a pas été fait par le laboratoire.
L'étui doit être acheminé au laboratoire dans les plus brefs délais.
Renseignements :
Date et heure du recueil
Signes cliniques : démangeaisons anales, insomnies ?
Préconisations et renseignements pour un prélèvement vulvo-vaginal
Préconisations:
Éviter tout rapport sexuel 24 heures avant le test.
Aucune toilette intime, même superficielle et tout traitement la veille du test.
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Il est conseillé d'éviter le prélèvement pendant la période menstruelle car la flore est
modifiée (sauf avis contraire du prescripteur).
Le prélèvement doit être réalisé avant ou à distance de tout traitement antibiotique
(supérieur à 15 jours pour les chlamydiae, supérieur à 5 jours pour les germes banals).
Éventuellement poser une protection.
Prélèvement :
En préambule au prélèvement, le biologiste préleveur doit s’assurer des
conditions physiologiques du sujet.
Après mise en place d’un spéculum à usage unique, prélever/
1 écouvillon pour le prélèvement vaginal
+ 1 écouvillon si demande de recherche de Mycoplasme (sur milieu mousse ou sec
mais pas de gel)
+ 1 écouvillon si demande de recherche de Chlamydiae (sur milieu spécifique)
Le prélèvement, s’il a été pratiqué à l’extérieur, doit être acheminé au laboratoire dans les plus
brefs délais (2 heures au maximum)
S’il a été pratiqué sur milieu de transport, il peut être conservé à température ambiante au
maximum 24 heures.
Renseignement à fournir :
Femme enceinte ?
Traitement antibiotique ?
Stérilet ?
Préconisations et renseignements pour un prélèvement urétral
Le patient ne doit pas uriner dans les deux heures précédant le prélèvement.
Prélever avec 1 écouvillon au niveau du méat
+ 1 écouvillon si demande de recherche de Mycoplasme (sur milieu mousse ou sec
mais pas de gel)
+ 1 écouvillon si demande de recherche de Chlamydiae (sur milieu spécifique)
Pour la recherche de chlamydiae et de mycoplasme : introduire un écouvillon fin
dans l’urètre de 2 à 3 cm en effectuant 3 ou 4 rotations pour recueillir le maximum de
cellules.
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Autres prélèvements bactériologiques
Nature du
prélèvement Mode de prélèvement Matériels
Recherche de
dermatophytes :
Ongles, cheveux,
squames
Prélever de préférence à la périphérie des
lésions des squames à l’aide d’un
vaccinostyle ou d’une curette
En cas de teigne, épiler les cheveux
susceptibles d’être atteints
Pour les ongles, couper avec la pince à
ongle toute la partie de l’ongle atteinte,
gratter à la limite de la zone saine avec un
vaccinostyle ou d’une curette
En cas de lésion suintante, écouvillonner
le pus et gratter le plancher de la lésion
Pots stériles
Vaccinostyle ou
curette
Plaie, escarre,
larmes, pus profond
etc
Prendre les précautions d’asepsie pour
éviter de contaminer le prélèvement par
les bactéries se trouvant normalement sur
la peau.
Mettre des gants à usage unique
Passer les écouvillons sur toute leur
surface au niveau de la zone prélevée
Noter la prise éventuelle d’antibiotiques.
Si abcès fermé :
prélèvement à la
seringue
Si abcès ouvert :
Minimum : 2
écouvillons avec
milieu de transport
ORL :
Gorge :
amygdales
Oreille : conduit
auditif externe
Nez / Pharynx
Yeux
Prélever avant antibiothérapie :
au niveau des zones inflammatoires ou
nécrotiques
à la périphérie des fausses membranes, sur
les amygdales
Éviter de toucher la langue, la luette et la
paroi postérieure du pharynx
A distance de tout ATB
1 à 2 écouvillons
stériles avec milieu
de
1 écouvillon par
œil
Crachat, tubage et/ou
aspiration
bronchique
Faire le prélèvement avant le lever pour le
crachat et dans l’heure qui suit le lever pour le
tubage
Flacon stérile,
acheminé le plus
rapidement au
laboratoire
Recherche Dermodix Arracher plusieurs cils avec les racines
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Regarder immédiatement au microscope
Préconisations et renseignements pour un test à l’urée marqué HELI-KIT®
Préconisations:
Avoir arrêté toute antibiothérapie depuis au moins 4 semaines.
Avoir arrêté tout traitement à base d’inhibiteur de la pompe à protons (IPP) depuis au
moins 2 semaines. Médicaments concernés (liste non exhaustive) : Omeprazole ®,
Mopral ®, Inexium ®, Zoltum ® ou Esomeprazole ®.
Avoir arrêté de boire, manger ou fumer depuis au moins 6 heures.
Acheter en pharmacie un test HÉLI-KIT 75 mg ®
Prendre rendez-vous au laboratoire : le test nécessite votre présence pendant au moins
45 minutes.
Le prélèvement réalisé, le dosage est envoyé à un laboratoire spécialisé.
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Identification des prélèvements
L’absence ou l’erreur d’identification du prélèvement ou de l’échantillon constitue un
critère de non-conformité :
Celle-ci sera enregistrée comme telle sur le logiciel qualité des laboratoires
Celle-ci pourra entraîner la non-exécution des actes et apparaîtra en
commentaire sur le compte rendu de résultats.
L’identification des prélèvements passe par :
L’identification correcte des tubes
La présence des fiches de suivi (pour un prélèvement au laboratoire) ou des fiches de
prélèvements (pour les prélèvements externes) complétées avec les informations
nécessaires et obligatoires.
Ces éléments sont utilisés pour différencier les homonymes, lier le patient à ses antériorités et
attribuer les valeurs de références adaptées (homme # femme # enfant).
Le technicien réceptionnant l’échantillon au laboratoire vérifie la conformité des échantillons
prélevés par rapport à la prescription ainsi que la présence de l’ensemble des informations
nécessaires et annote la conformité du prélèvement sur la fiche de prélèvement.
A la suite de cette vérification de conformité, le technicien du laboratoire étiquette les tubes
en fonction de la demande enregistrée.
L’ensemble des données recueillies sur le patient, le prélèvement et le préleveur est reporté
dans le dossier informatique du patient.
Attention certains patients peuvent présenter les mêmes noms, prénoms et dates de
naissance, d’où la nécessité de préciser l’adresse et le lieu de naissance, pour la
validation des cartes de groupes sanguins.
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Transport
1. Conditions de transport
Le transport des échantillons doit respecter les règles fixées par la réglementation ADR
(Accord européen relatif au transport international des marchandises dangereuses par la
route) et notamment l’instruction p650.
Ainsi notre transport d’échantillon inter site respecte les règles suivantes :
Triple emballage de l’échantillon biologique
Identification de l’emballage secondaire ou tertiaire par la mention « MATIÈRE
BIOLOGIQUE CATÉGORIE B » doit être apposée à côté du logo UN 3373.
2. Délais d’acheminement
Les délais d’acheminement fixés par le laboratoire pour chaque examen sont notés dans le
« Catalogue des examens ».
3. Température d’acheminement
En aucun cas les échantillons du jour ne doivent être conservés au réfrigérateur (sauf
indication particulière) ou en plein soleil. La température à respecter est la température
ambiante définie comme comprise entre 15°C et 25°C.
Le laboratoire peut éventuellement donner des bacs réfrigérants aux préleveurs externes en
été.
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Hygiène et sécurité
1. Gestion des déchets
Déchets potentiellement contaminés
Les aiguilles à prélèvement ne doivent en aucun cas être recapuchonnées.
Il s’agit des déchets d’activité de soins à risques infectieux (ou DASRI) y compris les restes
d’échantillons analysés, des matériels piquants ou coupants (aiguilles, lames, pipettes pasteur,
seringues …), et les déchets solides des automates.
Ces déchets sont collectés dans les containers en plastique ou carton jaune disponibles en
salle(s) technique(s), les aiguilles étant au préalable collectées dans les containers spécifiques
présents dans chaque salle de prélèvement et dans les mallettes des préleveurs.
Remarque : lors des prélèvements à domicile opérés par le laboratoire, aucun déchet
potentiellement contaminé n’est laissé chez le patient. L’élimination des déchets est sous la
responsabilité du préleveur externe.
Une fois remplis, les containers sont fermés de façon définitive et stockés au laboratoire. Ils
sont ramassés une fois par semaine par une société agréée avec laquelle a été établi un contrat
conventionnel.
Déchets assimilables à des ordures ménagères ne contenant pas d’informations
confidentielles
Il s’agit des papiers ne comportant pas d’informations confidentielles. Leur élimination est
opérée par l’agent d’entretien en vue de leur élimination par les services de la ville.
Déchets assimilables à des ordures ménagères contenant des informations
confidentielles
Il s’agit principalement des fiches de suivi médical, fiches de prélèvement, … . Un broyeur
est mis à la disposition du personnel pour détruire tous les documents à caractère confidentiel.
Ils sont ensuite éliminés par le circuit décrit précédemment.
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2. Incidents de prélèvement
Incidents Causes Conduite à tenir
Hématomes
-Garrot trop serré
-Prélèvement difficile (veines invisibles, trop profondes, veines très fines, mobiles, ponctions répétées, début de sclérose).
-Comportement anormal du patient, gestes inconsidérés.
-Rassurer le patient
-Appliquer un tampon alcoolisé puis un pansement.
Malaise sans perte de
connaissance
-Angoisse
-Jeûne
-Garder son calme et retirer l’aiguille
-Faire comprimer l’endroit de la ponction avec un tampon par le patient
-L’allonger, desserrer col, cravate, ceinture, ne pas couvrir
-Rassurer le patient. Faire respirer à fond, donner éventuellement de l’eau, du sucre
-Surveiller ses constantes vitales
Perte de connaissance du
patient
-Anxiété
-Jeûne
-Causes médicales
-Garder son calme et retirer l’aiguille
-Placer le patient dans une position confortable
-Surveiller les constantes vitales
-Faire intervenir un biologiste ou un personnel titulaire de l’AFGSU. Contacter les secours si le malaise persiste.
Piqure du nerf médian
-Angle de piqûre trop grand
-Piqûre trop profonde.
-Arrêt du prélèvement,
-Appeler le médecin responsable.
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3. Conduite à tenir en cas d’Accident d’Exposition au Sang (AES)
Le préleveur est soumis à un risque de contamination par les virus des hépatites B, C ou Delta
ou par le VIH au contact de liquide biologique (sang, urines, expectoration…).
Cette contamination est possible selon deux modalités :
Soit par une effraction cutanée (piqûre d’aiguilles, blessure…)
Soit par projection sur une muqueuse (bouche, œil), ou sur une peau lésée
Conduite à tenir:
Immédiatement
En cas de piqûre, blessure ou de contact sur une peau lésée :
Ne pas faire saigner
Nettoyer immédiatement la plaie à l’eau courante et au savon
Rincer abondamment
Désinfecter pendant 5 minutes en immergeant la blessure au Dakin OU à l’eau de
javel à 2,6 % fraîchement diluée au 1/5ème
OU à l’alcool 70° OU à la Bétadine
dermique
En cas de projection sur les muqueuses (les yeux, la bouche) :
Rincer abondamment pendant 5 minutes avec de l’eau ou du sérum physiologique
Dans l’heure qui suit :
Prévenir son responsable
Consulter un service d’urgences médical qui décidera du suivi et des éventuels
traitements à réaliser
Réaliser chaque fois que possible et avec l’accord du sujet source, une prise de sang
prescrite par un médecin, afin d’en connaître le statut sérologique. En cas
d’impossibilité ou de refus, le sujet source sera considéré comme potentiellement
infecté.
Dans les 24h :
Faire une déclaration d’accident de travail. La piqûre doit faire systématiquement
l’objet d’une déclaration d’accident de service ou de travail selon les modalités légales
afin de préserver les droits de l’agent. Elle permet la prise en charge non seulement de
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la lésion produite immédiatement (piqûre, blessure…) mais aussi les complications
éventuelles et les suites ultérieures (infections…).
Analyser l’accident
Etudier les circonstances de l’accident afin d’éviter qu’il ne se reproduise.
Quelles précautions observer afin d’éviter tout accident ?
Considérer tous les tubes comme potentiellement infectés.
Ni manger, ni boire, ni fumer au laboratoire.
Ne jamais pipeter à la bouche.
Lorsqu’un liquide se répand sur une surface, la désinfecter immédiatement avec de
l’eau de javel à 10 pour cent.
Désinfecter tout objet ou tout appareil contaminé pendant une minute avant de le
nettoyer.
Se laver les mains à chaque fois que l’on quitte le lieu de la manipulation.
Conseiller le port de gants.
Rendu des résultats
Les résultats sont rendus selon 3 modalités :
au patient directement (plusieurs possibilités : exemplaire papier à récupérer au
laboratoire, exemplaire à recevoir par courrier, ou consultation) ;
aux prescripteurs (par courrier ou télétransmission)
au laboratoire demandeur de l’examen (par télétransmission sécurisée) ;
Les résultats sont rendus selon les exigences normatives et règlementaires après la validation
biologique et sont sous la responsabilité du biologiste.
Les délais de rendu des résultats sont indiqués au patient au moment du prélèvement en même temps
qu’une carte avec son n° de dossier lui est remise. Le n° de dossier ou les Nom/Prénom/date de
naissance seront demandés pour tout retrait de résultat.
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Catalogue des examens
Liste des examens réalisés au laboratoire
Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
Hématologie
NF EDTA Sang total
24h à T°C Ambiante
48h réfrigéré (tirer une lame)
(9)
T°c ambiante
Ou Réfrigéré
Tirer une lame si
échantillon transmis le
lendemain ou pour les
échantillons du samedi
J-0 à +1
PLAQ EDTA Sang total
24h à T°C Ambiante
48h réfrigéré (tirer une lame)
(9)
T°c ambiante
Ou Réfrigéré
Tirer une lame si
échantillon transmis le
lendemain ou pour les
échantillons du samedi
J-0 à +1
VS EDTA Sang total
6h à T°C ambiante
24h entre 2 et 8°C (6)
T°c ambiante
Ou Réfrigéré
J-0 à +1
Réticulocytes EDTA Sang total 24h à T°C Ambiante
T°c ambiante Ou
J-0 à +1
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Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
72h entre 2 et 8°C (9)
Réfrigéré
Hémostase
D-Dimères Citrate de
sodium
Plasma
citraté 24h
(3, 4, 5)
8h T°C ambiante
Sinon congeler
T° Ambiante Tube rempli >80%
Pose du garrot <1min J-0 à +1
FIB Citrate de
sodium
Plasma
citraté 24h
(3, 4, 5)
8h T°C ambiante
Sinon congeler
T° Ambiante Tube rempli >80%
Pose du garrot <1min J-0 à +1
TCA Citrate de
sodium Plasma citraté
8h
(3, 4, 5)
4h T°C ambiante
Sinon congeler
T° Ambiante
Tube rempli >80%
Pose du garrot <1min
Cas d’un suivi d’un traitement à l’héparine :
prélèvement à réaliser au laboratoire
J-0 à +1
TP Citrate de
sodium Plasma citraté
24h (3, 4, 5)
8h T°C ambiante
Sinon congeler
T° Ambiante
Ne pas réfrigérer
Tube rempli >80%
Pose du garrot <1min J-0 à +1
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Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
AT3 Citrate de
sodium Plasma citraté
24h (3, 4, 5)
8h T°C ambiante
Sinon congeler
T° Ambiante J-0 à +1
Biochimie
Acide urique Tube sec
gel Sérum 24h
(2,7)
3 jours entre 15 et 25°C
7 jours entre 2 et 8°c
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
Acide urique urinaire
Flacon à urine
urine 4 jours entre 15 et 25°C 7 jours entre 2
et 8°c T° Ambiante J+1
ASAT Tube sec
gel Sérum 24h
(2,7)
4 jours entre 15 et 25°C
7 jours entre 2 et 8°c
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante Exempt d'hémolyse J+1
ALAT Tube sec
gel Sérum 24h
(2,7)
3 jours entre 15 et 25°C
7 jours entre 2 et 8°c
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
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Seule la version électronique fait foi
Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
Albumine Tube sec
gel Sérum 24h
(2,7)
7 jours entre 15 et 25°C
30 jours entre 2 et 8°c
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
Albumine urinaire
Flacon à urine
urine 24h à température ambiante
2 jours entre 2 et 8°C 7 jours entre 2
et 8°c 7 jours entre 2
et 8°c
Amylase Tube sec
gel Sérum 24h
(2,7) 7 jours entre 2
et 25°c 7 jours entre 2
et 8°c T° Ambiante J+1
Amylase urinaire Flacon à
urine urine
2 jours entre 15 et 25°C
10 jours entre 2 et 8 °C
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante Recueil sans conservateur J+1
APOA1 Tube sec
gel Sérum
24h
(7)
24h entre 15 et 25°C
8 jours entre 2 et 8°c
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
APOB Tube sec
gel Sérum
24h
(7)
24h entre 15 et 25°C
8 jours entre 2 et 8°c
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
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Seule la version électronique fait foi
Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
Bilirubine Totale Tube sec
gel Sérum 8h
24h entre 15 et 25°C
7 jours entre 2 et 8°c
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante
Protéger les échantillons de la lumière directe
Exempt d'hémolyse
J+1
Bilirubine Directe
Tube sec gel
Sérum 8h
3 jours entre 15 et 25°C si conservée à l’abri de la
lumière
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante
Protéger les échantillons de la lumière directe.
Exempt d'hémolyse et de lipémie
J+1
Calcium Tube sec
gel Sérum
24h
(2,7)
7 jours entre 15 et 25°C
3 semaines entre 2 et 8°c
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
Calcium urinaire Flacon à
urine Urine
Stable 2 jours entre 15 et 25°C et 4 jours entre 2 et 8°C
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
Cholestérol HDL Tube sec
gel Sérum
24h
(2,7)
2 jours entre 15 et 25°C
7 jours entre 2 et 8°c
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante A jeun J+1
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Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
Cholestérol Total Tube sec
gel Sérum
24h
(2,7)
24h entre 15 et 25°C
(7)
7 jours entre 2 et 8°c
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante A jeun J+1
Chlore Tube sec
gel Sérum
24h
(7) 7 jours entre 2
et 25°c 7 jours entre 2
et 8°c T° Ambiante J+1
Chlore urinaire Flacon à
urine urine 7jours entre 2 et 25°C T° Ambiante J+1
CO2 (réserve alcaline)
Tube sec gel
Sérum 24h
(7)
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante Exempt d'hémolyse
Pas de ré-analyse J+1
Créatine Kinase Tube sec
gel Sérum 24h
(2,7)
24h entre 15 et 25°C
(7)
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante Exempt d'hémolyse J+1
Créatinine Tube sec
gel Sérum
24h
(2,7) 7 jours entre 2
et 25°c 7 jours entre 2
et 8°c T° Ambiante J+1
Créatinine urinaire
Flacon à urine
Urine 7 jours entre 2 et 8°C 7 jours entre 2
et 8°c T° Ambiante J+1
CRP Tube sec
gel Sérum
24h
(2,7) 11 jours entre
15 et 25°C 7 jours entre 2
et 8°c T° Ambiante J+1
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Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
2 mois entre 2 et 8°c
Electrophorèses des protéines
Tube sec gel
Sérum 8h
7jours entre 2 et 8°C
1 mois congelé
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
Fer Tube sec
gel Sérum 24h
(7)
7 jours entre 15 et 25°C 3 semaines
entre 2 et 8°c
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante Exempt d'hémolyse J+1
Facteur Rhumatoïde
Tube sec gel
Sérum 8h
1 Jour entre 20 et 25°C
8 jours entre 2 et 8°c
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
GGT Tube sec
gel Sérum
24h
(7) 7 jours entre 2
et 25°c 7 jours entre 2
et 8°c T° Ambiante J+1
Glucose
Tube Fluorure
Tube sec gel
Plasma
Sérum
24h sur tube fluorure
2h sur tube sec
(7)
48h entre 15 et 25°c
7 jours entre 2 et 8°C
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante A jeun J+1
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Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
Glucose urinaire Flacon à
urine Urine 2h entre 2 et 25°c T° Ambiante A jeun J+1
HbA1C EDTA Sang total 7 jours entre 2 et 8°C
24 heures à T°C ambiante T° Ambiante Volume minimal : 1.5ml J+1
IGA Tube sec
gel Sérum
24h
(7) 8 mois entre 2
et 25°C 7 jours entre 2
et 8°c T° Ambiante
Eviter les échantillons à forte hémolyse
J+1
IGG Tube sec
gel Sérum
24h
(7)
4 mois entre 15 et 25°C
8 mois entre 2 et 8°C
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante Eviter les échantillons à
forte hémolyse J+1
IGM Tube sec
gel Sérum
24h
(7)
2 mois entre 15 et 2°C
4 mois entre 2 et 8°C
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante Eviter les échantillons à
forte hémolyse J+1
LDH Tube sec
gel Sérum 5h
7 jours entre 15 et 25°C
4 jours entre 2
T° Ambiante Eviter les échantillons à
forte hémolyse J+1
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Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
et 8°C
Lipase Tube sec
gel Sérum
24h
(7)
7 jours entre 15 et 25°C
3 semaines entre 2 et 8°c
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante Eviter les échantillons à
forte hémolyse ou ictère J+1
Magnésium Tube sec
gel Sérum
24h
(7) 7 jours entre
15 et 25°C 7 jours entre 2
et 8°c T° Ambiante
Eviter les échantillons à forte hémolyse
J+1
Magnésium urinaire
Flacon à urine
Urine 3 jours entre 2 et 8°C 7 jours entre 2
et 8°c T° Ambiante J+1
Micro albumine Flacon à
urine Urine
24h entre 15 et 25°C
1 mois entre 2 et 8°C
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
Phosphatase alcaline
Tube sec gel
Sérum 24h
(7) 7 jours entre 2
et 25°c 7 jours entre 2
et 8°c T° Ambiante
Eviter les échantillons à forte hémolyse
J+1
Phosphore Tube sec
gel Sérum
24h
(7)
24h entre 15 et 25°C
4 jours entre 2 et 8°c
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante Eviter les échantillons à
forte hémolyse J+1
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Seule la version électronique fait foi
Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
Phosphore urinaire
Flacon à urine
Urine Stable 24h entre 2 et 8°c 7 jours entre 2
et 8°c T° Ambiante J+1
Potassium Tube sec
gel Sérum 5h
6 semaines entre 2 et
25°C si séparé des cellules
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante Exempt d'hémolyse J+1
Potassium urinaire
Flacon à urine
Urine 45 jours entre 15 et 25°C
2 mois entre 2 et 8°c 7 jours entre 2
et 8°c T° Ambiante J+1
Protéines totales Tube sec
gel Sérum
24h
(7)
6 jours entre 15 et 25°C
4 semaines entre 2 et 8°c
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
Protéines urinaires
Flacon à urine
Urine 12 à 24h à T° Ambiante
48h entre 2 et 8°C
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
Sodium Tube sec
gel Sérum
24h
(7) 14 jours entre
2 et 25°C 7 jours entre 2
et 8°c T° Ambiante Exempt d'hémoyse J+1
Sodium urinaire Flacon à
urine Urine 45 jours entre 2 et 25°c
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
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Seule la version électronique fait foi
Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
Transferrine Tube sec
gel Sérum
24h
(7)
4 mois entre 15 et 25°C
8 mois entre 2 et 8°C
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
Triglycérides Tube sec
gel Sérum
24h
(7)
24h entre 15 et 25°C
7 jours entre 2 et 8°c
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante A jeun J+1
Urée Tube sec
gel Sérum
24h
(7) 7 jours entre 2
et 25°C 7 jours entre 2
et 8°c T° Ambiante
Eviter les échantillons à forte hémolyse
J+1
Urée urinaire Flacon à
urine Urine
Stable 2 jours à T°c ambiante et 7jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
Immunologie / Sérologie Infectieuse / Auto-Immunité / Allergologie Attention : les tubes doivent être complètement remplis
AFP
Tube sec gel
Sérum 8h
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
Sérothèque congelée 1 an
T° Ambiante J+1
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Seule la version électronique fait foi
Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
Anticorps HBc Tube sec
gel Sérum 8h
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°c
Sérothèque congelée 1 an
T° Ambiante J+1
Anticorps HBS Tube sec
gel Sérum 8h
8h à T°C ambiante
4 jours entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
Sérothèque congelée 1 an
T° Ambiante
Si analyse >8h après le prélèvement, re
centrifuger pendant 15 min à 3000g
J+1
Antigène HBS Tube sec
gel Sérum 8h
8h à T°C ambiante
4 jours entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler Au-delà, congeler
Sérothèque congelée 1 an
T° Ambiante
Si analyse >8h après le prélèvement, re
centrifuger pendant 15 min à 3000g
J+1
Anticorps HCV Tube sec
gel Sérum 8h
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°c
Au-delà, congeler
Sérothèque congelée 1 an
T° Ambiante J+1
Anti- TPO Tube sec Sérum 8h 8h à T°C
ambiante 7 jours entre 2 T° Ambiante J+1
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Seule la version électronique fait foi
Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
gel 48h entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
et 8°c
Anti-Tg Tube sec
gel Sérum 8h
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
BNP Tube EDTA Plasma 5h
3h à température
ambiante 8h entre 2 et
8°C >8h : à
congeler (pendant
60jours max)
T° Ambiante
ou
Réfrigéré
CA 125 Tube sec
gel Sérum
24h
(2)
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
Sérothèque congelée 1 an
T° Ambiante J+1
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Seule la version électronique fait foi
Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
CA 19-9 Tube sec
gel Sérum
24h
(2)
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
Sérothèque congelée 1 an
T° Ambiante J+1
CA 15-3 II Tube sec
gel Sérum 8h
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
Sérothèque congelée 1 an
T° Ambiante J+1
CEA Tube sec
gel Sérum 8h
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
Sérothèque congelée 1 an
T° Ambiante J+1
Cortisol Tube sec
gel Sérum
24h
(7)
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante Noter l'heure du
prélèvement J+1
CMV IgG Tube sec Sérum 8h 5 jours entre 2
et 8°C Sérothèque T° Ambiante J+1
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Seule la version électronique fait foi
Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
gel congelée 1 an
CMV IgM Tube sec
gel Sérum 8h
5 jours entre 2 et 8°C
Sérothèque congelée 1 an
T° Ambiante J+1
EBV Tube sec
gel Sérum 8h
5 jours entre 2 et 8°C
Sérothèque congelée 1 an
T° Ambiante
Ferritine Tube sec
gel Sérum 8h
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante Eviter les échantillons à
forte hémolyse J+1
Folate III Tube sec
gel Sérum 8h
8h Réfrigéré >8h : à
congeler
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante Eviter les échantillons à
forte hémolyse J+1
FSH Tube sec
gel Sérum 8h
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
HCG Tube sec
gel Sérum
24h
(7)
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et
Sérothèque congelée 1 an
T° Ambiante J+1
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Seule la version électronique fait foi
Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
8°C Au-delà, congeler
HEP A-IgM/ IgG Tube sec
gel Sérum 8h
7 jours entre 2 et 8°C
Sérothèque congelée 1 an
T° Ambiante J+1
HIV Tube sec
gel Sérum 8h
24h à T°C ambiante
8 jours entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
Sérothèque congelée 1 an
T° Ambiante J+1
IgE Tube sec
gel Sérum 24h
5 jours entre 2 et 8°C 2 mois
congelé
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
LH Tube sec
gel Sérum
24h
(7)
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
Myoglobine Tube sec
gel Sérum
24h
(7)
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
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Seule la version électronique fait foi
Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
β2 microglobuline
Tube sec gel
Sérum 24h
5 jours entre 2 et 8°C
1 an congelé
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante
Œstrogène Tube sec
gel Sérum
24h
8h à T°C ambiante
14 jours entre 2 et 8°C Au-delà, congeler
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
Pro-BNP Tube sec
gel Sérum 8h
4 jours entre 2 et 8°C 6 mois
congelé
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
Progestérone Tube sec
gel Sérum 24h
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
Prolactine Tube sec
gel Sérum 8h
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante
J+1
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Seule la version électronique fait foi
Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
PSA Total Tube sec
gel Sérum
24h
3h si combiné au PSA Libre
(6)
24h entre 2 et 8°C
>24h : à congeler
Sérothèque congelée 1 an
T° Ambiante Si combiné au PSA libre, centrifuger et réfrigérer
dans les 3h J+1
PSA Libre Tube sec
gel Sérum
3h
(6)
24h entre 2 et 8°C
>24h : à congeler
Sérothèque congelée 1 an
T° Ambiante centrifuger et réfrigérer
dans les 3h J+1
PTH Tube sec
gel Sérum 5h
4h à T°C ambiante
8h entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
Rubéole IgG Tube sec
gel Sérum 8h
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
Sérothèque congelée 1 an
T° Ambiante J+1
SDHA Tube sec
gel Sérum 8h
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°C
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
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Seule la version électronique fait foi
Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
Au-delà, congeler
T3 Libre Tube sec
gel Sérum
24h
(7)
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
T4 Libre Tube sec
gel Sérum
24h
(7)
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
Testostérone Tube sec
gel Sérum
24h
(7)
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
Thyroglobuline Tube sec
gel Sérum
24h
(2)
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
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Seule la version électronique fait foi
Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
Toxoplasme IgM Tube sec
gel Sérum 8h
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
Sérothèque congelée 1 an
T° Ambiante
Ou Réfrigéré J+1
Toxoplasme IgG Tube sec
gel Sérum 8h
8h à T°C ambiante
4 jours entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
Sérothèque congelée 1 an
T° Ambiante J+1
Troponine I Tube EDTA Plasma 8h 7 jours entre 2
et 8°c T° Ambiante J+1
TSH Tube sec
gel Sérum
24h
(7)
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
Vitamine D (25-OH)
Tube sec gel
Sérum 24h
(7)
72h T°C ambiante
7 jours entre 2 et 8°C
Au-delà,
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
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Seule la version électronique fait foi
Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
congeler
Vitamine B12 Tube sec
gel Sérum
24h
(7)
8h à T°C ambiante
48h entre 2 et 8°C
Au-delà, congeler
7 jours entre 2 et 8°c
T° Ambiante J+1
Immuno-hématologie
Sous-traitée à l’EFS
Groupes
sanguins /
Phénotype
2 EDTA
Plasma +
culot
globulaire
24h
T° Ambiante
Volume minimum: 1,5ml
Tubes EDTA à prélever sur
2 prélèvements différents
J+1 si réception
avant midi
RAI
1 EDTA
(si
demandé
avec
groupe
sanguin,
utiliser les
tubes pris
pour les
Plasma 24h
T° Ambiante Volume minimum: 1,5ml
J+1 si réception
avant midi
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Seule la version électronique fait foi
Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
groupes)
Techniques manuelles
ASO/ASDO Tube sec
gel Sérum 24h
24h entre 2 et
8°C
4 semaines
congeler
2 jours à T°C
ambiante
T°c ambiante ou
Réfrigéré J-0
Helicobacter
pylori
Tube sec
gel Sérum 24h
3 jours entre 2
et 8°C
2 jours à T°C
ambiante T°c ambiante J-0
Procalcitonine Tube sec
gel Sérum 24h
Si dosage
>24h après le
prélèvement
congeler
2 jours à T°C
ambiante T°c ambiante J-0
Syphilis Tube sec
gel Sérum 24h
7 jours entre
2 et 8°C
Sinon,
congeler
2 jours à T°C
ambiante T°c ambiante
Absence d’hémolyse ou
d’échantillon lipémique
Lundi /
Mercredi
/
Vendredi
WALER-ROSE Tube sec Sérum 24h 2 jours à T°C Absence d’hémolyse ou
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Seule la version électronique fait foi
Examen Tube à
prélever Matrice utilisée
Stabilité avant centrifugation
Stabilité après centrifugation
(6)
Conservation de
l’échantillon Post
analytique
Condition et T°c transport
Préconisation particulière Délai de
rendu
gel ambiante d’échantillon lipémique
Examen Type de récipient
Matrice utilisée Stabilité avant
analyse
Conservation de l’échantillon
Post analytique
Condition et T°C de transport
Préconisation particulière
Délai de rendu
Bactériologie / Parasitologie / Mycologie / Spermiologie
Coproculture culture
Flacon à selles Selles
Dans les 4h à température
ambiante 12h entre 2 et
8°C Les cultures
sont conservées
3 jours dans le
cas d’un
développement
tardif des
germes
T° Ambiante
Demander au patient de rapporter
l’échantillon dans les plus brefs délais
(conservation réfrigérée AU
LABORATOIRE)
J+3
ECBU
Flacon stérile boraté
Flacon stérile sans borate
Urines
48h sur flacon boraté
1h sur flacon non boraté
T° Ambiante Ne pas réfrigérer J+1 à 2
Expectoration Flacon stérile crachats Dans les 2h T° Ambiante Crachats du matin
non salivaire J+3
Prélèvements vaginaux
Ecouvillons sur milieu de transport
Sécrétions vaginales
Dans les 24h T° Ambiante J+3
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Pour les examens ne figurant pas dans la liste, contacter le laboratoire afin de connaître les modalités de prélèvement et d’acheminement.
Identification Dermathophytes
Flacon stérile ou écouvillon sur
milieu de transport
Peau/ Phanère Dans les 4h T° Ambiante J+20
Parasitologie Flacon à selles selles
Dans les plus brefs délais
(<3h) pour l’état frais
24h entre 2 et 8°C pour la
concentration
T° Ambiante
Demander au patient de rapporter
l’échantillon dans les plus brefs délais
(conservation réfrigérée AU
LABORATOIRE)
J+1
Sang dans les selles
Flacon à selles Selles
Dans les 4h à T°C ambiante 72h entre 2 et
8°c
T° Ambiante
Demander au patient de rapporter
l’échantillon dans les plus brefs délais
(conservation réfrigérée AU
LABORATOIRE)
J+1
Autre prélèvement
Ecouvillon sur milieu de transport
Dans les 24h T° Ambiante J+3
Examens envoyés à Cerba- Voir le « Catalogue des analyses » ou téléphoner au laboratoire
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Références bibliographiques :
1. HbA1c Reagent - Instruction for use, AFSSAPS 2006
2. Etude de stabilité analytes, OMS 2002
3. Collection, Transport, and Processing of Blood Specimens for Testing Plasma-Based Coagulation Assays
and Molecular Hemostasis Assays; Approved Guideline - CLSI – 2008
4. Stability of coagulation assays performed in plasma from citrated whole blood transported at ambient
temperature – Zurcher, Sulzer, Barizzi, Lämmle, Alberio – 2008
5. Stabilité pré-analytique des paramètres de la coagulation : revue des données disponibles – Annales de
biologie Clinic - Mauge, Alhenc-Gelas – 2014
6. Fiches techniques fournisseurs : STAGO, BECKMAN
7. Stability study of 81 analytes in human whole blood, in serum and in plasma Christiane Oddoze , Elise
Lombard, Henri Portugal - Clinical Biochemistry 45 (2012) 464–469
8. Note technique: Stabilité des paramètres sur tubes BD SSTTM
II - Juillet 2009
9. Spécifications de performance et caractéristiques du DxH 800 – 2013 BECKMAN COULTER
10. WHO laboratory manuel for the Examination an processing of human semen, 5th
edition – 2010 WHO