I
UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE SAN LUIS POTOSÍ
COORDINACIÓN ACADÉMICA REGIÓN ALTIPLANO OESTE
Caracterización física y química de las semillas de calabaza de castilla y calabaza hedionda como base para procesos agroindustriales.
T E S I S
Que para obtener el grado de:
INGENIERA AGROINDUSTRIAL
Presenta:
Selena del Rocío Martínez Betancourt
Comité tutelar
Director de tesis
Dra. Laura Araceli López Martínez
Co-director de tesis
Dr. Erich Dietmar Rössel Kipping
Salinas de Hidalgo, San Luis Potosí. Diciembre de 2019.
II
Dedicada a mis padres María de
Jesús Betancourt Marín y Juan Pablo
Martínez Rivas, a mi compañero de vida
Omar, Ana, Pablo, Alejandra y Marlen y a
mis sobrinas Angy y Paula por ser lo más
importante que me dio la vida y el soporte
fundamental que me ha permitido llegar
hasta donde ahora me encuentro.
DEDICATORIA
III
AGRADECIMIENTOS
Son muchas las personas que han contribuido y han hecho posible el desarrollo del
presente trabajo. Como no sé si podré recordar a cada uno, les doy gracias a todos
de corazón.
Quisiera agradecer especialmente:
A la Universidad Autónoma de San Luis Potosí Campus Salinas, por haberme
permitido formarme en ella, y personas que la conforman por su apoyo y amabilidad.
Al Instituto de Enseñanza e investigación en Ciencias Agrícolas (Colegio de
Postgraduados Campus San Luis Potosí), por haberme permitido realizar parte del
trabajo en sus instituciones.
A mis directores de Tesis, Dra. Laura Araceli López Martínez y Dr. Erich Dietmar
Rössel Kipping, quienes confiaron en mí y me dieron la oportunidad de poder
transitar este camino. Gracias por guiarme, acompañarme, por darme fuerzas en
los momentos más difíciles y por brindarme todos sus conocimientos y experiencia.
Gracias también porque en ellos no sólo encontré a excelentes profesionales, sino
principalmente a dos personas con valores intachables y de una calidad humana
excepcional. Muchas gracias por todo su cariño. A los Doctores Juan Francisco
Morales Flores y Alejandro Amante Orozco excelentes personas y reconocidos
profesionales del Colegio de Postgraduados Campus San Luis Potosí. Al Dr. Víctor
Manuel Ruiz Vera y a la Mtra. Clara Lourdes Tovar Robles, por haber confiado en
mí y haberme guiado en el trabajo realizado durante mi estancia de investigación
en el Colegio de Postgraduados Campus San Luis Potosí. A la Dra. Concepción
López Padilla (Universidad Autónoma de San Luis Potosí Campus Salinas) y Dr.
Alejandro Berrospe Ochoa (Universidad Autónoma de San Luis Potosí Campus
Salinas), por su valioso aporte técnico a este trabajo de Tesis. A la Lic. Magdalena
por su disposición y eficiencia en su apoyo, el cual es un pilar básico de las tareas
de investigación. A mi amiga, Flor Moreno Ovalle, por tantas horas compartidas, por
su ayuda intelectual, su lucha constante y todo su cariño. A mi amiga y compañera
Alejandra Rodríguez Gallegos, gracias por ayudarme a encontrar la salida en los
laberintos presentados en el camino. A mis amigas y compañeras de la Facultad de
IV
Ingeniería Agroindustrial de la CARAO, Elsa Verónica Izaguirre Martínez y Mónica
de Jesús Álvarez Castillo por el apoyo tanto intelectual como emocional, durante
este trabajo. A mis compañeras de grupo Martha Citlali Mata López y Daniela Garza
por sumarse al “tren” del desafío de la calabaza.
Gracias a todos por entenderme y ayudarme en todos estos años a poder destinar
más tiempo y esfuerzo en desarrollar mi tesis.
A los Doctores Santiago de Jesús Méndez Gallegos (Colegio de Postgraduados
Campus San Luis Potosí), Ismael Hernández Ríos (Colegio de Postgraduados
Campus San Luis Potosí), por proveerme las semillas y el aceite de calabaza de
castilla y calabaza hedionda.
Ahora quisiera agradecer a aquéllos que, de forma personal, estuvieron a mi lado
con su cariño, su aliento, su apoyo, sus fuerzas y su estímulo: a Dios por bendecirme
con la vida, por guiarme a lo largo de mi vida, ser el apoyo y fortaleza en aquellos
momentos difíciles y de debilidad. A mi sobrina Angy por toda su ternura. A mis
abuelas Pilar y Valentina, quienes me han brindado su gran sabiduría y amor. A
mis tías en general por apoyarme cuando más las necesito, por extender su mano
en momentos difíciles y por el amor brindado cada día.
Finalmente, a las personas más importantes de mi vida, a quienes tengo que
agradecerles todo: A mis papás, María de Jesús y Juan Pablo, por el amor que día
a día me han brindado, por todo su apoyo y comprensión, su constante aliento y por
haberme transmitido los valores que me han formado como persona. A mi hermano
Miguel quien fue como un padre para mí, a mi hermana Ana por haber sido mi
“primera maestra” desde muy pequeña, por su ayuda incondicional siempre,
Alejandra, Marlen y Pablo que han llenado mi vida de luz. A Omar, mi compañero
de vida, gracias por su amor, su comprensión, su paciencia, por compartir los
buenos y malos momentos que nos ha tocado vivir y principalmente por estar a mi
lado siempre y ayudarme a poder realizarme tanto en lo profesional como en lo
personal. Espero que la vida nos regale lo que tanto deseamos…
Gracias a todos de corazón.
V
LISTA DE CONTENIDO
DEDICATORIA ....................................................................................................................... II
AGRADECIMIENTOS ........................................................................................................... III
LISTA DE CONTENIDO ........................................................................................................V
LISTA DE TABLAS ............................................................................................................ VIII
LISTA DE FIGURAS ..............................................................................................................X
LISTA DE ECUACIONES .....................................................................................................XI
RESUMEN ............................................................................................................................XII
ABSTRACT ........................................................................................................................ XIV
1.0. CAPÍTULO I. INTRODUCCIÓN .................................................................................. 1
2.0. CAPÍTULO II. ASPECTOS GENERALES DE LAS CALABAZAS ........................... 4
2.1. Historia........................................................................................................................ 4
2.2. Cucurbitáceas ............................................................................................................ 5
2.2.1. Característica vegetal ............................................................................................... 5
2.2.2. Producción de calabaza ........................................................................................... 6
2.2.3. Variedades de Cucurbitáceas .................................................................................. 8
2.3. El género Cucúrbita .................................................................................................. 8
2.3.1. Calabaza de castilla (C. moschata). ........................................................................ 9
2.3.1.1. Origen y antecedentes históricos .................................................................... 9
2.3.1.2. Clasificación taxonómica .................................................................................. 9
2.3.1.3. Características morfológicas............................................................................ 9
2.3.1.4. Distribución geográfica ................................................................................... 10
2.3.1.5. Información nutricional de calabaza de castilla ........................................... 11
2.3.1.6. Información nutricional de semillas de calabaza de castilla ...................... 12
2.4. El género Apodanthera ........................................................................................... 13
2.4.1. Calabaza hedionda (A. undulata)........................................................................... 13
2.4.1.1. Origen y antecedentes históricos .................................................................. 13
2.4.1.2. Clasificación taxonómica ................................................................................ 14
2.4.1.3. Características morfológicas.......................................................................... 14
2.4.1.4. Distribución geográfica ................................................................................... 15
2.4.1.5. Información nutricional de calabaza hedionda ............................................ 16
2.4.1.6. Información nutricional de la semilla de calabaza hedionda ..................... 16
3.0. CAPÍTULO III PROCESAMIENTO DE LAS SEMILLAS DE CALABAZA ............. 18
3.1. Características físicas en el marco del procesamiento ...................................... 18
3.1.1. Almacenamiento ...................................................................................................... 19
VI
3.1.2. Proceso de limpieza ................................................................................................ 19
3.1.3. Proceso de secado .................................................................................................. 19
3.1.4. Proceso de cribado ................................................................................................. 20
3.1.5. Proceso de molienda .............................................................................................. 20
3.1.6. Proceso de mezclado .............................................................................................. 21
3.2. Características químicas en el marco del procesamiento ................................. 21
4.0. CAPÍTULO IV. JUSTIFICACIÓN .............................................................................. 23
5.0. CAPÍTULO V. OBJETIVOS E HIPÓTESIS .............................................................. 24
5.1. Objetivo general ...................................................................................................... 24
5.2. Objetivos específicos.............................................................................................. 24
5.3. Hipótesis ................................................................................................................... 24
6.0. CAPÍTULO VI. MATERIALES Y MÉTODOS ........................................................... 25
6.1. Materiales ................................................................................................................. 25
6.1.1. Material vegetal ........................................................................................................ 25
6.1.2. Materiales y equipos ............................................................................................... 25
6.2. Metodología para las determinaciones físicas de las semillas de calabaza .... 27
6.2.1. Plan de investigación de características físicas ................................................. 27
6.2.1.1. Dimensiones ..................................................................................................... 27
6.2.1.2. Diámetro geométrico ....................................................................................... 28
6.2.1.3. Área superficial específica .............................................................................. 28
6.2.1.4. Relación de aspecto ........................................................................................ 29
6.2.1.5. Determinación del peso................................................................................... 29
6.2.1.6. Propiedades friccionales ................................................................................ 29
6.2.1.7. Cribado de semillas y harina obtenida de semillas de calabaza ............... 31
6.2.1.8. Densidad aparente ........................................................................................... 32
6.2.1.9. Conductividad eléctrica................................................................................... 32
6.2.1.10. Molienda de semillas de calabaza .................................................................. 34
6.3. Metodología para las determinaciones químicas de las semillas de calabaza34
6.3.1. Plan de investigación de las características químicas ....................................... 34
6.3.1.1. Determinación del contenido de humedad ................................................... 35
6.3.1.2. Cuantificación del contenido de proteína cruda .......................................... 36
6.3.1.3. Cuantificación de proteína soluble ................................................................ 37
6.3.1.4. Cuantificación de Carbohidratos ................................................................... 39
6.3.1.5. Extracción de aceite en la semilla .................................................................. 41
6.3.1.6. Digestión por microondas .............................................................................. 42
VII
6.3.1.7. Determinación de fósforo ............................................................................... 43
6.3.1.8. Determinación de calcio, magnesio, zinc y hierro ....................................... 45
6.4. Elaboración de un producto con ingrediente de semillas de calabaza. ........... 47
6.4.1. Metodología para la elaboración de un aderezo de semillas de calabaza ....... 48
6.4.2. Evaluación sensorial ............................................................................................... 53
7.0. CAPÍTULO VII. RESULTADOS Y DISCUSIÓN ....................................................... 54
7.1. Características físicas ............................................................................................ 54
7.1.1. Dimensiones ............................................................................................................ 54
7.1.2. Diámetro geométrico, área superficial específica y relación de aspecto ........ 58
7.1.3. Peso .......................................................................................................................... 60
7.1.4. Fricción interna ........................................................................................................ 60
7.1.5. Fricción externa ....................................................................................................... 63
7.1.6. Cribado ..................................................................................................................... 65
7.1.7. Densidad ................................................................................................................... 66
7.1.8. Conductividad eléctrica .......................................................................................... 67
7.1.9. Molienda ................................................................................................................... 69
7.2. Características químicas ........................................................................................ 70
7.2.1. Humedad .................................................................................................................. 70
7.2.2. Proteína cruda.......................................................................................................... 71
7.2.3. Determinación de proteína soluble ....................................................................... 72
7.2.4. Determinación de carbohidratos ........................................................................... 74
7.2.5. Extracción de aceite ................................................................................................ 75
7.2.6. Determinación de fósforo ....................................................................................... 76
7.2.7. Determinación de zinc ............................................................................................ 77
7.2.8. Determinación de hierro ......................................................................................... 77
7.2.9. Determinación de magnesio .................................................................................. 78
7.2.10. Determinación de calcio .................................................................................. 79
7.3. Elaboración de un producto con ingrediente de semillas de calabaza
(aderezo). ............................................................................................................................. 79
8.0. CAPÍTULO VIII. CONCLUSIONES .......................................................................... 83
9.0. CAPÍTULO IX. RECOMENDACIONES .................................................................... 86
10.0. CAPÍTULO X. BIBLIOGRAFÍA ................................................................................ 88
11.0. CAPÍTULO XI. ANEXOS .......................................................................................... 96
VIII
LISTA DE TABLAS
Tabla 1. Clasificación taxonómica de la calabaza de castilla criolla (C. moschata)...............9
Tabla 2. Caracteres morfológicos de la planta, fruto y semilla de calabaza de castilla (C.
moschata) .....................................................................................................................10
Tabla 3. Características químicas de la pulpa de calabaza de castilla (C. moschata) ........11
Tabla 4. Contenido mineral de la pulpa de calabaza de castilla de invierno (C. moschata)
.......................................................................................................................................12
Tabla 5. Características químicas de la semilla de calabaza de castilla (C. moschata) .....12
Tabla 6. Clasificación taxonómica de la calabaza hedionda (A. undulata) ...........................14
Tabla 7. Caracteres morfológicos de la planta, fruto y semilla de calabaza hedionda ........15
Tabla 8. Características químicas de la semilla de calabaza hedionda con cáscara (A.
undulata) .......................................................................................................................17
Tabla 9. Equipos, materiales y reactivos....................................................................................25
Tabla 10. Plan de ensayos de los caracteres físicos de semillas y harinas de semillas de
calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara ............27
Tabla 11. Tipos de conductores eléctricos ................................................................................33
Tabla 12. Plan de ensayos de los caracteres químicos de las semillas y harinas de
semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin
cáscara ..........................................................................................................................35
Tabla 13b. Dimensiones de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de
castilla con y sin cáscara ............................................................................................54
Tabla 14b. Forma de las semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla
con y sin cáscara .........................................................................................................58
Tabla 15b. Peso de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con
y sin cáscara.................................................................................................................60
Tabla 16b. Fricción interna de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de
castilla con y sin cáscara ............................................................................................61
Tabla 17b. Fricción interna de harinas de semillas de calabaza hedionda con cáscara,
calabaza de castilla con y sin cáscara ......................................................................61
Tabla 18. Valores de fricción interna en semillas......................................................................62
Tabla 19b. Fricción externa de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de
castilla con y sin cáscara ............................................................................................63
Tabla 20b. Fricción externa de harinas de semillas de calabaza hedionda con cáscara,
calabaza de castilla con y sin cáscara ......................................................................64
Tabla 21b. Cribado de harinas de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza
de castilla con y sin cáscara.......................................................................................65
Tabla 22b. Densidad aparente de semillas y harinas de semillas de calabaza hedionda
con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara ..............................................67
Tabla 23b. Conductividad eléctrica en harinas de semillas de calabaza hedionda con
cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara ......................................................68
Tabla 24b. Análisis proximal de las harinas de semillas de calabaza de castilla y calabaza
hedionda .......................................................................................................................70
Tabla 25b. Contenido de proteína soluble en harinas de semillas de calabaza hedionda
con cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara................................73
IX
Tabla 26b. Contenido de minerales en harinas de semillas de calabaza hedionda con
cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara .......................................76
Tabla 27. Rendimiento de los aderezos de semillas remojadas y tostadas de semillas de
calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara ............82
Tabla 13a. Dimensiones de las semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de
castilla con y sin cáscara. .................................................................................... 96
Tabla 14a. Forma de las semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla
con y sin cáscara. ................................................................................................ 99
Tabla 15a. Peso de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con
y sin cáscara. ................................................................................................... 102
Tabla 16a. Fricción interna de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de
castilla con y sin cáscara. ................................................................................ 103
Tabla 17a. Fricción interna de harinas de semillas de calabaza hedionda con cáscara,
calabaza de castilla con y sin cáscara. ........................................................... 104
Tabla 19a. Fricción externa de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de
castilla con y sin cáscara. ................................................................................ 106
Tabla 20a. Fricción externa de harinas de semillas de calabaza hedionda con cáscara,
calabaza de castilla con y sin cáscara ............................................................ 107
Tabla 21a. Cribado de harinas de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza
de castilla con y sin cáscara ............................................................................ 112
Tabla 22a. Densidad aparente de semillas y harinas de semillas de calabaza hedionda
con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara ...................................... 112
Tabla 23a. Conductividad eléctrica en harinas de semillas de calabaza hedionda con
cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara ............................................. 113
Tabla 24a1. Contenido de humedad en harinas de semillas de calabaza hedionda con
cáscara y calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara ............................. 113
Tabla 24a2. Contenido de proteína cruda en harinas de semillas de calabaza hedionda
con cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara ........................ 114
Tabla 24a3. Contenido de carbohidratos en harinas de semillas de calabaza hedionda con
cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara ............................... 114
Tabla 24a4. Contenido de aceite en harinas de semillas de calabaza hedionda con
cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara ............................... 114
Tabla 25a. Contenido de proteína soluble en harinas de semillas de calabaza hedionda
con cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara ........................ 114
Tabla 26a. Contenido de fósforo en harinas de semillas de calabaza hedionda con
cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara ............................... 115
Tabla 27a. Concentración de zinc en harinas de semillas de calabaza hedionda con
cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara ............................... 115
Tabla 28a. Concentración de hierro en harinas de semillas de calabaza hedionda con
cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara ............................... 115
Tabla 29a. Concentración de magnesio en harinas de semillas de calabaza hedionda con
cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara ............................... 116
Tabla 30a. Concentración de calcio en harinas de semillas de calabaza hedionda con
cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara ............................... 116
X
LISTA DE FIGURAS
Figura 1. Producción de calabazas en México (SIAP, 2017). Log base 10 ............................7
Figura 2. Producción de semillas de calabaza en municipios del Estado de San Luis
Potosí (SIAP, 2017). ......................................................................................................7
Figura 3. Distribución geográfica del género Apodanthera (Villaseñor & Espinoza-García,
1998; Lira & Rodríguez-Arévalo, 2008). ...................................................................16
Figura 4. Localización de los centros de investigación. ...........................................................26
Figura 5. Dimensiones características (a) vista frontal, (b) vista del perfil y (c) geometría
tridimensional de la semilla de calabaza de castilla y calabaza hedionda. .........28
Figura 6. Representación de la fricción interna en las semillas y harinas de semillas de
calabaza hedionda con cáscara y calabaza de castilla con y sin cáscara. .........30
Figura 7. Representación de la fricción externa en las semillas y harinas de semillas de
calabaza hedionda con cáscara y calabaza de castilla con y sin cáscara. .........31
Figura 8. Representación del modelo de Drude (Drude, 1900). .............................................33
Figura 9. Metodología del proceso para la elaboración de los aderezos de semillas
tostadas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin
cáscara. .........................................................................................................................49
Figura 10. Metodología del proceso para la elaboración de los aderezos de semillas
remojadas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin
cáscara. .........................................................................................................................50
Figura 11. Pesado de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla
con y sin cáscara. ........................................................................................................51
Figura 12. Remojo y tostado de las semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza
de castilla con y sin cáscara. .....................................................................................52
Figura 13. Molienda de semillas e ingredientes. .......................................................................52
Figura 14. Envasado y decorado. ...............................................................................................53
Figura 15. Producto terminado. ...................................................................................................53
Figura 16. Molienda de semillas de calabaza hedionda con cáscara y calabaza de castilla
con y sin cáscara. ........................................................................................................69
Figura 17. Muestras de aderezos de semillas tostadas y remojadas de calabaza hedionda
con cáscara, calabaza de castillas con y sin cáscara. ...........................................81
Figura 18. Prueba de ordenamiento (muestras de aderezos). ...............................................81
Figura 19. Formato de evaluación de aderezos. .....................................................................117
XI
LISTA DE ECUACIONES
Ecuación 1. Dg = (L*W*T) (1/3) _________________________(1) .........................................28
Ecuación 2. S = π (Dg) 2 _____________________________(2) .........................................28
Ecuación 3. R = W/L x 100 ___________________________(3) ..........................................29
Ecuación 4. Fricción Interna = µi = tan β = h/r_____________(4) ..........................................30
Ecuación 5. Fricción externa = µe = 𝑡𝑎𝑛 𝛽 ________________________(5) .........................................31
Ecuación 6. Pb = m/V _______________________________(6) ..........................................32
Ecuación 7. S = f (t, h, l) _____________________________(7) ..........................................32
Ecuación 8. 1S = 1*Ω (-1) = 1m (-2) * [kg] (-1) *s 3 *A 2 ________(8) ..........................................32
Ecuación 9. mS = 1/kΩ ______________________________(9)..........................................34
Ecuación 10. mS/m = mS*20 ________________________(10) .........................................34
Ecuación 11. H° = (Ph-Ps) /Ps x100 ___________________(11) .........................................36
Ecuación 12. N (%) = V * N * 0.014 * 100 / m ____________(12) .........................................37
Ecuación 13. A (%) = 25000*T V*P____________________(13) ..........................................40
Ecuación 14. %A = (VaAP-VaP) /Hrn x 100 _____________(14) ..........................................42
XII
RESUMEN
Las semillas de calabaza de castilla y calabaza hedionda generalmente son
consideradas como residuos orgánicos debido al desconocimiento de sus
propiedades físicas y químicas, de su potencial nutricional, medicinal y fitosanitario,
así como de su relevancia en procesos de postcosecha y producción agroindustrial.
El consumo de productos funcionales está aumentando a nivel mundial, lo que
resalta la necesidad de realizar investigaciones de especies no tradicionales con
potencial agroindustrial. Los objetivos de esta investigación fueron analizar las
características físicas y químicas de las semillas secas de calabaza de castilla
(Cucurbita moschata) y calabaza hedionda (Apodanthera undulata). Las variables
físicas evaluadas fueron: forma, tamaño, peso de mil semillas, fricción interna,
fricción externa, textura, densidad aparente y conductividad eléctrica; así como las
variables químicas: contenido de humedad, proteína cruda, proteína soluble,
carbohidratos, fósforo, aceite, calcio, hierro, magnesio y zinc. Además, como un
ejemplo de agregación de valor a las semillas de calabaza, fue elaborado un
aderezo. Las propiedades físicas fueron diferentes entre las dos especies
estudiadas. La presencia de cáscara en las semillas incrementó la variación en las
variables físicas. En las variables contenido de carbohidratos, proteína soluble,
proteína cruda y aceite, no existieron diferencias significativas entre las semillas de
calabaza de castilla con cáscara y a las que se removió la cáscara. Las semillas de
calabaza hedionda con cáscara si presentaron diferencias significativas. El
contenido de minerales fue significativamente diferente en todas las muestras a
excepción del contenido de magnesio y calcio. Se concluye que las semillas de
calabaza hedionda y calabaza de castilla son una fuente proteica y lipídica
importante para el desarrollo de productos agroindustriales y sus propiedades
físicas y químicas son adecuadas para la elaboración de un producto alimentario
con atractivas características sensoriales y nutrimentales. El conocimiento de las
propiedades físicas y químicas de las semillas de calabaza permite advertir su
potencial de aprovechamiento como materia prima para la obtención de alimentos
y productos no alimentarios. Además, la información generada puede ser utilizada
XIII
para el diseño de equipos de procesamiento, control de calidad y procesos
industriales, entre otros.
Palabras clave: semillas de calabaza, características físicas y valores químicos.
XIV
ABSTRACT
The seeds of castilla squash and hedionda squash are generally considered organic
waste due to the lack of knowledge of their physical and chemical properties, their
nutritional, medicinal and phytosanitary potential, as well as their relevance in post-
harvest processes and agroindustrial production. The consumption of functional
products is increasing worldwide, hence the need to research non-traditional species
with agroindustrial potential. The objectives of this research were to analyze the
physical and chemical characteristics of dried seeds of castilla squash (Cucurbita
moschata) and hedionda squash (Apodanthera undulata). It was evaluated the
physical variables: shape, size, the weight of a thousand seeds, internal friction,
external friction, texture, apparent density, and electrical conductivity. The chemical
variables were: moisture, crude protein, soluble protein, carbohydrates, phosphorus,
oil, calcium, iron, magnesium, and zinc content. Also, a DIP was prepared as an
example of value-added to the squash seeds. The results show that the physical
properties were different between the two species studied in this research. The
presence of seed shells increased the variation between the physical variables. In
the variable’s carbohydrates, soluble protein, crude protein and oil contents there
were non-significant differences between the pumpkin seeds of castilla with and
without the shell. The shelled seeds of hedionda pumpkin showed significant
differences. Also, the mineral content was significantly different in all samples except
magnesium and calcium content. We conclude that the seeds of hedionda squash
and castilla squash are a source of protein and lipid with importance for the
development of agroindustrial products. Their physical and chemical properties are
suitable for the elaboration of a food product with attractive sensory and nutritional
characteristics. The knowledge of the physical and chemical properties of the squash
seeds allows knowing the potential of their use as raw material for obtaining food
and non-food products. Besides, the information generated can be used for the
design of processing equipment, quality control, and industrial processes, among
others.
Keywords: pumpkin seeds, physical characteristics and chemical values.
1
CAPÍTULO I. INTRODUCCIÓN
1.0.
México posee una gran diversidad de frutas, verduras y hortalizas que tienen
semillas las cuales son desechadas causando contaminación orgánica. A pesar de
ser consideradas desechos, muchas de las semillas tienen una alta calidad
nutricional pero no son aprovechadas por el desconocimiento de las propiedades
nutricionales o la falta de condiciones adecuadas para su conservación y
procesamiento. En México existe una gran cantidad de variedades de calabazas,
las cuales son un ejemplo de frutos que tienen abundante cantidad de semillas. Sin
embargo, el uso de semillas de calabaza solo es de forma tradicional, ya sea frita o
en algunos guisos, mas no es utilizada como materia prima en la transformación de
ingredientes alimenticios de valor agregado (forraje, pellets, etc.) o en productos
como colorantes, combustibles, medicamentos etc. Utilizar las semillas de calabaza
como materia prima renovable, es probablemente un gran paso hacia los esfuerzos
globales de sostenibilidad en la 6a generación de innovación y la 4a generación de
automatización industrial (Agro 4.0).
Este nuevo paradigma de Industria 4.0 fomenta la interconexión de todos los
elementos (Sishi & Telukdarie, 2017) y facilitaría la automatización de los procesos
permitiendo optimizar la producción de semillas de calabazas, con procesos
innovadores y nuevas tecnologías que obligan a ampliar la gama de insumos
agroindustriales, con una óptima contribución al proceso de crecimiento económico,
que incluye actividades relacionadas a elaborar, transformar y comercializar
productos de tipo agropecuario.
Para que la producción y transformación de las semillas de calabaza de castilla
(Cucurbita moschata) y calabaza hedionda (Apodanthera undulata), sean
ejecutados de manera eficiente es importante que estos procesos sean llevados a
cabo por la acción mecánica y robotizada, incluyendo todos los procesos desde la
siembra, riego, cosecha, postcosecha, tratamientos, lavado/desinfección, entre
otros, sin incluir labores manuales.
2
Los mecanismos automatizados conocidos como los elementos loT (tecnologías
con técnica de control) y los modelos de decisión basados en inteligencia artificial
permitirían maximizar la germinación y optimizar la producción de calabaza de
castilla (C. moschata) y calabaza hedionda (A. undulata). También es posible
modelar algorítmicamente el desarrollo, estimar la producción de semillas,
automatizar procesos de riego, calcular momentos adecuados de recolección y usar
sistemas de prevención climática (por ejemplo, prevención de heladas que afectan
a las cucurbitáceas), todo esto con diferentes tecnologías: Machine learning, Deep
learning y BIG DATA, para la ayuda en la toma de decisiones (Parlamento Europeo,
2017). A pesar de todas sus cualidades, la agroindustria también puede tener
efectos colaterales perjudiciales para el ambiente; si no hay un control adecuado
puede provocar contaminación ambiental o riesgos ecológicos.
La agroindustria puede dividirse en alimentaria y no alimentaria. La agroindustria
alimentaria transforma las materias primas orgánicas en alimentos con distintos
formatos y propiedades, mientras que en la no alimentaria las materias primas son
destinadas a diferentes procesos industriales que no están vinculados a la
alimentación, como lo son biomateriales, colorantes, entre otros (Planella-Villagra,
Mira, Gutierrez , & Ochoa, 1983). La alta productividad de la agroindustria ofrece
amplias oportunidades para acrecentar el valor añadido utilizando residuos
agrícolas actualmente no utilizados, como semillas y cáscaras de cucurbitáceas,
mejorando los ingresos económicos de los productores, así como la nutrición de la
población.
Por ello, es importante la utilización de subproductos (en este caso semillas) o
residuos de la principal actividad industrial, para poder utilizarla como materia prima
renovable en distintos sectores (sector primario, secundario y terciario) que
proporcionen alimentos y otros bienes necesarios. Es conveniente realizar una
preparación previa de la materia agrícola mediante un sistema de producción
basado frecuentemente en el cambio de actividad (mecanizada) que puedan
realizar los mismos jornaleros o pequeños productores e incluso llegar a
industrializar los procesos.
3
Una buena alternativa para conseguir estos objetivos de agroindustria basada en la
generación automática de alimentos y biomateriales (materia prima renovable), es
la utilización de robots que aporten flexibilidad, seguridad, efectividad y elevada
manufactura avanzada en la elaboración de nuevos productos (Manyika, Chui, &
Miremadi, 2017). Esto puede coadyuvar a una estrategia general de nutrición con
seguridad alimentaria a nivel nacional; es decir, garantizar un suministro alimenticio
seguro y nutricionalmente adecuado para todas las personas. También hace posible
un alto grado de estabilidad en el consumo de productos (p.e. elaborados a base de
las semillas de calabaza) durante todo el año y con acceso suficiente para satisfacer
las necesidades de los sectores productivos.
La investigación en alimentos hoy en día es muy importante, sobre todo en el
desarrollo de nuevos productos, y los que surgen del aprovechamiento de “residuos”
de materias primas orgánicas renovables. Esto es por lo general en industrias
procesadoras de vegetales y frutas, para evitar pérdidas, reduciendo el uso de los
recursos naturales sobre todo agua y energía. El proceso de elaboración de
productos requiere del conocimiento de las propiedades físicas, químicas y
biológicas de las semillas y sus derivados. El análisis de las propiedades físicas
permite dimensionar de modo más efectivo los requerimientos de los equipos de
almacenamiento, transporte y procesamiento de las semillas.
Así como el análisis de las propiedades químicas permite conocer el valor nutritivo,
funcional y completo de las materias primas (p.e. semillas de calabaza), en la
industria 4.0 conocer las propiedades químicas es uno de los criterios más
importantes, debido a que el sector salud no había sido transformado y ahora está
ayudando a tomar mejores decisiones en industrias reduciendo costos, optimizando
recursos y curando enfermedades.
Por lo anterior el objetivo de esta investigación es analizar las características físicas
y químicas de las semillas de calabaza de castilla y calabaza hedionda con el fin de
optimizar procesos agroindustriales como limpiar, almacenar, transportar, dosificar,
entre otros. Y se espera que sus características físicas y químicas mejoren el
procesamiento de las semillas para múltiples aplicaciones en usos agroindustriales.
4
2.0. CAPÍTULO II. ASPECTOS GENERALES DE LAS CALABAZAS
2.1. Historia
El nombre calabaza, es aplicado tanto a plantas con frutos carnosos que son
consumidos (C. moschata, C. máxima, C. pepo, etc.), como a todas las demás
especies llamadas calabazas que pertenecen de igual forma a la extensa familia de
las Cucurbitáceas (González, 2016), por ejemplo la calabaza hedionda (A.
undulata).
Desde épocas muy tempranas del inicio de la civilización, las calabazas han
brindado alimento al ser humano. Las calabazas fueron las primeras plantas
cultivadas en México. Registros arqueológicos reportan a la calabaza como la
primera planta domesticada por el hombre en el Nuevo Mundo (Flannery, 1986).
Desde entonces, su importancia cultural, social y económica no ha disminuido; han
sido consideradas como un fruto con alto valor nutritivo por su alto contenido de
pigmentos liposolubles y precursores de la vitamina A.
Las especies cultivadas de la familia de las cucurbitáceas conocidas en países de
habla hispana como “calabacitas”, representan un alto porcentaje de la producción
agrícola nacional. El valor económico de la producción de frutos inmaduros como
calabacita para hortaliza, en el año 2017, fue de $ 3´243,969.56. Mientras que, en
el mismo año, la producción de frutos maduros como calabaza de castilla, calabaza
kabosha, calabaza hedionda, entre otras, fue de $ 1´227,296.02 (SIAP, 2017).
México ha logrado el registro en el Catálogo Nacional de Variedades Vegetales
(CNVV); de una variedad de semillas que no presentan testa, lo que facilita su uso
en la industria culinaria (Schaffeld, Bruzzone, Lllanes, & Curotto, 1989; Villanueva,
2007). Las semillas tienen gran diversidad de tamaños, son cubiertas por una
cáscara con bordes gruesos, generalmente esta cáscara es de color entre blanco,
grisáceo y beige, color característico de la luteína; sin embargo, los colores que
tienen las cáscaras varían ampliamente (Sánchez, Villanueva, sahagún, & Chaning,
2000). Estas semillas son planas, ovaladas y son usadas para fines comestibles y
medicinales (Applequist, 2006). También las semillas son consideradas oleaginosas
5
abundantes en proteína, aminoácidos esenciales, grasa polinsaturada, fitoesteroles,
minerales y vitaminas (Martínez Y. M., 2012).
2.2. Cucurbitáceas
2.2.1. Característica vegetal
Diversos trabajos destacan que las cucurbitáceas son sensibles a las heladas y
como consecuencia su cultivo es preferente de regiones templadas calientes. Esta
familia tiene especies anuales y perennes, aunque son cultivadas como anuales.
Son plantas herbáceas de hábito de crecimiento normalmente postrado, logrando
ser trepadoras. Las hojas son alternadas, sin estípulas, simples y lobuladas. La
mayoría de las especies de las cucurbitáceas son monoicas, rastreras y son
clasificadas en plantas silvestres y domesticadas (Jeffrey, 1980).
Las calabazas domesticadas particularmente son desarrolladas en sistemas
agrícolas tradicionales en Mesoamérica conocidos como “milpa”, que es un sistema
de policultivo, donde conviven cultivos de varias especies, tanto domesticadas como
en proceso de domesticación. Estos sistemas producen, hasta cierto punto, la
diversidad de los ecosistemas naturales de plantas herbáceas y evitan grandes
cargas sobre el suelo agrícola, lo que ha permitido considerar a la milpa, como un
sitio de conservación y formación de diversidad genética muy importante (Bye &
Qualset, 2002).
El papel de cada uno de los cultivos principales que componen una milpa ha sido
descrito en diferentes trabajos (Zizumbo, 1986; Aguilar, IIIsley, & Marielle, 2003). El
maíz forma la estructura en la que crecen los frijoles, a su vez los frijoles brindan
nitrógeno al suelo; las plantas de calabaza benefician al maíz y al frijol en la lucha
contra las malezas y la erosión del suelo. Las hojas anchas, gruesas y horizontales
de las calabazas son extendidas sobre el suelo, ayudan a preservar su humedad, a
reducir el establecimiento y crecimiento de las malezas. Al mismo tiempo las hojas
de calabaza producen compuestos alelopáticos (las Cucurbitacinas) que la lluvia
extrae por lixiviación y estas sustancias pueden inhibir el crecimiento de malezas y
alejar a los insectos, al actuar como un insecticida natural (Altieri, Funes-Monzote,
& Petersen, 2011).
6
Las diferentes especies de cucurbitáceas son muy variables, sobre todo por su
forma, tamaño y color de sus frutos; sus semillas son planas, ovaladas, de color
verde claro y están cubiertas por una cáscara (Applequist, 2006). En la actualidad
la disponibilidad de este cultivo ha iniciado su explotación industrial con fines
comerciales, desde la elaboración de un jabón para limpiar artículos de piel, hasta
la extracción de algunas enzimas proteolíticas para el tratamiento de aguas
residuales. También elaboran estimulantes para la próstata y vejiga, mermeladas,
cremas, pan, conservas, mantequillas vegetales (de las semillas) y la producción de
aceite comestible gourmet (de las semillas). Además de poder incorporar nuevas
tecnologías con mecanismos automatizados, para el desarrollo de nuevos
productos, las calabazas son cultivadas en grandes cantidades, por lo que la
siguiente sección hace mención de la alta producción.
2.2.2. Producción de calabaza
La calabaza principalmente es utilizada como alimento, tanto en Latinoamérica
como en muchas otras regiones del mundo donde ha sido introducida. En México la
producción de calabaza en el año 2017 fue de 160,222 toneladas (Figura 1).
Los datos de producción y postcosecha en diferentes sectores confirman la alta
producción agrícola de este cultivo y, por lo tanto, la obtención de semilla
(subproducto) es muy elevada y de gran interés por sus importantes características
nutrimentales, lo cual justifica el estudio de sus características físicas, químicas y
tecnológicas.
7
Figura 1. Producción de calabazas en México (SIAP, 2017). Log base 10
La alta producción de semillas de calabaza en el estado de San Luis Potosí (Figura
2) reafirma la importancia de aprovechar las semillas de calabaza de castilla (C.
moschata) y calabaza hedionda (A. undulata) como materia prima en la elaboración
de nuevos productos, lo que permitiría crear nuevas fuentes de empleo para
pequeños productores, incrementando así sus ingresos. Por otra parte, permite
aprovechar un recurso que generalmente no es usado y muchas veces es
desechado.
Figura 2. Producción de semillas de calabaza en municipios del Estado de San Luis
Potosí (SIAP, 2017).
8
Para un uso más diverso y amplio de la calabaza, es necesario un análisis detallado
de las variedades existentes, sobre todo de las variedades silvestres, pues el primer
paso para el entendimiento de esta materia prima es el conocimiento de las
variedades de calabaza que existen en la naturaleza.
2.2.3. Variedades de Cucurbitáceas
La familia Cucurbitaceae incluye alrededor de 118 géneros y 825 especies
en todo el mundo; uno de los géneros más importantes de esta familia es el
Cucúrbita. En México existen 143 especies de esta familia, las cuales forman
una parte importante de la dieta básica tanto en las grandes ciudades como en
muchas regiones habitadas por población indígena; por esta diversidad y otros
elementos México ha sido considerado como uno de los posibles centros
de origen más importantes de especies domesticadas (Jeffrey, 1990).
En México son cultivas cuatro de las cinco especies domesticadas: la calabaza de
castilla (C. moschata), calabacita (C. pepo), calabaza pipiana (C. argyrosperma) y
chilacayote (C. ficifolia). La quinta especie, que es la calabaza kabosha (C. máxima),
no es cultivada en México; sin embargo, también es importante en el mundo (Lira
S. R., 1996). La domesticación de la calabaza tuvo lugar a lo largo del tiempo, por
la selección de la forma, sabor y tamaño del fruto, o su masa y de la semilla. La fruta
dulce fue un paso clave en la domesticación de la calabaza. A continuación, es
presentada información de dos diferentes especies.
2.3. El género Cucúrbita
El género Cucúrbita (calabazas) pertenece a la tribu Cucurbiteae, subfamilia
Cucurbitoideae, es de origen americano y comprende 20 especies distribuidas
desde Estados Unidos de América hasta Argentina, principalmente en regiones
tropicales o subtropicales de ambos hemisferios. Su historia taxonómica formal fue
iniciada en 1753 y durante muchos años ha sido considerado como un género
formado por 20 a 27 especies (Bailey, 1943; Bailey, 1948; Esquinas & Gulick, 1983;
Cutler & Whitaker, 1961); dentro de este género, una especie domesticada que
sobresale por su importancia económica es C. moschata.
9
2.3.1. Calabaza de castilla (C. moschata).
2.3.1.1. Origen y antecedentes históricos
C. moschata es una especie originaria de América Latina, los restos más antiguos
han sido encontrados tanto en Mesoamérica (principalmente México) como en
América del Sur; ambas regiones son importantes centros de diversificación de la
especie. Esta especie ha sido cultivada desde hace más de 5000-6000 años en
toda América Latina, en zonas de baja altitud en climas cálidos y con alta humedad,
aunque no necesariamente tiene que cultivarse dentro de dichos límites, ya que
en México y Colombia son cultivadas hasta los 2300 msnm (Lira & Montes, 1992;
Lira, 1995; Bisognin, 2002).
2.3.1.2. Clasificación taxonómica
La Tabla 1 presenta la clasificación taxonómica de C. moschata.
Tabla 1. Clasificación taxonómica de la calabaza de castilla criolla (C. moschata)
Reino Plantae Familia Cucurbitaceae
Subreino Traqueobionta Subfamilia Cucurbitoideae
Superdivisión Spermatophyta Tribu Cucurbiteae
División Magnoliophyta Género Cucúrbita
Clase Magnoliopsida Especie Cucúrbita moschata
Subclase Dilleniidae Nombre científico Cucúrbita moschata
Orden Violales Nombre común Calabaza de Castilla
Lira & Rodríguez-Arévalo (2008).
Los conocimientos de la clasificación taxonómica contribuyen a hacer una
evaluación previa de las características físicas y tecnológicas de las semillas y del
fruto.
2.3.1.3. Características morfológicas
La Tabla 2 presenta amplia información de la morfología de la calabaza de castilla.
10
Tabla 2. Caracteres morfológicos de la planta, fruto y semilla de calabaza de castilla
(C. moschata)
C. moschata
Planta Fruto Semilla
Lóbulos foliares poco
marcados. Lóbulo apical en
punta. Manchas
blanquecinas en la unión de
las nervaduras de las
láminas y debajo de la
epidermis de una delgada
capa de aire.
Pedúnculo duro, poco estriado.
Semillas color castaño
pardo, marginadas. En
vista lateral presentan un
lado convexo y otro
ligeramente comprimido.
21 cm
Inserción del pedúnculo muy
expandida. Ápice truncado recto.
Miglierina, Gaspera, & Mendoza (2013).
La especie C. moschata presenta variaciones en sus características físicas y
químicas, por diferentes causas, como pueden ser el origen geográfico, las
características físicas del suelo, el agua con la que es regada, las condiciones
climatológicas, entre otras.
2.3.1.4. Distribución geográfica
La distribución geográfica de C. moschata tiene como centro de origen el sur de
México, Guatemala, Panamá, América Central, hasta Colombia y Venezuela, con
abundantes variedades ampliamente distribuidas en esta región.
La alta producción agrícola del cultivo de calabaza de castilla, es una excelente
oportunidad como elemento importante de la 6a generación de innovación; además,
la semilla es un subproducto con gran interés industrial. Esta materia prima tiene un
11
uso moderno como materia prima orgánica renovable, aun teniendo una amplia
aplicación histórica en el área de nutrición y medicina tradicional.
2.3.1.5. Información nutricional de calabaza de castilla
La calabaza de castilla (C. moschata) tiene un alto contenido de fibra, carbohidratos,
vitaminas, minerales, pro vitamina A en forma de carotenos totales (535 µg/g), el β
carotenos precursores de la vitamina A, la criptoxantina, la luteína, además de
presentar propiedades antioxidantes y actividades farmacológicas tales como
antidiabética, antifúngicos, antibacteriana (Tabla 3).
Tabla 3. Características químicas de la pulpa de calabaza de castilla (C. moschata)
Característica Promedio*
Humedad (%) 91.55 ± 1.07
Proteína (%) 1.41 ± 0.28
Aceite (%) 0.07 ± 0.03
Ceniza (%) 0.89 ± 0.15
Fibra cruda (%) 1.06 ± 0.15
Fibra dietética total (%) 19.10 ± 3.09
Fibra dietética insoluble (%) 15.68 ± 6.24
Fibra dietética soluble (%) 4.00 ± 0.85
Pectina (%) 7.34 ±1.14
Azúcares reductores (%) 1.69 ± 0.39
Carotenoides (mg β- Caroteno/g) 2.67 ± 1.10
Fenoles (meq C/g) 1.38 ± 0.54
* = base seca, meq = miliequivalentes, C = catequina.
Glew, et al. (2006); Ortiz, Sánchez, Valdés, Baena, & Vallejo (2008).
La calabaza de castilla presenta un gran contenido de fibra dietaría, potasio, calcio
y fósforo. El contenido mineral de la calabaza de castilla, a excepción del sodio (Na)
y el potasio (K), exceden la cantidad promedio máxima necesaria para satisfacer las
necesidades nutricionales de las dietas de los seres humanos; además, contribuye
ampliamente en la prevención de un gran número de enfermedades (Tabla 4).
12
Tabla 4. Contenido mineral de la pulpa de calabaza de castilla de invierno (C.
moschata)
Elemento Concentración promedio (mg/Kg) Ingesta dietética recomendada (mg)
Fe 31.69 ± 2.46 43313
Mn 3.33 ± 0.38 1.8-2.3
Zn 23.88 ± 1.39 43777
Cu 8.44 ± 0.32 0.7-0.9
Na 700.20 ± 181.52 1200-1500
K 42,194.00 ± 863.88 4500-4700
Ca 6,684.75 ± 181.52 1-1.3
Mg 1,590.40 ± 31.96 210-420
P 3,040.48 ± 45.54 700-1250
US Institute of Medicine (2001), n=9.
Por la gran cantidad de semillas que tiene la calabaza, en la siguiente sección, es
detallada de manera general la composición química de la semilla.
2.3.1.6. Información nutricional de semillas de calabaza de castilla
Las semillas del género C. moschata también son clasificadas como oleaginosas y
poseen propiedades medicinales, alimenticias e industriales (Applequist, 2006;
Sánchez, Villanueva, Sahagún, & Chaning, 2000). Además, las semillas de
calabaza de castilla contienen altos contenidos de fibra, tocoferoles beta y gamma
(vitamina E) y carotenoides luteína y beta-caroteno (López, Márquez, Salomón, &
Gonzáles, 2009). La concentración de aceite es de 39%, del cual el 44% es de ácido
linolénico, el 22% de ácido oleico, el 23% de ácido palmítico, el 10% de ácido
esteárico y el 1% de ácido araquídico. Un aspecto nutricional importante de estas
semillas es que no hay reportes sobre elementos tóxicos (Tabla 5). El valor del ácido
araquídico no alcanza ni el 1%, lo cual es positivo por ser saturado. Además, cuenta
con una gran cantidad de ácidos grasos insaturados (Younis, El-Shahaby, Abo-
HAmed, & Ibrahim, 2000).
Tabla 5. Características químicas de la semilla de calabaza de castilla (C. moschata)
Característica Contenido
Aceite 39%
Proteína 47 %
Carbohidratos 8 %
Fibra 6 %
Hernández & León (1994); Maynard, Elmostrom, Talcott, & Carle (2004).
13
Es importante mantener la calidad y cantidad de estos nutrientes en los procesos
agroindustriales; para esto, es fundamental conocer las propiedades físicas,
químicas y tecnológicas, además de permitir convertir las semillas de C. moschata,
de semillas perecederas a mercancía estable de larga vida sin deterioro de su
contenido nutricional.
2.4. El género Apodanthera
El género Apodanthera pertenece a la familia Cucurbitaceae y está distribuida en
Norteamérica y América del Sur; este género fue denominado por Arnott en 1841,
basado en una única especie, A. mathewsii Arn., proveniente de Perú.
Posteriormente, diversos autores fueron incrementando el número de especies para
el género, por lo que Apodanthera cuenta en la actualidad con 45 especies y seis
variedades. Cogniaux (1916) mencionó que el género es dividido en tres secciones:
la sección Apodanthera, de áreas costeras de Ecuador, regiones andinas de Perú,
Bolivia y el noroeste de la Argentina, con algunos representantes en el este de Brasil
y centro de la Argentina; la sección Cucurbitopsis Cogn., exclusiva de Norteamérica
(desde el sur de Estados Unidos de América hasta el centro-sur de México) y la
sección Pseudoapodanthera Cogn., endémica del nordeste de Brasil. Dentro del
género Apodanthera está la especie A. undulada, la cual es descrita brevemente a
continuación.
2.4.1. Calabaza hedionda (A. undulata)
2.4.1.1. Origen y antecedentes históricos
A. undulata es una planta de la familia de las cucurbitáceas, originaria de América
del Norte y cuya mayor diversidad genética es encontrada en el suroeste de Estados
Unidos hasta el centro de México (Lira, Eguiarte, & Montes, 2009). Apodanthera
proviene del griego a, que significa sin, podos, y anthera o antera, que significa pie,
mientras que undulata significa ondulado (Wiggins, 1964; Kearney & Peebles,
1969).
Es una enredadera de ciclo perenne que crece en forma rastrera y es distinguida
por las hojas verde grisáceo-amarillentas con pelos ásperos y rígidos que presentan
14
una estructura superficial como papel de lija al tacto, márgenes de hojas onduladas
y cuenta con ramas que crecen en forma circular y miden de uno a dos m de largo.
Los frutos miden de 7 a 10 cm de alto por 4 a 6 cm de ancho; son de color verde,
cada fruto puede tener alrededor de 100 semillas las cuales contienen 28% de
proteína cruda y 31% de aceite (Vasconcellos, Bemis, Berry, & Weber, 1981). Crece
en matorrales xerófilos, así como también en pastizales, parcelas de cultivo
abandonadas y principalmente a orillas de caminos, donde la altitud es mayor a los
1800-2100 msnm y en condiciones de poca humedad y alta radiación solar
(CONABIO, 2015).
La bibliografía de esta especie es escasa, pero es una aportación interesante y
constituye una base para la evaluación de las características tecnológicas, físicas y
químicas de las semillas de calabaza hedionda.
2.4.1.2. Clasificación taxonómica
La clasificación taxonómica de la calabaza hedionda (A. undulata) es presentada en
la Tabla 6.
Tabla 6. Clasificación taxonómica de la calabaza hedionda (A. undulata)
Lira, Eguiarte, & Montes (2009).
El conocimiento de la clasificación taxonómica presentado anteriormente, permite
una evaluación previa de las características físicas tecnológicas de las semillas y
del fruto de calabaza hedionda.
2.4.1.3. Características morfológicas
La Tabla 7 contiene información sistemática de la morfología de la calabaza
hedionda. Las características morfológicas de los frutos y semillas de la especie de
Reino Plantae Familia Cucúrbitaceae
Subreino Traqueobionta Subfamilia Cucurbitoideae
Superdivisión Spermatophyta Tribu Melothrieae
División Magnoliophyta Género Apodanthera
Clase Magnoliopsida Especie Apodanthera undulata
Subclase Dilleniidae Nombre científico Apodanthera undulata
Orden Violales Nombre común Calabaza hedionda
15
A. undulata son muy diferentes dependiendo de la especie y especialmente de la
distribución geográfica a la que pertenezcan.
Tabla 7. Caracteres morfológicos de la planta, fruto y semilla de calabaza hedionda
A. undulata
Planta Fruto Semillas
Hojas alternas, con zarcillos en
su inserción con el tallo,
zarcillos con dos ramificaciones,
pecíolos de 3.5 a 9.5 cm,
anchamente ovado-cordadas a
suborbiculares, 3-5 lobuladas,
amplias, con salientes y
entrantes marginales profundas.
Pedúnculo duro poco
estriado e inserción del
pedúnculo muy expandida.
Semillas numerosas de color
castaño grisáceo, de hasta 9
mm de largo y 7 mm de ancho.
12 cm largo y poco menos de
ancho.
Fruto carnoso, de sabor
amargo, con forma de un
pequeño melón, de hasta 9
cm de largo y 5 cm de
ancho, inmaduro es de color
verde oscuro y al madurar es
amarillento o anaranjado.
La forma de estas semillas es
aovado-elíptica.
Belgrano & Pozner (2017).
2.4.1.4. Distribución geográfica
El género Apodanthera está distribuido en forma alterna en América del Norte
(sección Cucurbitopsis) y en Sudamérica, en el noreste de Brasil (secc.
Pseudoapodanthera) y una amplia área que va desde Ecuador, el norte de Perú y
el noroeste de Brasil hasta el norte de la Patagonia argentina. En México, la
distribución ha sido registrada en Aguascalientes, Chihuahua, Coahuila, Durango,
Guanajuato, Jalisco, Michoacán, Nayarit, Querétaro, San Luis Potosí, Sonora y
Zacatecas, entre los 1300 y los 2300 m. s. n. m. (Figura 3). Crece tanto en suelos
fértiles y bien drenados, como en otros franco-arcillosos o arenoso-pedregosos; la
vegetación predominante es el matorral espinoso o los pastizales abiertos.
16
Figura 3. Distribución geográfica del género Apodanthera (Villaseñor & Espinoza-
García, 1998; Lira & Rodríguez-Arévalo, 2008).
2.4.1.5. Información nutricional de calabaza hedionda
La calabaza hedionda (A. undulata) presenta un alto contenido de carbohidratos, el
cual está entre 77.5 - 84.9%, el de proteína está entre 21.37 - 29.06% y grasa de
0.1 a 9.2%, mientras que la cantidad de almidón representa aproximadamente el
20% de la materia seca (Clark, Tupa, Bazan, Chang, & Gonzales, 2012).
En la siguiente sección, de manera general es detallada la composición química de
la semilla.
2.4.1.6. Información nutricional de la semilla de calabaza hedionda
La semilla de calabaza hedionda (A. undulata), tiene importantes características
nutrimentales (Tabla 8), entre las cuales está una alta concentración de aceites
(29.31 %) de las cuales el ácido linoleico representa el 43.81%, ácido oleico el
22.29%, ácido palmítico el 17.41%, ácido esteárico el 14.11%, ácido fítico el 2% y
otros ácidos grasos el 1%. Además, los inhibidores de tripsina presentes en las
semillas no representan ningún problema de toxicidad (Lucas, Hernández, &
Boetter, 2015). La mayor cantidad de minerales esenciales como fierro, calcio,
magnesio, zinc, fósforo, sodio, potasio y cobre son encontrados en harinas de
semillas de calabaza hedionda (A. undulata), aunque los porcentajes de proteína no
son modificados y están entre 21.37 a 29.06% (Ekpedeme, Bassey, & Ekaete,
1999). Las semillas de calabaza hedionda con cáscara también son importantes por
su composición de aminoácidos y es posible afirmar que el aceite que poseen estas
17
semillas tiene un alto potencial de aplicación, por sus propiedades benéficas para
la salud.
Tabla 8. Características químicas de la semilla de calabaza hedionda con cáscara
(A. undulata)
Característica Contenido
Aceite 29.31%
Proteína 60.8 %
Carbohidratos 6.87%
Fibra 3.02 %
Clark, Tupa, Bazan, Chang, & Gonzales (2012).
El uso de subproductos como la semilla de calabaza de castilla (C. moschata) y
semilla de calabaza hedionda (A. undulata), tanto para usos agroindustriales como
para la fortificación de alimentos, es una opción muy importante ya que además de
resultar económico seguramente serían productos con alto valor nutrimental por los
contenidos elevados de nutrientes que contienen las semillas.
Para poder utilizar estas semillas en la industria, es importante conocer las
características físicas, como forma, tamaño (largo, ancho y grosor), propiedades
gravimétricas (peso, densidad aparente y conductividad) y propiedades friccionales
(ángulo de reposo y coeficiente estático de fricción). También es necesario conocer
las características químicas como contenido de humedad, proteína cruda, proteína
soluble, carbohidratos, grasas, macronutrientes y micronutrientes (fósforo [P], calcio
[Ca], magnesio [Mg], hierro [Fe] y zinc [Zn]). Las semillas de calabaza de castilla y
calabaza hedionda poseen propiedades físicas, químicas y tecnológicas distintas,
por ello, es importante conocer sus propiedades para tener los elementos
suficientes para diseñar nuevos productos con alto valor nutricional, así como la
maquinaria adecuada para poder automatizar los procesos.
18
3.0. CAPÍTULO III PROCESAMIENTO DE LAS SEMILLAS DE CALABAZA
3.1. Características físicas en el marco del procesamiento
El conocimiento de las propiedades físicas de los materiales agrícolas resulta de
importancia para la realización adecuada de las operaciones de post-cosecha, así
como para el diseño y selección del equipamiento para el procesamiento de las
mismas (Mohsenin, 1986).
Estas propiedades son muy importantes debido a que resultan sensibles al tiempo
de trabajo, al ritmo con que las secuencias productivas son completadas, la calidad
y cantidad de los productos. Por ello, el estudio de las propiedades físicas es
importante para elegir las máquinas, herramientas y aparatos para detectar el
impacto de sus propiedades sobre la productividad (Boyer & Saillard, 1998).
En los últimos 20 años la región de América Latina y el Caribe ha conseguido una
posición importante en el mercado gracias a la gran diversificación de su producción
agrícola y al crecimiento dinámico de sus industrias agrícolas. Para continuar con el
crecimiento de la industria agrícola, el industrializar productos elaborados con
semillas de calabaza, sería beneficioso.
El proceso de preparación de las semillas está afectado en gran medida por el tipo
de máquina, manejo que disponga la agroindustria, las características que poseen
las semillas y su composición (Rössel-Kipping, 2015). En el procesamiento (físico,
químico y tecnológico) de semillas es importante tomar en cuenta los procesos que
serán llevados a cabo (secado, limpieza, tratamiento, etc.) para la obtención de
productos de buena calidad, con las características deseadas tanto físicas como
químicas (textura, apariencia, composición nutricional, sabor, aroma y color),
partiendo de la utilización de instrumentos adecuados (equipos, máquinas y
herramientas).
Antes de la transformación de las semillas, hay que considerar aspectos de
limpieza, secado y humedad, para garantizar la calidad y conservación de la semilla
(Govaertz, 2014).
19
3.1.1. Almacenamiento
El almacenamiento de granos y semillas puede garantizar su disponibilidad en
distintos momentos y en lugares estratégicos, lo que genera condiciones
adecuadas para que los granos y semillas sean almacenados secos, enteros,
sanos, sin impurezas y que no sean dañados por plagas, enfermedades, medio
ambiente, etc. En México, el almacenamiento de semillas involucra distintas
prácticas tradicionales que surgen del conocimiento empírico, que los agricultores
han adquirido de la experiencia (áreas profesionales como mecánica, química,
térmica, biológica, etc.) a través del tiempo (SAGARPA, 2016).
3.1.2. Proceso de limpieza
La limpieza o clasificación constituye una etapa muy importante para la utilización
de semillas y granos de buena calidad, su función es despojar a los granos y
semillas de partículas indeseables que aún permanezcan junto con los mismos, los
cuales incluyen metales, hojas, pequeñas ramas y otros materiales extraños con
diferentes características físicas que deben tomarse en cuenta en la selección de
procesos técnicos que resulten exitosos. Los equipos utilizados en esta etapa son
zarandas, cernidores rotativos, separadores magnéticos y sistemas de aspiración.
La implementación de estos procedimientos permite una comercialización más
completa y ordenada, con alta calidad y limpieza de los granos y semillas (Arango,
1968). La técnica de limpieza es basada en las diferencias entre distintos
caracteres físicos de las semillas tales como tamaño, longitud, forma, peso, textura
superficial, color, afinidad por los líquidos y conductividad (Morant, Miranda, &
Salomon, 2004). La limpieza también evita alteraciones durante el procesamiento
y elaboración del producto.
3.1.3. Proceso de secado
El secado es uno de los procesos de conservación de alimentos más antiguos
usados por el hombre; su principal propósito es la reducción del contenido de
humedad en las semillas, hasta un nivel considerado seguro (en el cual hay una
reducción de la actividad respiratoria y mayor dificultad al ataque de insectos y
20
hongos) para el almacenamiento de éstas. Dicho nivel varía en los diferentes tipos
de semillas; en general, este nivel abarca una gama entre 10 y 14% de humedad
expresada sobre base húmeda. El secado más utilizado en el sector productor de
semillas es el secado a bajas temperaturas, puesto que este sistema puede
mantener la calidad del producto cosechado, mejor que el sistema a temperaturas
altas (FAO, 1991).
3.1.4. Proceso de cribado
Este proceso es otra manera de limpiar y separar las semillas. Puede ser definido
como el proceso de dividir mezclas de masas sólidas con el propósito de
clasificarlas por el tamaño y forma de sus partículas para sus diferentes usos; de
esta forma divide el material, en masas parciales, encima de cribas o tamices
(Rössel-Kipping, 2015).
Este proceso es de suma importancia porque logra obtener mayor rendimiento en
el procesamiento, haciéndolo más efectivo por el tamaño más grande de la semilla
o cualquier otro residuo (materia prima orgánica) para diferentes sectores
productivos. Otros procesos importantes son la molienda y el mezclado.
3.1.5. Proceso de molienda
Tiene por objetivo la transformación del endospermo en harina y la separación
íntegra de las cubiertas del grano y el germen, con fuerzas externas de equipos
intercalados (diferentes molinos de rodillos). Esto para que faciliten su manejo en el
momento de aplicar un mezclado homogéneo en la producción de nuevos productos
(Rössel-Kipping, 2015).
El tipo de equipo (molinos o trituradores), la dureza de la semilla, la humedad y la
energía necesaria son parte del procesamiento que determina el grado de finura, la
textura y la apariencia de las harinas, características que son clave para realizar
posibles mezclas o formulación en la elaboración de productos.
21
3.1.6. Proceso de mezclado
El proceso de mezcla consiste en realizar una distribución aleatoria de partículas
dentro y a través de dos o más fases inicialmente separadas (McCabe, Smith, &
Harriot, 1991). Este proceso tiene una amplia aplicación en la industria de la materia
prima, dado que los materiales (con alta estabilidad de sus características físicas,
químicas y biológicas) a mezclar poseen diferentes características en su
composición y propiedades físicas (Rössel-Kipping, 2015).
3.2. Características químicas en el marco del procesamiento
Las propiedades químicas son aquellas que se manifiestan cuando la materia
cambia de composición (Felder, 2004). El estudio de las propiedades físicas y
químicas en la actualidad es una alternativa para el manejo de residuos industriales,
los cuales tienen características fisicoquímicas que los hacen idóneos para la
elaboración de otros bienes.
Este procesamiento tiene que ver con las condiciones de operación en un proceso
industrial, mediante la ayuda de reacciones químicas por medio del conocimiento
de algunos conceptos como densidad, gravedad específica, volumen específico,
temperatura, presión, condiciones normales de operación, composición química,
composición en base libre de un componente, base de cálculo y estequiometria
(Hougen, Watson, & Ragatz, 1964; Rodríguez, 1982; Valiente, 1986; Reif &
Jaramillo, 1990; Himmelblau, 1997; Felder & Rouseau, 2003; Cuervo, 2008).
En general, aplicar los procesamientos químicos facilita y brinda la posibilidad de
optimizar rendimientos en los procesos de operaciones y procesos unitarios
adecuados en la transformación de materia prima (granos y semillas) y materiales
secundarios (cáscaras). Ello depende, de manera importante, de las propiedades
físicas y químicas en productos de mayor valor agregado.
Hoy en día es muy importante conocer las características físicas, químicas y
tecnológicas de las materias primas que utilizarán las industrias. La tecnología en
la industria ha evolucionado de manera positiva, debido a que los procesos son
automatizados, rápidos, sencillos, seguros y de mejor calidad; un ejemplo es la
22
generación de la Industria 4.0 en donde la tecnología ha mejorado la posición de
las empresas en el mercado, proporcionando de manera interactiva en las redes
sociales las tendencias del mercado, las preferencias de los consumidores y una
vía ideal para el marketing directo (Garrell & Guilera, 2019).
La industria 4.0 es la palanca de construcción del futuro, una revolución que
además de robotizar las fábricas persigue el reto de utilizar la tecnología en
beneficio de todos (Sukhodolov, 2019). Sin embargo, no es suficiente utilizar la
capacidad productiva de la tecnología en beneficio de todos, debido a que esta
industria tiene el potencial de cambiar el modo tecnológico existente.
La información presentada en la introducción y los antecedentes permite establecer
la siguiente problemática.
23
4.0. CAPÍTULO IV. JUSTIFICACIÓN
En la actualidad existe la necesidad de consumir alimentos que además de su
función nutritiva aporten propiedades fisiológicas benéficas y reduzcan el riesgo de
contraer enfermedades crónicas. Una opción a esto es la semilla tanto de calabaza
de castilla como de calabaza hedionda. Las semillas de calabazas han sido
utilizadas tradicionalmente en todo el mundo como alimento tanto humano como
animal (Doymaz, 2007; Lira & Montes, 1992; Quintero-Pinho, Henrriques, & Barroca,
2009), mas no son utilizadas como materia prima en la generación de nuevos
productos alimentarios y no alimentarios.
Estas semillas son una excelente alternativa para usarlas con fines agroindustriales
en varios sectores productivos [en el área de alimentos, medicina, biomateriales
(colorantes, jabones, cremas etc.)] y con buenos comportamientos ambientales.
Las características físicas permiten dimensionar de modo más efectivo los
requerimientos de los equipos y estructura de almacenamiento, transporte, diseño,
construcción, operación de maquinarias, herramientas y aparatos para detectar el
impacto de sus características sobre la producción. Por otro lado, las características
químicas sirven por sus propiedades y agentes funcionales para generar productos
con alto valor nutricional.
Sin embargo, a pesar de sus características, las semillas no son de interés en
procesos de industrialización y de comercialización, (El-Adawy, 2001; Valenzuela,
2011).
Conjuntamente, el uso de estas semillas podría beneficiar a la economía de la
región altiplano potosino-zacatecano ya que por las condiciones climáticas el
desarrollo de estos cultivos es favorecido y el uso de los subproductos (p.e. semilla)
con un proceso de transformación que sea efectivo y rentable, traería beneficios
económicos a los productores.
24
5.0. CAPÍTULO V. OBJETIVOS E HIPÓTESIS
En virtud de lo expuesto, la situación de la producción de cucurbitáceas en México
y el avance tecnológico, presentan los objetivos del presente trabajo.
5.1. Objetivo general
Analizar las características físicas (largo, ancho, grosor, fricción interna y externa,
densidad y textura) y químicas (contenido de proteínas, minerales, carbohidratos,
lípidos y humedad) de las semillas secas de calabaza de castilla (C. moschata), y
calabaza hedionda (A. undulata) con el fin de optimizar procesos agroindustriales
como limpiar, almacenar, transportar, medir, dosificar, procesar, comprimir, reducir
tamaños, mezclar y cribar, entre otros.
5.2. Objetivos específicos
1. Medir las propiedades físicas de semillas secas de calabaza de castilla (C.
moschata).
2. Medir las propiedades físicas de semillas secas de calabaza hedionda (A.
undulata).
3. Analizar las propiedades químicas de semillas secas de calabaza de Castilla
(C. moschata).
4. Analizar las propiedades químicas de las semillas secas de calabaza
hedionda con cáscara (A. undulata).
5. Elaborar un producto con ingrediente de semillas de calabaza.
5.3. Hipótesis
Las propiedades físicas y químicas de las semillas de calabaza de Castilla (C.
moschata) y de las semillas de calabaza hedionda (A. undulata) permiten mejorar
el procesamiento de las semillas y subproductos de estas para múltiples
aplicaciones, en usos agroindustriales.
25
6.0. CAPÍTULO VI. MATERIALES Y MÉTODOS
6.1. Materiales
6.1.1. Material vegetal
Las semillas de calabaza de castilla fueron obtenidas de San Luis Potosí y las
semillas de calabaza hedionda de Zacatecas. Las semillas de calabaza de castilla
provinieron de cultivos realizados en el zacatón (22°50´00” N), perteneciente al
municipio de Villa de Ramos, San Luis Potosí, mientras que las semillas de calabaza
hedionda procedieron de cultivos del municipio de Villa Nueva, Zacatecas (22° 21′
13″ N, 102° 52′ 59″ O).
6.1.2. Materiales y equipos
A continuación, la siguiente tabla muestra alfabéticamente los materiales, equipos
y reactivos usados en la presente investigación.
Tabla 9. Equipos, materiales y reactivos
Material Material Material
Acetato de plomo Equipo espectrofotómetro de rango visible, (Genesys 105 vis)
Oxalato de sodio
Acetato de sodio Papel filtro
Acetato neutro de plomo Equipo espectrómetro de absorción atómica (Aurora Instruments-1200)
Papel tornasol
Ácido bórico Parafina
Ácido clorhídrico al 0.1 N Equipo microondas (Preekem modelo WX-6000)
Parrilla eléctrica
Ácido nítrico Perlas de borosilicato
Ácido nítrico al 5% Equipo Soxleth TM, (ST 243 Soxtec™) Perlas de vidrio
Ácido sulfúrico Espátulas Pie de rey (vernier)
Agitador mecánico (modelo LA-0441) Estufa (Mabe) Pimienta negra en polvo
Agua destilada Estufa de secado Pinzas de crisol
Agua potable Fosfato mono potásico Probeta de 100 ml
Agua tridestilada Frascos de aluminio Reactivo Folin
Albumina Goniómetro de plástico Reactivo Lowry
Algodón Gránulos de zinc Reactivo nitromolibdovanadato
Asbesto Hexano mal 99.6 % Reactivo Shiro Tashiro
Azul de metileno Hidróxido de sodio Recipiente de plástico
Balanza Analítica Hidróxido de sodio 0.1 M Regla
Balanza Granataria Hidróxido de sodio 1 N Sal en polvo
Frascos Horno de secado (Dzf-6090) Soporte universal
Buretas Juego de 8 Cribas / Tamices (Alcón®) Sulfato cúprico al 1%
Cajas de Petri Lámina Sulfato de cobre
Carbonato sódico al 2% Licuadora Sulfato de cobre pentahidratado
Cebolla en polvo Limones Sulfato de sodio anhidro
Charolas de aluminio Madera (50 x 30 cm) Tabla de madera
Charolas de plástico Matraces volumétricos Tabla de plástico
Chile en polvo Matraces aforados Tartrato de potasio al 2%
Cilantro Matraces Erlenmeyer Tartrato de sodio al 2%
Comal Matraces Kjeldahl Triplay
Computadora Meta vanadato amónico Tubos Corning
Conductímetro (HANNA HI 98130) Molibdato amónico tetra hidratado Vaso de precipitado
Dedales Molino de café (KRUPS GX410011) Vaso de precipitado de 100 ml
Desecador Multímetro (Kinzo 18d265 ce) Vidrio
Embudo con tapadera Oxalato de potasio Vitropiso
26
• Ubicación de investigación
El presente trabajo de investigación fue realizado en el municipio de Salinas, San
Luis Potosí, en el Laboratorio de Agua-suelo-planta del Campus San Luis Potosí
del Colegio de Postgraduados (22°63’22” N y 101°71’25” O) y en el Laboratorio
2 de la Coordinación Académica Región Altiplano Oeste (CARAO) UASLP
(22°38'28.5" N y 101°42'10.0" O), (Figura 4).
Figura 4. Localización de los centros de investigación.
• Acondicionamiento de las muestras
Para cada una de las dos especies de semillas provenientes de diferente origen,
fue seleccionado al azar 1 kg de semilla.
Una limpieza manual de las semillas fue realizada descartándose las semillas
peladas, con pericarpio dañado, quebradas, vacías, secas, podridas y materias
extrañas. Las mismas fueron almacenadas a temperatura ambiente hasta su
utilización en los ensayos.
27
6.2. Metodología para las determinaciones físicas de las semillas de
calabaza
6.2.1. Plan de investigación de características físicas
Las propiedades físicas fueron determinadas tanto en las semillas de calabaza de
castilla con cáscara y sin cáscara como en las semillas de calabaza hedionda (para
esta especie todas las determinaciones fueron hechas en semilla con cáscara), por
separado. La Tabla 10 presenta el plan de investigación de las características
seleccionadas.
Tabla 10. Plan de ensayos de los caracteres físicos de semillas y harinas de semillas
de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara
Característica SCCCC SCCSC SCHCC CSCC HSCCCC HSCCSC HSCHCC
Largo X X X
Ancho X X X
Grosor X X X
Diámetro
geométrico X X X
Área superficial
específica X X X
Relación de
aspecto X X X
Peso de 1000
semillas X X X
Fricción interna X X X X X X X
Fricción externa X X X X X X X
Densidad aparente X X X X X X X
Conductividad
eléctrica X X X
Donde: SCCCC = semilla de calabaza de castilla con cáscara; SCCSC = semilla de calabaza de castilla sin cáscara; SCHCC = semilla de calabaza hedionda con cáscara; CSCC = cáscara de semilla de calabaza de castilla; HSCCCC = harina de semilla de calabaza de castilla con cáscara; HSCCSC= harina de semilla de calabaza de castilla sin cáscara; HSCHCC = harina de semilla de calabaza hedionda con cáscara.
6.2.1.1. Dimensiones
El tamaño de las semillas fue determinado a través de la medición de sus
dimensiones características: largo (L), ancho (W) y grosor (T), a partir de 100
28
semillas de cada género, seleccionadas al azar. Para ello, fue utilizado un calibrador
vernier, con calibre digital (0.001 mm de precisión), según lo indica la Figura 5.
Figura 5. Dimensiones características (a) vista frontal, (b) vista del perfil y (c) geometría tridimensional de la semilla de calabaza de castilla y calabaza hedionda.
6.2.1.2. Diámetro geométrico
El diámetro geométrico de una semilla individual fue calculado a partir de las tres
dimensiones características de acuerdo a la siguiente expresión (Mohsenin, 1986):
Dg = (L*W*T) (1/3) (1)
Donde: Dg = Diámetro geométrico; L = Largo; W = Ancho; T = Grosor
6.2.1.3. Área superficial específica
El área superficial específica (S) fue calculada a partir del resultado del diámetro
geométrico, asumiendo la forma elipsoidal de la semilla, según la siguiente ecuación
(McCabe, Smith, & Harriot, 1986):
S = π (Dg)2 (2)
Donde: S = área superficial específica; π = 3.1416; Dg = Diámetro geométrico
29
6.2.1.4. Relación de aspecto
Para completar la información sobre la forma de ambas semillas fue calculada la
relación de aspecto (R) (Maduako & Faborode, 1990), a partir de las dimensiones
ancho y largo de las semillas:
R = W/L x 100 (3)
Donde: R = Relación de aspecto; W = Ancho; L = Largo
6.2.1.5. Determinación del peso
Para la determinación del peso de 1000 semillas, fueron seleccionadas al azar 100
semillas de cada espécimen y para pesarlas en una balanza analítica con una
precisión de 0.0001 g con diez determinaciones experimentales para cada
espécimen. El resultado fue extrapolado a 1000 semillas (Kachru, Gupta, & Alam,
1994; Vilche, Gely, & Santalla, 2003).
6.2.1.6. Propiedades friccionales
Para la determinación de las propiedades friccionales en harinas y semillas de
ambas especies de calabaza, fueron obtenidos los valores de fricción interna, y/o
ángulo de reposo estático, fricción externa, y/o ángulo de reposo dinámico, los
cuales son descritos a continuación:
• Ángulo de fricción interna (µi): este ángulo fue determinado en un montón de
grano (ver Ecuación 5), utilizando un embudo en forma de cono sostenido
por un soporte universal, encima de una tabla de plástico de polietileno.
Después, el embudo fue tapado de la parte inferior y llenado con 40 g de la
muestra de semillas/harinas. Posterior a esto, el embudo fue abierto de la
parte inferior, para dejar caer la muestra, hasta que descendiera la muestra
a la tabla de plástico de polietileno y tomara la forma de cono invertido y/o
triángulo estático, sin moverse (Figura 6). A partir de ahí, fue medida la altura
y el diámetro que ocupó. Este procedimiento fue repetido 10 veces por
muestra en el caso de las semillas y 100 veces por muestra en el caso de las
harinas.
30
Figura 6. Representación de la fricción interna en las semillas y harinas de semillas de calabaza hedionda con cáscara y calabaza de castilla con y sin cáscara.
Fricción Interna = µi = tan β = h/r (4)
Donde: µi = Fricción interna; h = Altura de la semilla; r = radio del cono
• Ángulo de fricción externa (µe): Sobre una tabla de madera (50 x 30 cm) fijada
sobre una mesa, fue colocado el material (40 g de semillas y harinas), para
después alzar la tabla con las semillas y harinas encima, hasta llegar al punto
donde comenzara a mover hacia la parte inferior por completo (Figura 7). En
esa posición fue tomada la medida del ángulo con un goniómetro de plástico,
a la altura que quedó la tabla. Esto fue realizado tanto en la tabla de madera
como el cristal de vidrio, lámina de acero, vitropiso, triplay y tabla de plástico
de polietileno y tuvo una repetición de 10 veces por muestra en el caso de
las semillas y 100 veces por muestra en el caso de las harinas.
La Figura 7 representa la fricción externa de las semillas, cómo reaccionan
al deslizamiento, desde la parte superior, hasta caer a la parte inferior,
considerando el ángulo de inclinación y así determinar con qué rapidez logran
caer; esto influenciado por la fuerza de gravedad, la estructura superficial de
la plataforma y la estructura propia de las semillas.
31
Figura 7. Representación de la fricción externa en las semillas y harinas de semillas de calabaza hedionda con cáscara y calabaza de castilla con y sin cáscara.
Fricción externa = µe= 𝑡𝑎𝑛 𝛽 (5)
Donde: µe = Fricción externa; 𝑡𝑎𝑛 𝛽 = Angulo de inclinación
6.2.1.7. Cribado de semillas y harina obtenida de semillas de calabaza
Para hacer una clasificación más detallada de las harinas de semillas de calabaza
hedionda con cáscara y de calabaza de castilla criolla con cáscara y sin cáscara,
fueron seleccionados 200 g de estas harinas para realizar la siguiente metodología:
El cribado de las harinas de semillas de calabaza hedionda con cáscara y calabaza
de castilla criolla, con cáscara y sin cáscara, fue realizado utilizando un juego de
cribas marca Alcón®, con tamaños de 1.99898 mm, 1.79578 mm, 1.4097 mm,
0.4191 mm, 0.41402 mm, 0.131826 mm, 0.007366 mm y 0.00381 mm, para
determinar la granulometría de las partículas y obtener un tipo de harina más fina,
definido por la textura física que poseen las semillas de calabaza hedionda con
cáscara y calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara. Este procedimiento tuvo
una repetición de 3 veces por muestra.
32
6.2.1.8. Densidad aparente
La densidad aparente (ρb) fue calculada mediante la relación entre la masa de las
semillas (g) y el volumen de la medida de capacidad (90 cm3). Las mediciones
fueron realizadas por triplicado.
Colocar 90 cm3 de semillas en un vaso de precipitado para tomar el peso y así
posteriormente calcular la densidad aparente (ρb) con la siguiente fórmula.
pb = m/V (6)
Donde: m = masa; V = Volumen
6.2.1.9. Conductividad eléctrica
La conductividad eléctrica (σ) es la medida de la capacidad de un material o
sustancia para dejar pasar la corriente eléctrica a través de él. La conductividad
depende de la estructura atómica y molecular del material. Actualmente son
empleadas las unidades del SI, siemens (S), equivalente a mho; para trabajar con
números más manejables como submúltiplos: 1 mS/cm = 1 dS/m = 1000 S/cm = 1
mmho/cm.
La determinación de los Siemens es expresada con la siguiente formula.
S = f (t, h, l) (7)
Donde: S = Simens; f = función o pendiente de estas características; t = temperatura;
h = humedad; l = longitud.
Por otro lado, Göbel, Gutmacher, & Behrends (1987) definen la siguiente ecuación
para determinar los Siemens.
1S = 1*Ω (-1) = 1m (-2) *[kg] (-1) *s3*A2 (8)
Donde: S = Siemens; Ω = Ohm; m = metro; kg = masa; s = segundo; A = Amper.
La Tabla 11 muestra los tipos de conductores eléctricos que existen y un ejemplo
de éstos. (Drude, 1900) propuso que en dos eventos instantáneos sucesivos que
alteran la velocidad de los electrones (2 colisiones) desprecian las interacciones de
33
un electrón con los otros electrones y no con los iones. Así, la Figura 8, muestra que
las colisiones ocurren con los iones y no con los electrones.
Tabla 11. Tipos de conductores eléctricos
Tipo Material Conductividad
eléctrica (S · m −1)
Temperatura
(°C) Notas
Conductores Plata 6,30 × 107 20
La conductividad
eléctrica más alta de
cualquier metal
Semiconductores Carbono 2,80 × 104
Aislantes Vidrio 10−10 a 10−14
Líquidos Agua
potable
0.0005 a 0.05
Este rango de
valores es típico del
agua potable de alta
calidad, aunque no
es un indicador de la
calidad del agua.
Lide (2009).
Figura 8. Representación del modelo de Drude (Drude, 1900).
Metodología:
La conductividad eléctrica en las harinas de semillas de calabaza hedionda con
cáscara y calabaza de castilla criolla con y sin cáscara fue medida con un multímetro
de la marca Kinzo 18d265 ce.
Un multímetro es un instrumento con indicador de aguja que puede medir una
variedad de magnitudes eléctricas; además de medir las magnitudes, corrientes,
tensión y resistencia en diferentes rangos de medición, también son ideales para
las pruebas de diodo o de continuidad.
34
Procedimiento: Primero poner 30 g de cada muestra de harina en un recipiente de
plástico y 70 ml de agua destilada. Cabe hacer mención que la mezcla de harina de
calabaza hedionda contenía 29.84 g de materia seca y 70.16 g de humedad
mientras que la de harina de calabaza de castilla con cáscara contenía 29.87 g de
materia seca y 70.13 g de humedad y la de harina de calabaza de castilla sin
cáscara contenía 29.90 g de materia seca y 70.10 g de humedad. Posteriormente,
medir la temperatura de la muestra con un conductímetro de la marca HANNA HI
98130, al igual que la corriente eléctrica con multímetro de la marca Kinzo 18d265
ce, a una distancia de 5 cm entre cables.
El multímetro marca valores en kΩ por lo que el resultado fue convertido a mS, con
las siguientes ecuaciones.
mS = 1/kΩ (9)
Dónde: kΩ = Kilo Ohm
mS/m = mS*20 (10)
Dónde: mS = miliSimens; 20 = el coeficiente de distancia entre electrodos (fue 5 cm,
para pasarlo a un metro fue multiplicado por 20)
6.2.1.10. Molienda de semillas de calabaza
Para la realización de la molienda de las semillas fue utilizado un molino de café
(KRUPS GX410011), de dos cuchillas metálicas, con la finalidad de obtener harinas
con un tamaño de partícula más uniforme.
6.3. Metodología para las determinaciones químicas de las semillas de
calabaza
6.3.1. Plan de investigación de las características químicas
Después de la obtención de los resultados físicos, por medio de los métodos ya
mencionados, realizando en primera instancia la determinación del análisis proximal
en las semillas de calabaza hedionda, calabaza de castilla criolla con y sin cáscara,
las cuales fueron molidas en todos los ensayos.
35
Para determinar el contenido nutricional en las harinas de semillas de calabaza
utilizadas en el presente trabajo fue realizado un análisis proximal (Tabla 12).
Tabla 12. Plan de ensayos de los caracteres químicos de las semillas y harinas de
semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara
Característica CSCC HSCCCC HSCCSC HSCHCC
Proteína cruda X X X X
Proteína soluble X X X
Carbohidratos X X X X
Humedad X X X
Fósforo X X X
Calcio X X X
Magnesio X X X
Hierro X X X
Zinc X X X
Grasa X X X X
Donde: CSCC = cáscara de semilla de calabaza de castilla; HSCCCC = harina de semilla de
calabaza de castilla con cáscara; HSCCSC = harina de semilla de calabaza de castilla sin cáscara; HSCHCC = harina de semilla de calabaza hedionda con cáscara
Las determinaciones fueron realizadas en la Universidad Autónoma de San Luis
Potosí y el Campus San Luis Potosí del Colegio de Postgraduados (Figura 4),
llevando a cabo los siguientes métodos, ya establecidos y descritos a continuación.
6.3.1.1. Determinación del contenido de humedad
El contenido de humedad de las harinas de semillas de calabaza hedionda,
calabaza de castilla criolla con y sin cáscara, fue evaluado según la técnica de la
AOAC. 925.10 (AOAC, 1990).
Lo primero fue lavar y enjuagar las cajas Petri, colocar en el horno de secado
durante un tiempo de 1 h a 105 °C, para mantenerlos a peso constante
(absolutamente nada de humedad, ya que el porcentaje de humedad es una
determinación con alta sensibilidad por diferencia de peso), después poner al
desecador por 30 min.
Segundo, colocar 1 g de cada muestra en la parte inferior de las cajas Petri
uniformemente, las cuales fueron secadas en un horno de vacío de la marca FELISA
(TE-HV30D) durante 72 h a 60º C. Después del tiempo especificado en el horno,
36
utilizar las pinzas de crisol para retirar las cajas Petri con las muestras del horno de
secado, colocar en el desecador durante 30 min y enfriar a temperatura ambiente,
posteriormente pesar en una balanza analítica de la marca OHAUS Explorer Pro.
El procedimiento fue realizado por triplicado para las harinas de calabaza hedionda
y calabaza de castilla con y sin cáscara. El porcentaje de humedad resulta del
cálculo según la ecuación:
H° = (Ph-Ps) /Ps x 100 (11)
Donde: Ph = peso de la muestra antes del calentamiento (g); Ps = peso de la
muestra después del calentamiento (g).
6.3.1.2. Cuantificación del contenido de proteína cruda
La determinación de proteínas en las semillas de calabaza hedionda, cáscara de
semilla de calabaza de castilla, semillas de calabaza de castilla criolla con y sin
cáscara, realizado de acuerdo a la Norma (NMX-F-068-S, 1980).
Metodología:
1. Determinar la masa, en la balanza analítica, de aproximadamente 1 g de muestra
y pasarla cuantitativamente a un matraz Kjeldahl, añadirle 2 g de sulfato de cobre,
10 g de sulfato de sodio anhidro, 25 cm 3 de ácido sulfúrico y perlas de vidrio.
2. Colocar el matraz en el digestor y calentar cuidadosamente a 400 °C, hasta que
todo el material esté carbonizado, aumentar gradualmente, hasta que la
disolución esté completamente clara y dejar por el tiempo de 30 min.
3. Enfriar y añadir de 400 a 450 cm 3 de agua para disolver completamente la
muestra, agregar tres o cuatro gránulos de zinc, un poco de parafina cuando sea
necesario y 50 cm 3 de hidróxido de sodio 1:1.
4. Inmediatamente conectar el matraz a un sistema de destilación, el cual
previamente hay que colocar en la salida del refrigerante un matraz Erlenmeyer
de 500 cm 3 que contenga 50 cm 3 de ácido bórico y unas gotas del reactivo Shiro
Tashiro como indicador.
37
5. Destilar, hasta que haya pasado todo el amoniaco, que unas gotas de destilado
no den alcalinidad con el papel tornasol, aproximadamente 300 cm 3. Las
primeras gotas de destilado deben hacer virar el color del indicador de violeta a
verde.
6. Retirar el matraz recibidor y titular el destilado con ácido clorhídrico 0.1 N.
7. Expresión de resultados, el Nitrógeno presente en la muestra, expresado en
porcentaje (%) fue calculado mediante la siguiente ecuación:
N (%) = V * N * 0.014 * 100 / m (12)
En donde: N = Porcentaje (%) de Nitrógeno; V = Volumen de ácido clorhídrico
empleado en la titulación, en cm 3; N = Normalidad del ácido clorhídrico; m =
Masa de la muestra en g; 0.014 = Mili-equivalente del nitrógeno. El (%) de
proteínas fue obtenido multiplicando el (%) de nitrógeno obtenido por el factor
correspondiente.
6.3.1.3. Cuantificación de proteína soluble
La determinación de proteína soluble en las semillas de calabaza de castilla criolla
y calabaza hedionda, fue realizada en el Campus San Luis Potosí Colegio de
Postgraduado, basándose en el método de Lowry, Rosebrough, Farr, & Randal,
(1951), el cual es un método colorimétrico de valoración cuantitativa de las
proteínas, midiendo la cantidad total de nitrógeno proteico, ya que este elemento
representa aproximadamente el 16% del peso de una proteína. A la muestra fue
añadido un reactivo que forma un complejo coloreado azul con las proteínas, siendo
la intensidad de color proporcional a la concentración de proteínas solubles.
El método de Lowry, Rosebrough, Farr, & Randal (1951) tiene la ventaja de ser
extremadamente sensible, capaz de detectar cantidades del orden de 10
microgramos de proteína; como tratamos con mezclas biológicas complejas,
calibramos el método con proteína comercial seroalbúmina bovina, en un equipo
Espectrofotómetro rango visible, modelo Genesys 105 vis.
38
Metodología:
1. Preparar el reactivo de Lowry, compuesto por tres soluciones que son
mezclados en el momento de su utilización, y que son las siguientes:
A: Carbonato sódico al 2% en NaOH 0.1 M
B: Sulfato cúprico al 1%
C: Tartrato sódico-potásico al 2%
En el momento de su uso fueron mezclados 50 ml de la solución A con 0.5
ml de la solución B y 0.5 ml de la solución C.
2. Preparar una curva de calibrado según el siguiente procedimiento.
1) A 6 tubos (A, B, C, D, E y F) agregar albumina en progresión de 0 a
0.8 ml (0.0, 0.2, 0.3, 0.4, 0.6 y 0.8), después Agua en regresión de 1
al 0.2 ml (1.0, 0.8, 0.7, 0.6, 0.4 y 0.2) y por ultimo a todos los tubos
poner 5 ml del Reactivo de Lowry.
2) Agitar enérgicamente y dejar reposar por 15 minutos.
3) Agregar 0.5 ml de Folin a cada tubo.
4) Agitar enérgicamente y dejar reposar por 30 minutos.
5) Leer la absorbancia a 500 nm
3. Pesar 0.020 g de harina de semillas de calabaza de castilla (con cáscara y
sin cáscara) y 0.050 g de harina de semillas de calabaza hedionda, estas con
dos repeticiones.
4. Colocar las muestras en tubos tipo Corning y agregar 10 ml de agua
destilada.
5. Para la realización de la cuantificación de la proteína soluble, fue añadida la
muestra problema de los 10 ml a nuevos tubos, los cuales fueron preparados
según el siguiente procedimiento.
6. CUANTIFICACIÓN DE PROTEÍNAS EN LA MUESTRA
1) A siete tubos (A, B, C, D, E, F y G) fue agregada albumina en progresión
de 0 a 0.6 ml (0.0, 0.1, 0.2, 0.3, 0.4, 0.5 y 0.6), después agua en regresión
de 1 al 0.4 ml (1.0, 0.9, 0.8, 0.7, 0.6 y 0.4) y por ultimo a todos los tubos
poner 5 ml del Reactivo de Lowry.
2) Agitar enérgicamente y dejar reposar por 15 minutos.
39
3) Agregar 0.5 ml de Folin a cada tubo.
4) Agitar enérgicamente y dejar reposar por 30 minutos.
5) Leer la absorbancia a 500 nm frente al blanco a absorbancia cero (el
espectrofotómetro debe encenderse al menos 30 minutos antes de su
uso para obtener una perfecta estabilización de su línea de base).
6.3.1.4. Cuantificación de Carbohidratos
La determinación del contenido de carbohidratos fue realizada basada en la Norma
(NMX-F-312, 1978). Determinación de reductores directos y totales en alimento.
Metodología:
Parte 1. Preparación de las soluciones
1. Neutralizar 10 ml de la disolución de azúcar invertido con hidróxido de sodio 1
N, en un matraz volumétrico de 100 ml y completar el volumen con agua.
2. Transferir la disolución a una bureta, dejar caer la disolución a un matraz
Erlenmeyer que contenga una mezcla de 5 ml de la disolución A. Disolución A:
Disolver 34.639 g de sulfato de cobre pentahidratado en 500 ml de agua
destilada y filtrar a través de lana de vidrio o papel y 5 ml de la disolución B.
Disolución B: Disolver 173 g de tartrato doble de sodio y potasio y 50 g de
hidróxido de sodio en agua y diluir a 500 ml, dejar reposar dos días y después
filtrar usando asbesto y 50 ml de agua en ebullición, agregar la disolución de
azúcar invertido hasta un poco antes de la total reducción del cobre.
3. Agregar 1 ml de la disolución de azul de metileno y completar la titulación hasta
observar la coloración del indicador; la titulación debe efectuarse en el tiempo
de 3 min. Cuando el reactivo de glucosa es empleado, titular directamente.
4. El título de la disolución debe ser de 0.0505 a 0.0525 y de acuerdo con el cálculo
siguiente: Multiplicar los ml de disolución requeridos en la titulación por la
concentración de ésta en g/ml. El título es expresado indicando que 10 ml de la
disolución A + B corresponden a (x) gramos de azúcar invertido; este valor fue
utilizado en el cálculo de las disoluciones problema.
Parte 2. Determinación de los reductores directos
40
1. Pesar la muestra apropiada (de 5 a 10 g) y colocarla en un matraz volumétrico
de 250 ml, añadir 100 ml de agua, agitar lo suficiente para que todo el material
soluble en agua quede disuelto.
2. Añadir 2 a 10 ml de la disolución saturada de acetato neutro de plomo, agitar
y dejar sedimentar.
3. Añadir poco a poco oxalato de sodio hasta la precipitación del acetato de
plomo, completar el volumen con agua, agitar y filtrar.
4. Transferir el filtrado obtenido a una bureta y titular de acuerdo al paso 2 de la
primera parte.
Parte 3. Determinación de reductores totales
1. Determinación de la muestra: Pesar una cantidad de muestra apropiada de
semillas (de 5 a 10 g) y colocarla en un matraz Erlenmeyer de 250 ml, añadir
100 ml de agua y agitar.
2. Añadir de 2 a 10 ml de disolución saturada de acetato neutro de plomo, agitar y
dejar sedimentar.
3. Añadir, poco a poco, oxalato de sodio o de potasio hasta la total precipitación
del acetato de plomo. Filtrar en un matraz volumétrico de 250 ml.
4. Lavar tres veces el matraz Erlenmeyer y el filtro con 20 ml de agua, recibir el
agua de lavado en un matraz volumétrico.
5. Añadir 10 ml de HCl concentrado al matraz volumétrico que contiene el filtrado
obtenido en la digestión. Calentar a 65 °C por el tiempo de 15 min y después
enfriar.
6. Neutralizar con hidróxido de sodio 1 N y completar el volumen con agua.
Transferir a una bureta y titular de acuerdo al paso 2 de la parte 1.
7. La expresión de resultados fue mediante la siguiente ecuación:
A (%) = 25000*T V*P (13)
En donde: A = porcentaje de azucares reductores directos en porcentaje (%); T
= Título de la disolución A + B en gramos de azúcar invertido; V = Volumen de
la disolución problema, empleado en la titulación de 10 ml de la disolución A +
B en mililitros; P = Peso de la muestra, en gramos.
41
6.3.1.5. Extracción de aceite en la semilla
La extracción y determinación del porcentaje de aceite contenido en las semillas de
calabaza hedionda, cáscara de semilla de calabaza de castilla, calabaza de castilla
criolla con y sin cáscara, fue realizada por medio de la técnica Soxhlet en un equipo
ST243 Soxtec TM Extraction Unit.
Metodología:
1. Lavar los frascos de aluminio, y secarlos en la estufa por 1 h, a una
temperatura de 105 °C
2. Después llevar al desecador por 40 min
3. Posteriormente realizar la molienda de las muestras, pesar 4 g de cada
muestra con tres repeticiones, colocar en los dedales, y cubrir con algodón.
4. Encender el equipo, este cuenta con dos unidades: la unidad de extracción y
la unidad de control. La unidad de extracción es operada manualmente en
los diversos pasos (al término de cada etapa sonara una alarma, para
continuar con la siguiente etapa se tiene que apagar la alarma en el
“minutero”) y la unidad de control programada dependiendo de las
necesidades del usuario.
5. En este caso las condiciones programadas fueron, una temperatura de 130º
C, por un tiempo de 1 h 38 min, dividido en las tres etapas (ebullición 1 h,
enjuague 20 min, evaporación 15 min, y precalentamiento 3 min).
6. Posterior a eso, colocar los dedales en los adaptadores del equipo de tal
manera que queden enganchados completamente, y centrados con el imán,
para evitar que sean despegados y ocurra un error en la extracción.
7. Después a los frascos de aluminio agregar tres perlas de borosilicato y 50 ml
del solvente a utilizar, en este caso Hexano al 99.6 %, (C6H14).
8. Bajar los dedales, para que entren en contacto con el Hexano.
9. Abrir la llave del agua, y empezar con la etapa de precalentamiento, al
finalizar el precalentamiento pasar directo a la etapa de ebullición.
10. Para la etapa de ebullición la perilla debe estar en modo “ebullición”, y las
llaves cerradas.
42
11. Terminada esta etapa, sonara una alarma. Proceder a abrir las llaves y poner
las perillas en modo “abierto”. Apagar la alarma en el “minutero”. Esta será la
etapa de enjuague.
12. Terminada esta segunda etapa volverá a sonar la alarma. Proceder a cerrar
las llaves, dejar las perillas en modo “abierto” y cerrar la llave del agua.
Apagar la alarma con el “minutero”. Esta etapa será la de evaporación.
13. Sonará la alarma y después vendrá una etapa de enfriamiento, cuando esta
finalice apagar el equipo.
14. Una vez terminado el proceso, retirar los vasos de aluminio, del equipo, y
llevar de nuevo a la estufa de secado por 1 h, a la misma temperatura que al
inicio por 105º C, y después al desecador por un tiempo de 40 min.
15. Al final desechar las muestras con los dedales.
16. Recuperar el solvente utilizado, para utilizarse nuevamente.
17. El contenido de grasa es cuantificado por diferencia de peso entre la muestra
y la grasa removida con la siguiente ecuación:
%A = (VaAP - VaP) /Hrn x 100 (14)
En donde: %A = porcentaje de aceite; VaAP= peso en gramos de Vaso de
aluminio (g) + Aceite (g) + 3 Perlas de borosilicato (g); VaP= Vaso de aluminio
+ 3 Perlas de borosilicato (g); Hrn = harina (g).
6.3.1.6. Digestión por microondas
La digestión por microondas es el mecanismo mediante el cual un sistema cerrado
consigue por incidencia de las microondas altas temperaturas y presiones que en
presencia de mezclas acidas descomponen la materia orgánica a fracciones más
simples, como iones, agua y gases remanentes (NMX-EC-17025-IMNC, 2006). La
digestión por microondas fue realizada con el equipo Preekem modelo WX-6000.
Metodología:
1. Pesar 0.5 g de las muestras secas previamente molidas.
2. Pasar a los tubos de teflón del horno de microondas.
3. Añadir 5 ml de ácido nítrico a cada tubo, tapar y cerrar.
43
4. Poner los tubos en el horno de microondas y ajustar los tiempos,
temperaturas y presión al equipo en cada uno de los pasos de acuerdo a la
siguiente metodología:
• Agregar a los tubos 5 ml de HNO3, en el paso 1 debe estar a una temperatura
de 120° C, una presión de 10 atm y por 6 min.
• En el paso 2 a una temperatura de 150° C, una presión de 20 atm y por 6
min.
• En el paso 3 a una temperatura de 180° C, una presión de 30 atm y por 6
min.
• Y por último en el paso 4 a una temperatura de 200° C, una presión de 40
atm y por 20 min.
5. Al concluir la digestión en el microondas, dejar enfriar, abrir y transferir a
matraces aforados de 100 ml.
6. Aforar con agua tridestilada
7. Finalmente vaciar en tubos tipo Corning de 50 ml, para análisis posteriores.
6.3.1.7. Determinación de fósforo
La determinación de fósforo en las semillas de calabaza de castilla criolla y calabaza
hedionda fue realizada basándose en el método de fósforo por espectrofotometría,
el cual es un método colorimétrico de valoración cuantitativa.
El método propuesto para determinar fosfatos es basado en formación de un hetero
poliácido con el reactivo vanado molíbdico (de color amarillo y soluble en agua) que
absorbe la luz a 430 nm, el equipo usado fue un espectrofotómetro de rango visible,
modelo Genesys 105 vis utilizando la siguiente metodología:
1. Primero preparar dos disoluciones (Disolución de molibdato amónico y meta
vanadato amónico) para hacer el Reactivo de nitromolibdovanadato.
1. Disolución de molibdato amónico: Disolver en agua caliente 100 gramos
de molibdato amónico tetra hidratado, (NH4)6Mo7O24*4H2O; añadir 10 ml
de amoníaco concentrado, transferir a matraz aforado de 1 litro, enfriar,
enrasar y homogeneizar.
44
2. Disolución de meta vanadato amónico: Disolver 2.35 gramos de meta
vanadato amónico, NH4VO3, en un vaso de 500 ml con 400 ml de agua
destilada caliente y añadir lentamente una mezcla previamente
preparada de 7 ml de ácido nítrico concentrado con 13 ml de agua.
Transferir a un matraz aforado de 1000 ml, enfriar, enrasar con agua
destilada y homogeneizar.
3. Preparación del reactivo de nitromolibdovanadato: En un matraz aforado
de 1 litro, mezclar 200 ml de disolución de molibdato amónico con 200 ml
de disolución de meta vanadato amónico; añadir 134 ml de ácido nítrico
concentrado y completar con agua destilada hasta el enrase.
2. Preparar una curva de calibrado según el siguiente procedimiento
1. Pesar 4.394 gramos de fosfato mono potásico patrón, previamente
desecado, disolver en un matraz aforado de 1 litro con agua destilada,
enrasar y homogeneizar. Esta disolución madre contiene 1 miligramo de
fósforo por litro (pesar la cantidad indicada y hacer la corrección adecuada
en los cálculos).
2. Preparar disoluciones de calibrado pasando porciones de 1, 2, 3 y 4 ml a
matraces aforados de 100 ml, enrasar con agua destilada y
homogeneizar. Las disoluciones así preparadas corresponden a
concentraciones de 10, 20, 30 y 40 miligramos/litro.
3. Pasar 10 ml de cada una de las disoluciones de calibrado a tubos de
ensayo de 30 ml con boca esmerilada, junto con 10 ml de reactivo de
nitromolibdovanadato; tapar y mezclar. Proceder igualmente con un
blanco formado con 10 ml de agua destilada y esperar 10 minutos para el
desarrollo del color.
4. Leer la absorbancia a 430 nm frente al blanco a absorbancia cero.
3. Poner 2 ml de la muestra previamente digerida en tubos tipo Corning y 2 ml
de reactivo de nitromolibdovanadato. Mezclar y dejar reposar 10 minutos.
Proceder análogamente con un blanco formado por 1 ml de agua destilada y
1 ml del reactivo.
45
4. Leer la absorbancia a 430 nm, calibrando el 100 % de transmitancia
(absorbancia 0), con el blanco.
6.3.1.8. Determinación de calcio, magnesio, zinc y hierro
La determinación de estos minerales fue realizada por espectrofotometría de
absorción atómica. Esta es un método instrumental que está basado en la
atomización del analito en matriz líquida y que utiliza comúnmente un nebulizador
pre quemador (o cámara de nebulización) para crear una niebla de la muestra y un
quemador con forma de ranura que da una llama con una longitud de trayecto más
larga, en caso de que la transmisión de energía inicial al analito sea por el método
"de llama". La niebla atómica es desolvatada y expuesta a una energía a una
determinada longitud de onda emitida ya sea por la dicha llama, o una Lámpara de
Cátodo hueco construida con el mismo analito a determinar o una Lámpara de
Descarga de Electrones (EDL).
La temperatura de la llama es lo bastante baja para que la llama de por sí no excite
los átomos de la muestra de su estado fundamental. El nebulizador y usar la llama
para desolvatar y atomizar la muestra, hacer la excitación de los átomos del analito
por el uso de lámparas que brillan a través de la llama a diversas longitudes de onda
para cada tipo de analito.
En absorción atómica la cantidad de luz absorbida después de pasar a través de la
llama determina la cantidad de analito existente en la muestra. La determinación de
calcio, magnesio, zinc y hierro fue realizada con el equipo Aurora Instruments-1200.
Metodología:
1. Coloque la lámpara correspondiente al elemento (Ca, Mg, Fe y Zn) a medir
en cualquiera de las posiciones del carrusel del equipo. Verifique que las
entradas de pines coincidan con las de la lámpara, no fuerce su ajuste y
poner el tornillo suavemente.
2. Verificar que haya suficiente solución para la sonda (generalmente es
utilizado HNO3 al 5%).
3. Encender el equipo e iniciar el programa en la computadora (ícono Aurora AI
1200 en el escritorio).
46
4. Verifique que haya comunicación con el equipo. Cuando aparece la palomita
verde en “AI 1200 connected” dar click en “Continue”. Mostrará la última
condición con la que fue trabajado, tardando unos minutos en fijar la longitud
de onda de la última lámpara y mineral/metal, utilizado.
5. Dé click al ícono “File/Open/Method” para seleccionar el elemento (Ca, Mg,
Fe y Zn) a analizar, observará que aparecerá una tabla periódica, seleccione
en la tabla el elemento. Dar click al elemento, aparecerán, en la parte inferior
de la ventana los métodos ya guardados, seleccione uno de ellos. La
computadora verifica las condiciones de la lámpara en la ventana derecha y
es enviado a la ventana izquierda (ventana de trabajo), dar click en la flecha
y después dar click en “yes”.
6. El equipo fija entonces la longitud de onda correspondiente al elemento a
leer. En ese momento no realizar ningún ajuste al software ni al equipo.
7. Verifique con la tarjeta (cleaning and alignment strip) en el quemador, la
alineación. Si la lámpara está alineada, procederá a fijar a 70% la intensidad
de la lámpara. La intensidad adecuada (entre 70 y 80%) será alcanzada al
encontrar el pico máximo y con la auto ganancia.
8. Debe ajustarse la alineación de la lámpara (botón de auto en la primera pestaña) hasta que aparezca una gráfica que observe una distribución normal.
9. En este punto el equipo está en condiciones para encender la flama y
comenzar a leer. Dar click entonces al icono S (single) o B (batch) para
alimentar el nombre, tiempo de integración y concentración, esto tanto para
las muestras y para la curva en su caso.
10. Para encender la flama, es recomendado subir el quemador a la altura
suficiente (1 cm abajo del piloto) para que la flama logre encenderlo
(generalmente es entre 7 a 8 mil steps). Esto es fijado en el ícono de la
pantalla del quemador.
11. Hasta este punto es cuando los cilindros de los gases son abiertos. Verifique
nuevamente que la presión de los gases es adecuada para trabajar (mayores
a 70 psi en acetileno y/o 40 psi en aire). Las perillas están ajustadas a la
presión de trabajo del equipo. Usted solo debe abrir las llaves de los cilindros
47
y las manillas o llaves de paso cercanas al equipo, encender el extractor de
la campana.
12. El quemador está a una altura adecuada para que la flama alcance a
encender el quemador, dar click a “ignite” (tercera pestaña de la ventana de
trabajo), observar la salida de vapor (mezcla de acetileno y aire).
13. El piloto sale y enciende la flama. De manera ideal encender en un primer
intento, si no es así (el equipo no ha sido usado por un tiempo o hay humedad
en el ambiente) intentar otra vez (cuando no enciende la flama, aparece el
mensaje: “flame failure! Fuel turned off”) y dar click nuevamente al botón de
ignite.
14. Ahora comenzará con la lectura de las muestras. Independientemente del
tipo de método, dar I al ícono del triángulo que indica leer ►.
15. Coloque las muestras dentro de la sonda conforme el programa lo pida.
16. Asegúrese de introducir la sonda al líquido y que este no aspire aire.
17. Concluyendo las lecturas, primeramente, apagar la flama (“shut off”) *. Y
cerrar el programa y apague el equipo.
6.4. Elaboración de un producto con ingrediente de semillas de calabaza.
La caracterización física y química de semillas de calabaza nace para dar respuesta
a un entorno interconectado que, apuesta a la producción flexible y eficiente de
alimentos nutritivos, la integración del consumidor a los procesos de innovación y la
elaboración de cadenas de valor colaborativas con una mejor adaptación al
entorno. Esto tomando en cuenta la Agroindustria 4.0, donde la gestión de
los procesos productivos es óptima, logrando que estos sean más seguros, de
mayor calidad y en menos tiempo. La Agroindustria 4.0 incluye sistemas de
producción inteligentes y eficientes, que permitan un mejor control de la trazabilidad
de las materias primas, aprovechamiento de los recursos, minimizar los defectos de
fabricación, un ahorro en costos y disminución de los posibles riesgos (Urriola &
Cuvi, 1986).
48
6.4.1. Metodología para la elaboración de un aderezo de semillas de calabaza
Las Figuras 9 y 10 presentan la metodología utilizada para realizar la elaboración
manual de los aderezos y en caso de que se quieran industrializar también se
muestran con flechas las características físicas en cada una de las fases del
proceso. En el procesamiento al inicio se tiene las semillas almacenadas en silos, y
para esto es necesario conocer la densidad aparente para saber el volumen x masa
que ocupara incluyendo poros y huecos y humedad para alargar la vida de anaquel
y evitar el desarrollo microbiológico y deterioro químico, estos silos tienen una tolva
al final y para ello es necesario saber el coeficiente de fricción interna, así como la
relación de aspecto y la forma para que las semillas tengan un buen deslizamiento.
Las semillas son transportadas a otras máquinas a través de bandas y para ello es
necesario conocer el material en que se deslice mejor y en menor tiempo la materia
prima y el ángulo de inclinación de estas bandas, para la limpieza hay que saber la
forma de las semillas para el comportamiento que están tengan a través de fuerzas
aerodinámicas, las dimensiones de las semillas y el tamaño de partícula para el
diseño de máquinas limpiadoras. Para el descascarillado es fundamental también
conocer el tamaño y forma de estas para el diseño de máquinas descascarilladoras.
En el pesado, conocer el peso de cada una de las semillas
En la molienda el tiempo de molienda, la fuerza y el molino, conocer la conductividad
eléctrica también es importante porque la conductividad eléctrica de las harinas
indica que son buen conductor de energía y facilita el procesamiento de estas.
Además, para saber el contenido de sales de la materia prima.
Y como producto final se obtiene un aderezo con gran aporte nutricional.
49
Figura 9. Metodología del proceso para la elaboración de los aderezos de semillas tostadas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara.
Tamaño
Forma
Cribado
Tamaño
Forma
Conductividad eléctrica
Fricción interna
Densidad
Valor nutricional
Fricción externa
50
Figura 10. Metodología del proceso para la elaboración de los aderezos de semillas remojadas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara.
Valor nutricional
Fricción externa
Tamaño
Forma
Fricción interna
Tamaño
Forma
Cribado
Conductividad eléctrica
Densidad
51
~ Recepción de materias primas: Recibir las materias primas: semillas de
calabaza de castilla con y sin cáscara, semillas de calabaza hedionda con
cáscara, jugo de limón, agua, pimienta negra, sal en polvo, cebolla en polvo,
ajo en polvo y chile en polvo. Las semillas fueron depositadas inicialmente
en contenedores.
~ Limpieza y cribado: Limpiar las semillas manualmente y cribarlas, las
semillas de calabaza de castilla con cáscara (SCCCC) fueron cribadas con
un tamaño de partícula de 8.72 mm, las semillas de calabaza de castilla sin
cáscara (SCCSC) con un tamaño de 6.48 mm y las semillas de calabaza
hedionda con cáscara (SCHCC) con un tamaño de 7.55 mm.
~ Descascarillado: Descascarillar manualmente las semillas con la ayuda de
guantes de Látex.
~ Pesado: Pesar 200 g de semillas de calabaza de castilla con cáscara
(SCCCC), semillas de calabaza de castilla sin cáscara (SCCSC) y semillas
de calabaza hedionda con cáscara (SCHCC). Estas por duplicado (Figura
11).
Figura 11. Pesado de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara.
~ Remojo o tostado: Realizar un remojo por 6 h en 163 g de agua potable
previamente antes del procesamiento o un tostado por 3 min a 45° C (Figura
12).
52
Figura 12. Remojo y tostado de las semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara.
~ Molienda: Moler las semillas tostadas con 326 g de agua potable, las
semillas remojadas con 163 g de agua y añadir en la molienda 5 g de limón,
6 g de levadura nutricional (para dar un poco de sabor y textura como queso),
5 g de chile de árbol en polvo, 8 g de sal, 2 g de pimienta negra en polvo, 2
g de ajo en polvo y 2 g de cebolla en polvo (Figura 13).
Figura 13. Molienda de semillas e ingredientes.
~ Decorar y Envasar: Colocar el producto en frascos esterilizados, añadiendo
hierbas frescas y cerrar hasta su análisis sensorial (Figura 14 y 15).
53
Figura 14. Envasado y decorado.
Figura 15. Producto terminado.
6.4.2. Evaluación sensorial
La evaluación sensorial fue realizada con 20 panelistas, en la CARAO UASLP, para
la determinar la aceptación de los aderezos elaborados a partir de las semillas de
calabaza. Las variables evaluadas fueron: sabor, olor, color, textura y apariencia.
Mediante una prueba de ordenamiento, fue seleccionado el mejor aderezo,
considerando un orden de escala de “mejor a peor” en cada muestra, desde la de
mayor estímulo provocado por un descriptor sensorial (aspecto) hasta la de menor
o poco estímulo, y de esa manera clasificar el aderezo más aceptable. En el capítulo
anexos puede apreciarse la imagen del experimento real (Figura 19).
54
7.0. CAPÍTULO VII. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Los datos básicos de las características físicas y químicas de las semillas de
calabaza de castilla y calabaza hedionda obtenidos durante el desarrollo de este
trabajo, son presentados en Figuras y Tablas, en los anexos están las Tablas
completas con una numeración y subíndice (a) y en el texto están los resúmenes de
las Tablas con numeración y subíndice (b), las Figuras correspondientes a los datos
también están en el texto (de la tabla 24b y 26b hay sub índice en anexos 24a1 para
humedad, 24a2 para proteína cruda, 24a3 para carbohidratos, 24a4 para aceite,
26a1 para fósforo, 26a2 para zinc, 26a3 para hierro, 26a4 para magnesio y 26a5
para calcio).
7.1. Características físicas
7.1.1. Dimensiones
La Tabla 13b muestra los valores obtenidos de las dimensiones de las semillas de
calabaza hedionda, calabaza de castilla con y sin cáscara, los valores son
expresados como promedio ± desviación estándar (n = 100, 100, 150)
respectivamente. Las dimensiones (largo, ancho y grosor) de estas semillas fueron
determinadas con el método mencionado en el capítulo 6.2.1.1.
Tabla 13b. Dimensiones de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza
de castilla con y sin cáscara
Muestra Ancho
(mm)
Largo
(mm)
Grosor
(mm)
SCCCC 8.72 a* 21.76 a 2.41 b
(± 0.87) (± 2.19) (± 0.42)
SCCSC 6.48 c 18.28 b 2.06 c
(± 1.46) (± 0.82) (± 0.45)
SCHCC 7.55 b 10.21 c 3.52 a
(± 0.66) (± 0.81) (± 0.49)
*valores con la misma letra dentro de las columnas de ancho, largo y grosor son iguales de acuerdo
a la prueba de Tukey con una p≤0.05. Dónde: SCCCC = semilla de calabaza de castilla con cáscara; SCCSC = semilla de calabaza de castilla sin cáscara; SCHCC = semilla de calabaza hedionda con cáscara.
La Tabla 13c muestra en rojo el ejemplo de cómo fue determinado el promedio y
desviación estándar de las 100 muestras realizadas en este caso para las semillas
55
de calabaza de castilla con cáscara. Este procedimiento fue realizado en todos los
ensayos físicos y químicos.
Tabla 13c. Dimensiones de semillas de calabaza de castilla con cáscara
n Muestra Ancho (mm)
Largo (mm)
Grosor (mm)
n Muestra Ancho (mm)
Largo (mm)
Grosor (mm)
n Muestra Ancho (mm)
Largo (mm)
Grosor (mm)
1 SCCCC 10.60 25.80 2.20 35 SCCCC 7.00 19.80 2.20 69 SCCCC 7.90 18.90 2.20
2 SCCCC 9.60 24.70 3.70 36 SCCCC 9.30 26.70 2.90 70 SCCCC 7.50 21.20 2.40
3 SCCCC 9.00 20.20 2.30 37 SCCCC 8.70 21.70 1.80 71 SCCCC 8.00 21.70 2.10
4 SCCCC 10.50 22.40 2.80 38 SCCCC 8.30 21.30 2.30 72 SCCCC 9.80 25.70 2.90
5 SCCCC 9.20 20.60 2.10 39 SCCCC 8.70 23.70 2.80 73 SCCCC 9.80 22.70 2.30
6 SCCCC 8.70 23.20 2.60 40 SCCCC 9.20 23.60 2.60 74 SCCCC 8.10 20.00 2.10
7 SCCCC 8.60 22.30 3.30 41 SCCCC 8.00 23.90 2.10 75 SCCCC 8.20 24.00 2.50
8 SCCCC 9.30 22.80 2.70 42 SCCCC 10.40 25.00 2.30 76 SCCCC 7.70 19.00 2.20
9 SCCCC 8.10 18.90 2.20 43 SCCCC 8.60 21.00 2.10 77 SCCCC 7.70 22.80 2.50
10 SCCCC 7.90 21.00 2.00 44 SCCCC 7.10 17.30 2.30 78 SCCCC 9.50 24.90 3.40
11 SCCCC 8.70 19.50 2.00 45 SCCCC 8.20 24.00 2.00 79 SCCCC 8.80 19.40 1.70
12 SCCCC 9.80 24.40 2.60 46 SCCCC 9.00 23.30 2.80 80 SCCCC 8.60 19.80 2.00
13 SCCCC 7.90 22.70 2.00 47 SCCCC 9.20 24.70 2.40 81 SCCCC 8.50 24.00 2.90
14 SCCCC 9.10 24.20 3.90 48 SCCCC 8.20 23.20 2.90 82 SCCCC 7.60 19.10 2.20
15 SCCCC 9.20 24.30 2.50 49 SCCCC 8.10 19.00 2.30 83 SCCCC 10.00 23.40 2.80
16 SCCCC 7.90 19.00 2.20 50 SCCCC 7.30 20.60 2.10 84 SCCCC 9.50 20.50 2.60
17 SCCCC 8.10 22.30 2.00 51 SCCCC 9.30 24.20 2.60 85 SCCCC 9.50 23.70 2.50
18 SCCCC 8.40 23.20 2.50 52 SCCCC 8.20 22.90 3.00 86 SCCCC 10.50 22.50 2.80
19 SCCCC 7.40 19.00 2.60 53 SCCCC 8.90 20.50 2.50 87 SCCCC 8.10 18.20 2.50
20 SCCCC 10.20 23.60 2.40 54 SCCCC 8.00 19.30 2.20 88 SCCCC 8.70 18.50 1.60
21 SCCCC 8.10 20.70 2.40 55 SCCCC 8.10 22.60 2.20 89 SCCCC 8.60 22.30 3.10
22 SCCCC 8.50 19.90 2.30 56 SCCCC 9.20 23.90 2.50 90 SCCCC 7.70 20.80 2.00
23 SCCCC 8.20 19.80 2.20 57 SCCCC 7.80 17.60 1.50 91 SCCCC 9.10 20.80 2.00
24 SCCCC 7.80 19.00 2.60 58 SCCCC 8.80 25.40 2.40 92 SCCCC 7.30 21.40 2.00
25 SCCCC 9.60 23.80 2.10 59 SCCCC 8.40 22.80 2.60 93 SCCCC 10.40 19.70 3.00
26 SCCCC 8.80 21.00 1.70 60 SCCCC 9.20 21.60 2.20 94 SCCCC 9.00 22.50 3.10
27 SCCCC 8.30 22.90 2.80 61 SCCCC 8.60 21.20 2.50 95 SCCCC 9.10 18.20 2.70
28 SCCCC 10.00 24.10 2.90 62 SCCCC 7.20 20.70 2.60 96 SCCCC 8.90 22.30 2.70
29 SCCCC 8.90 20.80 1.90 63 SCCCC 9.10 24.10 2.10 97 SCCCC 9.60 23.90 2.50
30 SCCCC 9.40 21.70 2.30 64 SCCCC 7.60 23.10 2.00 98 SCCCC 11.80 26.80 2.80
31 SCCCC 8.50 19.00 2.20 65 SCCCC 9.50 22.80 2.60 99 SCCCC 8.40 17.60 2.20
32 SCCCC 8.50 20.30 2.30 66 SCCCC 8.70 19.70 2.30 100 SCCCC 9.20 20.70 2.30
33 SCCCC 8.40 20.80 2.60 67 SCCCC 9.20 19.80 2.00 Promedio SCCCC 8.72 21.76 2.41
34 SCCCC 8.10 18.90 1.70 68 SCCCC 8.30 21.40 2.40 Desviación Estándar
SCCCC 0.87 2.19 0.42
Dónde: SCCCC = semilla de calabaza de castilla con cáscara.
56
Aviara, Gwandzang, & Haque (1999), señalaron que el tamaño de las semillas es
considerado uno de los parámetros más importantes en el procesamiento. Las
mismas fueron clasificadas en 3 categorías según el largo:
Semillas de calabaza de castilla con cascara: grandes (L > 25 mm), medianas (19
mm < L ≤ 25 mm) y pequeñas (L ≤ 18 mm).
Semillas de calabaza de castilla sin cascara: grandes (L > 21 mm), medianas (16
mm < L ≤ 21 mm) y pequeñas (L ≤ 15 mm).
Semillas de calabaza hedionda: grandes (L > 12 mm), medianas (10 mm < L ≤ 12
mm) y pequeñas (L ≤ 9 mm).
La Tabla 13b muestra la distribución de tamaño de las mismas y los valores son
expresados como promedio ± desviación estándar (n = 100, 100 y 150
respectivamente). La dimensión de largo (L) varió entre 10-22 mm, la de ancho (W)
varió entre 6.3-9 mm y la de grosor (T) varió entre 2-3.6 mm, encontrándose el
mayor número de semillas en el rango de tamaño medio de largo (10 ≤ L ≤ 22 mm),
ancho (6,3 ≤ W ≤ 9 mm) y grosor (2 ≤ T ≤ 3.6 mm). Lo cual representa el 28.5 % de
las semillas de calabaza hedionda, el 28.5% de semillas de calabaza de castillas
con cáscara y 43% de las semillas de calabaza de castilla sin cáscara
respectivamente en el rango de cada dimensión.
Las dimensiones de las semillas de calabaza hedionda, calabaza de castilla con y
sin cáscara presentaron valores significativamente diferentes (p<.0001) (Tabla 13b).
El tamaño de las semillas de calabaza hedionda y calabaza de castilla, fue descrito
a través de sus dimensiones características. Mohsenin (1986), mencionó que es
importante conocer las dimensiones características para la determinación del
tamaño de apertura y otros parámetros en el diseño de maquinarias (máquinas para
limpieza, descascarillado etc.).
Los coeficientes de correlación mostraron las relaciones entre las dimensiones
características entre sí. El largo es la dimensión que tiene más variación comparada
con el grosor, es por eso que el grosor puede ser utilizado convenientemente para
la determinación de parámetros constructivos de la maquinaria en procesos
57
agroindustriales. Los valores promedio de las dimensiones, presentados en la Tabla
13b muestran una relación en los valores de grosor entre ancho (T/W) y ancho entre
largo (W/L) para las semillas de calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara y
para las semillas de calabaza hedionda con cáscara solo una relación entre los
valores promedio de grosor entre ancho (T/W) para los diferentes procesamientos.
La relación para las semillas de calabaza con cáscara es de T/W = 0.28 y W/L =
0.40, la relación para las semillas de calabaza de castilla sin cáscara es de T/W =
0.32 y W/L = 0.35 y para las semillas de calabaza hedionda con cáscara T/W 0.47
respectivamente.
En las semillas de calabaza hedionda, calabaza de castilla con cáscara y sin
cáscara el grosor presenta menos desviación estándar lo que significa que estas
tienen un grosor relativamente homogéneo, el cual es un factor a considerar durante
los procesos de transformación de estas semillas (limpieza, descascarillado,
clasificación por tamaños etc.).
Todas las relaciones establecidas fueron altamente significativas (p≤.01). La
relación L/T presentó el mayor valor. Este hecho indica que la longitud de las
semillas está negativamente relacionada con su ancho, grosor y diámetro
geométrico.
Cáseres, Piña, Berrio, & Leal (2010) reportaron valores de largo y ancho en la
variedad de C. moschata Duch. ex Lam (7.4 mm de ancho; 11.5 mm de largo),
Martínez I. A. (2010) reportan valores de largo y ancho en las semillas de calabaza
(C. máxima Duch) de (21.5 mm de largo; 13 mm de ancho), Delgado-Paredes,
Rojas-Idrogo, Sencie-Tarazona, & Vázques-Núñez (2014) también reportaron
valores de largo y ancho en diferentes variedades de semillas con calabaza
completas como lo son: C. ficifolia (20.1 mm de largo; 11.7 mm de ancho) C. máxima
(15.1 mm de largo; 8.3 mm de ancho), C. moschata (16.9 mm de largo; 8.5 mm de
ancho), C. moschata Chuyan (17.6 mm de largo; 8.8 mm de ancho), Cucúrbita spp.
“zapallo criollo” (15.1 mm de largo; 8.3 mm de ancho) y Lagenaria ciceraria (14.1
mm de largo; 7.5 mm de ancho) y Belgrano & Pozner (2017) reporta valores de largo
y ancho en semillas de calabaza hedionda (9 mm de largo y 7 mm de ancho). Ellos
58
no reportan valores de grosor, sin embargo, Valenzuela (2011) menciona valores
de largo ancho y grosor para la semilla de calabaza C. moschata, Dúchense de (8-
21 mm de largo; 5-10.15 mm, de ancho; 2.75-3.032 mm de grosor). Los valores
obtenidos en este trabajo de investigación para las semillas de calabaza de castilla
criolla y calabaza hedionda están en el rango de lo reportado en la bibliografía.
7.1.2. Diámetro geométrico, área superficial específica y relación de aspecto
Los resultados del diámetro geométrico, área superficial específica y relación de
aspecto de las semillas de calabaza de castilla con y sin cáscara y calabaza
hedionda son presentadas en la Tabla 14b y los valores son expresados como
promedio ± desviación estándar. La forma de estas semillas fue determinada con
los métodos mencionados en los capítulos 6.2.1.2, 6.2.1.3 y 6.2.1.4.
Tabla 14b. Forma de las semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de
castilla con y sin cáscara
Muestra
Diámetro
geométrico
(mm)
Área superficial
específica
(mm 2)
Relación de
aspecto (%)
SCCCC 7.68 a* 187.21 b 40.26 b
(± 0.76) (± 37.60) (± 3.93)
SCCSC 6.21 c 122.98 c 35.45 c
(± 0.73) (± 28.82) (± 3.80)
SCHCC 6.45 b 131.27 a 74.20 a
(± 0.42) (± 16.84) (± 6.39)
*valores con la misma letra dentro de las columnas de diámetro geométrico, área superficial y relación de aspecto son iguales de acuerdo a la prueba de Tukey con una p≤0.05. Dónde: SCCCC = semilla de calabaza de castilla con cáscara; SCCSC = semilla de calabaza de castilla sin cáscara; SCHCC = semilla de calabaza hedionda con cáscara.
El diámetro geométrico (Dg) varió entre 6.21 – 7.68 mm, con un promedio de 6.45
mm para las semillas de calabaza hedionda, 6.21 mm para la semilla de calabaza
de castilla sin cáscara y para las semillas calabaza de castilla con cáscara (Dg =
7.68 mm) (Tabla 14b). Estos valores de Dg fueron menores que la longitud y el
ancho, pero mayores que el grosor (Tabla 13b).
Ordóñez, Gely, & Pagano (2012) mencionaron que el diámetro geométrico es
dependiente del contenido de humedad en las semillas; sin embargo, el ancho y el
grosor no son influenciados por el contenido de humedad, solamente la longitud de
59
las semillas y por consecuente afecta al diámetro geométrico. Esto es muy
importante en los resultados que presenta este estudio.
El área superficial específica de una semilla (S) y la relación de aspecto (R) fueron
S = 131.27 mm 2, R = 74.20%; S = 187.21 mm 2, R = 40.26 % y S = 122.98 mm 2, R
= 35.45 % para las semillas de calabaza hedionda, calabaza con cáscara y calabaza
sin cáscara, respectivamente, con diferencias significativas (p<.0001) entre ambos
tipos de semillas (Tabla 14b). Los valores de relación de aspecto calculados
muestran la tendencia de que la forma de las semillas de calabaza hedionda y
calabaza de castilla es un elipsoide piriforme más que hacia un elipsoide. No existen
estudios relacionados con área superficial (S) y relación aspecto (R), de las semillas
de calabaza de castilla criolla y calabaza hedionda.
Teniendo en cuenta la baja relación de aspecto (R), puede deducirse que las
semillas de calabaza de castilla y calabaza hedionda presentarán una mayor
tendencia a deslizarse sobre su superficie plana que a rodar. Esta tendencia a rodar
o deslizarse es muy importante para el diseño de tolvas y otros aparatos importantes
debido a que las semillas más planas caen más fácilmente que las que ruedan sobre
las superficies estructurales.
Las semillas de calabazas presentaron tres semiejes desiguales, cuya forma para
las semillas de calabaza de castilla fue piriforme y para las semillas de calabaza
hedionda subglobosa y piriforme. Delgado-Paredes, Rojas-Idrogo, Sencie-
Tarazona, & Vázques-Núñez (2014) determinaron la forma y las dimensiones de las
semillas de C. moschata (chuyan); ellos presentaron el promedio de las
dimensiones (largo 17.6 y ancho de 8.8 mm) y mencionaron que presenta una forma
piriforme al igual que en esta investigación, Belgrano & Pozner (2017) mencionan
que las semillas de calabaza hedionda (A. undulata) tienen una forma aovado
eliptica. Estos índices de forma son importantes para la predicción analítica de su
comportamiento al secado. Este parámetro es necesario para la realización de la
limpieza de las semillas a través del uso de fuerzas aerodinámicas. Estas
características de forma y tamaño son muy importantes para diseñar y fabricar
máquinas automatizadas.
60
Existe muy poca información del estudio de estas características físicas (relación de
aspecto, área superficial y diámetro geométrico).
7.1.3. Peso
La Tabla 15b muestra el peso de las mismas y los valores son expresados como
promedio ± desviación estándar. El peso de estas semillas fue determinado con el
método mencionado en el capítulo 6.2.1.5.
Tabla 15b. Peso de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla
con y sin cáscara
Muestra Peso 100 semillas (g) Peso 1000 semillas (g)
SCCCC 16.55 a* 165.49 a*
(± 0.14) (± 1.36)
SCCSC 14.12 c 141.23 c
(± 0.12) (± 1.16)
SCHCC 15.51 b 155.12 b
(± 0.07) (± 0.66)
*valores con la misma letra dentro de las columnas de peso 100 semillas y peso 1000 semillas son iguales de acuerdo a la prueba de Tukey con una p≤0.05. Dónde: SCCCC = semilla de calabaza de castilla con cáscara; SCCSC = semilla de calabaza de
castilla sin cáscara; SCHCC = semilla de calabaza hedionda con cáscara.
De acuerdo con el análisis estadístico el peso de mil semillas (W 1000), fue diferente
estadísticamente (p<.0001) entre las diferentes semillas (Tabla 15b). Grisales,
López, Abadia, Restrepo, & Cabrera (2009) reportan valores del peso de 100
semillas de calabaza (C. moschata Duch, 15.0 ±1.99 g), los valores obtenidos en
esta investigación son muy similares a lo encontrado en las semillas de calabaza de
castilla (C. moschata 15.335 ± 1.215 g) y en las semillas de calabaza hedionda (A.
undulata 15.51 g), el peso de las semillas está en el rango de lo reportado en la
bibliografía.
7.1.4. Fricción interna
La Tabla 16b presenta los resultados de fricción interna de las semillas de calabaza
de castilla con cáscara, calabaza de castilla sin cáscara y calabaza hedionda.
Muestran la fricción interna de las semillas y los valores son expresados como
promedio ± desviación estándar (n = 10, 10, 10) respectivamente.
61
Tabla 16b. Fricción interna de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza
de castilla con y sin cáscara
Muestra µi (-)
SCCCC 0.42 b*
(± 0.05)
SCCSC 0.41 b
(± 0.05)
SCHCC 0.44 b
(± 0.05)
CSCC 0.53 a
(± 0.06)
*valores con la misma letra dentro de la columna de µ (-) son iguales de acuerdo a la prueba de Tukey con una p≤0.05. Donde: SCCCC = semilla de calabaza de castilla con cáscara; SCCSC = semilla de calabaza de castilla sin cáscara; SCHCC = semilla de calabaza hedionda con cáscara; CSCC = cáscara de semilla de calabaza de castilla.
El coeficiente de fricción interna promedio fueron los siguientes: para las semillas
de calabaza hedionda con cáscara, 0.44 ± 0.05; calabaza con cáscara, 0.42 ± 0.05;
calabaza sin cáscara, 0.41± 0.05 y cáscara, 0.53 ± 0.06. De acuerdo con el análisis
estadístico los valores de fricción interna en las semillas fueron diferentes (p<.0001)
entre las muestras. Sin embargo, de acuerdo con la prueba de Tukey (Tabla 16b) el
valor de fricción interna de las semillas es igual, solo es diferente el valor de la
cáscara.
La Tabla 17b muestra la fricción interna de las mismas y los valores son expresados
como promedio ± desviación estándar (n = 100).
Tabla 17b. Fricción interna de harinas de semillas de calabaza hedionda con
cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara
*valores con la misma letra dentro de la columna de µ (-) son iguales de acuerdo a la prueba de Tukey con una p≤0.05. Donde: HSCCCC = harina de semilla de calabaza de castilla con cáscara; HSCCSC = harina de semilla de calabaza de castilla sin cáscara; HSCHCC = harina de semilla de calabaza hedionda con cáscara.
Muestra µi (-)
HSCCCC 0.7 b*
(± 0.07)
HSCCSC 0.74 a
(± 0.08)
HSCHCC 0.51 c
(± 0.07)
62
Los valores de fricción interna promedio fueron los siguientes: para las harinas de
semillas de harina de calabaza hedionda, 0.51 ± 0.07; harina de calabaza de castilla
con cáscara, 0.7 ± 0.07 y harina de calabaza de castilla sin cáscara, 0.74 ± 0.08. De
acuerdo con el análisis estadístico los valores de fricción interna en las harinas de
semillas fueron diferentes (p<.0001), la prueba de Tukey confirma que son
diferentes entre sí (Tabla 17b).
Guerra (2017) reporta valores de fricción interna de las semillas y harinas de
calabaza hedionda, calabaza de castilla criolla con y sin cáscara (Tabla 18), los
cuales son diferentes a los encontrados en esta investigación (Tabla 16b y 17b).
Estos valores son diferentes debido a que la fricción interna está influenciada por el
tamaño, forma, volumen, densidad, superficie del grano, contenido de humedad y
orientación de las partículas que conforman las semillas. De acuerdo con Ospina
(2001) y Mohsenin (1986), la fricción interna varia con el contenido de humedad
debido a la lámina superficial de humedad que rodea a cada partícula y a los efectos
de tensión superficial que predominan sobre los productos granulares. Igualmente,
cuando un silo es llenado, el ángulo de reposo puede variar dependiendo de la altura
de llenado y el flujo del material.
Tabla 18. Valores de fricción interna en semillas
Guerra (2017).
63
Según Barbosa, Ortega, Juliano, & Yan (2005) una fricción interna cercana a 0.35
indica libre fluidez, de 0.35 – 0.45 algo cohesivo, 0.45 – 0.55 cohesivo (pérdida de
libre fluidez) y para valores mayores de 55 el flujo es limitado. Los resultados de
esta investigación indican que los valores de fricción interna de las semillas de
calabaza de castilla y calabaza hedionda oscilaron en el rango de 0.41 – 0.53, lo
cual indica que son algo cohesivas; asimismo, las harinas de estas semillas
presentaron valores de fricción interna de 0.51 – 0.74, lo cual indica que el flujo de
las harinas es limitado. Los valores de fricción interna de las harinas son más
grandes que los de las semillas completas.
7.1.5. Fricción externa
Los resultados de fricción externa de las semillas de calabaza hedionda, calabaza
de castilla con cáscara y sin cáscara son presentados en Tabla 19b. Los valores de
fricción externa son expresados como promedio ± desviación estándar (n = 10, 10,
10, respectivamente).
Tabla 19b. Fricción externa de semillas de calabaza hedionda con cáscara,
calabaza de castilla con y sin cáscara
Material Vidrio Triplay Lámina de
acero Vitropiso
Tabla de Madera
Tabla de plástico
Muestra
Fricción externa
µe (-)
Fricción externa
µe (-)
Fricción externa
µe (-)
Fricción externa
µe (-)
Fricción externa
µe (-)
Fricción externa
µe (-)
SCCCC 0.29 f* 0.64 a 0.38 e 0.46 d 0.51 c 0.56 b
(± 0.01) (± 0.01) (± 0.01) (± 0.01) (± 0.01) (± 0.01)
SCCSC 0.38 e* 0.78 a 0.44 d 0.49 c 0.63 b 0.64 b
(± 0.01) (± 0.01) (± 0.01) (± 0.01) (± 0.01) (± 0.01)
SCHCC 0.26 f* 0.60 a 0.36 e 0.39 d 0.45 c 0.53 b
(± 0.01) (± 0.01) (± 0.01) (± 0.01) (± 0.01) (± 0.01)
CSCC 0.68 c* 0.76 b 0.59 d 0.56 d 0.76 b 0.82 a
(± 0.01) (± 0.02) (± 0.02) (± 0.01) (± 0.02) (± 0.01)
*valores con la misma letra dentro de las filas de SCCCC, SCCSC, SCHCC y CSCC son iguales de acuerdo a la prueba de Tukey con una p≤0.05. Donde: SCCCC = semilla de calabaza de castilla con cáscara; SCCSC = semilla de calabaza de castilla sin cáscara; SCHCC = semilla de calabaza hedionda con cáscara; CSCC = cáscara de semilla de calabaza de castilla.
La siguiente Tabla 20b muestra la fricción interna de las harinas de semillas y los
valores son expresados como promedio ± desviación estándar (n = 100, 100, 100,
64
respectivamente). La fricción externa de las semillas y harinas fueron determinadas
con el método mencionado en el capítulo 6.2.1.6.
Tabla 20b. Fricción externa de harinas de semillas de calabaza hedionda con
cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara
Material Vidrio Triplay Lámina de
acero Vitropiso
Tabla de Madera
Tabla de plástico
Muestra
Fricción externa
µe (-)
Fricción externa
µe (-)
Fricción externa
µe (-)
Fricción externa
µe (-)
Fricción externa
µe (-)
Fricción externa
µe (-)
HSCCCC 0.94 b* 0.92 b* 0.97 a* 0.92 b* 0.75 a* 0.82 a*
(± 0.01) (± 0.03) (± 0.03) (± 0.02) (± 0.02) (± 0.03)
HSCCSC 0.93 c 0.98 a 0.82 c 0.94 a 0.86 b 0.80 b
(± 0.02) (± 0.02) (± 0.02) (± 0.02) (± 0.01) (± 0.01)
HSCHCC 0.95 a 0.89 c 0.92 b 0.71 c 0.72 c 0.74 c
(± 0.02) (± 0.02) (± 0.02) (± 0.02) (± 0.01) (± 0.01)
*valores con la misma letra dentro de las columnas vidrio, triplay, lamina, vitropiso, tabla de madera y tabla de plástico son iguales de acuerdo a la prueba de Tukey con una p≤0.05. Donde: HSCCCC = harina de semilla de calabaza de castilla con cáscara; HSCCSC = harina de semilla de calabaza de castilla sin cáscara; HSCHCC = harina de semilla de calabaza hedionda con cáscara.
Esta tabla muestra los valores de fricción externa de las harinas de calabaza
hedionda, calabaza de castilla con y sin cáscara, en donde el vidrio fue el que tuvo
menor variación en comparación con la madera. La información del grado de
variación es muy importante para la elección de los materiales para el diseño y
construcción de maquinaria.
De acuerdo con el análisis estadístico, el coeficiente de fricción externa de las
harinas y semillas fueron diferentes (p<.0001) entre las muestras.
Esta diferencia puede resultar de la rugosidad y adhesividad (la rugosidad y
adhesividad tiene diferentes características elástico, viscoso, plástico, etc.) de las
superficies estudiadas. La rugosidad de la superficie interior de los silos puede
calificarse según Ravenet (1992) como: pulidas (D1), lisas (D2), rugosas (D3) y
perfiles corrugados (D4). Así, el acero galvanizado está dentro de D1, mientras que
el acero inoxidable sería una superficie clasificada como D2.
Guerra (2017) reportó valores de fricción externa para semillas de calabaza con
cáscara (vidrio = 0.36 y tabla de madera = 0.50), semillas de calabaza sin cáscara
(vidrio = 0.59 y tabla de madera = 0.58), harina semilla de calabaza con cáscara
65
(vidrio = 0.59 y tabla de madera = 0.81), harina semilla de calabaza sin cáscara
(vidrio = 1 y tabla de madera = 1.24) y semillas de calabaza hedionda con cáscara
(vidrio = 0.22 y tabla de madera = 1.24), comparado con los resultados de esta
investigación en algunos casos fueron muy similares y en otros fueron valores muy
diferentes.
La diferencia entre estos valores registrados del ángulo de fricción externa (ver
Figura 7) puede atribuirse a la dificultad de las semillas a deslizarse unas sobre
otras, debido a la superficie exterior lisa y a la forma de las mismas. Coskuner &
Karababa (2007) y Garnayak, Pradhan, Naik, & Bhatnagar (2008), manifestaron que
el coeficiente de fricción externa es mayor en contenidos de humedad altas por que
el agua presente en las semillas ejerce una fuerza de adhesión en la superficie de
contacto.
Conocer la fricción interna y externa de las semillas y harinas es importante para
determinar la inclinación de salida adecuada en el silo, debido a que la rugosidad
de superficie tiene una importancia mucho más grande.
7.1.6. Cribado
Los resultados del cribado de las harinas de semillas de calabaza son presentados
en la Tabla 21b. El cribado de estas harinas fue determinado con el método
mencionado en el capítulo 6.2.1.7.
Tabla 21b. Cribado de harinas de semillas de calabaza hedionda con cáscara,
calabaza de castilla con y sin cáscara
Número de criba
(mm) 1.99898 1.79578 1.4097 0.4191 0.41402 0.13183 0.00737 0.00381
HSCCCC (g) 4.07 95.66 91.87 2.98 5.42
HSCCSC (g) 0.14 4.39 192.24 3.23
HSCHCC (g) 0.42 9.15 101.50 70.73 18.20
Donde: HSCCCC = harina de semilla de calabaza de castilla con cáscara; HSCCSC = harina de semilla de calabaza de castilla sin cáscara; HSCHCC = harina de semilla de calabaza hedionda con cáscara.
El proceso de cribado fue realizado con un juego de cribas por 10 min, la harina fue
obtenida de las semillas molidas de calabaza hedionda (200 g) de acuerdo con la
Tabla 21b. La mayor cantidad de harina de semilla de calabaza hedionda
66
permaneció en las cribas de 0.4191 y 0.41402 mm. El tamaño óptimo de partícula
para esta harina fue de 0.42 mm. Esto fue determinado con el promedio del tamaño
de partículas de la harina, debido a que en tamaños menores la harina era adherida
en la criba y esta evitaba el paso de la harina.
Del mismo modo para la harina de semilla de calabaza de castilla con cáscara (200
g) la mayor cantidad de harina permanecía en las cribas de 0.4191 y 0.131826 mm.
En este caso no fue determinado el promedio ya que la harina de la semilla quedaba
en la criba de 0.4191 mm y en la criba de 0.131826 quedaba harina, pero en mayor
cantidad fue harina de cáscara. La semilla de calabaza de castilla sin cáscara (200
g) la mayor cantidad de harina permaneció en la criba de 0.4191 mm y en tamaños
menores pasaba muy poca harina y era adherida en la criba evitando el paso a otra
criba.
Actualmente existe muy poca información del proceso de cribado de harinas y
semillas de calabaza hedionda y calabaza de castilla. En algunos casos no es
considerado este proceso físico, lo cual no permite una correcta interpretación para
el adecuado manejo de las semillas y harinas en los diferentes procesos
tecnológicos.
7.1.7. Densidad
Los resultados de densidad aparente de las semillas y harinas de calabaza
hedionda, calabaza de castilla con y sin cáscara, así como la cáscara de las semillas
de calabaza de castilla son presentados en la Tabla 22b, esta muestra la densidad
de las mismas y los valores son expresados como promedio ± desviación estándar
(n = 3) para cada una. La densidad de estas fue determinada con el método
mencionado en el capítulo 6.2.1.8.
La densidad aparente (ρb) de las semillas, harinas y la cáscara mostraron
diferencias significativas (p≤.0001), de acuerdo con la prueba de Tukey (Tabla 22b).
La semilla de calabaza con cáscara y la harina de calabaza con cáscara tienen
estadísticamente la misma densidad aparente (ρb), de igual manera la semilla de
67
calabaza sin cáscara, la semilla de calabaza hedionda con cáscara y la harina de
calabaza hedionda con cáscara son estadísticamente iguales.
Tabla 22b. Densidad aparente de semillas y harinas de semillas de calabaza
hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara
Muestra Densidad (g/cm 3)
SCCCC 0.33 b*
(± 0.01)
SCCSC 0.63 d
(± 0.02)
CSCC 0.07 a
(± 0.01)
SCHCC 0.67 d
(± 0.00)
HSCCCC 0.37 b
(± 0.04)
HSCCSC 0.47 c
(± 0.03)
HSCHCC 0.61 d
(± 0.03)
*valores con la misma letra dentro de la columna de densidad son iguales de acuerdo a la prueba de Tukey con una p≤0.05. Donde: SCCCC = semilla de calabaza de castilla con cáscara; SCCSC = semilla de calabaza de castilla sin cáscara; SCHCC = semilla de calabaza hedionda con cáscara; CSCC = cáscara de semilla de calabaza de castilla; HSCCCC = harina de semilla de calabaza de castilla con cáscara; HSCCSC = harina de semilla de calabaza de castilla sin cáscara; HSCHCC = harina de semilla de calabaza hedionda con cáscara.
Barragan & Bautista (2018) determinaron la densidad de las semillas de chicayota
(C. argyrosperma sororia 0.5312 g/cm 3), con valores similares a los encontrados
en esta investigación. Sin duda, la densidad aparente de estas semillas de
cucurbitáceas es baja. Sishi & Telukdarie (2017) mencionaron que la densidad
aparente es incrementada cuando el contenido de humedad de las semillas
aumenta.
7.1.8. Conductividad eléctrica
Los resultados de conductividad eléctrica de las harinas de semillas de calabaza de
castilla con cáscara, calabaza de castilla sin cáscara y calabaza hedionda son
presentados en la Tabla 23b, y los resultados presentan el promedio y desviación
estándar de la conductividad eléctrica de las harinas (n = 10), esto es visualizado
68
en la Figura 34. La conductividad eléctrica de estas harinas fue determinada con el
método mencionado en el capítulo 6.2.1.9.
Los valores de conductividad eléctrica de las harinas de semillas de calabaza
hedionda con cáscara y calabaza de castilla con y sin cáscara (Tabla 23b), indican
que estas semillas son un buen conductor de energía, esto facilita la extracción de
aceite y/o posterior procesamiento. Esto es un importante resultado ya que no sería
muy costoso procesar estas semillas y podrían tener diversas aplicaciones en la
Agroindustria.
Tabla 23b. Conductividad eléctrica en harinas de semillas de calabaza hedionda
con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara
Muestra Conductividad eléctrica (mS/m)
HSCHCC 6.62 a*
(± 0.02)
HSCCCC 5.03 b
(± 0.14)
HSCCSC 4.09 c
(± 0.16)
*valores con la misma letra dentro de la columna de conductividad eléctrica son iguales de acuerdo a la prueba de Tukey con una p≤0.05. Donde: HSCCCC = harina de semilla de calabaza de castilla con cáscara; HSCCSC = harina de semilla de calabaza de castilla sin cáscara; HSCHCC = harina de semilla de calabaza hedionda con cáscara.
Por los valores presentados en la Tabla 23b, estas harinas presentan características
de compuestos iónicos porque no conducen electricidad en medio sólido (seco); sin
embargo, si son disueltas en agua si conducen electricidad por que los iones quedan
separados y los iones si conducen electricidad sin resistencia La conductividad
eléctrica del material está relacionada con las sales presentes en la solución cuya
disociación genera iones negativos y positivos capaces de transformar energía si el
líquido es sometido a un campo eléctrico, en el capítulo 6.2.1.9 la Tabla 11 presenta
ejemplos de tipos de conductores que existen.
De acuerdo con el análisis de la varianza la conductividad eléctrica de las harinas
de calabaza hedionda, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara son diferentes
(p<.0001), esto lo confirma la prueba de Tukey (Tabla 23b).
69
En la bibliografía no existe información de la conductividad de las harinas o semillas
de calabaza hedionda y calabaza de castilla, para comparar los resultados
encontrados en esta investigación.
7.1.9. Molienda
La molienda de las semillas secas fue ejecutada en un molino, con el objetivo de
obtener harinas de las semillas de calabaza hedionda, calabaza de castilla con y sin
cáscara (Figura 35). Estas harinas fueron sometidas a un cribado para separar las
partículas más grandes y determinar la finura de las harinas. La molienda es muy
importante para determinar la composición química y transformar esta materia prima
en nuevos productos.
La molienda de las semillas fue realizada de acuerdo con el método mencionado en
el capítulo 6.2.1.10.
Figura 16. Molienda de semillas de calabaza hedionda con cáscara y calabaza de castilla con y sin cáscara.
70
7.2. Características químicas
Las semillas de calabaza hedionda con cáscara y calabaza de castilla con y sin
cáscara fueron molidas, para lo cual los resultados obtenidos fueron de las harinas
de estas semillas (Tabla 24).
Tabla 24b. Análisis proximal de las harinas de semillas de calabaza de castilla y calabaza hedionda
Muestra Humedad
(%)
Proteína Cruda
%
Carbohidratos
%
Aceite
%
#Minerales
%
+Fibra
%
HSCHCC 0.16 a* 24.23 b* 6.49 a* 27.79 b* 0.90 40.43
(± 0.04) (± 0.33) (± 0.07) (± 0.54) (± 0.21) (± 0.20)
HSCCCC 0.13 a 31.65 a 4.92 b 37.74 a 1.36 24.20
(± 0.01) (± 0.36) (± 0.04) (± 4.17) (± 0.28) (± 1.79)
HSCCSC 0.10 a 31.38 a 4.12 c 38.59 a 1.64 24.17
(± 0.02) (± 0.11) (± 0.00) (± 1.17) (± 0.38) (± 0.49)
CSCC 0.03 b 16.72 c 4.83 b 0.82 c 0.14 77.46
(± 0.00) (± 0.31) (± 0.00) (± 0.19) (± 0.11) (± 0.13)
*valores con la misma letra dentro de la columna de promedio son iguales de acuerdo a la prueba de Tukey con una p≤0.05. Donde: HSCCCC = harina de semilla de calabaza de castilla con cáscara; HSCCSC = harina de semilla de calabaza de castilla sin cáscara; HSCHCC = harina de semilla de calabaza hedionda con cáscara; CSCC = cáscara de semilla de calabaza de castilla. +En esta tabla la fibra se determinó por diferencia con los demás nutrientes. #Los minerales son un aproximado del total, ya que no se determinaron el total de estos.
7.2.1. Humedad
El contenido de humedad de las harinas de semillas de calabaza hedionda con
cáscara y calabaza de castilla con y sin cáscara fue determinado con el método
mencionado en el capítulo 6.3.1.1. Los resultados de las harinas de semillas de
calabaza son presentados en la Tabla 24b.
La humedad fue de 0.16±0.04 %, 0.13±0.01 % y 0.10±0.02 % para las harinas de
semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza con cáscara y sin cáscara,
respectivamente. Los resultados fueron analizados estadísticamente e indicaron
que el contenido de humedad no tuvo diferencias significativas (p > .1288) entre las
muestras. El estudio de Tukey confirma que el contenido de humedad es igual en
los 3 tipos de harinas.
71
El contenido de humedad fue muy bajo, lo que favorece una mayor vida de anaquel
para las harinas, evitando el desarrollo microbiológico y deterioro químico. Diversos
autores han determinado el contenido de humedad en semillas; Habib (2015)
determinó la humedad en semillas de calabaza (C máxima Linn) y obtuvo un valor
de 4.06 % de humedad. Comparando el estudio de Habib (2015) con los valores
encontrados en nuestra investigación, puede observarse que el contenido de
humedad de esta especie de calabaza (C. máxima Linn) fue mayor que el contenido
de humedad de las harinas de las semillas de calabaza de castilla y calabaza
hedionda (Tabla 24b). Esto puede deberse a que las semillas habían recibido un
tratamiento previo de secado, el cual fue realizado por los productores para evitar
hongos y alargar la vida de anaquel.
7.2.2. Proteína cruda
El contenido de proteína cruda de estas harinas fue determinado con el método
mencionado en el capítulo 6.3.1.2. Los resultados de la determinación de proteína
cruda de las harinas de la cáscara de semillas de calabaza de castilla, de las harinas
de semillas de calabaza hedionda y calabaza de castilla con y sin cáscara son
presentados en la Tabla 24b.
Los resultados fueron analizados estadísticamente y muestran que el contenido de
proteína cruda fue diferente significativamente (p<.0001) entre las muestras. La
prueba de Tukey confirma que hubo diferencias significativas, entre el contenido de
proteína de la cáscara de las semillas de calabaza de castilla y la harina de semillas
de calabaza hedionda con cáscara, así mismo estas son diferentes de las harinas
de calabaza de castilla con y sin cáscara. Sin embargo, estas dos últimas no tienen
diferencias estadísticas entre ellas (Tabla 24b). El contenido de proteína cruda de
las semillas de calabaza de castilla sin cáscara fue de 31.38 ± 0.11, muy parecido
al de la semilla de calabaza de castilla con cáscara que fue de 31.65 ±0.36. La
cáscara no provocó que existiera diferencia significativa de la proteína en las
harinas, esto es debido a que el porcentaje de proteína cruda en la cáscara de las
semillas de calabaza de castilla es alto 16.72% y además por la menor cantidad de
72
cáscara con respecto a la semilla. Sin embargo, la semilla de calabaza hedionda
con cáscara presenta menor contenido de proteína cruda (24.23 ±0.32 %).
Algunos autores han determinado el contenido de proteína, Petkova & Antova
(2015) encontraron un contenido de 26 - 38.2% en semillas de C. moschata, El-
Adawy (2001) 36.5% en semillas de C. pepo, Martínez I. A. (2010) 23,63% en
semillas de C. máxima Duch y Vasconcellos et al. (1981) reportan 28% en semillas
de A. undulata. Los valores de proteína obtenidos en esta investigación de las
semillas son muy parecidos a los encontrados en la bibliografía para otras
variedades de semilla de calabaza. La bibliografía muestra el contenido proteico en
diferentes variedades de semillas de calabaza el cual está entre 23 y 38%. Los
valores de proteína cruda en las variedades de calabazas son diferentes y es
importante conocer el contenido antes de procesar la variedad a utilizar ya que los
productos derivados de las semillas, tendrían un valor nutrimental diferente al
elaborarse con semilla de diferentes especies de calabaza.
El contenido de proteína cruda favorece el valor nutricional de los productos, los
principales beneficios de consumir proteína en nuestros alimentos son: formar y
reparar tejidos corporales, músculos, órganos, piel, uñas y huesos, fortalecer el
sistema inmunológico, entre otros (García , 2012).
7.2.3. Determinación de proteína soluble
El contenido de proteína soluble de estas harinas fue determinado con el método
mencionado en el capítulo 6.3.1.3. Los resultados del contenido de proteína en las
harinas de semillas de calabaza de castilla con cáscara, calabaza de castilla sin
cáscara y calabaza hedionda son presentados en la Tabla 25b.
El contenido de proteína soluble encontrado en harina de semillas de calabaza
hedionda fue menor con respecto al encontrado en la harina de semillas de calabaza
de castilla con y sin cáscara. Habib, (2015) determinó el contenido de proteína
soluble en semillas de calabaza (C. máxima Linn) la cual contenía 18.1%, valor que
es menor al que presentan las semillas de calabaza de castilla y calabaza hedionda.
73
Cabe mencionar que en la bibliografía existe poca información de la proteína soluble
en estas semillas.
Tabla 25b. Contenido de proteína soluble en harinas de semillas de calabaza
hedionda con cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara
Contenido de proteína soluble (%)
Muestra Promedio
HSCCCC 31.10 b*
(± 2.33)
HSCCSC 28.70 b
(± 2.71)
HSCHCC 25.03 a
(± 1.09)
*valores con la misma letra dentro de la columna de promedio son iguales de acuerdo a la prueba de Tukey con una p≤0.05. Dónde: HSCCCC = harina de semilla de calabaza de castilla con cáscara; HSCCSC = harina de semilla de calabaza de castilla sin cáscara; HSCHCC = harina de semilla de calabaza hedionda con cáscara.
Los resultados analizados estadísticamente muestran que existieron diferencias
significativas (p<.0001) en el contenido de proteína soluble de las muestras de las
harinas de semillas de calabaza hedionda y semillas de calabaza de castilla con y
sin cáscara. Sin embargo, con base en la prueba de Tukey puede observarse que
el contenido de proteína soluble no mostró diferencias estadísticas entre las harinas
de calabaza de castilla con y sin cáscara (Tabla 25b). El contenido de proteína
soluble de las harinas de semillas de calabaza de castilla sin cáscara fue de 28.70
± 2.71. La ausencia de diferencias significativas entre el contenido de proteína
soluble de las semillas con cáscara y sin cáscara, nos indica que la cáscara tiene
un contenido de proteína soluble similar, que no afectó negativamente el contenido
total de proteína de harinas de semillas completas (con cáscara). En cambio, la
semilla de calabaza hedionda con cáscara presentó menor contenido de proteína
soluble (25.03 ±1.09 %). En general los resultados encontrados de proteína soluble
son muy similares a lo encontrado de proteína cruda por lo que se deduce que, casi
el 100% de la proteína en las harinas es proteína soluble.
74
7.2.4. Determinación de carbohidratos
El contenido de carbohidratos de las harinas de semillas de calabaza fue
determinado con el método mencionado en el capítulo 6.3.1.4. Los resultados son
presentados en la Tabla 24b.
No existieron diferencias significativas en el porcentaje de carbohidratos presente
en la cáscara de la semilla de calabaza de castilla comparado con el contenido en
la harina de semillas de calabaza de castilla con cáscara. El contenido de
carbohidratos en la harina de semilla de calabaza de castilla sin cáscara fue menor.
Por otro lado, la harina de semilla de calabaza hedionda con cáscara tuvo mayor
contenido de carbohidratos en comparación con las otras muestras.
Algunos autores han determinado el contenido de carbohidratos en semillas;
Petkova & Antova (2015) determinaron el contenido de carbohidratos en semillas
de C. moschata el cual fue de 1,3%; Rezig, Chouaibi, Msaada, & Hamdi (2012) lo
evaluaron en semillas de C. máxima (0.11%) y Guerra (2017) en semillas de
Cucúrbita spp. con y sin cáscara (6.99 y 5.57 %, respectivamente). Los valores de
semillas de calabaza de castilla con y sin cáscara obtenidos en esta investigación
están dentro de los valores encontrados en la bibliografía; sin embargo, no existe
información en la bibliografía de semillas de calabaza hedionda con cáscara (A.
undulata).
El contenido de proteína en las semillas de calabaza fue mayor que el contenido de
carbohidratos, lo cual es muy interesante ya que en la actualidad numerosos
estudios muestran que el consumo de carbohidratos está asociado con problemas
de salud como la obesidad y la diabetes tipo 2 (Anderson, Konz, & Jenkins, 2000;
Cohen, Wylie-Rosett , & Shamoon, 1990). Sin embargo, existen carbohidratos
buenos que sí le dan nutrientes al cuerpo y son beneficiosos para el mismo, las
semillas de calabaza contienen en su mayoría carbohidratos benéficos, debido a
que las semillas son ricas en fibra y proteína (Fennema, 1992).
Es importante consumir carbohidratos de buena calidad, ya que constituyen la
principal fuente de energía en la dieta de la mayoría de los individuos y son
75
recomendables para la prevención y tratamiento de enfermedades crónicas
(Esquivel-Solís, 2005).
7.2.5. Extracción de aceite
La extracción de aceite en harinas de semillas de las muestras de calabaza
analizadas fue realizada con el método mencionado en el capítulo 6.3.1.5. Los
resultados de la extracción de aceite son presentados en la Tabla 24b. Los
resultados indican que ocurrieron diferencias significativas (p<.0001) en el
contenido de aceite de las muestras. De acuerdo con la prueba de Tukey puede
observarse que no existió diferencia entre el contenido de aceite de las semillas de
calabaza de castilla con y sin cáscara; sin embargo, el contenido de aceite de
semillas de calabaza hedionda con cáscara fue diferente a estas dos; además, el
contenido de aceite de la cáscara (CSCC) fue significativamente menor al de las
semillas.
El contenido de aceite no fue afectado en la harina de semilla de calabaza con
cáscara, ya que la cáscara tiene cantidades de aceite muy bajas en su composición,
lo cual se ve acentuado por el alto contenido de aceite que contiene la semilla. El
contenido de aceite en la harina de semilla de calabaza hedionda (A. undulata)
encontrado en este estudio fue similar al que reportan Flores, et al. ( 2018). Ellos
estudiaron las semillas y hallaron contenidos superiores a 30%, mencionaron que
A. undulata podría producir potencialmente hasta 1,315 kg ha-1 de aceite.
Probablemente las mayores cantidades de aceite obtenidos en esta investigación
pueden deberse al proceso de molienda puesto que no fue controlada la fuerza, ni
la velocidad de molienda. Por otro lado, el contenido de aceite en la harina de semilla
de calabaza de castilla encontrado en este estudio está por arriba del que presenta
Martínez (2011) en semillas de calabaza de castilla (C. moschata) con 33.15 - 34.6
%.
76
7.2.6. Determinación de fósforo
El contenido de fósforo fue determinado con el método mencionado en el capítulo
6.3.1.7. Los resultados son presentados en la Tabla 26b e indican que hubo
diferencias significativas (p<.0001) entre las muestras en el contenido de fósforo.
Tabla 26b. Contenido de minerales en harinas de semillas de calabaza hedionda
con cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara
Mineral Contenido de Fósforo
(%)
Concentración de Zinc (mg/Kg)
Concentración de Hierro (mg/Kg)
Concentración de Magnesio
(mg/Kg)
Concentración de Calcio (mg/Kg)
Muestra Promedio Promedio Promedio Promedio Promedio
HSCHCC 0.51 c* 14.99 c* 124.32 c* 237.29 a* 17.90 a*
(± 0.05) (± 0.00) (± 61.05) (± 30.36) (± 0.00)
HSCCCC 0.69 b 44.22 b 380.46 a 232.39 a 14.30 b
(± 0.07) (± 0.00) (± 31.45) (± 57.98) (± 0.57)
HSCCSC 0.97 a 62.82 a 370.39 b 224.86 a 17.57 a
(±0.10) (± 0.00) (± 15.11) (± 79.90) (± 0.57)
*valores con la misma letra dentro de la columna de promedio son iguales de acuerdo a la prueba de Tukey con una p≤0.05. Dónde: HSCCCC = harina de semilla de calabaza de castilla con cáscara; HSCCSC = harina de semilla de calabaza de castilla sin cáscara; HSCHCC = harina de semilla de calabaza hedionda con cáscara.
El porcentaje de fósforo en la harina de semilla de calabaza de castilla sin cáscara
fue mayor en comparación con las harinas de semillas de calabaza hedionda con
cáscara y semillas de calabaza de castilla con cáscara. La cáscara de la semilla es
deficiente en fósforo ya que, al analizar la semilla con cáscara, el contenido de este
mineral fue disminuido en casi un 30%. Además, la semilla de calabaza hedionda
con cáscara tiene bajo contenido de fósforo, aún menor que la semilla de castilla
con cáscara. En la bibliografía existen pocos trabajos que estudien el contenido de
fósforo en Cucurbitáceas; Barragan & Bautista (2018) determinaron algunos
minerales en semillas de Chicayota (C. Argyrosperma sororia) destacando el
contenido de fósforo con 1232.25 mg.
Es importante determinar el contenido de fósforo debido a que es uno de los
minerales más importantes, permite mantener un estado de salud óptimo debido a
que ayuda al fortalecimiento de dientes y huesos, asimilación de vitaminas, mejora
los riñones, mejora la digestión, mejora la capacidad memorística, atenúa los
77
síntomas de la menopausia y es ideal para reducir el cansancio físico. Sin embargo,
el consumo excesivo de fósforo puede provocar hipocalcemia (desequilibrio
electrolítico) y un desequilibrio de calcio (Albalate-Ramón, de Sequera-Ortiz, &
Rodríguez-Portillo, 2012).
7.2.7. Determinación de zinc
El contenido de zinc fue determinado con el método mencionado en el capítulo
6.3.1.8. Los resultados de la determinación de zinc de las harinas de semillas de
calabaza de castilla con cáscara, calabaza de castilla sin cáscara y calabaza
hedionda con cáscara, son presentados en la Tabla 26b. Estos fueron analizados
estadísticamente indicando que el contenido de zinc fue diferente significativamente
(p<.0001) entre las muestras y es comprobado con la prueba de Tukey (Tabla 26b).
El contenido de zinc en la harina de semilla de calabaza de castilla sin cáscara fue
mayor en comparación con las otras muestras. Ello indica que la cáscara de esta
semilla tiene un escaso contenido de zinc al igual que el contenido de fósforo.
Además, la harina de semilla de calabaza hedionda con cáscara tiene menor
cantidad de zinc incluso que la semilla de castilla con cáscara. Habib (2015)
determinó el contenido de zinc en semillas de calabaza (C. máxima Linn) la cual
contenía 39.9 ppm, este valor fue menor al que presentan las semillas de calabaza
de castilla con y sin cáscara.
Es muy importante consumir zinc en la dieta, puesto que es un mineral esencial
para nuestro organismo y tiene un papel específico en más de 300 enzimas que
participan en todas las reacciones bioquímicas importantes del cuerpo humano.
Tiene un efecto directo en el crecimiento, desarrollo neurológico y en el sistema
inmune (Grandy, Weisstaub, & López de Romaña, 2010).
7.2.8. Determinación de hierro
El contenido de hierro fue determinado con el método mencionado en el capítulo
6.3.1.8. La Tabla 26b presenta los resultados de la determinación de hierro de las
78
harinas de semillas de calabaza de castilla con cáscara, calabaza de castilla sin
cáscara y calabaza hedionda con cáscara.
Los resultados fueron analizados estadísticamente e indican que el contenido de
hierro fue diferente significativamente (p<.0001) entre las muestras. Esto puede
comprobarse con la prueba de Tukey (Tabla 26b). No existe información en la
bibliografía de la determinación de hierro en semillas de calabaza hedionda y
calabaza de castilla. Sin embargo, Habib (2015) determinó el contenido de hierro en
semillas de calabaza (C. máxima Linn), la cual contiene 290.0 ppm, este valor es
menor a los resultados de las semillas de este estudio.
Es importante consumir hierro, ya que es un mineral necesario para el crecimiento
y el desarrollo del cuerpo, consumirlo ayuda a tener un mejor rendimiento atlético,
ayuda a incrementar funciones como la capacidad de razonamiento, el aprendizaje
o la memoria (Freire, 1998).
7.2.9. Determinación de magnesio
El contenido de magnesio fue determinado con el método mencionado en el capítulo
6.3.1.8. La Tabla 26b muestra los resultados los cuales fueron analizados
estadísticamente e indican que en el contenido de magnesio no presentó diferencias
estadísticamente significativas (p>.7126) entre las muestras.
Existe muy poca información bibliográfica acerca del contenido de magnesio en
semillas. Rössel-Kipping, Ortiz-Laurel, Amante-Orozco, Durán-Garcia & López-
Martínez (2018) determinaron el contenido de magnesio en semilla de calabaza de
castilla (C. moschata) y el valor que encontraron fue de 12.49 – 11.58 mg/100 g de
muestra, valores menores a los encontrados en esta investigación. Estos resultados
pueden variar por numerosos motivos como la edad de la semilla, las condiciones
de siembra, entre otras.
El magnesio es el cuarto mineral más abundante en el cuerpo humano e interviene
en cientos de reacciones bioquímicas en el cuerpo, combate la depresión, es eficaz
contra la diabetes tipo 2, reduce la presión arterial, tiene efectos inflamatorios,
mejora los síntomas premenstruales y previene las migrañas (Jahnen-Dechent &
79
Ketteler , 2012), por ello, es recomendable elaborar productos a partir de estas
semillas pues tendrían propiedades nutritivas altas.
7.2.10. Determinación de calcio
El contenido de calcio fue determinado con el método mencionado en el capítulo
6.3.1.8. Los resultados analizados estadísticamente indican que el contenido de
calcio fue diferente significativamente (p>0.0122) entre las muestras. De acuerdo a
la prueba de Tukey solo la harina de semilla de calabaza de castilla con cáscara es
diferente (Tabla 26b).
Rössel-Kipping, Ortiz- Laurel, Amante-Orozco, Durán-Garcia & López-Martínez
(2018) determinaron el contenido de calcio en semillas de calabaza de castilla
(Cucúrbita spp.) en el que encontraron valores de 29.25 – 29.79 mg/100 g muestra,
que son valores mayores que los obtenidos en esta investigación. Respecto a este
elemento es posible resaltar la importancia de consumir cantidades adecuadas de
calcio para que el corazón, los músculos y los nervios funcionen debidamente, así
como para favorecer la coagulación de la sangre. Por otra parte, la insuficiencia de
calcio contribuye de manera considerable al desarrollo de la osteoporosis (Quick,
1966).
7.3. Elaboración de un producto con ingrediente de semillas de calabaza
(aderezo).
Las semillas fueron previamente cribadas para tener semillas de tamaño
homogéneo y así optimizar el proceso en industrias alimentarias, ya mencionados
en la metodología en el capítulo 6.4.2.
El tipo de tamaño utilizado más apropiado para cribar las semillas fue el ancho,
puesto que una parte contradictoria resultó en que las semillas al momento de
cribarse, si las semillas eran cribadas con cribas del tamaño del largo pasaban todas
las semillas y por el grosor no pasaban muchas semillas, de modo que el tamaño
más óptimo fue el ancho de cada tipo de semillas [semillas de calabazas de
calabaza de castilla con cáscara (SCCCC) previamente cribadas con un tamaño de
criba de 8.72 mm, semillas de calabaza de castilla sin cáscara (SCCSC) con un
80
tamaño de 6.48 mm y semillas de calabaza hedionda con cáscara (SCHCC) con un
tamaño de 7.55 mm].
Para la elaboración de cada aderezo, las semillas fueron molidas con agua potable,
6 g de levadura, 5 g de jugo de limón, 5 g de chile, 8 g de sal, 2 g de pimienta, 2 g
de ajo y 2 g de cebolla en polvo, para sazonar y evitar un sabor muy marcado a
semilla de calabaza. Una vez terminado el proceso de elaboración del aderezo, fue
decorado con hierbas frescas y envasado hasta su consumo.
Para la obtención de un producto alimenticio (p.e. aderezo) con características
óptimas y de buena apariencia, conlleva desde preparar el insumo o materia prima
(ingredientes) y realizar un buen proceso, que comprende desde dividir (cribar) el
material (semilla), moler (semilla), mezclar (ingredientes), remojar y / o tostar, según
sea el caso.
El objetivo del remojo de las semillas por algunas horas es para quitarles algunas
sustancias que causan problemas de digestión, las semillas remojadas serán más
fáciles de digerir y sus vitaminas y minerales serán absorbidos con mayor facilidad,
el objetivo del tostado de semillas a 45° C es para con el fin de mejorar y obtener
características sensoriales y texturales propias del alimento como por ejemplo
ampliar la gama de aromas, texturas, realzar el sabor, inactivar enzimas, destruir
microorganismos y reducir la actividad de agua (Amaral, Casal , Seabra, & Oliveira,
2006; Amaral, Casal , Seabra, & Oliveira, 2006).
Las seis muestras de aderezos elaborados a partir de las diferentes semillas fueron
evaluadas mediante una prueba de ordenamiento, de una escala de mejor a peor.
De las muestras evaluadas fue seleccionada la mejor muestra en base a su grado
de aceptación (Figura 17); cabe mencionar que para la prueba de aceptación fue
usado el método ciego (es decir a los participantes no sabían en qué consistía cada
muestra a probar).
81
Figura 17. Muestras de aderezos de semillas tostadas y remojadas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castillas con y sin cáscara.
La Figura 18 presenta el grado de aceptación de los productos mediante la prueba
de ordenamiento, la mejor muestra fue el aderezo de semillas tostadas de calabaza
de castilla sin cáscara. en general los aderezos les parecieron agradables a los 20
panelistas.
Donde: T- SCCCC = aderezo de semillas tostadas de calabaza de castilla con cáscara; T-SCCSC = aderezo de semillas tostadas de calabaza de castilla sin cáscara; T-SCHCC = aderezo de semillas tostadas de calabaza hedionda con cáscara; R- SCCCC = aderezo de semillas remojadas de calabaza de castilla con cáscara; R-SCCSC = aderezo de semillas remojadas de calabaza de castilla sin cáscara; R-SCHCC = aderezo de semillas remojadas de calabaza hedionda con cáscara.
Figura 18. Prueba de ordenamiento (muestras de aderezos).
2.00
6.00
1.00
4.00
5.00
3.00
-
1.00
2.00
3.00
4.00
5.00
6.00
T- SCCCC T- SCCSC T- SCHCC R- SCCCC R- SCCSC R- SCHCC
Ord
en
de
se
lecció
n (
me
jor
a
pe
or)
Aderezo
A B
C D
E F
82
La Tabla 27 muestra los rendimientos obtenidos de los aderezos, junto con el peso
Neto obtenido en cada muestra, es evidente que las semillas que fueron remojadas
tuvieron las pérdidas menores.
Tabla 27. Rendimiento de los aderezos de semillas remojadas y tostadas de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara
Muestra (aderezo) Peso Neto (g) Rendimiento del
procesamiento (%)
T-SCCCC 544 97.84
T-SCCSC 548 98.56
T-SCHCC 546 98.20
R-SCCCC 549 98.74
R-SCCSC 555 99.82
R-SCHCC 553 99.46
Donde: T- SCCCC = aderezo de semillas tostadas de calabaza de castilla con cáscara; T-SCCSC = aderezo de semillas tostadas de calabaza de castilla sin cáscara; T-SCHCC = aderezo de semillas tostadas de calabaza hedionda con cáscara; R- SCCCC = aderezo de semillas remojadas de calabaza de castilla con cáscara; R-SCCSC = aderezo de semillas remojadas de calabaza de castilla sin cáscara; R-SCHCC = aderezo de semillas remojadas de calabaza hedionda con cáscara.
83
8.0. CAPÍTULO VIII. CONCLUSIONES
El estudio relacionado con las propiedades físicas y químicas de las semillas de
calabaza de castilla criolla (C. moschata) provenientes del zacatón (San Luis Potosí)
y calabaza hedionda de Villa Nueva (Zacatecas) permitió obtener las siguientes
conclusiones:
El incremento de estos cultivos ha sido significativo en los últimos años, siendo una
excelente alternativa en el sector agroindustrial. El uso de sus subproductos como
las semillas, puede impactar en las diferentes industrias de hoy en día, por sus
importantes características nutrimentales e industriales. Esto, mediante la
elaboración de diversos productos posibles de realizar por las propiedades físicas y
químicas que presentan estas semillas.
➢ Los valores de las diferentes dimensiones evaluadas (largo, ancho y grosor)
de las semillas de calabaza hedionda, calabaza de castilla con y sin cáscara
tuvieron un comportamiento normal. Las semillas de calabaza hedionda con
cáscara resultaron en promedio de menor tamaño en comparación con las
semillas de calabaza de castilla. Estas semillas presentaron tres semiejes
desiguales, cuya forma es descrita como piriforme para las semillas de
calabaza de castilla y subglobosa y piriforme para las semillas de calabaza
hedionda. Para todas las variables físicas evaluadas las semillas de calabaza
de castilla con cáscara tuvieron valores similares a otras variedades de
calabaza reportadas en la literatura.
➢ La variable peso de mil semillas fue mayor en las semillas de calabaza de
castilla que en las semillas de calabaza hedionda.
➢ El diámetro geométrico de las semillas de calabaza de castilla y calabaza
hedionda pudiera ser utilizado convenientemente para el cálculo teórico del
volumen y la esfericidad de la misma.
➢ Los valores de fricción interna y externa en las harinas de las semillas fueron
mayores que en las semillas, lo cual favorece a la eficiencia de los procesos
de las semillas y evita o minimiza pérdidas.
84
➢ La caracterización física y química de las semillas de ambas especies de
calabaza permite concluir que sus semillas pueden utilizarse en procesos
agroindustriales y por tanto generar productos procesados.
➢ Los valores encontrados en las variables evaluadas pueden ser utilizados
para el diseño y la selección de parámetros tecnológicos de equipos en
procesamiento industrial, así como también para el control de calidad de la
semilla.
➢ La utilización de las semillas de calabaza hedionda y de castilla, genera valor
agregado, obteniendo beneficios económicos por la generación de nuevos
productos en lugares que producen estas semillas.
➢ El conocimiento de las propiedades físicas y químicas de las semillas de
calabaza y de los subproductos de la misma (semilla, pulpa, cáscara del fruto,
etc.) permite mejorar los procesos agrícolas.
➢ Factores como la distribución geográfica de las semillas afectan algunas
propiedades físicas y químicas.
➢ El grado de finura de las harinas (textura) tiene un gran papel para los
procesos de generar nuevos productos basados en harinas.
➢ Las metodologías desarrolladas permitieron determinar el comportamiento
físico y químico y pueden ser utilizadas para el estudio de otras aplicaciones
en la agroindustria.
➢ Las características físicas y químicas de las semillas de calabaza hedionda,
calabaza de castilla con y sin cáscara en casi todos los casos fue
estadísticamente muy diferente (p<.0001), lo que significa que para cada tipo
de semilla es diferente el procesamiento, así como la obtención de un
producto procesado.
➢ La harina de semillas de calabaza de castilla tiene mayor contenido de
proteína y grasa que la harina de semillas de calabaza hedionda.
➢ En el caso de los carbohidratos, también la harina de semillas de calabaza
de castilla tiene menor contenido de carbohidratos que la harina de semillas
de calabaza hedionda.
85
➢ Las harinas de semilla de calabaza hedionda con cáscara y calabaza de
castilla con y sin cáscara, en estado seco (0.15 % de humedad) fueron un
material absolutamente aislante y en estado húmedo (con 70% de humedad)
un material semiconductor.
➢ El valor nutrimental en cuanto a proteína cruda, proteína soluble,
carbohidratos y lípidos de las semillas de calabaza de castilla sin cáscara no
presentó diferencias con las harinas de semillas de calabaza de castilla con
cáscara; el valor de proteína cruda es casi el 95% de proteína soluble.
➢ Los minerales como el fósforo y el zinc, así como los lípidos estuvieron
presentes en mayor cantidad en la harina de semillas de calabaza de castilla
sin cáscara mientras que la carbohidratos, magnesio y calcio fueron
encontrados en mayor medida en la harina de semillas de calabaza hedionda
con cáscara. En el caso de la harina de semillas de calabaza de castilla con
cáscara los contenidos de los minerales tuvieron una reducción debido a que
la cáscara de esta tiene muy poco contenido mineral, solo el hierro es el que
se presentó en mayor medida. La proteína cruda y soluble son las que están
en mayor medida en las harinas de semillas de castilla con cáscara esto
concluye que la cáscara de esta semilla es rica en proteína.
➢ El estudio de las características físicas y químicas permitió elaborar un
producto alimenticio con aceptación sensorial y organoléptica, con bajo costo
y aprovechando las semillas de calabaza de castilla y calabaza hedionda lo
que puede generar beneficios a la economía de productores y consumidores.
Por lo expuesto previamente, es aprobada la hipótesis: “Las propiedades físicas y
químicas de las semillas de calabaza de castilla (C. moschata) y de las semillas de
calabaza hedionda con cáscara (A. undulata) permiten mejorar el procesamiento de
las semillas y subproductos de estas para múltiples aplicaciones, en usos
agroindustriales”, p.e. la digitalización de procesos.
86
9.0. CAPÍTULO IX. RECOMENDACIONES
Los resultados obtenidos en esta investigación dan a conocer las características
físicas y químicas de la semilla de calabaza hedionda con cáscara y calabaza de
castilla con y sin cáscara (dimensiones, forma, tamaño, fricción interna, fricción
externa, cribado, densidad, conductividad eléctrica, textura, humedad, proteína
cruda, proteína soluble, carbohidratos, aceite, fósforo, calcio, magnesio, hierro y
zinc); de esta manera es posible aportar elementos para el diseño de equipos y
maquinas necesarias en los procesos de transformación, sobre todo las
herramientas que están en contacto con el material orgánico. Por ello, se emiten
las siguientes recomendaciones:
➢ Buscar diferentes alternativas para el procesamiento de las semillas de
calabaza con el objetivo de desarrollar diferentes productos procesados
aprovechando adecuadamente el contenido físico y químico del material
básico, por ejemplo, para la selección del elemento de transporte es muy
importante conocer los valores de forma, tamaño, fricción interna, fricción
externa, cribado, densidad, humedad y conductividad eléctrica para el
principio del aparato.
➢ Determinar coeficientes de resistencia del flujo de aire para procesos
agroindustriales.
➢ Hacer un análisis físico y químico más amplio de las semillas de calabaza
hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara y las cáscaras
de estas semillas, bajo la perspectiva Agroindustrial y Agro 4.0,
especialmente para la digitalización completa de los procesos.
➢ Evaluar los parámetros físicos y químicos en las semillas de calabaza
hedionda con cáscara y calabaza de castilla con y sin cáscara, de acuerdo a
las categorías clasificadas en el capítulo 7.1.1 (grandes, medianas y
pequeñas) para conocer qué tamaño tiene más concentración química.
➢ Caracterizar el perfil de ácidos grasos en el aceite de las semillas de calabaza
hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara, así como las
cáscaras de estas semillas y los caracteres físicos de los aceites.
87
➢ Evaluar el consumo de energía en los procesos de molienda con diferentes
aberturas del tamiz del molino, para seleccionar el mejor comportamiento
mecánico de la semilla de calabaza hedionda y calabaza de castilla.
➢ Hacer análisis bromatológico al producto.
➢ Es necesario evaluar las demás propiedades físicas y químicas de estas
semillas y otras variedades de la familia de las Cucurbitáceas para el uso
agroindustrial.
88
10.0. CAPÍTULO X. BIBLIOGRAFÍA
Petkova, Z. Y., & Antova, G. A. (2015). Changes in the composition of pumpkin seeds (Cucúrbita
moschata) during development and maturation. Grasas y aceites, 66(1), e058.
Aguilar, J., IIIsley, C., & Marielle, C. (2003). El sistema agrícola de maíz y sus procesos técnicos. Sin
maíz no hay país. Consejo nacional para la cultura y las artes, dirección general de culturas
populares e indígenas, 83-122.
Albalate-Ramón, M., de Sequera-Ortiz, P., & Rodríguez-Portillo, M. (2012). Trastornos del calcio, el
fósforo. Nefrología al día, 201-219. Recuperado el 18 de 09 de 2019, de
https://webcache.googleusercontent.com/search?q=cache:g6WK50CMTF8J:https://www.
revistanefrologia.com/index.php%3Fp%3Drevista%26tipo%3Dpdf-
simple%26pii%3DXX342164212000477+&cd=11&hl=es-419&ct=clnk&gl=mx
Altieri, M. A., Funes-Monzote, F. R., & Petersen, P. (2011). Agroecologicallyefficient agricultural
systems for smalholder farmers. Contributions to food sovereignty, 32, 3-15.
doi:10.1007/s13593-011-0065-6
Amaral, J., Casal , S., Seabra, R., & Oliveira, B. (2006). Effects of Roasting on Hazelnut Lipids.
Journal of Agricultural and food chemistry, 35, 1315-1321.
Anderson, J., Konz, E., & Jenkins, D. (2000). Health advantages and disadvantages of weight-
reducing diets: a computer analysis and critical review. J Am College Nutr, 19(5), 578-590.
AOAC. (1990). Official methods of analysis. AOAC international, 1067.
Applequist, W. L. (2006). Comparative fatty acid content of seeds of four Cucurbita species grown
in a common (share) garden. Journal of food composition and analysis, 19(6), 606-611.
Arango, H. W. (1968). Equipo para procesamiento de productos agrícolas. Lima, Perú: IICA.
Arnott, G. A. (1841). On the Cucurbitaceae. Journal of botany (hooker), 3(21), 271-280.
Aviara, N. A., Gwandzang, M. N., & Haque, M. A. (1999). Physical properties of guna seed. Journal
agriculture engineering, 73, 105-111.
Bailey, L. H. (1943). Species of Cucurbita. Gentes herb, 6(5), 266-322.
Bailey, L. H. (1948). Jottings the Cucurbitas. Gentes herb, 7(5), 447-477.
Barbosa, G., Ortega, E., Juliano, P., & Yan, H. (2005). Food powders, physical properties, processing
and suntionality. Food engineering series, 55-88.
Barragan, R. M., & Bautista, J. M. (2018). Caracterización fisicoquímica de la semilla de chicayota
(Cucurbita agyrosperma sororia) y su empleo en panificación. Jóvenes en la ciencia, 4(1),
83-90.
Beaver, W. L. (2012). Producción de semilla. Conjunto tecnológico para la producción de calabaza.
Estación experimental agrícola, 155.
89
Belgrano, J. M., & Pozner, R. (2017). Sinopsis del género Apodanthera (Cucurbitaceae,
coniandreae). Darwinana, nueva serie, 5(1), 5-50.
Bisognin, D. A. (2002). Origin and evolution of cultivated cucurbits. Ciencia rural, 32(4), 715-723.
Boyer, R., & Saillard, Y. (1998). Théorie de la régulation. L'état des savoirs, La Découverte, "coll.
Recherches", 40(2), 282-284.
Bye, R., & Qualset, C. (2002). Conservation of generic diversity and improvement of crop
production in México: a farmer-based approach. The McKninght foundation. collaborative
crop research program.
Cáseres, E., Piña, K., Berrio, T. Y., & Leal, N. (2010). Comparación morfológica de frutos y semillas
de auyama (Cucurbita moschata Duch. Ex Lam). Unellez de ciencia y tecnología, 28, 32-36.
Clark, D., Tupa, M., Bazan, A., Chang, L., & Gonzales, W. L. (2012). Chemical composition of
Apodanthera bifora, a cucurbit of the dry forest in Northwestern Perú. Rev. Perú. Biol,
19(2), 199-203.
Cogniaux, A. (1916). Cucurbitaceae. Fevilleae et Melothrieae, 66(1), 275-277.
Cohen, C., Wylie-Rosett , J., & Shamoon, H. (1990). Insulin response and glicemic effects of meals
in non-insulin-dependent diabetes. Am J Clin Nutr, 52, 519-523.
CONABIO. (2015). Apodanthera undulata. Recuperado el 20 de julio de 2019, de
http://bdi.conabio.gob.mx/fotoweb/archives/5023-
Plantas/Plantas/1104%20Apondathera%20undulata.jpg.info
Cordain, L. (1999). Cereal grains: Humanity´s double-edged sword. World Rev. Nutr. Diet, 84, 19-
73.
Coskuner, Y., & Karababa, E. (2007). Physical properties of coriander seeds (Coriandrum sativum
L.). Journal of food engineering, 80, 408-416.
Cuervo, F. A. (2008). Fundamentos de materia y energía para ingenierías. Iparte: Materia.
Pontificia universidad javeriana. Cali: Primera edición.
Cutler, H. C., & Whitaker, T. W. (1961). History and distribution of the cultivated cucurbits in the
americas. América antique, 26, 469-485.
De la Cruz, G. V., Villalpando, S., Mundo, R. V., & Shamah, L. T. (2013). Prevalencia de anemia en
niños y adolescentes mexicanos. Comparativo de tres encuestas nacionales. Salud pública
de México, 55(2), 180-189.
Delgado-Paredes, G. E., Rojas-Idrogo, C., Sencie-Tarazona, A., & Vázques-Núñez, L. (2014).
Caracterización de frutos y semillas de algunas Cucurbitáceas en el norte del Perú. Revista
Fitotecnia Mexicana, 37(1), 7-20.
Drude, P. (1900). Zur elektronentheorie der metalle. Annaleb der physik, 306(3), 566.
doi:10.1002/Andp.1900306312
90
Eaton-Lii, S. B., Sinclair, J., Cordain, L., & Man, N. J. (1998). Dietary intake of long-chain
polyunsaturated fatty acids during the paleolithic. World Rev. Nutr. Diet, 83, 12-23.
Ekpedeme, U. A., Bassey, A. N., & Ekaete, U. (1999). Etuk. Minerals and antinutrientes in fluted
pumpkin (Telfairia Occidentalis Hook F.). Food chemistry, 70(2000), 235-240.
El-Adawy, T. A. (2001). Characteristics and composition of different seed oils and flours. Food
chemistry, 74(1), 47-54.
Esquinas, A. J., & Gulick, P. J. (1983). Genetic resources of Cucurbitaceae. International board for
plant genetic resources, 113.
Esquivel-Solís, V. (2005). Dietas modificadas en carbohidratos: implicaciones fisiológicas. Revista
Costarricense de Salud Pública, 14(26), 1-5.
FAO. (1991). Secado de granos: natural, solar y a bajas temperaturas. Recuperado el 29 de abril de
2019, de http://www.fao.org/3/x5058s/x5058s00.htm#contents.
FAO. (2008). Consumo de alimentos. Recuperado el 17 de noviembre de 2018, de
http://www.fao.org/fileadmin/templates/ess/documents/food_security_statistics/foodco
nsumptionnutrients_es.xls
Felder, R. (2004). Principios elementales de los procesos quimicos (Tercera ed.). Limusa wiley.
Felder, R., & Rouseau. (2003). principios elementales de los procesos quimicos (Tercera ed.).
Limusa wiley.
Fennema, O. R. (1992). Química de los alimentos. Zaragoza, ES : Acribia. 1095 p. :il. Edición ; 2a ed.
Flannery, K. V. (1986). The research problem. In: K.V. (Flannery ed.). New York: 3-18.
Flores, V. M., Méndez, G. S., García, H. E., Amante, O. A., Gómez, G. A., Cabral, A. F., & Vasco, L. J.
(2018). Plantas silvestres del centro-norte de México con potencial para la produccion de
aceite. Revista mexicana de ciencias agricolas, 9(7). Recuperado el 07 de junio de 2019, de
https://cienciasagricolas.inifap.gob.mx/editorial/index.php/agricolas/article/download/16
72/2083?inline=1.
Freire, B. W. (1998). La anemia por deficiencia de hierro: estrategias de la OPS/OMS para
combatirla. Salud Pública de México, 20037-2895.
García , G. (2012). Alimentos que ayudan a prevenir y combatir enfermedades. USA: Copyright .
Garnayak, D. K., Pradhan, R. C., Naik, S. N., & Bhatnagar, N. (2008). Moisture dependent physical
properties of jatropha seed (Jatropha curcas L.). Industrial crops and products, 2(7), 123-
129.
Garrell, A., & Guilera, L. (2019). La industria 4.0 en la sociedad digital. Martorell, Barcelona.
Glew, R. H., Glew, R. S., Chuang, L. T., Huang, Y. S., Milson, M., Constans, D., & Vanderiag, D. J.
(2006). Amino acid, mineral and fatty acid content of pumpkin seeds (Cucurbita spp) and
Cyperus esculentus nuts in the Republic of Niger. Plant foods for human nutrition, 61, 51-
56.
91
Göbel, R., Gutmacher, E., & Behrends, R. (1987). Wissensspeicher - Grössen Einheiten (3a ed.).
Volkseigener verlag Berlin.
González, C. F. (2016). Caracterización fisicoquímica y microbiológica de calabaza (Cucurbita
moschata ´Bernaut´), utilizada en la industria para la elaboracion de cremogenados. Actas
de horticultura, 187-190.
Govaertz, G. (2014). Prácticas y soluciones tecnológicas para el almacenamiento de granos. Revista
de la agricultura de consevación, 5(18). Recuperado el 20 de diciembre de 2018, de
conservacion.cimmyt. org/es/component/docman/doc_download/1090-r18
Grandy, G., Weisstaub, G., & López de Romaña, D. (2010). Deficiencia de hierro y zinc en niños.
Rev Soc Bol Ped, 49(1), 25-31.
Grisales, O. S., López, P. S., Abadia, R. X., Restrepo, V. M., & Cabrera, V. F. (2009). Extracción y
caracterización de aceite de semillas de zapollo. Acta agronómica. Recuperado el 22 de
junio de 2019, de https://www.redalyc.org/html/1699/169916219005/.
Guerra, R. I. (2017). Caracterización física y química de la semilla de calabaza de castilla tipo criolla
(Cucurbita spp). (Tesis de pregrado). Instituto tecnológico superior Zacatecas Norte, San
Luis Potosí.
Habib, A. B. (2015). Nutritional and lipid composition analysis of pumpkin seed (Cucurbita máxima
linn). Journal food science, 5(374), 1-6.
Hernández, B. J., & León, J. (1994). Neglected crops: 1492 from a different perspective. FAO Plant
Production and Protection, 26, 63-74.
Himmelblau, D. (1997). Principios básicos y cálculos en ingenierá química (Sexta ed.). Pearson-
Prentice Hall.
Hougen, O., Watson, K. M., & Ragatz, R. A. (1964). Principios de los procesos químicos. Parte I.
Reverte.
Jahnen-Dechent , W., & Ketteler , M. (2012). Magnesium basics. Clin Kidney J, 5(Suppl 1):i3-i14.
Jeffrey, C. (1980). A review of Cucurbitaceae. Bot.J.Linn.Soc, 81(3), 233-247.
Jeffrey, C. (1990). Appendix. An outline classification of the Cucurbitaceae. Biology and utilization
of the Cucurbitaceae, 449-463.
Kachru, R. R., Gupta, R. K., & Alam, A. (1994). Physico-chemical constituents y engineering-
properties of food crops (1st ed.). India: Scientific publisher, Jodhpur.
Kearney, & Peebles. (1969). Apodanthera undulata A. Gray. SEINet. Recuperado el 19 de
noviembre de 2018, de
http://swbiodiversity.org/seinet/taxa/index.php?tid=2356&taxauthid=1&clid=0
Lide, D. R. (2009). Handbook of chemistry and physics. (P. Inc, Ed.) 2804.
92
Lira, R., & Rodríguez-Arévalo, I. (2008). cucurbitáceas (dicotiledóneas), in s. ocegueda y j. llorente-
bousquets (coords.), catálogo taxonómico de especies de méxico, en capital natural de
México (Vol. 1). México.
Lira, R., Eguiarte, L., & Montes, S. (2009). Proyecto recopilación y análisis de la información
existentes de la especie de los géneros Cucurbita y Sechium que crecen y/o se cultivan en
México. México: 107. Recuperado el 29 de octubre de 2018, de
https://www.biodiversidad.gob.mx/genes/centrosorigen/cucurbita%20y%20sechium/info
rme_final/informe%20final%20cucurbita%20y%20sechium.pdf
Lira, S. R. (1995). Estudios taxonómicos y ecogeográficos de las cucurbitaceae latinoamericanas de
importancia económica. Systematic and ecogeographic studies on crop genepools. .
International plant genetic resources institute.
Lira, S. R. (1996). Calabaza de México. Ciencias(42), 52-55. Recuperado el 04 de noviembre de
2018, de http://www.revistaciencias.unam.mx/pt/184-revistas/revista-ciencias-42/1734-
calabazas-de-m%c3%a9xico.html
Lira, S. R., & Montes, H. S. (1992). Cultivos marginados otra perspectiva de 1492. La agricultura en
mesoamérica. Cucurbita (Cucurbita spp). Cultivos Andinos-FAO. Recuperado el 17 de
noviembre de 2018, de
http://www.fao.org/tempref/gi/reserved/ftp_faorlc/old/prior/segalim/prodalim/prodveg/
cdrom/contenido/libro09/cap2_1.htm
López, H. O., Márquez, C. T., Salomón, I. S., & Gonzáles, S. M. (2009). Extracción de lípidos de las
semillas de Cucurbita pepo L. (calabaza). Centro de investigación y desarrollo de
medicamentos. Habana, Cuba.
Lowry, L. H., Rosebrough, N. J., Farr, A. L., & Randal, R. J. (1951). Protein measurement with the
folin phenol reagent. J. Biol. Chem. . J. Biol. Chem., 193, 265-275.
Lucas, F. B., Hernández, J. L., & Boetter, B. R. (2015). Análisis proximal y determinación de factores
tóxicos de la almendra y caracterización fisicoquímica de la grasa de calabaza hedionda
(Apodanthera undulata). México.
Maduako, J. N., & Faborode, M. O. (1990). Some physical properties of cocoa pods in relation to
primary processing. LFE J Technol, 2, 1-7.
Manyika, J., Chui, M., & Miremadi, M. (2017). Un futuro que funciona: automatización, empleo y
productividad, resumen ejecutivo. McKinsey global institute.
Martínez , I. A. (2010). Efecto del proceso de tostado en el desarrollo de pasta entable de semilla
de zapollo (Cucúrbita máxima duch). Universidad de chile. (Tesis de pregrado), 73.
Martínez, A. Y. (2011). Fitoesteroles y escualeno como hipocolesterolémicos en cinco variedades
de semillas de Cucúrbita máxima y Cucúrbita moschata (calabaza). Revista cubana de
plantas medicinales, 16(1), 72-81. Recuperado el 07 de junio de 2019, de
https://www.medigraphic.com/cgi-bin/new/resumen.cgi?idarticulo=45714
93
Martínez, Y. M. (2012). Factibilidad economica del empleo de la harina de la semilla de calabaza en
la alimentación de las aves. 13(3), 1-9.
Maynard, D. N., Elmostrom, G. W., Talcott, S. T., & Carle, R. B. (2004). El dorado and la estrella.
Compact plant tropical pumpkin hybrids. Recuperado el 01 de noviembre de 2018, de
hortscience: a publica tion of the american society for horticultural science
McCabe, W. L., Smith, J. C., & Harriot, P. (1986). Unit operations of chemical engineering. New
York, USA: Mcgraw-hill.
McCabe, W. L., Smith, J. C., & Harriot, P. (1991). Operaciones unitarias en ingeniería química. (C.
edición, Ed.) 968-987.
Miglierina, A. M., Gaspera, D. P., & Mendoza, S. C. (2013). Manual del cultivo del zapollo anguito
(Cucurbita moschata duch). INTA E-BOOK.
Mohsenin, N. N. (1986). Physical properties of plant an animal materials. Gordon breach science
publishers (2nd Ed.). New York, USA.
Morant, A., Miranda, R., & Salomon, N. (2004). Procesamiento y análisis de semilla. Universidad
Nacional del Sur de Argentina.
NMX-EC-17025-IMNC. (2006). Requisitos generales para la competencia de los laboratorios de
ensayo y de calibración. Recuperado el 20 de agosto de 2019, de
http://integra.cimav.edu.mx/intranet/data/files/calidad/documentos/externos/NMX-EC-
17025-IMNC-2006.pdf
NMX-F-068-S. (1980). Determinacion de proteinas en alimentos. Recuperado el 20 de agosto de
2018, de www.colpos.mx/bancodenormas/nmexicanas/nmx-f-068-s-1980.pdf.
NMX-F-312. (1978). Determinación de reductores directos y totales. Recuperado el 20 de agosto
de 2018, de https://www.colpos.mx/bancodenormas/nmexicanas/NMX-F-312-1978.PDF
Ordóñez, M. R., Gely, M. C., & Pagano, A. M. (2012). Estudio de las propiedades físicas y de la
cinética de secado de granos de maíz colorado duro. Av. Cien. Ing, 3(3), 153-17.
Ortiz, G. S., Sánchez, L. J., Valdés, R. M., Baena, G. D., & Vallejo, C. F. (2008). Retención de caroteno
total en fruto de zapollo Cucúrbita moschata duch. Acondicionado por
osmodeshidratacióm y secado. Acta agronómica, 57(4), 269-274.
Ospina, M. J. (2001). Características físico mecánicas y análisis de calidad de granos. Universidad
Nacional de Colombia. Departamento de Ingeniería Agrícola, 225.
Parlamento Europeo. (2017). Resolución de 14 de marzo de 2017, sobre las implicaciones de los
macrodatos en los derechos fundamentales: privacidad, protección de datos, no
discriminación, seguridad y aplicación de la ley (2016/2225(INI)).
Planella-Villagra, I., Mira, J., Gutierrez , E., & Ochoa, S. N. (1983). Agroindustria, fundamentos y
conceptos básicos. Bogotá: IICA.
Quick, A. (1966). Hemorrhagic diseases and thrombosis. Philadelphia. Lea & Febiger, 15-33.
94
Quintero-Pinho, F. G., Henrriques, F., & Barroca, M. J. (2009). Mass transfer coefficients for the
drying of pumpkin (Cucurbita moschata) and dried product quality. Food bioprocess
technol. Springer science and business media.
Ravenet, J. (1992). Silos. Barcelona, España: Barcelona Ravenet, 191.
Reif, S., & Jaramillo, J. (1990). Elementos de procesos. Universidad del Valle. Cali, Colombia.
Rezig, L., Chouaibi, M., Msaada, K., & Hamdi, S. (2012). Chemical composition and profile
charactersation of pumpkin (Cucurbita maxima) seed oil. Chemical composition and profile
charactersation of pumpkin (Cucurbita maxima) seed oil, 37(1), 82-87.
Rodríguez, C. (1982). Principios para los balances de materiales. Colombia: Universidad Nacional
de Colombia sede Manizales.
Rössel-Kipping, E. D. (2015). Técnicas de procesos agrícolas I. San Luis Potosí, México.
Rössel-Kipping, E. D., Ortiz- Laurel, H., Amante- Orozco, A., Durán-Garcia, H. M., & López-Martínez,
L. A. (2018). Caracteristicas físicas y químicas de la semilla de calabaza para mecamización
y procesamiento. NOVA SCIENTIA, 10(21), 61-77.
SAGARPA. (2016). Almacenamiento y conservación de granos y semillas. Recuperado el 30 de julio
de 2019, de http://www.sagarpa.gob.mx/desarrolloRural/Documents/fichasaapt/Almacen
amiento%20de%20semillas.pdf
Sánchez, M. A., Villanueva, C., sahagún, J., & Chaning, L. (2000). Variación genética y respuesta a la
selección combinada en una variedad criolla de calabaza pipiana (Cucurbita argyrosperma
Huber var. stenosperma). REVISTA CHAPINGO SERIE HORTICULTURA,, 6(2), 221-230.
Schaffeld, G., Bruzzone, O., Lllanes, A., & Curotto, E. C. (1989). Enzymatic treatment of Stickwater
from fishmeal Industry with the protease from Cucurbita ficifolia. Biotechnology Letters,
11(7), 521-522.
Shamah, L. T., Cuevas, N. L., Mundo, R. V., Morales, R. C., Cervantes, T. L., & Villalpando, H. S.
(2008). Estado de salud y nutrición de los adultos mayores en México: Resultados de una
encuesta probabilistica nacional. Salud pública de México, 50, 383-389.
SIAP. (2017). Producción agrícola. Recuperado el 03 de noviembre de 2018, de
https://nube.siap.gob.mx/cierreagricola/
Silva, J. S. (2014). Development and chemical and sensory characterization of pumpkin seed flour-
based cereal bars. Food science and technology (Campinas), 34(2), 346-352.
Simopoulos, A. P. (1998). Overview of evolutionary aspects of omega-3 fatty acids in the diet. En
the return of ω-3 fatty acids into the food supply. i. land-based animal food products and
their health effects. World Rev Nutr Diet, 83, 1-11.
Sishi, M. N., & Telukdarie, A. (2017). Implementation of industry 4.0 technologies in the mining
industry: a case study. Paper presented at the 2017 leee international conference on
industrial engineering and engineering management (leem). 201-205.
95
Sukhodolov, Y. A. (2019). The notion, essence, and peculiarities of industry 4.0 as a sphere of
industry. Baikal state university, Irkutsk, Russia.
Urriola, R., & Cuvi, M. (1986). La agroindustria alimentaria en el Ecuador en los años 80. Quito. EC:
Ildis Ceplaes.
Us Institute of Medicine. (2001). Dierary reference intakes for vitamin A, vitamin K, Arsenic, Boron,
Chromium, Copper, Iodine, Iron, Manganese, Molybdenum, Nickel, Silicon, Vanadium, and
Zinc. A report of the panel on micronutrients, subcommittees on upper reference levels of
nutrients and of interpretation and use of dietary reference intakes, and the standing
committee on the scientific evaluation of dietary reference intakes, Washington, DC:
National Academy Press, Food and Nutrition Board.
Valenzuela, J. N. (2011). Physicochemical, technological properties, and health-benefits of
Cucurbita moschata duchense vs. cehualca: a review. Food research international, 44(9),
2587-2593.
Valiente, A. (1986). Problemas de balances de materia. Primera edición: Alambra.
Vasconcellos, J. A., Bemis, W. P., Berry, J. W., & Weber, C. W. (1981). The buffalo gourd, Cucurbita
foetidissima hbk, as a source of edible oil. In E.H Pryde, Ed New Sources of Fats an Oiks.
Amer. Oil Chem. Soc., Champaing, II. .
Vilche, C., Gely, M. C., & Santalla, E. (2003). Physical properties of quinoa seeds. Biosystems
engineering, 86(1), 59-65.
Villanueva, V. C. (2007). Calabazas cultivadas. Identificacion de especies, caracterización y
descripción varietal. Universidad Autónoma Chapingo, 123.
Villaseñor, J. L., & Espinoza-García, F. J. (1998). Catálago de malezas de México. México: Ediciones
Científicas Universitarias, UNAM, Consejo Nacional Consultivo Fitosanitario y Fondo de
Cultura Económica.
Whitaker , T. W., & Bemis, W. P. (1975). Origin and Evolution of the Cultivated Cucurbita. Bulletin
of the Torrey Botanical Club, 102(6), 362-368.
Wiggins. (1964). Apodanthera undulata A. Gray. Recuperado el 19 de noviembre de 2018, de
http://swbiodiversity.org/seinet/taxa/index.php?taxon =2356#
Younis, M. E., El-Shahaby, O. A., Abo-HAmed, S. A., & Ibrahim, A. H. (2000). Effects of water stress
on growth, pigments and 14co2 assimilation in three sorghum cultivar. Agron. Crop. Sci,
185(2), 73-82.
Zizumbo, V. D. (1986). Aspectos etnobotánicos de las calabaza silvestres y cultivadas (Cucurbita
spp) de la península de Yucatán. Boletín de la escuela de ciencias antropológicas de la
universidad de Yucatán, 13, 15-29.
96
11.0. CAPÍTULO XI. ANEXOS
Tabla 13a. Dimensiones de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara
n Muestra Ancho (mm)
Largo (mm)
Grosor (mm)
n Muestra Ancho (mm)
Largo (mm)
Grosor (mm)
1 SCCCC 10.60 25.80 2.20 65 SCCCC 9.50 22.80 2.60
2 SCCCC 9.60 24.70 3.70 66 SCCCC 8.70 19.70 2.30
3 SCCCC 9.00 20.20 2.30 67 SCCCC 9.20 19.80 2.00
4 SCCCC 10.50 22.40 2.80 68 SCCCC 8.30 21.40 2.40
5 SCCCC 9.20 20.60 2.10 69 SCCCC 7.90 18.90 2.20
6 SCCCC 8.70 23.20 2.60 70 SCCCC 7.50 21.20 2.40
7 SCCCC 8.60 22.30 3.30 71 SCCCC 8.00 21.70 2.10
8 SCCCC 9.30 22.80 2.70 72 SCCCC 9.80 25.70 2.90
9 SCCCC 8.10 18.90 2.20 73 SCCCC 9.80 22.70 2.30
10 SCCCC 7.90 21.00 2.00 74 SCCCC 8.10 20.00 2.10
11 SCCCC 8.70 19.50 2.00 75 SCCCC 8.20 24.00 2.50
12 SCCCC 9.80 24.40 2.60 76 SCCCC 7.70 19.00 2.20
13 SCCCC 7.90 22.70 2.00 77 SCCCC 7.70 22.80 2.50
14 SCCCC 9.10 24.20 3.90 78 SCCCC 9.50 24.90 3.40
15 SCCCC 9.20 24.30 2.50 79 SCCCC 8.80 19.40 1.70
16 SCCCC 7.90 19.00 2.20 80 SCCCC 8.60 19.80 2.00
17 SCCCC 8.10 22.30 2.00 81 SCCCC 8.50 24.00 2.90
18 SCCCC 8.40 23.20 2.50 82 SCCCC 7.60 19.10 2.20
19 SCCCC 7.40 19.00 2.60 83 SCCCC 10.00 23.40 2.80
20 SCCCC 10.20 23.60 2.40 84 SCCCC 9.50 20.50 2.60
21 SCCCC 8.10 20.70 2.40 85 SCCCC 9.50 23.70 2.50
22 SCCCC 8.50 19.90 2.30 86 SCCCC 10.50 22.50 2.80
23 SCCCC 8.20 19.80 2.20 87 SCCCC 8.10 18.20 2.50
24 SCCCC 7.80 19.00 2.60 88 SCCCC 8.70 18.50 1.60
25 SCCCC 9.60 23.80 2.10 89 SCCCC 8.60 22.30 3.10
26 SCCCC 8.80 21.00 1.70 90 SCCCC 7.70 20.80 2.00
27 SCCCC 8.30 22.90 2.80 91 SCCCC 9.10 20.80 2.00
28 SCCCC 10.00 24.10 2.90 92 SCCCC 7.30 21.40 2.00
29 SCCCC 8.90 20.80 1.90 93 SCCCC 10.40 19.70 3.00
30 SCCCC 9.40 21.70 2.30 94 SCCCC 9.00 22.50 3.10
31 SCCCC 8.50 19.00 2.20 95 SCCCC 9.10 18.20 2.70
32 SCCCC 8.50 20.30 2.30 96 SCCCC 8.90 22.30 2.70
33 SCCCC 8.40 20.80 2.60 97 SCCCC 9.60 23.90 2.50
34 SCCCC 8.10 18.90 1.70 98 SCCCC 11.80 26.80 2.80
35 SCCCC 7.00 19.80 2.20 99 SCCCC 8.40 17.60 2.20
36 SCCCC 9.30 26.70 2.90 100 SCCCC 9.20 20.70 2.30
37 SCCCC 8.70 21.70 1.80 Promedio 8.72 21.76 2.41
38 SCCCC 8.30 21.30 2.30 Desviación Estándar 0.87 2.19 0.42
39 SCCCC 8.70 23.70 2.80 1 SCCSC 7.10 18.90 2.20
40 SCCCC 9.20 23.60 2.60 2 SCCSC 5.80 14.90 1.70
41 SCCCC 8.00 23.90 2.10 3 SCCSC 6.50 19.70 2.70
42 SCCCC 10.40 25.00 2.30 4 SCCSC 7.50 20.20 2.60
43 SCCCC 8.60 21.00 2.10 5 SCCSC 5.60 19.50 2.30
44 SCCCC 7.10 17.30 2.30 6 SCCSC 5.80 19.70 2.20
45 SCCCC 8.20 24.00 2.00 7 SCCSC 8.40 21.30 2.20
46 SCCCC 9.00 23.30 2.80 8 SCCSC 7.70 19.30 3.00
47 SCCCC 9.20 24.70 2.40 9 SCCSC 7.00 15.40 2.00
48 SCCCC 8.20 23.20 2.90 10 SCCSC 6.40 19.20 2.20
49 SCCCC 8.10 19.00 2.30 11 SCCSC 7.00 18.00 2.20
52 SCCCC 8.20 22.90 3.00 12 SCCSC 7.40 19.10 2.50
53 SCCCC 8.90 20.50 2.50 13 SCCSC 6.90 19.80 3.30
54 SCCCC 8.00 19.30 2.20 14 SCCSC 5.60 17.40 2.00
55 SCCCC 8.10 22.60 2.20 15 SCCSC 6.10 17.90 2.00
56 SCCCC 9.20 23.90 2.50 16 SCCSC 7.20 19.70 1.70
57 SCCCC 7.80 17.60 1.50 17 SCCSC 8.60 20.70 1.80
58 SCCCC 8.80 25.40 2.40 18 SCCSC 6.90 18.80 2.80
59 SCCCC 8.40 22.80 2.60 19 SCCSC 6.20 19.30 2.30
60 SCCCC 9.20 21.60 2.20 20 SCCSC 6.70 18.20 2.40
61 SCCCC 8.60 21.20 2.50 21 SCCSC 5.00 17.10 1.80
62 SCCCC 7.20 20.70 2.60 22 SCCSC 6.60 19.00 2.70
63 SCCCC 9.10 24.10 2.10 23 SCCSC 6.70 19.00 2.30
64 SCCCC 7.60 23.10 2.00 24 SCCSC 6.60 18.20 3.20
97
Tabla 13a. Dimensiones de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara (Continuación)
n Muestra Ancho (mm)
Largo (mm)
Grosor (mm)
n Muestra Ancho (mm)
Largo (mm)
Grosor (mm)
25 SCCSC 7.20 18.90 2.80 90 SCCSC 5.70 16.30 2.40
26 SCCSC 8.10 18.00 2.20 91 SCCSC 6.90 17.70 2.00
27 SCCSC 7.10 19.20 2.80 92 SCCSC 5.50 18.80 1.70
28 SCCSC 7.00 19.20 2.60 93 SCCSC 6.20 16.50 1.70
29 SCCSC 6.40 16.70 1.80 94 SCCSC 6.00 17.10 2.30
30 SCCSC 7.10 20.00 1.90 95 SCCSC 6.20 16.10 1.50
31 SCCSC 7.30 17.00 2.10 96 SCCSC 5.70 17.90 2.00
32 SCCSC 6.60 18.80 2.40 97 SCCSC 5.40 18.10 2.10
33 SCCSC 7.20 19.90 1.90 98 SCCSC 6.60 19.10 1.70
34 SCCSC 7.00 18.00 2.30 99 SCCSC 5.10 17.70 1.70
35 SCCSC 7.60 21.00 2.80 100 SCCSC 6.80 17.10 0.90
36 SCCSC 7.10 19.20 2.40 101 SCCSC 6.40 15.50 1.50
37 SCCSC 6.50 17.10 1.70 102 SCCSC 5.20 17.80 1.80
38 SCCSC 8.10 18.70 2.30 103 SCCSC 6.70 17.80 1.80
39 SCCSC 7.20 23.10 2.50 104 SCCSC 5.50 15.50 1.60
40 SCCSC 7.50 18.50 2.20 105 SCCSC 5.40 17.40 1.30
41 SCCSC 8.20 20.30 2.00 106 SCCSC 6.50 17.40 1.60
42 SCCSC 6.10 20.20 2.00 107 SCCSC 6.40 16.40 1.10
43 SCCSC 7.30 19.10 2.10 108 SCCSC 6.00 18.30 2.00
44 SCCSC 6.90 19.00 2.00 109 SCCSC 5.20 16.10 1.90
45 SCCSC 7.70 19.60 2.50 110 SCCSC 6.30 16.40 1.50
46 SCCSC 6.40 20.60 2.60 111 SCCSC 6.20 17.60 1.60
47 SCCSC 7.20 20.20 3.40 112 SCCSC 5.80 17.40 1.70
48 SCCSC 6.90 21.30 3.10 113 SCCSC 6.50 18.00 1.60
49 SCCSC 7.80 19.40 2.10 114 SCCSC 5.90 18.30 1.70
50 SCCSC 6.10 18.60 1.60 115 SCCSC 6.30 17.20 1.90
51 SCCSC 6.80 19.00 3.00 116 SCCSC 5.50 19.00 1.60
52 SCCSC 5.40 16.10 1.40 117 SCCSC 6.20 17.20 2.20
53 SCCSC 6.50 19.70 2.40 118 SCCSC 5.40 17.10 1.90
54 SCCSC 7.20 18.80 1.80 119 SCCSC 4.90 18.60 1.40
55 SCCSC 6.90 19.20 2.00 120 SCCSC 7.50 19.50 1.90
56 SCCSC 7.20 20.60 3.10 121 SCCSC 7.90 19.70 2.30
57 SCCSC 8.40 21.20 1.90 122 SCCSC 5.90 18.00 2.30
58 SCCSC 7.70 17.60 2.00 123 SCCSC 4.90 16.80 1.90
59 SCCSC 6.20 17.80 2.00 124 SCCSC 6.60 16.80 1.80
60 SCCSC 6.00 16.90 1.50 125 SCCSC 5.70 16.00 1.70
61 SCCSC 7.00 19.40 1.70 126 SCCSC 5.20 16.50 1.90
62 SCCSC 5.70 17.30 1.20 127 SCCSC 5.20 16.00 2.10
63 SCCSC 6.30 19.70 2.90 128 SCCSC 5.20 18.10 1.90
64 SCCSC 6.90 19.90 2.60 129 SCCSC 6.40 16.50 1.70
65 SCCSC 7.00 19.50 2.00 130 SCCSC 5.70 17.30 1.30
66 SCCSC 7.50 18.10 1.80 131 SCCSC 6.70 18.90 1.80
67 SCCSC 6.40 17.20 2.30 132 SCCSC 5.70 18.90 2.20
68 SCCSC 6.40 16.80 2.10 133 SCCSC 4.40 16.50 1.60
69 SCCSC 7.50 20.80 3.00 134 SCCSC 5.60 16.80 2.20
70 SCCSC 7.20 19.30 2.60 135 SCCSC 6.10 16.50 1.40
71 SCCSC 6.80 17.70 2.20 136 SCCSC 5.40 16.50 2.20
72 SCCSC 6.60 21.00 2.50 137 SCCSC 6.30 18.40 2.00
73 SCCSC 7.60 19.80 2.10 138 SCCSC 5.50 17.10 1.70
74 SCCSC 6.90 19.60 2.60 139 SCCSC 6.00 16.60 1.90
75 SCCSC 7.40 18.60 1.90 140 SCCSC 5.90 16.80 1.70
76 SCCSC 6.20 18.50 2.50 141 SCCSC 5.90 17.20 1.70
77 SCCSC 6.50 17.90 2.40 142 SCCSC 5.60 16.90 1.80
78 SCCSC 5.80 18.30 2.00 143 SCCSC 5.60 17.50 1.70
79 SCCSC 8.10 19.60 2.20 144 SCCSC 6.10 17.00 1.60
80 SCCSC 5.70 19.60 2.00 145 SCCSC 5.00 18.70 2.10
81 SCCSC 6.40 19.90 2.30 146 SCCSC 6.40 18.40 2.50
82 SCCSC 6.50 16.80 2.00 147 SCCSC 6.50 17.20 1.50
83 SCCSC 5.50 18.00 1.90 148 SCCSC 6.10 16.40 1.50
84 SCCSC 7.30 18.00 2.20 149 SCCSC 6.70 20.30 1.80
85 SCCSC 6.40 20.10 2.30 150 SCCSC 6.40 18.50 2.00
86 SCCSC 7.00 16.60 1.60 Promedio 6.48 18.28 2.06
87 SCCSC 6.50 17.80 1.90 Desviación Estándar 1.46 0.82 0.45
88 SCCSC 6.40 16.60 1.30 1 SCHCC 8.50 10.30 2.70 89 SCCSC 6.20 17.80 1.80 2 SCHCC 7.80 10.20 3.50
98
Tabla 13a. Dimensiones de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara (Continuación)
n Muestra Ancho (mm)
Largo (mm)
Grosor (mm)
n Muestra Ancho (mm)
Largo (mm)
Grosor (mm)
3 SCHCC 7.30 9.50 3.80 68 SCHCC 8.20 9.50 3.40
4 SCHCC 7.60 9.60 3.30 69 SCHCC 6.20 9.90 3.90
5 SCHCC 7.80 10.70 3.50 70 SCHCC 6.70 10.00 3.00
6 SCHCC 7.50 9.90 3.30 71 SCHCC 7.70 9.80 4.10
7 SCHCC 7.30 10.80 3.30 72 SCHCC 6.90 9.70 3.00
8 SCHCC 7.50 9.30 4.60 73 SCHCC 8.40 10.30 3.60
9 SCHCC 8.90 11.00 3.70 74 SCHCC 7.70 10.80 2.60
10 SCHCC 7.40 10.30 3.30 75 SCHCC 7.00 9.20 4.50
11 SCHCC 7.70 9.10 3.30 76 SCHCC 8.60 10.80 3.80
12 SCHCC 7.80 10.60 4.30 77 SCHCC 7.60 9.60 2.90
13 SCHCC 8.60 11.00 3.70 78 SCHCC 6.30 9.10 3.50
14 SCHCC 7.70 10.40 3.70 79 SCHCC 6.70 10.00 3.90
15 SCHCC 6.30 8.20 3.70 80 SCHCC 7.60 10.70 3.90
16 SCHCC 7.60 10.70 3.70 81 SCHCC 7.00 12.00 4.00
17 SCHCC 7.40 12.00 3.60 82 SCHCC 7.00 10.00 4.00
18 SCHCC 8.10 11.60 3.50 83 SCHCC 7.00 10.00 3.00
19 SCHCC 8.50 10.70 3.50 84 SCHCC 7.00 12.00 3.50
20 SCHCC 8.00 11.10 3.10 85 SCHCC 8.00 10.00 4.00
21 SCHCC 8.30 10.50 3.30 86 SCHCC 7.00 10.00 4.00
22 SCHCC 6.90 11.40 3.20 87 SCHCC 8.00 9.00 3.50
23 SCHCC 8.40 11.40 2.60 88 SCHCC 8.00 10.00 4.00
24 SCHCC 6.40 9.40 3.70 89 SCHCC 9.00 11.00 3.50
25 SCHCC 8.60 10.30 3.40 90 SCHCC 7.00 10.00 4.00
26 SCHCC 7.90 11.20 3.20 91 SCHCC 7.00 10.00 3.00
27 SCHCC 6.70 9.30 3.30 92 SCHCC 7.00 9.50 4.00
28 SCHCC 8.50 10.70 3.80 93 SCHCC 7.00 11.00 5.00
29 SCHCC 8.20 9.90 3.00 94 SCHCC 7.50 11.00 4.00
30 SCHCC 8.60 11.90 2.80 95 SCHCC 7.00 10.00 2.00
31 SCHCC 8.20 10.50 3.70 96 SCHCC 8.00 9.00 3.50
32 SCHCC 7.40 10.20 3.70 97 SCHCC 8.50 11.00 3.00
33 SCHCC 6.60 9.00 3.20 98 SCHCC 8.00 11.00 4.00
34 SCHCC 7.80 9.60 3.60 99 SCHCC 9.00 11.00 4.00
35 SCHCC 7.20 9.10 3.20 100 SCHCC 7.00 10.00 2.50
36 SCHCC 7.30 10.20 3.20 Promedio 7.55 10.21 3.52
37 SCHCC 7.50 10.70 4.00 Desviación Estándar 0.66 0.81 0.49
38 SCHCC 7.80 9.60 3.50
39 SCHCC 6.60 10.80 3.70
40 SCHCC 7.50 10.50 4.00
41 SCHCC 7.60 10.60 2.80
42 SCHCC 7.40 10.20 3.50
43 SCHCC 7.50 10.10 3.00
44 SCHCC 7.10 8.60 3.10
45 SCHCC 7.30 9.10 3.40
46 SCHCC 8.90 11.50 2.50
47 SCHCC 7.30 10.00 4.30
48 SCHCC 7.60 10.00 3.40
49 SCHCC 6.90 9.30 3.80
50 SCHCC 7.60 10.50 4.30
51 SCHCC 7.70 10.60 4.00
52 SCHCC 7.70 9.80 3.40
53 SCHCC 7.60 10.10 3.50
54 SCHCC 7.30 10.10 3.00
55 SCHCC 7.60 10.20 3.50
56 SCHCC 8.70 11.60 3.70
57 SCHCC 6.90 8.70 3.30
58 SCHCC 7.80 10.60 3.30
59 SCHCC 6.90 8.90 3.60
60 SCHCC 7.60 11.30 4.00
61 SCHCC 7.00 10.10 4.10
62 SCHCC 6.10 10.70 3.60
63 SCHCC 6.90 9.40 3.30
64 SCHCC 7.60 10.30 4.00
65 SCHCC 7.30 10.10 3.10
66 SCHCC 8.30 10.20 2.90
67 SCHCC 6.90 8.50 3.50
99
Tabla 14a. Forma de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara
n Muestra Diámetro
geométrico (mm)
Área superficial específica
(mm 2)
Relación de
aspecto (%)
n Muestra Diámetro
geométrico (mm)
Área superficial específica
(mm 2)
Relación de
aspecto (%)
1 SCCCC 8.44 223.90 41.09 65 SCCCC 8.26 214.24 41.67
2 SCCCC 9.57 287.91 38.87 66 SCCCC 7.33 168.90 44.16
3 SCCCC 7.48 175.67 44.55 67 SCCCC 7.14 160.25 46.46
4 SCCCC 8.70 237.80 46.88 68 SCCCC 7.53 177.95 38.79
5 SCCCC 7.36 169.98 44.66 69 SCCCC 6.90 149.56 41.80
6 SCCCC 8.07 204.40 37.50 70 SCCCC 7.25 165.28 35.38
7 SCCCC 8.59 231.58 38.57 71 SCCCC 7.14 160.32 36.87
8 SCCCC 8.30 216.61 40.79 72 SCCCC 9.01 254.79 38.13
9 SCCCC 6.96 152.08 42.86 73 SCCCC 8.00 200.97 43.17
10 SCCCC 6.92 150.57 37.62 74 SCCCC 6.98 153.10 40.50
11 SCCCC 6.97 152.83 44.62 75 SCCCC 7.89 195.79 34.17
12 SCCCC 8.53 228.85 40.16 76 SCCCC 6.85 147.55 40.53
13 SCCCC 7.10 158.59 34.80 77 SCCCC 7.60 181.44 33.77
14 SCCCC 9.51 283.86 37.60 78 SCCCC 9.30 271.70 38.15
15 SCCCC 8.24 213.16 37.86 79 SCCCC 6.62 137.71 45.36
16 SCCCC 6.91 150.09 41.58 80 SCCCC 6.98 153.21 43.43
17 SCCCC 7.12 159.35 36.32 81 SCCCC 8.39 221.40 35.42
18 SCCCC 7.87 194.52 36.21 82 SCCCC 6.84 146.78 39.79
19 SCCCC 7.15 160.62 38.95 83 SCCCC 8.69 236.99 42.74
20 SCCCC 8.33 217.92 43.22 84 SCCCC 7.97 199.58 46.34
21 SCCCC 7.38 171.24 39.13 85 SCCCC 8.26 214.17 40.08
22 SCCCC 7.30 167.42 42.71 86 SCCCC 8.71 238.51 46.67
23 SCCCC 7.10 158.16 41.41 87 SCCCC 7.17 161.49 44.51
24 SCCCC 7.28 166.35 41.05 88 SCCCC 6.36 127.16 47.03
25 SCCCC 7.83 192.54 40.34 89 SCCCC 8.41 222.12 38.57
26 SCCCC 6.80 145.18 41.90 90 SCCCC 6.84 147.08 37.02
27 SCCCC 8.10 206.32 36.24 91 SCCCC 7.23 164.40 43.75
28 SCCCC 8.87 247.42 41.49 92 SCCCC 6.79 144.65 34.11
29 SCCCC 7.06 156.54 42.79 93 SCCCC 8.50 227.11 52.79
30 SCCCC 7.77 189.68 43.32 94 SCCCC 8.56 230.33 40.00
31 SCCCC 7.08 157.60 44.74 95 SCCCC 7.65 183.71 50.00
32 SCCCC 7.35 169.66 41.87 96 SCCCC 8.12 207.26 39.91
33 SCCCC 7.69 185.65 40.38 97 SCCCC 8.31 216.88 40.17
34 SCCCC 6.38 128.06 42.86 98 SCCCC 9.60 289.69 44.03
35 SCCCC 6.73 142.32 35.35 99 SCCCC 6.88 148.58 47.73
36 SCCCC 8.96 252.39 34.83 100 SCCCC 7.59 181.19 44.44
37 SCCCC 6.98 152.99 40.09 Promedio 7.71 186.61 40.06
38 SCCCC 7.41 172.43 38.97 Desviación Estándar 0.93 2.70 39.76
39 SCCCC 8.33 217.82 36.71 1 SCCSC 6.66 139.29 37.57
40 SCCCC 8.26 214.59 38.98 2 SCCSC 5.28 87.47 38.93
41 SCCCC 7.38 170.98 33.47 3 SCCSC 7.02 154.76 32.99
42 SCCCC 8.42 222.99 41.60 4 SCCSC 7.33 168.81 37.13
43 SCCCC 7.24 164.60 40.95 5 SCCSC 6.31 125.06 28.72
44 SCCCC 6.56 135.26 41.04 6 SCCSC 6.31 125.13 29.44
45 SCCCC 7.33 168.73 34.17 7 SCCSC 7.33 168.74 39.44
46 SCCCC 8.37 220.29 38.63 8 SCCSC 7.64 183.34 39.90
47 SCCCC 8.17 209.71 37.25 9 SCCSC 6.00 112.96 45.45
48 SCCCC 8.20 211.32 35.34 10 SCCSC 6.47 131.35 33.33
49 SCCCC 7.07 157.20 42.63 11 SCCSC 6.52 133.56 38.89
50 SCCCC 6.81 145.69 35.44 12 SCCSC 7.07 157.02 38.74
51 SCCCC 8.36 219.79 38.43 13 SCCSC 7.67 184.72 34.85
52 SCCCC 8.26 214.29 35.81 14 SCCSC 5.80 105.60 32.18
53 SCCCC 7.70 186.15 43.41 15 SCCSC 6.02 113.93 34.08
54 SCCCC 6.98 152.94 41.45 16 SCCSC 6.22 121.71 36.55
55 SCCCC 7.38 171.33 35.84 17 SCCSC 6.84 147.11 41.55
56 SCCCC 8.19 210.81 38.49 18 SCCSC 7.13 159.93 36.70
57 SCCCC 5.91 109.55 44.32 19 SCCSC 6.50 132.92 32.12
58 SCCCC 8.13 207.41 34.65 20 SCCSC 6.64 138.48 36.81
59 SCCCC 7.93 197.37 36.84 21 SCCSC 5.36 90.22 29.24
60 SCCCC 7.59 180.96 42.59 22 SCCSC 6.97 152.61 34.74
61 SCCCC 7.70 186.07 40.57 23 SCCSC 6.64 138.52 35.26
62 SCCCC 7.29 166.98 34.78 24 SCCSC 7.27 166.08 36.26
63 SCCCC 7.72 187.36 37.76 25 SCCSC 7.25 165.11 38.10
64 SCCCC 7.05 156.36 32.90 26 SCCSC 6.85 147.21 45.00
100
Tabla 14a. Forma de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara (Continuación)
n Muestra Diámetro
geométrico (mm)
Área superficial específica
(mm 2)
Relación de
aspecto (%)
n Muestra Diámetro
geométrico (mm)
Área superficial específica
(mm 2)
Relación de
aspecto (%)
27 SCCSC 7.25 165.31 36.98 91 SCCSC 6.25 122.76 38.98
28 SCCSC 7.04 155.86 36.46 92 SCCSC 5.60 98.58 29.26
29 SCCSC 5.77 104.70 38.32 93 SCCSC 5.58 97.88 37.58
30 SCCSC 6.46 131.17 35.50 94 SCCSC 6.18 119.97 35.09
31 SCCSC 6.39 128.18 42.94 95 SCCSC 5.31 88.58 38.51
32 SCCSC 6.68 140.10 35.11 96 SCCSC 5.89 108.89 31.84
33 SCCSC 6.48 131.96 36.18 97 SCCSC 5.90 109.31 29.83
34 SCCSC 6.62 137.58 38.89 98 SCCSC 5.98 112.50 34.55
35 SCCSC 7.65 183.63 36.19 99 SCCSC 5.35 90.05 28.81
36 SCCSC 6.89 149.16 36.98 100 SCCSC 4.71 69.77 39.77
37 SCCSC 5.74 103.45 38.01 101 SCCSC 5.30 88.22 41.29
38 SCCSC 7.04 155.54 43.32 102 SCCSC 5.50 95.12 29.21
39 SCCSC 7.46 175.01 31.17 103 SCCSC 5.99 112.63 37.64
40 SCCSC 6.73 142.43 40.54 104 SCCSC 5.15 83.25 35.48
41 SCCSC 6.93 150.91 40.39 105 SCCSC 4.96 77.34 31.03
42 SCCSC 6.27 123.49 30.20 106 SCCSC 5.66 100.51 37.36
43 SCCSC 6.64 138.53 38.22 107 SCCSC 4.87 74.49 39.02
44 SCCSC 6.40 128.70 36.32 108 SCCSC 6.03 114.35 32.79
45 SCCSC 7.23 164.04 39.29 109 SCCSC 5.42 92.23 32.30
46 SCCSC 7.00 153.87 31.07 110 SCCSC 5.37 90.64 38.41
47 SCCSC 7.91 196.45 35.64 111 SCCSC 5.59 98.14 35.23
48 SCCSC 7.69 186.01 32.39 112 SCCSC 5.56 97.00 33.33
49 SCCSC 6.82 146.29 40.21 113 SCCSC 5.72 102.81 36.11
50 SCCSC 5.66 100.72 32.80 114 SCCSC 5.68 101.47 32.24
51 SCCSC 7.29 167.01 35.79 115 SCCSC 5.90 109.54 36.63
52 SCCSC 4.96 77.16 33.54 116 SCCSC 5.51 95.35 28.95
53 SCCSC 6.75 143.07 32.99 117 SCCSC 6.17 119.50 36.05
54 SCCSC 6.25 122.55 38.30 118 SCCSC 5.60 98.46 31.58
55 SCCSC 6.42 129.60 35.94 119 SCCSC 5.03 79.62 26.34
56 SCCSC 7.72 187.15 34.95 120 SCCSC 6.53 133.78 38.46
57 SCCSC 6.97 152.54 39.62 121 SCCSC 7.10 158.38 40.10
58 SCCSC 6.47 131.57 43.75 122 SCCSC 6.25 122.76 32.78
59 SCCSC 6.04 114.74 34.83 123 SCCSC 5.39 91.20 29.17
60 SCCSC 5.34 89.52 35.50 124 SCCSC 5.84 107.29 39.29
61 SCCSC 6.13 118.23 36.08 125 SCCSC 5.37 90.67 35.63
62 SCCSC 4.91 75.72 32.95 126 SCCSC 5.46 93.75 31.52
63 SCCSC 7.11 158.96 31.98 127 SCCSC 5.59 98.19 32.50
64 SCCSC 7.09 158.10 34.67 128 SCCSC 5.63 99.72 28.73
65 SCCSC 6.49 132.21 35.90 129 SCCSC 5.64 99.98 38.79
66 SCCSC 6.25 122.79 41.44 130 SCCSC 5.04 79.87 32.95
67 SCCSC 6.33 125.73 37.21 131 SCCSC 6.11 117.23 35.45
68 SCCSC 6.09 116.49 38.10 132 SCCSC 6.19 120.32 30.16
69 SCCSC 7.76 189.37 36.06 133 SCCSC 4.88 74.79 26.67
70 SCCSC 7.12 159.37 37.31 134 SCCSC 5.92 109.93 33.33
71 SCCSC 6.42 129.55 38.42 135 SCCSC 5.20 85.07 36.97
72 SCCSC 7.02 154.98 31.43 136 SCCSC 5.81 106.01 32.73
73 SCCSC 6.81 145.75 38.38 137 SCCSC 6.14 118.56 34.24
74 SCCSC 7.06 156.51 35.20 138 SCCSC 5.43 92.55 32.16
75 SCCSC 6.39 128.47 39.78 139 SCCSC 5.74 103.55 36.14
76 SCCSC 6.59 136.61 33.51 140 SCCSC 5.52 95.84 35.12
77 SCCSC 6.54 134.22 36.31 141 SCCSC 5.57 97.36 34.30
78 SCCSC 5.97 111.80 31.69 142 SCCSC 5.54 96.54 33.14
79 SCCSC 7.04 155.81 41.33 143 SCCSC 5.50 95.12 32.00
80 SCCSC 6.07 115.68 29.08 144 SCCSC 5.49 94.86 35.88
81 SCCSC 6.64 138.57 32.16 145 SCCSC 5.81 106.13 26.74
82 SCCSC 6.02 113.93 38.69 146 SCCSC 6.65 139.03 34.78
83 SCCSC 5.73 103.14 30.56 147 SCCSC 5.51 95.54 37.79
84 SCCSC 6.61 137.35 40.56 148 SCCSC 5.31 88.71 37.20
85 SCCSC 6.66 139.49 31.84 149 SCCSC 6.26 122.95 33.00
86 SCCSC 5.71 102.34 42.17 150 SCCSC 6.19 120.25 34.59
87 SCCSC 6.04 114.43 36.52 Promedio 6.25 122.54 35.42
88 SCCSC 5.17 83.94 38.55 Desviación Estándar 0.82 2.09 177.38
89 SCCSC 5.83 106.96 34.83 1 SCHCC 6.18 120.11 82.52
90 SCCSC 6.06 115.52 34.97 2 SCHCC 6.53 133.97 76.47
101
Tabla 14a. Forma de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara (Continuación)
n Muestra Diámetro
geométrico (mm)
Área superficial específica
(mm 2)
Relación de
aspecto (%)
n Muestra Diámetro
geométrico (mm)
Área superficial específica
(mm 2)
Relación de
aspecto (%)
3 SCHCC 6.41 129.13 76.84 67 SCHCC 5.90 109.32 81.18
4 SCHCC 6.22 121.59 79.17 68 SCHCC 6.42 129.57 86.32
5 SCHCC 6.64 138.31 72.90 69 SCHCC 6.21 121.12 62.63
6 SCHCC 6.26 123.01 75.76 70 SCHCC 5.86 107.80 67.00
7 SCHCC 6.38 128.03 67.59 71 SCHCC 6.76 143.71 78.57
8 SCHCC 6.85 147.24 80.65 72 SCHCC 5.86 107.72 71.13
9 SCHCC 7.13 159.64 80.91 73 SCHCC 6.78 144.35 81.55
10 SCHCC 6.31 125.18 71.84 74 SCHCC 6.00 113.17 71.30
11 SCHCC 6.14 118.35 84.62 75 SCHCC 6.62 137.58 76.09
12 SCHCC 7.08 157.66 73.58 76 SCHCC 7.07 156.90 79.63
13 SCHCC 7.05 156.03 78.18 77 SCHCC 5.96 111.55 79.17
14 SCHCC 6.67 139.63 74.04 78 SCHCC 5.85 107.68 69.23
15 SCHCC 5.76 104.24 76.83 79 SCHCC 6.39 128.40 67.00
16 SCHCC 6.70 141.06 71.03 80 SCHCC 6.82 146.10 71.03
17 SCHCC 6.84 146.88 61.67 81 SCHCC 6.95 151.84 58.33
18 SCHCC 6.90 149.68 69.83 82 SCHCC 6.54 134.46 70.00
19 SCHCC 6.83 146.46 79.44 83 SCHCC 5.94 110.99 70.00
20 SCHCC 6.51 132.94 72.07 84 SCHCC 6.65 138.90 58.33
21 SCHCC 6.60 136.88 79.05 85 SCHCC 6.84 146.98 80.00
22 SCHCC 6.31 125.24 60.53 86 SCHCC 6.54 134.46 70.00
23 SCHCC 6.29 124.33 73.68 87 SCHCC 6.32 125.34 88.89
24 SCHCC 6.06 115.39 68.09 88 SCHCC 6.84 146.98 80.00
25 SCHCC 6.70 141.15 83.50 89 SCHCC 7.02 154.98 81.82
26 SCHCC 6.57 135.46 70.54 90 SCHCC 6.54 134.46 70.00
27 SCHCC 5.90 109.45 72.04 91 SCHCC 5.94 110.99 70.00
28 SCHCC 7.02 154.72 79.44 92 SCHCC 6.43 129.94 73.68
29 SCHCC 6.24 122.52 82.83 93 SCHCC 7.27 166.26 63.64
30 SCHCC 6.59 136.55 72.27 94 SCHCC 6.91 150.02 68.18
31 SCHCC 6.83 146.54 78.10 95 SCHCC 5.19 84.70 70.00
32 SCHCC 6.54 134.23 72.55 96 SCHCC 6.32 125.34 88.89
33 SCHCC 5.75 103.86 73.33 97 SCHCC 6.55 134.62 77.27
34 SCHCC 6.46 131.10 81.25 98 SCHCC 7.06 156.62 72.73
35 SCHCC 5.94 110.87 79.12 99 SCHCC 7.34 169.41 81.82
36 SCHCC 6.20 120.74 71.57 100 SCHCC 5.59 98.29 70.00
37 SCHCC 6.85 147.28 70.09 Promedio 6.47 131.66 73.97
38 SCHCC 6.40 128.66 81.25 Desviación Estándar 0.64 1.29 81.57
39 SCHCC 6.41 129.20 61.11
40 SCHCC 6.80 145.44 71.43
41 SCHCC 6.09 116.41 71.70
42 SCHCC 6.42 129.35 72.55
43 SCHCC 6.10 116.99 74.26
44 SCHCC 5.74 103.57 82.56
45 SCHCC 6.09 116.51 80.22
46 SCHCC 6.35 126.62 77.39
47 SCHCC 6.80 145.10 73.00
48 SCHCC 6.37 127.45 76.00
49 SCHCC 6.25 122.62 74.19
50 SCHCC 7.00 153.98 72.38
51 SCHCC 6.89 148.96 72.64
52 SCHCC 6.35 126.85 78.57
53 SCHCC 6.45 130.80 75.25
54 SCHCC 6.05 114.90 72.28
55 SCHCC 6.47 131.67 74.51
56 SCHCC 7.20 162.91 75.00
57 SCHCC 5.83 106.76 79.31
58 SCHCC 6.49 132.16 73.58
59 SCHCC 6.05 114.86 77.53
60 SCHCC 7.00 154.09 67.26
61 SCHCC 6.62 137.60 69.31
62 SCHCC 6.17 119.63 57.01
63 SCHCC 5.98 112.41 73.40
64 SCHCC 6.79 144.86 73.79
65 SCHCC 6.11 117.44 72.28
66 SCHCC 6.26 123.18 81.37
102
Tabla 15a. Peso de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara
Muestra Peso 100 semillas
(g)
Peso 1000 semillas
(g)
SCCCC 16.49 164.90
SCCCC 16.30 163.00
SCCCC 16.35 163.50
SCCCC 16.60 166.00
SCCCC 16.53 165.30
SCCCC 16.57 165.68
SCCCC 16.61 166.06
SCCCC 16.64 166.44
SCCCC 16.68 166.82
SCCCC 16.72 167.20
Promedio 16.55 165.49
Desviación Estándar 0.14 1.36
SCCSC 21.09 140.58
SCCSC 21.00 140.00
SCCSC 21.50 143.33
SCCSC 21.20 141.33
SCCSC 21.41 142.71
SCCSC 21.49 143.27
SCCSC 21.57 143.83
SCCSC 21.66 144.39
SCCSC 21.74 144.95
SCCSC 21.83 145.51
Promedio 21.45 142.99
Desviación Estándar 0.28 1.84
SCHCC 15.58 155.82
SCHCC 15.40 154.00
SCHCC 15.40 154.00
SCHCC 15.60 156.00
SCHCC 15.51 155.09
SCHCC 15.51 155.14
SCHCC 15.52 155.20
SCHCC 15.52 155.25
SCHCC 15.53 155.30
SCHCC 15.54 155.36
Promedio 15.51 155.12
Desviación Estándar 0.07 0.66
103
Tabla 16a. Fricción interna de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara
n Muestra µ (-)
1 SCCCC 0.46
2 SCCCC 0.38
3 SCCCC 0.53
4 SCCCC 0.40
5 SCCCC 0.46
6 SCCCC 0.37
7 SCCCC 0.37
8 SCCCC 0.43
9 SCCCC 0.45
10 SCCCC 0.35
Promedio SCCCC 0.42
Desviación Estándar SCCCC 0.05
1 SCCSC 0.41
2 SCCSC 0.38
3 SCCSC 0.41
4 SCCSC 0.42
5 SCCSC 0.52
6 SCCSC 0.44
7 SCCSC 0.39
8 SCCSC 0.45
9 SCCSC 0.37
10 SCCSC 0.35
Promedio SCCSC 0.41
Desviación Estándar SCCSC 0.05
1 SCHCC 0.38
2 SCHCC 0.47
3 SCHCC 0.41
4 SCHCC 0.46
5 SCHCC 0.34
6 SCHCC 0.47
7 SCHCC 0.44
8 SCHCC 0.45
9 SCHCC 0.50
10 SCHCC 0.49
Promedio SCHCC 0.44
Desviación Estándar SCHCC 0.05
1 CSCC 0.56
2 CSCC 0.50
3 CSCC 0.44
4 CSCC 0.58
5 CSCC 0.48
6 CSCC 0.56
7 CSCC 0.41
8 CSCC 0.45
9 CSCC 0.53
10 CSCC 0.60
11 CSCC 0.58
12 CSCC 0.60
13 CSCC 0.50
14 CSCC 0.62
15 CSCC 0.49
16 CSCC 0.57
17 CSCC 0.58
18 CSCC 0.56
19 CSCC 0.52
20 CSCC 0.41
Promedio CSCC 0.52
Desviación Estándar CSCC 0.06
104
Tabla 17a. Fricción interna de harinas de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara
n Muestra µ (-)
n Muestra µ (-)
n Muestra µ (-)
1 HSCCCC 0.69 64 HSCCCC 0.82 25 HSCCSC 0.73
2 HSCCCC 0.81 65 HSCCCC 0.68 26 HSCCSC 0.71
3 HSCCCC 0.62 66 HSCCCC 0.58 27 HSCCSC 0.76
4 HSCCCC 0.71 67 HSCCCC 0.62 28 HSCCSC 0.83
5 HSCCCC 0.70 68 HSCCCC 0.64 29 HSCCSC 0.75
6 HSCCCC 0.58 69 HSCCCC 0.60 30 HSCCSC 0.79
7 HSCCCC 0.69 70 HSCCCC 0.59 31 HSCCSC 0.77
8 HSCCCC 0.58 71 HSCCCC 0.62 32 HSCCSC 0.72
9 HSCCCC 0.68 72 HSCCCC 0.76 33 HSCCSC 0.69
10 HSCCCC 0.78 73 HSCCCC 0.70 34 HSCCSC 0.76
11 HSCCCC 0.54 74 HSCCCC 0.68 35 HSCCSC 0.73
12 HSCCCC 0.58 75 HSCCCC 0.80 36 HSCCSC 0.78
13 HSCCCC 0.73 76 HSCCCC 0.72 37 HSCCSC 0.79
14 HSCCCC 0.64 77 HSCCCC 0.71 38 HSCCSC 0.82
15 HSCCCC 0.74 78 HSCCCC 0.73 39 HSCCSC 0.76
16 HSCCCC 0.67 79 HSCCCC 0.76 40 HSCCSC 0.78
17 HSCCCC 0.68 80 HSCCCC 0.78 41 HSCCSC 0.78
18 HSCCCC 0.66 81 HSCCCC 0.67 42 HSCCSC 0.80
19 HSCCCC 0.79 82 HSCCCC 0.67 43 HSCCSC 0.82
20 HSCCCC 0.62 83 HSCCCC 0.71 44 HSCCSC 0.73
21 HSCCCC 0.65 84 HSCCCC 0.73 45 HSCCSC 0.62
22 HSCCCC 0.71 85 HSCCCC 0.76 46 HSCCSC 0.73
23 HSCCCC 0.64 86 HSCCCC 0.68 47 HSCCSC 0.67
24 HSCCCC 0.61 87 HSCCCC 0.65 48 HSCCSC 0.83
25 HSCCCC 0.67 88 HSCCCC 0.72 49 HSCCSC 0.87
26 HSCCCC 0.65 89 HSCCCC 0.64 50 HSCCSC 0.71
27 HSCCCC 0.80 90 HSCCCC 0.63 51 HSCCSC 0.76
28 HSCCCC 0.82 91 HSCCCC 0.69 52 HSCCSC 0.82
29 HSCCCC 0.70 92 HSCCCC 0.79 53 HSCCSC 0.69
30 HSCCCC 0.67 93 HSCCCC 0.67 54 HSCCSC 0.73
31 HSCCCC 0.54 94 HSCCCC 0.67 55 HSCCSC 0.68
32 HSCCCC 0.66 95 HSCCCC 0.68 56 HSCCSC 0.57
33 HSCCCC 0.71 96 HSCCCC 0.69 57 HSCCSC 0.80
34 HSCCCC 0.64 97 HSCCCC 0.81 58 HSCCSC 0.73
35 HSCCCC 0.68 98 HSCCCC 0.73 59 HSCCSC 0.73
36 HSCCCC 0.80 99 HSCCCC 0.79 60 HSCCSC 0.59
37 HSCCCC 0.57 100 HSCCCC 0.74 61 HSCCSC 0.81
38 HSCCCC 0.63 Promedio 0.70 62 HSCCSC 0.65
39 HSCCCC 0.75 Desviación Estándar 0.07 63 HSCCSC 0.84
40 HSCCCC 0.76 1 HSCCSC 0.58 64 HSCCSC 0.70
41 HSCCCC 0.75 2 HSCCSC 0.63 65 HSCCSC 0.83
42 HSCCCC 0.82 3 HSCCSC 0.67 66 HSCCSC 0.86
43 HSCCCC 0.85 4 HSCCSC 0.50 67 HSCCSC 0.85
44 HSCCCC 0.83 5 HSCCSC 0.73 68 HSCCSC 0.83
45 HSCCCC 0.67 6 HSCCSC 0.72 69 HSCCSC 0.71
46 HSCCCC 0.72 7 HSCCSC 0.69 70 HSCCSC 0.71
47 HSCCCC 0.71 8 HSCCSC 0.78 71 HSCCSC 0.67
48 HSCCCC 0.68 9 HSCCSC 0.76 72 HSCCSC 0.78
49 HSCCCC 0.69 10 HSCCSC 0.78 73 HSCCSC 0.83
50 HSCCCC 0.65 11 HSCCSC 0.67 74 HSCCSC 0.67
51 HSCCCC 0.73 12 HSCCSC 0.80 75 HSCCSC 0.62
52 HSCCCC 0.73 13 HSCCSC 0.67 76 HSCCSC 0.62
53 HSCCCC 0.77 14 HSCCSC 0.74 77 HSCCSC 0.84
54 HSCCCC 0.80 15 HSCCSC 0.76 78 HSCCSC 0.74
55 HSCCCC 0.87 16 HSCCSC 0.70 79 HSCCSC 0.71
56 HSCCCC 0.68 17 HSCCSC 0.78 80 HSCCSC 0.73
57 HSCCCC 0.68 18 HSCCSC 0.76 81 HSCCSC 0.82
58 HSCCCC 0.87 19 HSCCSC 0.81 82 HSCCSC 0.82
59 HSCCCC 0.74 20 HSCCSC 0.69 83 HSCCSC 0.72
60 HSCCCC 0.59 21 HSCCSC 0.63 84 HSCCSC 0.68
61 HSCCCC 0.75 22 HSCCSC 0.76 85 HSCCSC 0.70
62 HSCCCC 0.71 23 HSCCSC 0.77 86 HSCCSC 0.71
63 HSCCCC 0.76 24 HSCCSC 0.67 87 HSCCSC 0.61
105
Tabla 17a. Fricción interna de harinas de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara (Continuación)
n Muestra µ (-)
n Muestra µ (-)
88 HSCCSC 0.87 49 HSCHCC 0.58
89 HSCCSC 0.60 50 HSCHCC 0.45
90 HSCCSC 0.64 51 HSCHCC 0.48
91 HSCCSC 0.69 52 HSCHCC 0.61
92 HSCCSC 0.75 53 HSCHCC 0.47
93 HSCCSC 0.86 54 HSCHCC 0.42
94 HSCCSC 0.75 55 HSCHCC 0.36
95 HSCCSC 0.88 56 HSCHCC 0.62
96 HSCCSC 0.84 57 HSCHCC 0.63
97 HSCCSC 0.71 58 HSCHCC 0.41
98 HSCCSC 0.64 59 HSCHCC 0.48
99 HSCCSC 0.71 60 HSCHCC 0.49
100 HSCCSC 0.76 61 HSCHCC 0.46
Promedio 0.74 62 HSCHCC 0.63
Desviación Estándar 0.08 63 HSCHCC 0.46
1 HSCHCC 0.53 64 HSCHCC 0.52
2 HSCHCC 0.48 65 HSCHCC 0.53
3 HSCHCC 0.60 66 HSCHCC 0.57
4 HSCHCC 0.67 67 HSCHCC 0.52
5 HSCHCC 0.60 68 HSCHCC 0.44
6 HSCHCC 0.60 69 HSCHCC 0.52
7 HSCHCC 0.61 70 HSCHCC 0.50
8 HSCHCC 0.58 71 HSCHCC 0.46
9 HSCHCC 0.49 72 HSCHCC 0.51
10 HSCHCC 0.50 73 HSCHCC 0.51
11 HSCHCC 0.65 74 HSCHCC 0.55
12 HSCHCC 0.55 75 HSCHCC 0.42
13 HSCHCC 0.67 76 HSCHCC 0.47
14 HSCHCC 0.63 77 HSCHCC 0.66
15 HSCHCC 0.61 78 HSCHCC 0.53
16 HSCHCC 0.51 79 HSCHCC 0.53
17 HSCHCC 0.48 80 HSCHCC 0.41
18 HSCHCC 0.44 81 HSCHCC 0.57
19 HSCHCC 0.34 82 HSCHCC 0.52
20 HSCHCC 0.41 83 HSCHCC 0.46
21 HSCHCC 0.48 84 HSCHCC 0.60
22 HSCHCC 0.53 85 HSCHCC 0.48
23 HSCHCC 0.43 86 HSCHCC 0.60
24 HSCHCC 0.49 87 HSCHCC 0.57
25 HSCHCC 0.51 88 HSCHCC 0.50
26 HSCHCC 0.43 89 HSCHCC 0.58
27 HSCHCC 0.46 90 HSCHCC 0.51
28 HSCHCC 0.44 91 HSCHCC 0.47
29 HSCHCC 0.43 92 HSCHCC 0.57
30 HSCHCC 0.54 93 HSCHCC 0.54
31 HSCHCC 0.37 94 HSCHCC 0.56
32 HSCHCC 0.48 95 HSCHCC 0.54
33 HSCHCC 0.51 96 HSCHCC 0.52
34 HSCHCC 0.52 97 HSCHCC 0.56
35 HSCHCC 0.48 98 HSCHCC 0.62
36 HSCHCC 0.53 99 HSCHCC 0.54
37 HSCHCC 0.49 100 HSCHCC 0.50
38 HSCHCC 0.45 Promedio 0.51
39 HSCHCC 0.47 Desviación Estándar 0.07
40 HSCHCC 0.49
41 HSCHCC 0.45
42 HSCHCC 0.53
43 HSCHCC 0.45
44 HSCHCC 0.46
45 HSCHCC 0.33
46 HSCHCC 0.52
47 HSCHCC 0.55
48 HSCHCC 0.48
106
Tabla 19a. Fricción externa de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara
Material Vidrio Triplay Lámina
de acero inoxidable Vitropiso Tabla de Madera
Tabla de plástico de polietileno
n Muestra µ (-)
µ (-)
µ (-)
µ (-)
µ (-)
µ (-)
1 SCCCC 0.29 0.65 0.36 0.47 0.51 0.58
2 SCCCC 0.29 0.65 0.38 0.47 0.51 0.55
3 SCCCC 0.31 0.65 0.36 0.47 0.49 0.55
4 SCCCC 0.29 0.65 0.38 0.47 0.51 0.55
5 SCCCC 0.29 0.62 0.38 0.47 0.49 0.55
6 SCCCC 0.31 0.65 0.38 0.47 0.51 0.58
7 SCCCC 0.29 0.65 0.38 0.45 0.51 0.55
8 SCCCC 0.29 0.65 0.38 0.47 0.51 0.58
9 SCCCC 0.29 0.62 0.38 0.47 0.51 0.55
10 SCCCC 0.29 0.65 0.38 0.47 0.51 0.55
Promedio 0.29 0.64 0.38 0.46 0.51 0.56
Desviación Estándar 0.01 0.01 0.01 0.01 0.01 0.01
1 SCCSC 0.38 0.78 0.45 0.49 0.62 0.65
2 SCCSC 0.38 0.75 0.45 0.49 0.62 0.65
3 SCCSC 0.36 0.78 0.42 0.51 0.62 0.62
4 SCCSC 0.38 0.75 0.45 0.49 0.65 0.65
5 SCCSC 0.38 0.78 0.45 0.51 0.62 0.65
6 SCCSC 0.38 0.78 0.45 0.49 0.62 0.62
7 SCCSC 0.38 0.78 0.45 0.49 0.65 0.65
8 SCCSC 0.38 0.78 0.45 0.49 0.65 0.65
9 SCCSC 0.38 0.78 0.45 0.49 0.62 0.65
10 SCCSC 0.38 0.78 0.45 0.49 0.62 0.65
Promedio 0.38 0.78 0.44 0.49 0.63 0.64
Desviación Estándar 0.01 0.01 0.01 0.01 0.01 0.01
1 SCHCC 0.27 0.60 0.36 0.38 0.45 0.53
2 SCHCC 0.25 0.60 0.36 0.38 0.45 0.53
3 SCHCC 0.27 0.58 0.36 0.38 0.42 0.51
4 SCHCC 0.25 0.60 0.34 0.40 0.47 0.53
5 SCHCC 0.27 0.60 0.34 0.38 0.45 0.53
6 SCHCC 0.27 0.60 0.36 0.38 0.45 0.53
7 SCHCC 0.27 0.60 0.36 0.38 0.45 0.53
8 SCHCC 0.27 0.60 0.34 0.40 0.45 0.55
9 SCHCC 0.27 0.60 0.36 0.38 0.45 0.53
10 SCHCC 0.27 0.60 0.36 0.40 0.45 0.53
Promedio 0.26 0.60 0.36 0.39 0.45 0.53
Desviación Estándar 0.01 0.01 0.01 0.01 0.01 0.01
1 CSCC 0.70 0.81 0.53 0.58 0.75 0.84
2 CSCC 0.70 0.75 0.58 0.55 0.75 0.81
3 CSCC 0.67 0.75 0.55 0.55 0.78 0.81
4 CSCC 0.70 0.73 0.58 0.58 0.75 0.81
5 CSCC 0.67 0.75 0.58 0.58 0.75 0.84
6 CSCC 0.67 0.73 0.53 0.55 0.75 0.81
7 CSCC 0.70 0.75 0.65 0.55 0.75 0.84
8 CSCC 0.67 0.75 0.60 0.58 0.73 0.81
9 CSCC 0.67 0.73 0.60 0.55 0.78 0.81
10 CSCC 0.67 0.75 0.58 0.55 0.75 0.84
11 CSCC 0.67 0.78 0.58 0.55 0.75 0.81
12 CSCC 0.67 0.75 0.60 0.58 0.73 0.81
13 CSCC 0.70 0.75 0.53 0.55 0.75 0.84
14 CSCC 0.67 0.75 0.62 0.55 0.75 0.81
15 CSCC 0.67 0.75 0.53 0.55 0.75 0.81
16 CSCC 0.70 0.78 0.65 0.58 0.73 0.84
17 CSCC 0.67 0.81 0.58 0.55 0.78 0.81
18 CSCC 0.67 0.81 0.58 0.58 0.78 0.81
19 CSCC 0.67 0.75 0.60 0.58 0.75 0.81
20 CSCC 0.70 0.75 0.58 0.55 0.75 0.84
Promedio 0.68 0.76 0.58 0.56 0.76 0.82
Desviación Estándar 0.01 0.03 0.04 0.01 0.02 0.01
107
Tabla 20a. Fricción externa de harinas de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara
Material Vidrio Triplay Lámina de acero
inoxidable Vitropiso
Tabla de Madera
Tabla de plástico de polietileno
n Muestra µ (-)
µ (-)
µ (-)
µ (-)
µ (-)
µ (-)
1 HSCCCC 0.93 0.90 0.97 0.90 0.75 0.84
2 HSCCCC 0.97 0.93 1.00 0.93 0.75 0.78
3 HSCCCC 0.93 0.90 0.93 0.90 0.75 0.81
4 HSCCCC 0.93 0.93 0.97 0.93 0.73 0.78
5 HSCCCC 0.97 0.90 0.97 0.93 0.70 0.78
6 HSCCCC 0.97 0.93 0.97 0.93 0.75 0.78
7 HSCCCC 0.93 0.93 0.97 0.93 0.75 0.81
8 HSCCCC 0.93 0.90 0.97 0.93 0.73 0.84
9 HSCCCC 0.93 0.97 0.97 0.93 0.73 0.78
10 HSCCCC 0.97 0.93 1.00 0.93 0.75 0.84
11 HSCCCC 0.93 0.93 1.00 0.93 0.73 0.81
12 HSCCCC 0.93 0.93 1.00 0.93 0.73 0.81
13 HSCCCC 0.97 0.90 1.00 0.90 0.75 0.78
14 HSCCCC 0.97 0.90 1.00 0.90 0.73 0.84
15 HSCCCC 0.93 0.90 0.97 0.93 0.75 0.81
16 HSCCCC 0.97 0.93 0.93 0.93 0.73 0.81
17 HSCCCC 0.93 0.90 1.00 0.90 0.75 0.87
18 HSCCCC 0.93 0.90 1.00 0.90 0.73 0.84
19 HSCCCC 0.97 0.90 0.97 0.93 0.75 0.81
20 HSCCCC 0.97 0.90 1.00 0.90 0.75 0.84
21 HSCCCC 0.93 0.90 1.00 0.90 0.75 0.87
22 HSCCCC 0.93 0.90 1.00 0.93 0.75 0.84
23 HSCCCC 0.97 0.90 1.00 0.90 0.75 0.81
24 HSCCCC 0.97 0.90 1.00 0.93 0.75 0.87
25 HSCCCC 0.93 0.93 0.93 0.93 0.73 0.81
26 HSCCCC 0.93 0.90 1.00 0.93 0.73 0.87
27 HSCCCC 0.93 0.90 1.00 0.93 0.75 0.90
28 HSCCCC 0.97 0.90 0.93 0.93 0.73 0.81
29 HSCCCC 0.93 0.90 1.00 0.93 0.75 0.81
30 HSCCCC 0.93 1.04 0.97 0.93 0.75 0.81
31 HSCCCC 0.93 0.90 1.00 0.93 0.75 0.81
32 HSCCCC 0.93 0.93 0.97 0.93 0.73 0.81
33 HSCCCC 0.93 0.93 0.93 0.90 0.73 0.81
34 HSCCCC 0.93 0.93 1.00 0.90 0.73 0.78
35 HSCCCC 0.93 0.90 1.00 0.93 0.75 0.84
36 HSCCCC 0.93 0.90 1.00 0.93 0.75 0.84
37 HSCCCC 0.93 0.90 1.00 0.90 0.75 0.78
38 HSCCCC 0.97 0.87 0.90 0.90 0.73 0.81
39 HSCCCC 0.93 0.90 0.97 0.93 0.73 0.87
40 HSCCCC 0.93 0.93 0.97 0.90 0.75 0.81
41 HSCCCC 0.93 0.87 0.97 0.90 0.78 0.81
42 HSCCCC 0.93 0.97 0.97 0.93 0.73 0.81
43 HSCCCC 0.93 0.90 0.93 0.90 0.75 0.81
44 HSCCCC 0.93 0.97 1.00 0.93 0.75 0.78
45 HSCCCC 0.93 0.93 0.93 0.93 0.78 0.84
46 HSCCCC 0.93 0.90 0.93 0.93 0.75 0.81
47 HSCCCC 0.97 0.90 1.00 0.93 0.78 0.78
48 HSCCCC 0.93 0.93 1.00 0.93 0.75 0.81
49 HSCCCC 0.97 0.97 0.93 0.93 0.75 0.81
50 HSCCCC 0.93 0.93 0.97 0.93 0.75 0.84
51 HSCCCC 0.93 0.90 0.97 0.93 0.75 0.81
52 HSCCCC 0.93 0.97 0.97 0.93 0.75 0.78
53 HSCCCC 0.93 0.87 0.97 0.90 0.75 0.81
54 HSCCCC 0.93 0.90 1.00 0.90 0.75 0.81
55 HSCCCC 0.93 0.93 0.97 0.93 0.75 0.81
56 HSCCCC 0.93 0.90 0.97 0.93 0.75 0.81
57 HSCCCC 0.93 0.97 0.93 0.90 0.78 0.87
58 HSCCCC 0.93 0.90 0.97 0.90 0.75 0.81
59 HSCCCC 0.93 0.90 1.00 0.93 0.75 0.87
60 HSCCCC 0.93 0.90 0.93 0.90 0.75 0.81
61 HSCCCC 0.93 0.93 1.00 0.90 0.73 0.87
108
Tabla 20a. Fricción externa de harinas de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara (Continuación)
Material Vidrio Triplay Lámina de acero
inoxidable Vitropiso
Tabla de Madera
Tabla de plástico de polietileno
n Muestra µ (-)
µ (-)
µ (-)
µ (-)
µ (-)
µ (-)
62 HSCCCC 0.93 0.93 0.97 0.93 0.75 0.84
63 HSCCCC 0.93 0.90 0.97 0.90 0.75 0.81
64 HSCCCC 0.93 0.90 0.97 0.93 0.73 0.81
65 HSCCCC 0.97 0.90 0.93 0.93 0.75 0.87
66 HSCCCC 0.93 0.90 0.93 0.93 0.75 0.78
67 HSCCCC 0.93 0.90 1.00 0.93 0.75 0.81
68 HSCCCC 0.93 0.90 0.97 0.93 0.75 0.81
69 HSCCCC 0.93 0.93 1.00 0.93 0.75 0.87
70 HSCCCC 0.93 0.90 0.97 0.93 0.75 0.81
71 HSCCCC 0.93 0.90 0.93 0.93 0.78 0.78
72 HSCCCC 0.93 0.93 0.97 0.93 0.73 0.78
73 HSCCCC 0.93 0.90 1.00 0.90 0.75 0.87
74 HSCCCC 0.97 0.90 0.93 0.90 0.75 0.84
75 HSCCCC 0.93 0.90 0.97 0.93 0.75 0.81
76 HSCCCC 0.97 0.90 0.97 0.93 0.75 0.84
77 HSCCCC 0.93 0.90 1.00 0.90 0.70 0.81
78 HSCCCC 0.93 0.90 0.97 0.90 0.73 0.81
79 HSCCCC 0.93 0.93 0.97 0.93 0.75 0.81
80 HSCCCC 0.93 0.90 0.97 0.90 0.78 0.81
81 HSCCCC 0.93 0.93 0.97 0.90 0.75 0.81
82 HSCCCC 0.93 0.90 0.97 0.93 0.73 0.84
83 HSCCCC 0.93 0.90 1.00 0.90 0.75 0.81
84 HSCCCC 0.93 0.90 0.97 0.93 0.73 0.81
85 HSCCCC 0.93 0.90 1.00 0.93 0.75 0.81
86 HSCCCC 0.93 0.90 1.00 0.93 0.75 0.81
87 HSCCCC 0.93 0.90 1.00 0.93 0.78 0.81
88 HSCCCC 0.93 0.97 0.93 0.93 0.75 0.81
89 HSCCCC 0.93 0.93 0.97 0.93 0.75 0.81
90 HSCCCC 0.93 0.93 0.97 0.93 0.73 0.84
91 HSCCCC 0.93 0.93 0.97 0.93 0.75 0.87
92 HSCCCC 0.97 0.93 0.97 0.93 0.78 0.81
93 HSCCCC 0.93 0.93 1.00 0.90 0.75 0.87
94 HSCCCC 0.93 0.90 0.97 0.90 0.75 0.81
95 HSCCCC 0.93 0.90 0.93 0.93 0.75 0.87
96 HSCCCC 0.93 0.90 0.93 0.93 0.73 0.87
97 HSCCCC 0.93 0.93 0.97 0.90 0.73 0.78
98 HSCCCC 0.93 0.97 0.93 0.90 0.75 0.81
99 HSCCCC 0.93 0.90 0.97 0.93 0.75 0.84
100 HSCCCC 0.93 0.90 0.97 0.90 0.75 0.81
Promedio 0.94 0.92 0.97 0.92 0.75 0.82
Desviación Estándar 0.01 0.03 0.03 0.02 0.02 0.03
1 HSCCSC 0.90 1.00 0.84 0.97 0.87 0.78
2 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.93 0.87 0.81
3 HSCCSC 0.93 1.00 0.84 0.93 0.84 0.78
4 HSCCSC 0.93 0.97 0.84 0.97 0.84 0.81
5 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.93 0.87 0.81
6 HSCCSC 0.90 1.00 0.84 0.93 0.87 0.81
7 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.93 0.87 0.81
8 HSCCSC 0.93 0.97 0.84 0.93 0.87 0.78
9 HSCCSC 0.93 1.00 0.84 0.93 0.87 0.78
10 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.97 0.84 0.81
11 HSCCSC 0.90 1.00 0.81 0.93 0.87 0.81
12 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.97 0.87 0.81
13 HSCCSC 0.90 0.97 0.81 0.93 0.84 0.81
14 HSCCSC 0.93 0.93 0.84 0.97 0.84 0.78
15 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.97 0.87 0.81
16 HSCCSC 0.87 1.00 0.81 0.93 0.87 0.81
17 HSCCSC 0.93 0.93 0.81 0.93 0.84 0.78
18 HSCCSC 0.87 0.97 0.81 0.97 0.87 0.78
19 HSCCSC 0.90 0.97 0.84 0.97 0.87 0.81
20 HSCCSC 0.90 1.00 0.81 0.93 0.87 0.81
109
Tabla 20a. Fricción externa de harinas de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara (Continuación)
Material Vidrio Triplay Lámina de acero
inoxidable Vitropiso
Tabla de Madera
Tabla de plástico de polietileno
n Muestra µ (-)
µ (-)
µ (-)
µ (-)
µ (-)
µ (-)
21 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.97 0.87 0.81
22 HSCCSC 0.93 1.00 0.84 0.93 0.87 0.78
23 HSCCSC 0.90 1.00 0.81 0.93 0.87 0.78
24 HSCCSC 0.97 0.97 0.84 0.93 0.87 0.81
25 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.93 0.84 0.81
26 HSCCSC 0.93 0.97 0.81 0.93 0.87 0.78
27 HSCCSC 0.97 1.00 0.84 0.97 0.87 0.81
28 HSCCSC 0.90 1.00 0.84 0.93 0.87 0.78
29 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.93 0.87 0.78
30 HSCCSC 0.93 0.97 0.84 0.93 0.87 0.81
31 HSCCSC 0.97 0.97 0.81 0.97 0.87 0.81
32 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.97 0.87 0.81
33 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.93 0.84 0.81
34 HSCCSC 0.93 0.93 0.84 0.93 0.87 0.81
35 HSCCSC 0.97 1.00 0.81 0.97 0.87 0.81
36 HSCCSC 0.93 1.00 0.84 0.93 0.84 0.78
37 HSCCSC 0.93 1.00 0.84 0.97 0.87 0.78
38 HSCCSC 0.93 0.93 0.81 0.97 0.87 0.81
39 HSCCSC 0.97 1.00 0.84 0.93 0.87 0.81
40 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.93 0.87 0.78
41 HSCCSC 0.93 0.97 0.81 0.93 0.87 0.78
42 HSCCSC 0.93 1.00 0.84 0.93 0.87 0.81
43 HSCCSC 0.93 0.97 0.81 0.93 0.87 0.81
44 HSCCSC 0.93 1.00 0.84 0.97 0.87 0.78
45 HSCCSC 0.93 1.00 0.84 0.93 0.87 0.81
46 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.93 0.84 0.81
47 HSCCSC 0.93 0.97 0.81 0.93 0.84 0.78
48 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.93 0.87 0.78
49 HSCCSC 0.93 1.00 0.84 0.93 0.84 0.78
50 HSCCSC 0.93 0.97 0.84 0.93 0.84 0.78
51 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.93 0.87 0.78
52 HSCCSC 0.90 0.97 0.84 0.93 0.84 0.78
53 HSCCSC 0.90 1.00 0.84 0.93 0.84 0.78
54 HSCCSC 0.93 1.00 0.84 0.93 0.87 0.81
55 HSCCSC 0.87 1.00 0.81 0.97 0.87 0.78
56 HSCCSC 0.93 0.97 0.84 0.93 0.87 0.81
57 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.93 0.84 0.78
58 HSCCSC 0.90 1.00 0.81 0.97 0.87 0.81
59 HSCCSC 0.90 1.00 0.81 0.93 0.87 0.81
60 HSCCSC 0.90 1.00 0.84 0.97 0.87 0.81
61 HSCCSC 0.93 1.00 0.78 0.93 0.84 0.81
62 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.93 0.87 0.78
63 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.93 0.84 0.81
64 HSCCSC 0.97 0.93 0.81 0.97 0.87 0.81
65 HSCCSC 0.93 1.00 0.84 0.93 0.87 0.78
66 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.97 0.87 0.78
67 HSCCSC 0.90 0.97 0.84 0.97 0.84 0.78
68 HSCCSC 0.93 0.93 0.84 0.93 0.87 0.78
69 HSCCSC 0.90 1.00 0.84 0.97 0.87 0.81
70 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.93 0.87 0.81
71 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.93 0.87 0.81
72 HSCCSC 0.93 1.00 0.84 0.97 0.84 0.78
73 HSCCSC 0.93 1.00 0.84 0.93 0.87 0.81
74 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.93 0.87 0.81
75 HSCCSC 0.97 1.00 0.84 0.97 0.87 0.81
76 HSCCSC 0.93 0.93 0.84 0.93 0.84 0.81
77 HSCCSC 0.93 0.93 0.84 0.93 0.84 0.81
78 HSCCSC 0.93 0.93 0.81 0.93 0.87 0.81
79 HSCCSC 0.93 0.97 0.81 0.93 0.84 0.81
80 HSCCSC 0.97 1.00 0.81 0.97 0.84 0.78
81 HSCCSC 0.93 1.00 0.84 0.93 0.87 0.78
110
Tabla 20a. Fricción externa de harinas de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara (Continuación)
Material Vidrio Triplay Lámina de acero
inoxidable Vitropiso
Tabla de Madera
Tabla de plástico de polietileno
n Muestra µ (-)
µ (-)
µ (-)
µ (-)
µ (-)
µ (-)
82 HSCCSC 0.93 1.00 0.84 0.93 0.87 0.78
83 HSCCSC 0.93 0.97 0.81 0.93 0.84 0.81
84 HSCCSC 0.93 0.93 0.81 0.97 0.87 0.78
85 HSCCSC 0.97 1.00 0.78 0.93 0.87 0.81
86 HSCCSC 0.93 1.00 0.84 0.93 0.84 0.78
87 HSCCSC 0.93 0.97 0.81 0.93 0.87 0.78
88 HSCCSC 0.93 1.00 0.84 0.93 0.87 0.81
89 HSCCSC 0.90 1.00 0.81 0.93 0.84 0.78
90 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.97 0.87 0.81
91 HSCCSC 0.97 0.93 0.84 0.97 0.87 0.78
92 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.93 0.87 0.81
93 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.93 0.87 0.78
94 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.93 0.87 0.81
95 HSCCSC 0.93 0.93 0.84 0.97 0.87 0.78
96 HSCCSC 0.93 0.97 0.84 0.93 0.87 0.81
97 HSCCSC 0.93 0.97 0.81 0.93 0.87 0.81
98 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.93 0.87 0.78
99 HSCCSC 0.93 0.97 0.81 0.97 0.87 0.81
100 HSCCSC 0.93 1.00 0.81 0.93 0.87 0.81
Promedio 0.93 0.98 0.82 0.94 0.86 0.80
Desviación Estándar 0.02 0.02 0.02 0.02 0.01 0.01
1 HSCHCC 0.97 0.90 0.90 0.70 0.70 0.73
2 HSCHCC 0.97 0.90 0.93 0.73 0.73 0.75
3 HSCHCC 0.97 0.87 0.90 0.70 0.73 0.73
4 HSCHCC 0.97 0.90 0.93 0.70 0.73 0.75
5 HSCHCC 0.93 0.90 0.93 0.73 0.73 0.73
6 HSCHCC 0.93 0.87 0.93 0.73 0.70 0.73
7 HSCHCC 0.97 0.90 0.93 0.73 0.73 0.75
8 HSCHCC 0.97 0.87 0.93 0.73 0.73 0.75
9 HSCHCC 0.97 0.90 0.93 0.70 0.70 0.73
10 HSCHCC 0.93 0.90 0.90 0.70 0.73 0.73
11 HSCHCC 0.97 0.90 0.90 0.73 0.73 0.73
12 HSCHCC 0.93 0.90 0.93 0.73 0.73 0.75
13 HSCHCC 0.97 0.90 0.93 0.70 0.70 0.75
14 HSCHCC 0.93 0.87 0.93 0.70 0.73 0.73
15 HSCHCC 0.93 0.90 0.90 0.70 0.73 0.73
16 HSCHCC 0.97 0.90 0.93 0.73 0.73 0.73
17 HSCHCC 0.97 0.87 0.90 0.73 0.73 0.75
18 HSCHCC 0.93 0.90 0.93 0.73 0.73 0.73
19 HSCHCC 0.93 0.87 0.90 0.70 0.70 0.73
20 HSCHCC 0.97 0.90 0.93 0.70 0.73 0.75
21 HSCHCC 0.93 0.87 0.90 0.73 0.70 0.73
22 HSCHCC 0.93 0.90 0.93 0.73 0.73 0.73
23 HSCHCC 0.97 0.87 0.90 0.70 0.70 0.75
24 HSCHCC 0.93 0.90 0.93 0.73 0.73 0.75
25 HSCHCC 0.97 0.87 0.93 0.73 0.73 0.75
26 HSCHCC 0.97 0.87 0.93 0.70 0.73 0.73
27 HSCHCC 0.93 0.87 0.90 0.73 0.70 0.73
28 HSCHCC 0.97 0.90 0.90 0.70 0.73 0.75
29 HSCHCC 0.93 0.90 0.90 0.73 0.73 0.73
30 HSCHCC 0.97 0.90 0.90 0.70 0.73 0.75
31 HSCHCC 0.93 0.90 0.93 0.67 0.73 0.75
32 HSCHCC 0.93 0.87 0.93 0.73 0.70 0.73
33 HSCHCC 0.97 0.87 0.93 0.73 0.73 0.75
34 HSCHCC 0.93 0.90 0.90 0.73 0.70 0.73
35 HSCHCC 0.93 0.87 0.93 0.73 0.73 0.75
36 HSCHCC 0.97 0.90 0.90 0.67 0.70 0.73
37 HSCHCC 0.97 0.90 0.93 0.70 0.73 0.75
38 HSCHCC 0.93 0.90 0.93 0.70 0.73 0.73
39 HSCHCC 0.93 0.87 0.90 0.70 0.73 0.75
40 HSCHCC 0.93 0.87 0.90 0.67 0.70 0.73
111
Tabla 20a. Fricción externa de harinas de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara (Continuación)
Material Vidrio Triplay Lámina de acero
inoxidable Vitropiso
Tabla de Madera
Tabla de plástico de polietileno
n Muestra µ (-)
µ (-)
µ (-)
µ (-)
µ (-)
µ (-)
41 HSCHCC 0.93 0.87 0.90 0.73 0.73 0.75
42 HSCHCC 0.97 0.87 0.93 0.67 0.70 0.75
43 HSCHCC 0.93 0.87 0.93 0.70 0.70 0.73
44 HSCHCC 0.93 0.90 0.93 0.67 0.73 0.73
45 HSCHCC 0.93 0.90 0.90 0.70 0.73 0.75
46 HSCHCC 0.97 0.90 0.90 0.70 0.73 0.73
47 HSCHCC 0.97 0.90 0.90 0.67 0.73 0.73
48 HSCHCC 0.97 0.87 0.90 0.67 0.73 0.73
49 HSCHCC 0.93 0.90 0.93 0.73 0.70 0.75
50 HSCHCC 0.97 0.87 0.90 0.73 0.73 0.75
51 HSCHCC 0.97 0.90 0.90 0.73 0.70 0.75
52 HSCHCC 0.97 0.87 0.90 0.73 0.70 0.75
53 HSCHCC 0.97 0.90 0.90 0.70 0.73 0.75
54 HSCHCC 0.97 0.87 0.90 0.70 0.73 0.73
55 HSCHCC 0.97 0.90 0.93 0.73 0.73 0.75
56 HSCHCC 0.93 0.87 0.93 0.70 0.73 0.75
57 HSCHCC 0.93 0.87 0.93 0.73 0.73 0.73
58 HSCHCC 0.97 0.87 0.90 0.70 0.70 0.75
59 HSCHCC 0.93 0.87 0.93 0.73 0.73 0.75
60 HSCHCC 0.93 0.90 0.93 0.70 0.73 0.73
61 HSCHCC 0.97 0.87 0.93 0.73 0.73 0.73
62 HSCHCC 0.93 0.90 0.93 0.67 0.70 0.73
63 HSCHCC 0.93 0.90 0.90 0.67 0.70 0.73
64 HSCHCC 0.97 0.87 0.93 0.73 0.73 0.75
65 HSCHCC 0.97 0.90 0.90 0.73 0.73 0.73
66 HSCHCC 0.93 0.90 0.90 0.70 0.73 0.73
67 HSCHCC 0.93 0.87 0.93 0.70 0.70 0.73
68 HSCHCC 0.93 0.87 0.93 0.70 0.73 0.73
69 HSCHCC 0.93 0.87 0.93 0.73 0.70 0.75
70 HSCHCC 0.97 0.90 0.90 0.73 0.70 0.73
71 HSCHCC 0.97 0.90 0.93 0.73 0.73 0.73
72 HSCHCC 0.93 0.90 0.93 0.73 0.73 0.75
73 HSCHCC 0.93 0.87 0.93 0.70 0.70 0.73
74 HSCHCC 0.97 0.87 0.90 0.73 0.73 0.73
75 HSCHCC 0.97 0.87 0.93 0.73 0.70 0.75
76 HSCHCC 0.93 0.87 0.93 0.70 0.73 0.73
77 HSCHCC 0.93 0.90 0.90 0.70 0.73 0.73
78 HSCHCC 0.97 0.90 0.93 0.70 0.73 0.73
79 HSCHCC 0.93 0.90 0.90 0.70 0.70 0.73
80 HSCHCC 0.97 0.90 0.93 0.70 0.73 0.75
81 HSCHCC 0.93 0.90 0.93 0.70 0.70 0.73
82 HSCHCC 0.93 0.87 0.93 0.70 0.73 0.75
83 HSCHCC 0.97 0.87 0.90 0.73 0.70 0.73
84 HSCHCC 0.93 0.90 0.93 0.73 0.70 0.75
85 HSCHCC 0.97 0.90 0.90 0.70 0.70 0.73
86 HSCHCC 0.93 0.90 0.90 0.70 0.73 0.73
87 HSCHCC 0.93 0.87 0.93 0.73 0.73 0.75
88 HSCHCC 0.93 0.87 0.90 0.73 0.73 0.75
89 HSCHCC 0.93 0.90 0.93 0.73 0.73 0.73
90 HSCHCC 0.97 0.87 0.90 0.70 0.73 0.75
91 HSCHCC 0.93 0.90 0.93 0.73 0.73 0.73
92 HSCHCC 0.93 0.87 0.93 0.73 0.73 0.73
93 HSCHCC 0.97 0.90 0.93 0.73 0.73 0.73
94 HSCHCC 0.97 0.87 0.90 0.70 0.73 0.73
95 HSCHCC 0.97 0.87 0.93 0.73 0.73 0.75
96 HSCHCC 0.97 0.87 0.93 0.73 0.70 0.73
97 HSCHCC 0.93 0.90 0.90 0.73 0.73 0.75
98 HSCHCC 0.97 0.90 0.93 0.73 0.73 0.73
99 HSCHCC 0.93 0.87 0.93 0.70 0.70 0.75
100 HSCHCC 0.93 0.87 0.90 0.70 0.70 0.75
Promedio 0.95 0.89 0.92 0.71 0.72 0.74
Desviación Estándar 0.02 0.02 0.02 0.02 0.01 0.01
112
Tabla 21a. Cribado de harinas de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara
Numero de tamiz (mm) 1.99898 1.79578 1.4097 0.4191 0.41402 0.13183 0.00737 0.00381
HSCCCC (g) 4.07 95.66 91.87 3.01 5.42
HSCCCC (g) 4.05 95.52 91.83 2.95 5.42
HSCCCC (g) 4.08 95.79 91.92 2.97 5.42
Promedio 4.07 95.66 91.87 2.98 5.42
Desviación estándar 0.02 0.14 0.05 0.03 0.00
HSCCSC (g) 0.14 4.39 192.24 3.21
HSCCSC (g) 0.13 4.37 192. 27 3.24
HSCCSC (g) 0.16 4.38 192.25 3.25
Promedio 0.14 4.38 192.24 3.23
Desviación estándar 0.01 0.01 0.01 0.02
HSCHCC (g) 0.41 9.15 101.50 70.73 18.20
HSCHCC (g) 0.42 9.16 101.42 70.72 18.18
HSCHCC (g) 0.43 9.14 101.59 70.74 18.23
Promedio 0.42 9.15 101.50 70.73 18.20
Desviación estándar 0.01 0.01 0.09 0.01 0.03
Tabla 22a. Densidad de semillas y harinas de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara
n Muestra Densidad (g/cm 3)
1 SCCCC 0.32
2 SCCCC 0.32
3 SCCCC 0.35
Promedio 0.33
Desviación Estándar 0.01
1 SCCSC 0.63
2 SCCSC 0.65
3 SCCSC 0.61
Promedio 0.63
Desviación Estándar 0.02
1 CSCC 0.07
2 CSCC 0.06
3 CSCC 0.06
Promedio 0.07
Desviación Estándar 0.01
1 SCHCC 0.67
2 SCHCC 0.67
3 SCHCC 0.67
Promedio 0.67
Desviación Estándar 0.00
1 HSCCCC 0.33
2 HSCCCC 0.39
3 HSCCCC 0.39
Promedio 0.37
Desviación Estándar 0.04
1 HSCCSC 0.48
2 HSCCSC 0.44
3 HSCCSC 0.49
Promedio 0.47
Desviación Estándar 0.03
1 HSCHCC 0.57
2 HSCHCC 0.62
3 HSCHCC 0.63
Promedio 0.61
Desviación Estándar 0.03
113
Tabla 23a. Conductividad eléctrica de harinas de semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con y sin cáscara
n Muestra Conductividad Eléctrica
(mS/m)
1 HSCHCC 6.60
2 HSCHCC 6.64
3 HSCHCC 6.60
4 HSCHCC 6.62
5 HSCHCC 6.62
6 HSCHCC 6.60
7 HSCHCC 6.64
8 HSCHCC 6.62
9 HSCHCC 6.60
10 HSCHCC 6.62
Promedio 6.62
Desviación Estándar 0.02
1 HSCCCC 5.00
2 HSCCCC 5.00
3 HSCCCC 5.26
4 HSCCCC 5.13
5 HSCCCC 4.88
6 HSCCCC 5.13
7 HSCCCC 5.00
8 HSCCCC 4.76
9 HSCCCC 5.13
10 HSCCCC 5.00
Promedio 5.03
Desviación Estándar 0.14
1 HSCCSC 4.44
2 HSCCSC 4.26
3 HSCCSC 4.08
4 HSCCSC 4.17
5 HSCCSC 4.00
6 HSCCSC 4.00
7 HSCCSC 4.00
8 HSCCSC 4.00
9 HSCCSC 3.92
10 HSCCSC 4.00
Promedio 4.09
Desviación Estándar 0.16
Tabla 24a1. Contenido de humedad en semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara
n Muestra Humedad
( %) Promedio Desviación estándar
1
HSCHCC
0.16
0.16 0.04 2 0.12
3 0.20
1
HSCCCC
0.12
0.13 0.01 2 0.12
3 0.14
1
HSCCSC
0.09
0.10 0.02 2 0.10
3 0.13
114
Tabla 24a2. Contenido de aceite en semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara
n Muestra Aceite
(%) Promedio Desviación estándar
1
HSCHCC
13.78
13.89 0.54 2 14.48
3 13.42
1
HSCCCC
18.21
18.87 4.17 2 15.06
3 23.33
1
HSCCSC
19.84
19.30 1.17 2 17.95
3 20.10
1
CSCC
0.20
0.41 0.19 2 0.45
3 0.58
Tabla 24a3. Contenido de proteína cruda en semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara
n Muestra Proteína
Promedio Desviación Estándar (%)
1 CSCC 16.5 16.72 0.31112698
2 CSCC 16.94
1 HSCCCC 31.9 31.65 0.35355339
2 HSCCCC 31.4
1 HSCCSC 31.3 31.38 0.11313708
2 HSCCCC 31.46
1 HSCHCC 24.46 24.23 0.32526912
2 HSCHCC 24
Tabla 24a4. Contenido de carbohidratos en semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara
n Muestra Carbohidratos
Promedio Desviación Estándar (%)
1 CSCC 4.83 4.83 0
2 CSCC 4.83
1 HSCCCC 4.94 4.915 0.03535534
2 HSCCCC 4.89
1 HSCCSC 4.12 4.12 0
2 HSCCCC 4.12
1 HSCHCC 6.44 6.49 0.07071068
2 HSCHCC 6.54
Tabla 25a. Contenido de proteína soluble en semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara
n Muestra Proteína soluble
(mg/g) Proteína soluble
(%) Promedio Desviación Estándar
1 SCCCC
245.0341 24.50 31.10 9.33
2 376.9563 37.70
1 SCCSC
306.2299 30.62 28.70 2.71
2 267.8571 26.79
1 SCHCC
257.9969 25.80 25.03 1.09
2 242.5584 24.26
115
Tabla 26a1. Contenido de fósforo en semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara
n Muestra Fósforo (mg/g) Fósforo (%) Promedio Desviación estándar
1 HSCHCC 0.51305407 0.05130541
0.51061861 0.05106186 2 HSCHCC 0.53911349 0.05391135
3 HSCHCC 0.5111057 0.05111057
1 HSCCCC 0.70959571 0.07095957
0.6943335 0.06943335 2 HSCCCC 0.72566975 0.07256698
3 HSCCCC 0.64773502 0.0647735
1 HSCCSC 0.95971749 0.09597175
0.96807923 0.09680792 2 HSCCCC 0.97262543 0.09726254
3 HSCCSC 0.97189479 0.09718948
Tabla 26a2. Contenido de zinc en semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara
Muestra Abs. Conc. Promedio mg/Kg
HSCHCC
0.05 0.0749 0.05 14.98804146 0.05
0.05 0.0749 0.05 14.98804146 0.05
0.05 0.0749 0.05 14.98804146 0.05
0.05 0.0749 0.05 14.98804146 0.05
HSCCCC
0.1 0.2211 0.105 44.2200372 0.11
0.11 0.2211 0.105 44.2200372 0.1
0.1 0.2211 0.105 44.2200372 0.11
HSCCSC
0.14 0.3141 0.14 62.82221632 0.14
0.14 0.3141 0.14 62.82221632 0.14
0.14 0.3141 0.14 62.82221632 0.14
Tabla 26a3. Contenido de hierro en semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara
Hierro (Fe)
Muestra Abs. Conc. Promedio mg/Kg
HSCHCC
0.13 0.8671 0.125 173.4138973
0.12
0.14 1.0937 0.14 218.7311178
0.14
0.1 0.4894 0.1 97.88519637
0.1
HSCCCC
0.05 0.1903 0.055 370.3927492 0.06
0.07 0.0363 0.07 415.7099698 0.07
0.05 0.2659 0.05 355.2870091 0.05
HSCCSC
0.05 0.2659 0.05 355.2870091 0.05
0.06 0.1903 0.055 370.3927492 0.05
0.06 0.1148 0.06 385.4984894
0.06
116
Tabla 26a4.Contenido de magnesio en semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara
Muestra Abs. Conc. Promedio mg/Kg
HSCHCC
0.44 0.1006 0.435 100.5649718
0.43
0.51
0.2588 0.505 258.7570621 0.5
0.3
HSCCCC
0.41 0.0328 0.405 32.76836158
0.4
0.51 0.2475 0.5 247.4576271
0.49
HSCCSC
0.42 0.0441 0.41 44.06779661
0.4
0.52 0.2814 0.515 281.3559322
0.51
Tabla 26a5. Contenido de calcio en semillas de calabaza hedionda con cáscara, calabaza de castilla con cáscara y sin cáscara
Muestra Abs. Conc. Promedio mg/Kg
HSCHCC
0.08 0.0748 0.085 14.95638538
0.09
0.1 0.0895 0.1 17.89669705
0.1
0.1 0.0895 0.1 17.89669705
0.1
0.1 0.0895 0.1 17.89669705
0.1
HSCCCC
0.08 0.0699 0.08 13.97628149
0.08
0.08 0.0699 0.08 13.97628149
0.08
0.08 0.0748 0.085 14.95638538
0.09
HSCCSC
0.09 0.0846 0.095 16.91659316
0.1
0.1 0.0895 0.1 17.89669705
0.1
0.1 0.0895 0.1 17.89669705
0.1
117
Figura 19. Formato de evaluación de aderezos.