1432-3234-1-PB

143Sukardi, Identifikasi dan Karakterisasi Umbi Keladi Tikus sebagai Zat Antioksidan Alami

GAMMAVolume 6, Nomor 2, Maret 2011: 143 - 151

Versi online:http://ejournal.umm.ac.id/index.php/gamma/article/view/1432

IDENTIFIKASI DAN KARAKTERISASI UMBI KELADI TIKUSSEBAGAI ZAT ANTIOKSIDAN ALAMI

Sukardi

Staf Pengajar Jurusan Teknologi Hasil Pangan, Fakultas Pertanian-Peternakan, Universitas Muhammadiyah MalangAlamat Korespondensi : Joyogrand Blok A2 No 4 Malang

Email : [email protected]

ABSTRACT

Keladi Tikus plant can be used as a herbal medicine that is the leaves and tubers. Keladi Tikusis believed to cure various diseases, especially cancer. Keladi Tikus contain ribosome inacting protein(RIP), antioxidants and substances antikurkumin (Yayat, 2008). Presumably this is an antioxidantcompound that causes taro potential in curing mice of cancer. In research conducted solvent extractionof ethyl acetate, ethanol and hexane to obtain the yield and antioxidant activity test. To determine thestability of antioxidants is heating, irradiation and oxidation of design used randomized block design(RAK) factorial. Research results indicate that the water content of tubers of taro flour rat that is10.74%. Sucrose content 0.38% hexane, ethyl acetate extract 0.65% and 1.63% ethanol extract.Taro extract the most active mice obtained from the ethanol extract and its active compounds areflavonoids. Old heating, sunshine and light significantly affected the stability of antioxidant activity.The highest damage occurred in pengeruh pemaasan and then the sun light is very small while theeffect on antioxidant activity declined.

Key words : keladi tikus, extraction, stability antioxidants

PENDAHULUAN

Keladi tikus (typhonium flagelliforme)merupakan tanaman obat yang bermanfaat dalammengobati penyakit kanker (Syahid, 2007). DiIndonesia, tanaman ini tergolong pendatang baru dalamkhasanah pengobatan herbal (Sudewo, 2004). Di pulauJawa, keladi tikus banyak ditemukan di hampir semuatempat baik dataran tinggi maupun dataran rendah(Anonim, 2010). Keladi Tikus mengandung RibosomeInacting Protein (RIP), zat antioksidan dan zatantikurkumin (Yayat, 2008). Diduga senyawaantioksidan inilah yang menyebabkan keladi tikusberpotensi dalam menyembuhkan penyakit kanker(Syahid, 2007).

Bagian tanaman keladi tikus yang dapatdimanfaatkan sebagai obat herbal yaitu daun dan umbi.Jika mengenai tangan, daun dan umbi keladi tikus dapatmenimbulkan rasa gatal (Sudewo, 2004). Di Malaysia,keladi tikus telah lama dikenal sebagai bahan obattradisional yang ampuh dalam melawan sel kanker.Pertumbuhan sel kanker dapat dipicu oleh adanyaradikal bebas dari oksidasi lipid. Penelitian

menunjukkan unsur antioksidan alami memangmemiliki kemampuan untuk mencegah dampak negatifdari radikal bebas (Dewanti, 2006).

Penelitian mengenai ekstrak daun Typhoniumflagelliforme telah dilakukan untuk mengetahuiaktivitas antioksidan dan antibakterial (Mohan, et al,2008); kandungan fitokimia dari ekstrak Typhoniumflagelliforme (Nobakht, et al, 2009); danpenghambatan sel kanker oleh ekstrak Typhoniumflagelliforme (Lai, et al, 2008). Penelitian lainmengenai keladi tikus yaitu potensi fitoremediasi darityphonium flagelliforme untuk degradasi Brilliantblue R (Kagalkar, et al, 2010); dan keragamanmorfologi, pertumbuhan, produksi, mutu dan fitokimiakeladi tikus (Syahid, 2007).

Penelitian terhadap tanaman ini belum banyakdilakukan, sehingga kandungan kimianya belumteridentifikasi secara pasti. Dalam penelitian ini akandilaksanakan ekstraksi tepung umbi keladi tikusmenggunakan beberapa pelarut. Ekstrak yangdiperoleh kemudian diuji stabilitas antioksidan terhadapberbagai kondisi oksidasi. Aktivitas antioksidatifsenyawa antioksidan diketahui dengan uji RSA(Radical Scavenging Activity) dalam DPPH (2-2-

144 GAMMA, Volume 6, Nomor 2, Maret 2011: 143 - 151

SukardiVersi online:

http://ejournal.umm.ac.id/index.php/gamma/article/view/1432

diphenyl-2- picrylhidrazyl). Hasil yang diperoleh daripenelitian ini diharapkan dapat digunakan untukmeminimalisir penurunan aktivitas antioksidan akibatproses pengolahan dan penyimpanan.

METODA PENELITIAN

Jenis alat yang digunakan dalam penelitianadalah: magnetic stirrer Cimmarec+ 2, RotaryEvaporator Hahnvapor HS 3001 yang diproduksi olehHanshin Scientific Co., penyaring vakum Welch 2522c-62, desikator, neraca analitik Pioneer PA413 diproduksioleh Ohaus Corp. USA, spektrofotometer UV- VisGenesys 20 yang diproduksi oleh PT. Gloria ScientificAbadi Surabaya, botol timbang, oven Model E53 WTCBinder Germany, lampu bohlam 20 watt Chiyoda 55,hotplate dan alat-alat gelas.

Bahan penelitian terdiri atas tepung umbi keladitikus yang diperoleh dari Kota Gresik. Tepung umbikeladi tikus dikemas dalam kantong plastik untukdisimpan pada lemari pendingin. Bahan kimia yangdigunakan untuk penelitian adalah: etanol, etil asetat,dan heksan dengan kemurnian teknis yang diperolehdari PT. Brataco Chemika; reagen DPPH; dan kertassaring Whatman no. 42.

Bahan kimia dengan kemurnian pro analys yangdigunakan yaitu etanol untuk analisa aktivitasantioksidan. Penelitian ini dilakukan untuk mengetahuijenis pelarut yang tepat untuk menghasilkan rendemendan aktivitas antioksidan tertinggi dalam ekstraksiantioksidan tepung umbi keladi tikus. Parameter yangdiamati yaitu rendemen ekstrak. Jenis pelarut yangdigunakan yaitu heksan, etil asetat dan etanol.

Pengujian stabilitas antioksidan masing-masingekstrak umbi keladi tikus dilakukan denganmenggunakan Rancangan Acak Kelompok (RAK)faktorial yang tersusun atas dua faktor. Faktor I yaitujenis oksidasi dengan 3 level dan faktor II yaitu lamapemanasan dengan 3 level sehingga diperoleh 9kombinasi. Setiap kombinasi perlakuan dilakukanpengulangan sebanyak 3 kali. Faktor I : Jenis Oksidasi;P1 : Cahaya Lampu; P2 : Pemanasan AlkoholMendidih; P3 : Cahaya Matahari . Faktor II : Lamaoksidasi: L1 : 10 menit; L2 : 20 menit; L3 : 30 menitsehingga diperoleh kombinasi sebagai berikut P1L1 :Pengaruh oksidasi dengan cahaya lampu selama 10menit ; P1L2 : Pengaruh oksidasi dengan cahaya lampuselama 20 menit ; P1L3 : Pengaruh oksidasi dengan

cahaya lampu selama 30 menit; P2L1 : Pengaruhoksidasi dengan pemanasan alkohol mendidih selama10 menit; P2L2 : Pengaruh oksidasi denganpemanasan alkohol mendidih selama 20 menit; P2L3 :Pengaruh oksidasi dengan pemanasan alkoholmendidih selama 30 menit ; P3L1 : Pengaruh oksidasidengan cahaya matahari selama 10 menit; P3L2 :Pengaruh oksidasi dengan cahaya matahari selama20 menit; P3L3 : Pengaruh oksidasi dengan cahayamatahari selama 30 menit

Uji Stabilitas Antioksidan

Masing-masing ekstrak antioksidan umbi keladitikus sebanyak 200 ppm dipanaskan dalam alkoholmendidih, sinar matahari dan lampu bohlam selama10, 20 dan 30 menit. Masing-masing ekstrak kemudiandidinginkan dan diuji aktivitas antioksidatifnya denganmenggunakan uji RSA (Radical ScavengingActivity).

(Sukadi. , 2008)

1. Mencampur 1 ml ekstrak dengan 3 mlmethanol

2. Menambahkan 1 ml larutan DPPH (0.012 g/100 ml)

3. Campuran ditera dengan menggunakanspektrofotometer pada panjang gelombang517 nm selama 15 menit. Aktivitas antioksidatifdari ekstrak dapat dihitung dengan rumus:

HASIL DAN PEMBAHASAN

Bahan baku yang digunakan pada prosesekstraksi yaitu tepung umbi keladi tikus. Pada prosesekstraksi tidak digunakan umbi segar keladi tikuskarena umbi segar kandungan airnya masih relatifbesar. Selain itu, umbi segar ukuran partikelnya lebihbesar daripada bentuk tepung. Daya ekstraksi akansemakin meningkat dengan semakin kecilnya bahan(Dwiari, 2008). Pengeringan umbi keladi tikusdilakukan pada suhu 50C dengan menggunakan




cabinet dryer agar tidak banyak senyawa aktif yangterkadung dalam umbi keladi tikus menjadi rusak. Caratradisional untuk mengeringkan umbi keladi tikus yangdimanfaatkan sebagai obat herbal yaitu denganpengeringan sinar matahari.

Pada proses penepungan umbi keladi tikussebanyak 1300 gram menghasilkan 300 gram tepungumbi keladi tikus. Rendemen tepung umbi keladi tikussebesar 23,08%. Dari penelitian oleh Nasution (2011)diperoleh hasil dari pengeringan umbi segar keladi tikusmenghasilkan rendemen sebesar 33%.

Analisa bahan baku pada tepung umbi keladi tikusmeliputi analisa kadar air. Kadar air adalah kandunganair bahan yang dapat dinyatakan berdasarkan beratbasah dan berat kering. Dari analisa kadar airmenggunakan metode pemanasan di bawah inidiketahui bahwa tepung umbi keladi tikus memilikikadar air sebesar 10,74%. Menurut Syahid (2008),kadar air (water content) pada tepung umbi keladitikus benih konvensional berkisar 10,81%. Untukproses penepungan umbi keladi tikus sebagai obatberbentuk kapsul dilakukan sampai kadar airnya dibawah 35%. Kadar air pada bahan dapatmempengaruhi proses ekstraksi senyawa organik darijaringan bahan. Hal ini dikarenakan bila kadar air dalambahan yang akan diekstraksi tinggi maka air yangterdapat dalam bahan dapat menghalangi solven(pelarut) untuk mengikat senyawa organik dalamjaringan bahan. Oleh karena itu untuk mengekstrakbahan agar diperoleh hasil yang maksimal maka bahandikeringkan terlebih dahulu untuk mengurangikandungan airnya.

Keberadaan air dalam jaringan bahan seolah-olahmelidungi setiap komponen penyusun dalam jaringanbahan dari serangan larutan pengesktrak melaluiaktivitas solvasinya, sehingga ekstrak yang dihasilkanmasih mengandung komponen-komponen lain. Ragamekstraksi yang tepat sudah tentu bergantung padatekstur dan kandungan air bahan tumbuhan yangdiekstraksi dan pada jenis senyawa yang diisolasi(Harbourne, 1987).

Kadar air pada bahan juga dapat menurunkanefisiensi proses ekstraksi. Kandungan air yang tinggipada hasil ekstraksi akan membuat proses pemekatanmenjadi sulit karena air memiliki titik didih yang lebihtinggi dibandingkan pelarut organik yang digunakan(Yudiastuti, dkk, 2007).

Ekstraksi Antioksidan dari tepung umbi keladitikus (Kajian Jenis Pelarut)

Pada penelitian utama tahap 1 dilakukan analisarendemen hasil ekstraksi umbi keladi tikus sebagaiparameter pengamatan. Perhitungan rendemendilakukan untuk mengukur efektivitas jenis pelarutuntuk mengekstrak (Yudiastuti, dkk, 2007).Berdasarkan analisa rendemen diketahui rendemenekstrak tepung umbi keladi tikus dengan pelarutheksan sebesar 0,38%; dengan pelarut etil asetat0,65% dan dengan pelarut etanol sebesar 1,63%.Rerata rendemen ekstrak tepung umbi keladi tikusdapat dilihat pada Tabel 1.

Tabel 1. Rerata Rendemen Ekstrak TepungUmbi Keladi Tikus

Pelarut Rendemen (%) Heksan 0,38

Etil Asetat 0,65 Etanol 1,63

Ekstraksi dengan menggunakan pelarut etanolmemiliki hasil akhir yang lebih besar daripada ekstraksidengan menggunakan pelarut heksan dan etil asetat.Hal ini menunjukkan bahwa etanol merupakan pelarutyang tepat untuk menghasilkan rendemen tertinggidalam proses ekstraksi umbi keladi tikus.

Rendemen ekstrak meningkat seiring denganmeningkatnya kepolaran pelarut. Hasil ekstrak darikacang tanah meningkat seiring dengan meningkatnyapolaritas pelarut yang digunakan (Przybylski., et al,1998). Heksan memiliki kepolaran rendah sehinggamenghasilkan rendemen yang rendah. Etil asetatmerupakan pelarut polar menengah (Nurhari, 2010).Ekstraksi menggunakan pelarut etanol menghasilkanrendemen yang tinggi karena diduga kepolaran etanolmendekati kepolaran senyawa yang diekstrak.Menurut Pujaatmaka (1996), kelarutan suatu zat kedalam suatu pelarut sangat ditentukan oleh kecocokansifat antara zat pelarut dengan zat terlarut yaitu sifatlike dissolve like diantaranya disebabkan olehpolaritasnya.

Berdasarkan hasil penelitian Syahid (2008),senyawa fitokimia yang kandungannya paling besarpada umbi keladi tikus yaitu senyawa flavonoid dan




alkaloid. Pada ekstraksi dengan etanol diduga senyawayang banyak terekstrak adalah senyawa flavonoidsehingga rendemen pada ekstrak etanol paling tinggi.Kepolaran pelarut merupakan pertimbangan pentingdalam ekstraksi senyawa flavonoid. Senyawa polarbiasanya akan lebih baik diekstraksi dengan pelarutgolongan polar seperti etanol atau methanol(Harbourne, 1987). Pada ekstrak heksan dan etil asetatrendemen yang dihasilkan lebih sedikit daripada ekstraketanol karenan diduga pada ekstraksi dengan pelarutheksan dan etil asetat komponen yang terekstrakberbeda. Ekstrak heksan keladi tikus mengandunghidrokarbon jenuh dan asam alifatik, sedangkanekstrak etil asetat keladi tikus mengandung asamlemak aromatik (Lai, et al, 2008).

Uji Stabilitas Aktivitas Antioksidan Primer

Salah satu cara pengujian aktivitas antioksidatifyaitu dengan uji Radical Scavenging Activity (RSA).

Uji RSA yaitu menguji keberadaan donor hidrogendalam ekstrak rimpang dengan pengurangan radikalyang terbentuk dari ionisasi 2-2-difenil-2-picrylhydrazyl(DPPH) ketika dilarutkan dalam etanol (Przybylski etal. dalam Sukardi, 2001). Senyawa DPPH (1,1-Difenil-2-Pikril Hidrazil) adalah senyawa radikal bebasstabil yang menerima sebuah elektron atau hidrogenuntuk diubah menjadi molekul diamagnetik. Interaksiantioksidan dengan DPPH baik secara transfer elektronatau radikal hidrogen pada DPPH, akan menetralkankarakter radikal bebas dari DPPH. Jika semua elektronpada radikal bebas DPPH menjadi berpasangan, makawarna larutan berubah dari ungu tua menjadi kuningterang dan absorbansi pada panjang gelombang 517nm akan hilang. Perubahan ini dapat diukur secarastoikiometri sesuai dengan jumlah elektron atau atomhidrogen yang ditangkap oleh molekul DPPH akibatadanya zat antioksidan. DPPH banyak digunakandalam penelitian aktivitas penangkapan radikal padasenyawa alami tumbuhan.

Gambar 1. stabilitas aktivitas antioksidan ekstrak heksan, etil asetat dan etanol setelahdilakukan pemanasan, penyinaran sinar matahari dan pencahayaan lampu

Secara keseluruhan Aktivitas antioksidan primersetelah dilakukan uji stabilitas menunjukkan bahwaperlakuan pemanasan dan penyinaran sinar matahariterjadi penurunan aktivitas. Adapun perlakuanpencahayaan lampu tidak menurunkan aktivitassehingga penyimpanan dalam ruangan yang disinaridengan cahaya lampu tidak merusak antioksidanekstrak keladi tikus (Gambar 1).

Pemanasan dan penyinaran dengan sinarmatahari menyebabkan penurunan aktivitas yang

sangat besar, bahkan menimbulkan kerusakan yangsangat besar sehingga menimbulkan prooksidan danaktivitasnya bisa negatif. Kurkumin akan mengalamidekomposisi jika terkena cahaya. Produk degradasiyang utama adalah asam ferulat, aldehid ferulat,dehidroksinaftalen, vinilguaikol, vanilin dan asam vanilat(Tonnesen et al.,1986) Reaksi degradasi mengikutitingkat pertama yang dipercepat oleh pengaruh sinarultraviolet (Sukardi 2005)




Gambar 2. Aktivitas Antioksidan setelah ekstrak dioksidasi dengan cahaya lampu

Hasil uji stabilitas antioksidan pada ekstrak umbikeladi tikus pada perlakuan oksidasi dengan cahayalampu sebagaimana tampak pada Gambar 2. Padaekstrak etil asetat setelah dioksidasi dengan cahayalampu pada lama oksidasi 10 menit mengalamipenurunan yaitu dari 14,923% menjadi 18,974%.Namun, setelah lama oksidasi 20 menit aktivitasantioksidan ekstrak etil asetat turun sebesar 2,769%.Setelah dioksidasi selama 30 menit aktivitasantioksidannya mengalami kenaikkan menjadi16,462%.

Semakin lama waktu oksidasi maka semakintinggi aktivitas antioksidan pada ekstrak heksan. Padaekstrak etanol setelah lama oksidasi 10 menit dan 20menit aktivitas antioksidannya menjadi naik, sedangkanpada lama oksidasi 30 menit aktivitas antioksidannyamenjadi turun. Ekstrak etil asetat merupakan ekstrakyang memiliki aktivitas antioksidan tertinggi setelahekstrak dioksidasi dengan cahaya lampu dibandingdengan ekstrak heksan dan etanol.

Gambar 3. Aktivitas Antioksidan setelah ekstrak dipanaskan dalam alkohol mendidih

Aktivitas antioksidan semua ekstrak setelah lamaoksidasi 10 menit dalam alkohol mendidih mengalamipenurunan yang cukup besar bila dibandingkan denganaktivitas antioksidan semua ekstrak dengan perlakuan

kontrol (tanpa pemanasan). Aktivitas antioksidanekstrak heksan setelah lama oksidasi 10 menit turundari 10,769% menjadi 2,359%. Pada ekstrak etil asetatsetelah lama oksidasi 10 menit aktivitas antioksidannya




turun dari 14,923% menjadi 1,077%. Aktivitasantioksidan ekstrak etanol pada lama oksidasi 10 menitturun dari 7,231% menjadi 1,590% (Gambar 3).Penurunan ini sangat signifikan yaitu lebih dari 50%dari aktivitas antioksidan sebelum dipanaskan. Setelahpasteurisasi, terjadi penurunan aktivitas antioksidanyang cukup tajam yaitu sekitar 50% (Tensiska, 2007).

Pada lama oksidasi 20 dan 30 menit, semuaekstrak mengalami kenaikan aktivitas antioksidankecuali pada ekstrak heksan. Pada ekstrak heksanterjadi penurunan aktivitas antioksidan setelah lamaoksidasi 20 menit yaitu dari 2,359% menjadi 0,462%.Setelah lama oksidasi 30 menit aktivitas antioksidanekstrak heksan meningkat menjadi 1,641%. Ekstrak

etil asetat merupakan ekstrak yang memiliki aktivitasantioksidan tertinggi setelah ekstrak dioksidasi denganpemanasan alkohol mendidih dibanding dengan ekstrakheksan dan etanol. Hasil penelitian Tensiska (2007)menunjukkan bahwa ekstrak kasar isoflavon dariampas tahu yang memiliki stabilitas terbaik pada suhupasteurisasi (75C) adalah ekstrak etil asetat.

Aktivitas antioksidan ekstrak heksan pada lamaoksidasi 10 menit mengalami penurunan yang sangatsignifikan yaitu dari 10,769% menjadi 3,897%. Setelahekstrak dioksidasi selama 20 menit, aktivitasantioksidannya meningkat menjadi 13,282%. Aktivitasantioksidan ekstrak heksan menurun setelah dioksidasiselama 30 menit menjadi 7,282%.

Gambar 4. Aktivitas Antioksidan setelah ekstrak dioksidasi dengan cahaya matahari

Pada lama oksidasi 10 dan 20 menit aktivitasantioksidan ekstrak etil asetat mengalami penurunan.Namun setelah lama oksidasi 30 menit aktivitasantioksidannya meningkat menjadi 8,667%. Aktivitasantioksidan ekstrak etanol meningkat setelah dioksidasidengan cahaya matahari selama 10 menit yaitu dari7,231% menjadi 15,385%. Pada lama oksidasi 20 menitaktivitas antioksidan ekstrak etanol menurun menjadi9,432% dan meningkat kembali pada lama oksidasi30 menit menjadi 11,282% (Gambar 4). Adanyakenaikkan dan penurunan aktivitas antioksidan padaekstrak heksan kemungkinan disebabkan pada waktuoksidasi cahaya matahari kurang seragam sehinggaberpengaruh terhadap aktivitas antioksidan. Pada saatperlakuan oksidasi dengan cahaya matahari, cahayamatahari yang dipancarkan saat penelitian kurang

stabil. Hal ini tentunya juga mempengaruhi aktivitasantioksidan dari ekstrak umbi keladi tikus. Pada semuaekstrak umbi keladi tikus (ekstrak heksan, etil asetatdan etanol) perlakuan oksidasi dengan pemanasanalkohol mendidih menurunkan aktivitas antioksidanyang cukup signifikan. Hal ini berarti pada perlakuanoksidasi dengan pemanasan alkohol mendidih dapatmenurunkan aktivitas antioksidan ekstrak umbi keladitikus. Pemanasan dengan alkohol mendidihmenggunakan suhu 78C.Setelah pasteurisasi (suhu75C), terjadi penurunan aktivitas antioksidan yangcukup tajam yaitu sekitar 50% (Tensiska, 2007).Aktivitas antioksidan ekstrak umbi keladi tikus setelahdioksidasi dengan berbagai sumber dan lama tertentumenunjukkan bahwa terdapat kenaikkan danpenurunan aktivitas antioksidan. Adanya kenaikkan




aktivitas antioksidan setelah ekstrak umbi keladi tikusdioksidasi dengan waktu yang lebih lama kemungkinandisebabkan adanya pengikatan gugus OH dari etanolpada saat proses oksidasi. Senyawa fitokimia yangpaling banyak kandungannya dalam umbi keladi tikusyaitu flavonoid. Flavonoid memiliki struktur kimia yangpada dasarnya terdiri atas 2 cincin benzena (cincin Adan B) serta cincin piran C dengan gugus oksigen.

Aktivitas antioksidan flavonoid menjadi kuatdipengaruhi oleh jumlah dan posisi gugus OH dalammolekul flavonoid (Farkas, et al, 2004). Pada saatoksidasi dengan waktu yang lebih lama terjadipengikatan gugus OH dari etanol oleh senyawaflavonoid sehingga terjadi kenaikkan aktivitasantioksidan. Saat mengikat gugus OH dari etanol,struktur flavonoid berubah dan perubahan inimenyebabkan aktivitas antioksidan menjadi naik.Aktivitas antioksidan pada pasta kari meningkat seiringdengan suhu dan lama pemanasan (Ramson., et al,2011). Hal ini diduga dapat terjadi karena adanyaformasi baru komponen aktif atau pelepasanantioksidan terikat selama proses pemanasan,

Kandungan senyawa fitokimia pada tiap ekstrakumbi keladi tikus diduga mempengaruhi aktivitasantioksidan ekstrak umbi keladi tikus. Komponen aktiflain yang terkandung dalam umbi keladi tikus dalamalkaloid. Aktivitas antioksidan alkaloid lebih rendahdaripada flavonoid.

KESIMPULAN DAN SARAN

Pelarut etanol merupakan pelarut yang efektifuntuk mengekstrak zat\ antioksidan pada umbi keladitikus dibanding heksan dan etil asetat. kestabilanaktivitas antioksidan sangat dipengaruhi oleh sinarmatahari dan panas sedangkan pencahayaan tidakberpengaruh terhadap stabiltitas aktivitas antioksidan.

DAFTAR PUSTAKA

Andayani, Regina, Yoviya Lisawati dan Maimunah.2008. Penentuan Aktivitas

Antioksidan, Kadar Fenol Total, dan Likopen PadaBuah Tomat (Solanum Lycopersicum L.).Jurnal Sains dan Teknologi Farmasi 13(1).

Anonima. 2010. Heksana. Http://id.wikipedia.org/Heksana. Diakses Tanggal 1 Desember 2010.

Anonimb. 2010. Etanol. Http://id.wikipedia.org/Etanol. Diakses Tanggal 1 Desember 2010.

Anonimc. 2010. Mengenal Tanaman KeladiTikus. Http://keladitikus.com. Diakses PadaTanggal 22 November 2010.

Barus, Pina. 2009. Pemanfaatan BahanPengawet dan Antioksidan Alami padaIndustri Makanan. Pidato PengukuhanJabatan Guru Besar. Universitas SumateraUtara. Medan.

Dewanti, Tri. 2006. Buku Ajar PanganFungsional Untuk Kesehatan. UniversitasBrawijaya. Malang.

Febrina, Ellin, Dolih Gozali dan Taofik Rusdiana.Formulasi Sediaan Emulsi Buah Merah(Pandanus conoideus Lam.) Sebagai ProdukAntioksidan Alami. Laporan Penelitian PenelitiMuda. Universitas Padjadjaran.

Harbourne, J.B. 1987. Metode Fitokimia: PenuntunCara Modern Menganalisis Tumbuhan.Diterjemahkan Oleh Kosasin Padmawinata DanIwang Soediro. Penerbit Institut TeknologiBandung. Bandung.

Harapini, Dkk. 2006. Nilai Peroksida danAktivitas Antiradikal Bebas DPPHEkstrak Metanol Knema Laura. MajalahFarmasi Indonesia: 17.

Kagalkar, Anurandha, Umesh, Jyoti P., Sanjay P.,And Vishwas. 2010. Studies OfPhytoremedoation Potentiality Of TyphoniumFlagelliforme For The Degradation OfBrilliant Blume R. Planta (2010) 232: 271-285.

Kuncahyo, Ilham dan Sunardi. 2007. Uji AktivitasAntioksidan Ekstrak Belimbing Wuluh(Averrhoa bilimbi L.) Terhadap 1,1-Diphenyl-2- Pycrylhidrazil (DPPH). Seminar NasionalTeknologi. Yogyakarta.




Lai, Choon-Sheen, Rosemal Dan N.K. Nair. 2008.Typhonium Flagelliforme Inhibits CancerCell Growth In Vitro And Induces Apoptosis:An Evaluation By The Bioactivity GuidedApproach. Journal Of Enthopharmacology 118(2008): 14-20.

Mohan, Syam, Ahmad Busataman And Adel Sharaf.2008. Antibacterial And Antioxidant ActivitiesOf Typhonium Flagelliforme (Lodd.) BlumeTuber. American Journal Of Biochemistry AndBiotechnology 4 (4): 402- 407.

Maulida, Dewi Dan Naufal Zulkarnaen. 2010.Ekstraksi Antioksidan (Likopen) dari BuahTomat dengan Menggunakan SolvenCampuran, N Heksana, Aseton, danEtanol. Skripsi. Universitas Diponegoro.Semarang.

Nobakht, Kadir, M. and Stanslas. 2009. AnalysisOf Preliminary Phytochemical Screening OfTyphonium Flagelliforme. African Journal OfBiotechnology Vol. 9 (11): 1655-1657.

Nasution, Pipi Saputri. 2011. KarakterisasiSimplisia, Skrining Fitokimia, dan UjiToksisitas dari Ekstrak Umbi Keladi Tikusdengan Metode Brine Shrimp Lethality Tes(BST). Skripsi. Universitas Sumatera Utara.

Nurhari, Ogi. 2010. Kimia Organik: EsterifikasiEtil Asetat. Sekolah Tinggi Farmasi. Bandung.

Prakash, Aruna, Fred Rigelholf, and Eugene Miller.2010. Antioxidant Activity. MedallionLaboratory Analitical Progress.Minneapolis.

Rahim, Mohd S. Azman, Jailani Salihon and MashitahMohd Yusoff. 2010. Effect of Temperature andTime to the Antioxidant Activity in Plecramthusamboinicus Lour. American Journal ofApplied Sciences 7 (9): 1195-1199

Sarastani, Soewarno, Tien dan Dedi. 2002.Aktivitas Antioksidan Ekstrak Dan FraksiBiji Atung. Junal Teknologi dan IndustriPangan XIII (2): 149-156.

Siger, Aleksander, Malgozata Nogala and EleonoraLampart. 2008. The Content and AntioxidantActivity of Phenolic Compound In Cold-PressPlant Oils. Journal of Food Lipids 15 (2008):137-149.

Sudarmadji, S., B Haryono, dan Suhardi. 1997.Prosedur Analisa Untuk Bahan Makanandan Pertanian. Liberty. Yogyakarta.

Sudewo, Bambang. 2004. Tanaman obat PopulerPenggempur Aneka Penyakit. PT.Agromedia Pustaka. Jakarta.

Sukardi. 2001. Pengaruh Pemanasan terhadapStabilitas Antioksidan Ekstrak Jahe,Kunyit dan temu Lawak. Program PascaSarjana Universitas Gajahmada Yogyakarta.

Sukardi. 2002. Ekstraksi dan Isolasi BahanBioaktif Ekstrak Jahe sebagai PenangkapRadikal Bebas. Dosen Muda DIKTI

Sukardi. 2004. Ekstraksi dan Isolasi Bahan BioaktifDaun dewa sebagai Penangkap RadikalBebas. LEMLIT UMM.

Sukardi. 2005. Esktraksi dan Isolasi BahanBioaktif Ekstrak Ubi Jalar Ungu sebagaiPanangkap Radikal Bebas. LEMLITUMM.

Sihombing, Christina Noventi, Nasrul Wathoni danTaofik Rusdiana. 2010. Formulasi GelAntioksidan Ekstrak Buah Buncis (PhaesoulusVulgaris L.) dengan Menggunakan BasisAquapec Hv. Universitas Padjajaran.Sumedang

Syahid, Siti F. 2007. Keragaman Morfologi,Pertumbuhan, Produksi, Mutu DanFitokimia Keladi Tikus (Typonium FlagelliformeLodd.) Blume Asal Variasi Somaklonal.Jurnal Littri 14(3): 113 118.




Tensiska, Marsetio dan Silvia Oktavia. 2007.Pengaruh Jenis Pelarut terhadap AktivitasAntioksidan Ekstrak Kasar Isoflavon dariAmpas Tahu. Hasil Penelitian. UniversitasPadjadjaran.

Utami, Indah Wahyu. 2008. Efek Fraksi AirEkstrak Etanol Daun Salam (SyzygiumpolyanthumWight.) Terhadap Penurunan KadarAsam Urat Pada Mencit Putih (Mus musculus)Jantan Galur BALB-C yang Diinduksidengan Kalium Oksonat. Skripsi. UniversitasMuhammadiyah Surakarta.

Utami, Devi Nadya. 2009. Ekstraksi.Http://majarimagazine.com/2009/03/Ekstraksi.htm.

Diakses Pada Tanggal 16 November 2010.

Yayat. 2008. Khasiat Tanaman Keladi Tikus.Http://kabarinews.com. Diakses Pada Tanggal22 November 2010.

Yitnosumarto, S. 1993. Percobaan Perancangan,Analisis dan Intepretasinya. PT. GramediaPustaka Utama. Jakarta.

Yudiastuti, Silvi Oktavia Nur, Tensiska dan Marsetio.2007. Pengaruh Jenis Pelarut terhadapAktivitas Antioksidan Ekstrak Kasar Isoflavondari Ampas Tahu. Universitas Padjajaran.Bandung.

Documents

1432-3234-1-PB