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8/16/2019 4 TEORIA BIOPLASTICOS
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Polímeros bacterianos biodegradables:
Polihidroxialcanoatos (PHAs)
1. Polímeros biodegradablesLos plásticos son polímeros orgánicos generalmente de origen
petroquímico, cuyo peso molecular varía entre 104 a 106 Da y debido a su
estructura pueden ser manipulados y moldeados con facilidad. resentan
resistencia química !ácidos, álcalis y disolventes" y mecánica, son
impermeables, tienen una alta relaci#n resistencia$densidad, e%celentes
propiedades para el aislamiento t&rmico y el&ctrico y pueden ser transparentes
y coloridos. 'stas características asociadas a su ba(o costo de producci#n
)acen que el uso de los plásticos est& generali*ado !Dantas, +00".
-egn su origen, las mol&culas de los plásticos pueden ser naturales,
como la celulosa, cera, cauc)o natural, o sint&ticas como el polietileno y el
nylon. Los plásticos sint&ticos se clasifican segn el proceso de polimeri*aci#n
en polímeros de condensaci#n y de adici#n. Las reacciones de condensaci#n
producen diferentes longitudes de polímeros !nylon, poliuretanos y poli&steres"
y peque/as cantidades de subproductos como agua, amoniaco y etilenglicol.
Las reacciones de adici#n producen longitudes específicas de polímeros
!polietileno, polipropileno, policloruro de vinilo y poliestireno" y ningn
subproducto. -egn la forma en que son procesados, los plásticos pueden ser
termoplásticos o termoestables. Los termoplásticos formados por polímeroslineales o ramificados pueden fundirse, se ablandan cuando se calientan y se
endurecen al enfriarse. or el contrario, la mayoría de los plásticos formados
por polímeros entrecru*ados son termoestables y ganan dure*a cuando se
calientan.
-egn el onse(o acional del 2mbiente, 32, !+006" más del 50
de los plásticos e%istentes en el mercado, son termoplásticos, entre los que se
incluyen el polietileno tereftalato, '7 !envases de gaseosa", polietileno de alta
densidad, '2D !botellas de detergentes, productos alimenticios, tubos,
(uguetes", cloruro de polivinilo, 8 !muebles de (ardín, tubos de ca/os,
*apatillas", polietileno de ba(a densidad, '9D !bolsas para basura,
contenedores fle%ibles", polipropileno, !envases de yogurt, margarina y
lec)e, pie*as de autom#viles". Los termoestables se endurecen mediante un
fraguado, no se pueden volver a fundir ni a moldear y constituyen el +0 de
los plásticos, como el poliuretano, : !revestimientos, acabados, colc)ones,
asientos de ve)ículos", epo%y !ad)esivos, embarcaciones, componentes
el&ctricos" y fen#licos !)ornos, tostadores, placas de circuitos".
'l mayor porcenta(e de los plásticos se utili*a para embala(es por lo quetienen una vida til muy corta y despu&s son descartados en grandes
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cantidades, acumulándose en los vertederos municipales. uesto que durante
periodos relativamente largos no se )a producido alguna biodegradaci#n
significativa de estos materiales, se )a pensado en los polímeros naturales
para sustituirlos. Dado que cualquier sustancia de origen biol#gico puede ser
degradada por uno o varios microorganismos, la utili*aci#n generali*ada de
plásticos biol#gicos podría resolver el problema ambiental de los petroplásticos
!adigan et al., +004".
Los plásticos biodegradables pueden ser divididos en tres categorías; los
sinteti*ados químicamente, los que contienen amidas adicionadas a su
estructura y los poli)idro%ialcanoatos !
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producidos utili*ando como fuente de carbono materias primas como el
acetato, ácido 4=)idro%ibutirico, celulosa, glicerol, lignina, metano, aceite
mineral y sacarosa entre otros !Dantas, +00".
Los
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. Historia'l primer
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polímeros de cadena corta !
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predominantes de los poli)ro%ialcanoatos comercialmente disponibles en la
actualidad !Civera y eváre*, +00@".
-egn la composici#n de los mon#meros en la cadena, los
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ig"ra 2. ?#rmula general de los poli)idro%ialcanoatos y algunos
miembros representativos !osta, +00".
nM1 CM)idr#geno oli !=)idro%ipropionato"CM metil oli !=)idro%ibutirato" !
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ig"ra &. b1, carbonilo !M0"> 9+, metileno ! 94, metilo ! 81,
carbonilo !M0", 8+, metileno ! 84,
metileno !
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CM
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moldeables en temperaturas cercanas o mayores a su punto de fusi#n. De esta
misma manera, la 7m y la 7g se incrementan conforme aumenta la masa
molecular en el caso de los
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)idro%ivalerato !
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'%tensi#n )asta quiebre!"
400 =5 0
Cesistencias a radiaci#nultravioleta
9a(a 2lta
Cesistencia a solventes 2lta 9a(a
ermeabilidad deo%ígeno !cm .m+ .atm=1 d=1"
1B00 4
9iodegradabilidadula 9uena uy buena
+. rganismos "e sintetian PHAsLos Au*mán y Au*, +005 %.
'%isten g&neros de bacterias que sinteti*an el polímero nicamente en la
fase estacionaria de crecimiento, por limitaci#n de un nutriente en presencia de
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una fuente de carbono en e%ceso, por e(emplo; C. necator , P. oleovorans,
Azotobacter bei&erinc'ii , y Azospirillum brasilense. 3tras bacterias acumulan
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Hypomicrobium sp.arbono
Methylobacterium sp.etano !
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Los productores naturales de
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síntesis de
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+ acetil R o2 S acetoacetil=o2 S )idro%ibutiril=o2 S !
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Azucare
s
Acetil CoA
Acetil – - en!i"#
Aceto#cetil - CoA
(R) – 3 – $i%&oxi'ti&il -
CoA
HB
*A+H ,
H,
*A+,
CoAH P (3HB) polimerasa o
sintetasa
Acetoacetil – CoA
reductasa
B – cetoacil – CoA
tiolasa
Acetil CoA
CoAH
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ig"ra 4. Diagrama de flu(o que presenta las etapas de la síntesis de
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ig"ra 5. -erie de reacciones de la síntesis de
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ig"ra 1/. etabolismo de poli)idro%ibutirato !)olula,+00".
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ig"ra 11. Cuta metab#lica para la síntesis de poli)idro%ialcanoatos a
partir de ácidos grasos !Dantas, +00".
2vila !+00B", menciona que la biosíntesis de
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uando la fuente de carbono está constituida por ácidos grasos de 6 a
1+, los mon#meros de
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gluconato. 2 trav&s de esta vía una mol&cula de 2D
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ig"ra 12. ecanismo propuesto para la formaci#n de gránulos de
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nitr#geno, las c&lulas no producen proteínas y se acumula el 27 cuyo e%ceso
provoca una disminuci#n de la fosforilaci#n o%idativa y así mimo acumulaci#n
de las en*imas reducidas !2D
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Pseudomonas oleovorans algunos metil#trofos y scherichia coli
recombinante". ada bacteria requiere condiciones de crecimiento específicas
para la síntesis de
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!"adro &. roducci#n de poli)idro%ialcanoatos en diversas bacterias
Bacteria PHA Fuente de carbonoTiempo
(h)
Concentración
celular (gL-1)
Conc
PHA
(gL-1)
Rendimiento
p!"
(gg-1)
Contenido
PHA (#)
p!$
Rendimiento
$!"
(g g-1)
Producti%idad
(g&L-1&h-1)
Re'erencia
Cupriavidus
necator P(3HB) Glucosa 50 164 121 76,0 2,42
Lee et al ., 1995
Cupriavidusnecator P(3HB) Glucosa 49 124 92 74,0 1,87
Lee et al ., 1995
Cupriavidus
necator P(3HB)
C02 / H2Etaol
Glucosa
Glucosa
H!"#ol!$a"o
%a"!oca
&o#ta "e so'a%ela$a
40
50
59
36
85,00
63,50
164,067,1
106,0
126,0
61,5
47,0
121,047,6
61,9
94,80,00065
72,80
74,0
76,072,1
57,5
32,8
1,54
0.94
2,421,23
0,99
atas, 2005
Cupriavidus
necator P(3HB) C*2 40 85,0 61,5 72,0 1,54
Lee et al.,1995
Cupriavidus
necator
P(3HB)+co+
P(3H)
Glucosa+
-#o-!!co46 158,0 117 74,0 2,55
Lee et al ., 1995
Cupriavidus
necator
P(3HB)+co+
P(3H)
Glucosa+
-#o-!!co39 113,0 64,0 56,5 1,64
Lee et al ., 1995
Cupriavidus
necator
P(3HB) #uctosa
Glucosa
0,284
0,1 a 0,3
66,2
76,0
0,1245 Ba#osa
et al .,2005
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Azotobacter
vinelandiiP(3HB/3H)
Bete##aac!"o
-etao!co
19+
2259+71
Lee et al.,1995
Chromobacterium
violaceumP(3H) c!"o al:#!co 39,5 24,5 62,0
!le#, 2006
Haloferax
mediterraneiPHB
l%!"
;!"#ol!$a"o.39,4 20,0
1+1,750,8
Haloferax
mediterranei Glucosa 85,5 23,0 27,0
&! et al., 2006
Haloferax
mediterraneiPHB
Pa=a "e a##o$+
al%!" %a$
;!"#ol!$a"a"o
l%!" %a$
;!"#ol!$a"o
Glucosa
140,0
62,6
85,8
77,8
24,2
23,0
55,6
38,7
27,0
&! et al ., 2006
Haloferax
mediterranei
P(3HB)+co+
3H)
P(3HB)+co+
3H)
ue#o
;!"#ol!$a"o
-uero )idroli*ado
31,5
12,2
14,7
0,29
0,20
72,8
87,5
0,09
0,14
>olle# et al.,
2007
Haloferax
mediterranei
P(3HB)+co+
3H)Glucosa 117 85,0 48,6
&! et al., 2006
Halomonas
boliviensis
P(3HB) Glucosa 27 0,346 48,7
31
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Klebsiella
aerogenes P(3HB) ?es!"uos 32 37,0 24,0 65,0 0,75
Lee et al.,1995
Methylobacterium
organophylumP(3HB) etaol 70 250,0 130 52,0 1,36
Rhizobium tropici P(3HB)
aca#osa
aca#osa
saca#osa
36
36
36
4,02
3,58
1,82
18,83
19,84
18,55
#aco et al.,
2009
Mesorhizobium
plurifariumP(3HB)
&o%ate
Lactosa
aca#osaa!tol
ela$a
Glucosa
48
48
4848
48
48
0,724
0,716
0,9710,967
1,152
1,169
0,299
0,279
0,3610,336
0,146
0,192
41,32
39,07
37,2734,82
12,68
11,05
Lasala, 2004
Methylobacterium
extoruensP(3HB) etaol 170 233,0 149 64,0 0,88
Lee et al., 1995
Methilobacterium
extoruensP(3HB) etaol 121 223,0 136,0 61,0 1,12
Lee et al ., 1995
!aracoccus
denitrificansP(3HB/3H)
etaolalco;ol
+ a%l!co120 9,0 2,34 26,0 0,02
Lee et al., 1995
!seudomonas
fluorescensela$a 150 3,39 3,34 98,5
?a%#e$ et al ,
!seudomonas
oleovorans
P(3HH+co+
3H*)+octao 11,6 2,9 25,0 0,58
Lee et al ., 1995
32
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!seudomonas
oleovorans
P(3HH+co+
3H*)+ octao 38 37,1 12,1 33,0 0,32
Lee et al., 1995
!seudomonas
oleovoransP(3HH/3H*) +octao 2,25 1,05 46,7 0,09
Lee et al ., 1995
!seudomonas
oleovoransP(3HH/3H*) +octao 45 41,8 15,5 37,1 0,34
Lee et al., 1995
!seudomonas
putida PHs+%cl c!"o ole!co 69 30,22 13,52 0,102 44,9 0,188
a#su"! et al ., 2007
"scherichia coli
#eco%.P(3HB) Glucosa 39 101,4 81,2 80,1 2,08
Klebsiella
aerogenes #eco%.P(3HB) ela$a 32 37,0 24,0 65,0 0,75
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La estrategia actual en la producci#n de sin
embargo, durante el crecimiento celular parte del polímero formado inicialmente
se pierde debido a que se utili*a como sustrato en el mantenimiento del
metabolismo celular. 'n el proceso en serie, primero las bacterias se cultivan
con una fuente de carbono para obtener biomasa celular y luego se elimina un
nutriente esencial en el medio, a la ve* que se a/ade un sustrato para la
formaci#n del polímero. 'ste es convertido directamente en polímero y el
crecimiento celular es mínimo. 'ste proceso se usa en la producci#n de
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on base en esta ecuaci#n se estableci# la relaci#n ; en 6,5 gramos
de carbono por gramo de nitr#geno y se mantuvo constante en la primera etapa
para obtener una alta concentraci#n celular. 'n la segunda etapa las c&lulas
obtenidas se limitaron en la fuente de nitr#geno para permitir la acumulaci#n
del biopolímero. La me(or concentraci#n para la producci#n de
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nitrógeno (g
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transferencia de o%ígeno, con alimentaci#n de magnesio y limitaci#n de amonio
se alcan*# una concentraci#n celular y de sin embargo, uno de
los problemas de emplear este recombinante es el uso de o%ígeno puro para
obtener una elevada densidad celular.
11., tros microorganismosDong et al . !+006" reali*aron una fermentaci#n fed batc) con Halofera"
mediterranei !aqueobacteria e%tremadamente )al#fila, aerobia,
quimiorgan#trofa" utili*ando glucosa y e%tracto de levadura como fuente de
carbono y nitr#geno respectivamente para la producci#n de
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sint&ticos. Los costos de producci#n de 2rcos y 8argas, +006".
La selecci#n de los microorganismos para producir
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-e conoce que en la mayoría de las bacterias, la producci#n de
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27 B@@. 'ste sustrato es rico en acetato, propionato y butirato y cuando
fue diluido a la mitad, A. vinelandii logr# producir y almacenar ,6 y B+,5 respectivamente
!)en et al., +006> 7ing et al., +006 y Eoller et al ., +00B". 'stos investigadores
sugieren la )idr#lisis de los residuos agrícolas lo que acarrea un costo e%tra enel proceso. omo una forma de superar este inconveniente se propone utili*ar
un e%tracto en*imático crudo de origen microbiano en lugar del uso de en*imas
purificadas !Civera y eváre*, +00@". or su parte, Camíre* et al . !+00"
reali*aron una fermentaci#n con Pseudomonas fluorescens en biorreactor air
lift con caldo mela*a !10 gL=1", obteniendo ,@ g L=1 de biomasa despu&s de
10 )oras así como ,4 gL=1 de
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produce
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Las fuentes nitrogenadas contribuyen fundamentalmente al crecimiento
microbiano ya que en la mayoría de los casos contienen aminoácidos libres
que pueden ser transportados a la c&lula sin necesidad de ser metaboli*ados,
lo cual sugiere un a)orro de energía y de tiempo para la multiplicaci#n celular.
'ste aspecto )a sido estudiado en la síntesis de 6,5 y B,4 mostraron rendimientos producto
biomasa !Op$%" entre @,6 y B,4 , alcan*ado el rendimiento má%imo a p< 6,5
44
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para una tasa de crecimiento de 1,6B gL =1 y 0,16 gL=1 de
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cantidad de polímeros 100 veces menor. La detecci#n in vivo se basa en la
utili*aci#n de diferentes tipos de colorantes en las colonias productoras; -udan
egro 9 para detectar en microscopio #ptico comn, 2*ul de ilo 2 para
detectar en microscopio con receptores de fluorescencia y 8ermel)o de ilo
para detectar a trav&s de e%posici#n a lu* ultravioleta. Las metodologías in
vitro además de detectar la presencia de sin embargo, para usar la
cromatografía de gases, es necesario una despolimeri*aci#n del
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7raba(os reali*ados en laboratorio con C. necator y B. megaterium
salva(es y deficientes en la síntesis de
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1,. Degradación de PHAsLos
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ig"ra 1&. 9iosíntesis y degradaci#n de !
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generaci#n de constructos para el crecimiento celular, debido a que resulta
biocompatible. 's particularmente importante el )ec)o que el producto de la
degradaci#n del
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industrias de alimentos. 7esis de maestría. :niversidad ?ederal de
-anta atalina, 9rasil.)en, H., 7rong, D.
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Arados, C., 2lvare*, ., Aim&ne*, 2. attiasson, 9. !+005". Degradaci#n
anaer#bica de desec)os agrícolas por consorcios microbianos para la
producci#n de poli)idro%ialcanoatos. Biofarbo, 10!1", +5=., >-?.adigan, ., artinTo, K. arTer, K. !+004". Broc'. Biolog5a de los
Microorganismos. !10a ed.". adrid; arson 'ducaci#n, -.2.arangoni, ., ?urigo, 2. 2ragao, A. !+001". 7)e influence of substrate
source on t)e gro]t) of Ralstonia eutropha, aiming at t)e production
of poly)ydro%yalTanoate. Brazilian
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poly)idro)yalcanoate producing microorganisms. lectronic