Cuadernillo de Biología 2015

Universidad Nacional de Misiones

Facultad de Ciencias Forestales

Profesorado en Biología

CUADERNO DE

ACTIVIDADES DE

BIOLOGÍA GENERAL

Prof. Adjunta: Ana María Noguera JTP: Carmen Borrero

Ayudante alumno: Pirelli Jorge Hernán

UNAM – FCF Profesorado en Biología Cátedra: BIOLOGIA GENERAL

Bienvenidos a la Biología, el estudio científico de la vida.

En esta materia se trata de abordar aquellos aspectos

relacionados con la vida, desde la minúscula célula hasta

como se relacionan las diversas formas de vida en las

comunidades biológicas y como la gran diversidad de la

vida sobre la Tierra ha evolucionado a partir de los

primeros microorganismos.

Cuanto más aprendamos acerca de la vida, más fascinante

resulta; la respuesta a una pregunta conduce a más

preguntas que durante su formación cautivará a las

mentes curiosas.

Más que cualquier otra cosa, la biología es una

indagación, una búsqueda continua para descubrir la

naturaleza de la vida


BIOLOGÍA GENERAL

Profesores:

- Prof. Adjunta: Mgter. Ana María Noguera

- JTP: Prof. Carmen Borrero

- Ayudante alumno: Jorge Hernán Pirelli

- Alumna Adscripta: Judidt Franco

CONTENIDOS TEÓRICOS ANALÍTICOS

Para su mejor desarrollo y comprensión, los contenidos han sido agrupados en cuatro bloques

introductorios:

BLOQUE I: Introducción a la ciencia de la Biología

Unidad 1: Consideraciones generales sobre la ciencia.

Concepto de ciencia. Clasificación de la ciencia. Naturaleza de la actividad científica. El conoci-

miento científico: sus características. Producción del conocimiento científico. La Biología como

ciencia. Evolución del conocimiento científico en el campo de la Biología. La metodología cientí-

fica: ¿existe un método en ciencia?

Unidad 2: Un vistazo a lo que es la vida

Qué es la vida. Sistema viviente, Propiedades o características de los seres vivos: organización,

metabolismo, homeostasis, reproducción, crecimiento, adaptación, evolución. Los virus: una dis-

cusión en el límite de la vida.

Unidad 3: El origen de la vida

Principales teorías del origen de la vida. Evolución del conocimiento científico sobre el origen de

la vida en los siglos XVII, XVIII y XIX. Origen y evolución de la Tierra. Condiciones primitivas

en la Tierra. Origen de las moléculas orgánicas. Desde las moléculas orgánicas hasta la primera

célula. Las membranas definieron la primera célula. Desde los procariotas hasta los eucariotas.

Teorías actuales sobre el origen de la vida.

BLOQUE II: Introducción a la Biología celular

Unidad 4: La química de la vida

Los componentes químicos de la célula. Compuestos inorgánicos: agua e iones. Las propiedades e

importancia biológica del agua. pH: importancia de su mantenimiento. Compuestos orgánicos: la

química de la célula se basa en los compuestos de carbono. El por qué de la selección del carbono.

Carbohidratos., lípidos, proteínas, ácidos nucleicos. Su importancia biológica.


Unidad 5: Organización celular

Teoría celular. Cómo se estudian las células. Célula procariota y eucariota: características genera-

les. Forma y tamaño en relación a las funciones. Movimientos de las células (ameboidales, flagela-

res, filiares). Diferencias entre células vegetales y animales. Intercambio de sustancias a través de

las membranas: difusión, ósmosis (sistemas hipotónicos, hipertónicos e isotónicos). Plasmólisis,

turgencia hemólisis. Transporte activo: endocitosis.

Unidad 6: División celular

Ciclo celular. Interfase. Mitosis: fases. Importancia de la mitosis. Meiosis: divisiones reduccional y

ecuacional. Importancia biológica y consecuencias genéticas de la meiosis. Ciclos biológicos. Ci-

clos biológicos de organismos de interés genético experimental. Los ciclos biológicos y la evolu-

ción.

BLOQUE III: Introducción a la genética

Unidad 7: Genética Mendeliana

El comienzo de la genética. Las contribuciones de Mendel. Los experimentos que conducen a las

Leyes de Mendel. Cruzamiento de prueba. Codominancia. Alelismo. Teoría cromosómica de la

herencia. Organización del ADN en los cromosomas eucarióticos. Niveles de organización del

cromosoma eucariótico. Organización citológica. Tipos de cromosomas. El cromosoma como

portador de la información. Mecanismos de determinación del sexo: ambientales, hormonales y

genéticos. Los cromosomas sexuales. Sexo heterogamético y homogamético. Hemicigosis. Heren-

cia ligada al sexo: las experiencias con Droshophyla. Algunos casos de herencia ligada al sexo.

Citogenética humana: cariotipo. Ejemplos de enfermedades genéticas más comunes que se pre-

sentan en los seres humanos.

Unidad 8: Química y expresión de la herencia

El camino de la doble hélice. El modelo de Watson y Crick. Los experimentos que condujeron al

descubrimiento del material genético. Replicación del ADN. El ADN como portador de la infor-

mación. Datos que apoyan el modelo de replicación semiconservativa. Flujo de información dentro

de la célula. El código genético y su traducción. Descifrando el código. Características del código.

Transcripción. Traducción: decodificación del mensaje. La síntesis de las proteínas.

BLOQUE IV: Introducción a la Biología de los organismos y de las poblaciones

Unidad 9: Cómo metabolizan las células y los organismos

Consideraciones generales sobre energética. Las leyes de la termodinámica y la vida. Cómo in-

gresa y se transforma la energía en los seres vivos. Fotosíntesis, sus productos. Importancia para

los seres vivos. Cómo producen ATP las células: glucólisis y respiración, vías anaerobias. Para qué

sirve la energía producida en la respiración. Importancia y función de los catalizadores biológicos

en los procesos mencionados.

Unidad 10: Biología vegetal

Nociones generales sobre cohesión celular, especialización y cooperación celular. La autotrofía

como fenómeno distintivo de los vegetales. Niveles de organización de los vegetales. Protofitas.

Talofitas: plantas que colonizaron la Tierra. Cormofitas: plantas sin semillas, plantas con semillas.

El crecimiento de los vegetales. Una planta en funcionamiento.


Unidad 11: Biología Animal

La heterotrofía en los animales: ingestión, absorción. Niveles de organización de los animales. Los

unicelulares. Evolución a la pluricelularidad. Evolución a nivel tisular. Un paso más en la evolu-

ción: el nivel triblástico. El celoma: importancia, modos de formación (la presencia de órganos y

sistemas de órganos). La adquisición del endoesqueleto. Plan corporal de los animales.

Unidad 12: Reproducción

Reproducción sexual versus reproducción asexual. La conjugación: los inicios de la sexualidad. La

alternancia de fases nucleares. La sexualidad como propiedad adaptativa. Reproducción: el modelo

vegetal: la alternancia de generaciones, el modelo básico de la reproducción vegetal. El esporofito

dominante como la base para la evolución de las plantas terrestres. La adquisición de la semilla. La

última innovación en la reproducción de la planta: el desarrollo de las estructuras florales. Algunas

estrategias en vegetales: apomixis. Reproducción: el modelo animal: el esquema organizativo

como modelo de la reproducción sexual en animales superiores. Bases estructurales del fenómeno

reproductivo. Fecundidad. Estrategias reproductivas en los animales: unisexualidad, partenogéne-

sis, sexualidad ambiental, hormonal, estrategias k y r.

Unidad 13: Diversidad de la vida

Clasificación de los organismos. Conceptos de especie: tipológico, biológico y ecológico. Taxo-

nomía y sistemática. Algunos métodos taxonómicos. Las categorías taxonómicas. Nomenclatura

binomial. Los cinco reinos: Moneras, Protistas, Hongos, Plantas y Animales. Principales grupos

(características y evolución).

Unidad 14: Ecología

Esencia de la Ecología. Poblaciones: estrategias de dispersión y crecimiento. Comunidades y eco-

sistemas: funciones de la comunidad. Interacción entre comunidades: competencia, depredación,

simbiosis. Flujo de la energía en el ecosistema.

Unidad 15: Evolución

Concepto de evolución y variación. Antecedentes históricos de la evolución: teorías. Catastro-

fismo, Lamarckismo. Las evidencias de la evolución (homología, biogeografía, registro fósil). La

teoría de Darwin – Wallace. Microevolución. Base genética de la evolución. Selección natural.

Macroevolución: tendencias evolutivas, radiación adaptativa. Base genética de la evolución. Selec-

ción natural. Modos de especiación. Coevolución. Evolución del comportamiento social.


BIBLIOGRAFÍA

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ALEGRÍA y OTROS; Química II; Editorial Santillana; 1999

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BUNGE MARIO; La ciencia su Método y su Filosofía; Ed. Sudamericana; 2001. (Apuntes de

cátedra)

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MAYR ERNEST; Así es la Biología; Ed. Debate pensamiento (Apuntes de cátedra)

MERCÉ DE BARBARÁ; Introducción a la Biología; Ed. Omega 1989

MINISTERIO DE EDUCACIÓN; Pensamiento Científico II; Epistemología aplicada a las Ciencias

Naturales y a la matemática; Red federal de formación docente continua (apuntes de cátedra).

NEEDHAM y NEEDHAM; Guía para el estudio de los seres vivos de las aguas dulces; Editorial

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PARKER y MERTENS; Biomoléculas, Base de la vida; Editorial Limusa; 1975.

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WEISZ Y KEOGH; La Ciencia de la Biología; Ed. Omega 1990

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VALLA, J.; Botánica, Morfología de las plantas superiores; Editorial Hemisferio Sur S.A.; 1983.

VILLÉ CLAUDE; Biología; Ed. Mc Graw Hill; 8va. Edición 2001

VILLÉ, SALOMÓN, MARTIN Y BERG; Biología; Ed. Interamericana

MINISTERIO DE EDUCACIÓN; Pensamiento Científico II; Epistemología aplicada a las Ciencias

Naturales y a la matemática; Red federal de formación docente continua (apuntes de cátedra).


CONDICIONES DE LA CÁTEDRA PARA EL TRABAJO EN

LABORATORIO

Los alumnos deberán concurrir de guardapolvo blanco. (obligatorio)

Cada alumno deberá concurrir al laboratorio con su caja de elementos que tendrá como

mínimo el siguiente instrumental:

- Tijera

- Paño de gasa y /o gamuza

- Bisturí, u hoja de afeitar

- Una caja de cubre objetos

- Algunos portaobjetos

- Aguja histológica

- Pinza de punta fina no muy grande

- Gotero

Hojas blancas tipo A4

Marcadores por lo menos dos colores (indeleble , para vidrio )

Etiquetas

Lápiz negro para dibujo, goma de borrar

Un pincel de punta fina

Gasa

Alcohol

Detergente

Repasador

Esponja

Cepillo para tubos de ensayo

Criterios de evaluación de los trabajos prácticos:

1. Carpeta de trabajos prácticos:

a) Cumplimiento en fecha al entregar la carpeta (se entregará el informe de cada actividad el día

de haberse realizado el práctico)

b) Pertinencia y adecuación conceptual a las consignas.

c) Nivel de comprensión evidenciado

d) Capacidad de observación, descripción y análisis de los trabajos realizados en el laboratorio.

e) Uso adecuado de vocabulario técnico

f) Calidad y precisión de esquemas y gráficos

g) Redacción y ortografía

2. Elementos de trabajo: Cumplimentar con los materiales solicitados por la cátedra y requisitos

de laboratorio.

.


NORMAS DE PRESENTACIÓN DE INFORMES DE TRABAJOS PRÁCTICOS

Teniendo en cuenta que al comenzar una carrera universitaria también nos iniciamos en la

formación para la actividad científica, es importante que desde el principio usemos algunas

“formalidades” de la ciencia.

Al hablar de formalidades no nos referimos a un formalismo vacío de contenido, sino a normas

con una estructuración lógica, que sirven para unificar criterios y poder entendernos mejor en el

ámbito del quehacer científico.

Respetaremos entonces, para la presentación de los INFORMES DE LAS

ACTIVIDADES EXPERIMENTALES que se realicen a lo largo del año, una secuencia

lógica, que es la que se usa para la comunicación de los trabajos científicos en general.

Los informes, de acuerdo a esto, deberán estar redactados de la siguiente manera:

Titulo y subtítulo (si lo hubiera)

Introducción y objetivos

Materiales y métodos

Resultados

Discusión y conclusiones

Bibliografía

Se buscará que el informe refleje, de forma clara y honesta, todas las actividades realizadas, las

dudas surgidas, las interpretaciones logradas, las especulaciones pertinentes, en fin: los éxitos y los

fracasos.

En la INTRODUCCIÓN se presenta el tema general y el fenómeno a estudiar, dentro de este

ítem se escribe un breve marco teórico, que es una síntesis de los principios o teorías científicas

que subyacen al práctico (como máximo dos carillas). A continuación se deberán enunciar las

palabras clave, buscando su origen etimológico (prefijos y sufijos) y la definición conceptual

de las mismas. Luego se realiza el planteo del problema y las hipótesis de trabajo, tomando

estas como las respuestas o suposiciones elaboradas que guiaran los posteriores pasos. Se pueden

realizar predicciones elaboradas a partir de las hipótesis planteadas.

En la sección de MATERIALES Y MÉTODOS se debe detallar tanto el material de

laboratorio, como el material biológico que utilizó. Se mencionan, además, los procedimientos

generales que se siguieron al realizar el trabajo.

En la sección de RESULTADOS, se debe presentar, en forma ordenada y precisa, los datos

obtenidos en la investigación, (experimentación) y el análisis que se hizo de ellos. Es importante,

para hacer más comprensibles los resultados, presentarlos en forma de cuadros, tablas, gráficos y

esquemas.

En la sección de DISCUSIÓN Y CONCLUSIONES, es donde se debe tratar de interpretar

los datos y dar alguna explicación de su ocurrencia, siempre teniendo presente el marco teórico

con el cual se trabajó. Esta sección debe tener las características de una síntesis, es decir que debe

relacionar las ideas desarrolladas y concluir si las hipótesis planteadas estaban acertadas o no.

En BIBLIOGRAFÍA se escriben los libros con los cuales se trabajó para construir el marco

teórico, y otras consultas realizadas durante la experimentación.


INSTRUCCIONES GENERALES PARA TRABAJAR EN EL LABORATORIO

Para el desarrollo de las prácticas de laboratorio es conveniente tener en cuenta algunas normas

elementales que deben ser observadas con toda escrupulosidad.

1. Los alumnos/alumnas deberán usar GUARDAPOLVO y estarán provistos de los elementos biológicos y materiales necesarios para el práctico.

2. Antes de realizar una práctica, deberán leerse detenidamente los protocolos de los prácticos, para

adquirir una idea clara de su objetivo, fundamento y técnica. Los resultados deben ser siempre anotados cuidadosamente apenas se conozcan.

3. El orden y la limpieza deben presidir todas las experiencias de laboratorio. En consecuencia, al

terminar cada práctica se procederá a limpiar cuidadosamente el material que se ha utilizado.

4. Cada grupo de prácticas se responsabilizará de su zona de trabajo y del material entregado, así

como también del deterioro y roturas que se produzcan.

5. Los alumnos/as deberán conservar su lugar de trabajo, hablar estrictamente lo necesario y en voz

baja.

6. La mesada de trabajo debe estar libre de mochilas, ropa u otros útiles. Estos elementos se

depositarán en un lugar previamente asignado por el profesor.

7. Está terminantemente prohibido comer y fumar en el laboratorio.

8. No se permitiría el acceso de personas ajenas al laboratorio.

9. Para ausentarse del laboratorio, los alumnos/as deberán contar con la autorización expresa del

profesor.

Del material a utilizar:

10. Antes de utilizar un compuesto hay que fijarse en la etiqueta para asegurarse de que es el que se

necesita y de los posibles riesgos de su manipulación.

11. No devolver nunca a los frascos de origen los sobrantes de los productos utilizados sin consultar con el profesor.

12. No tocar con las manos y menos con la boca los productos químicos.

13. Todo el material, especialmente los aparatos delicados, como lupas y microscopios, deben

manejarse con cuidado evitando los golpes o el forzar sus mecanismos.

14. Los productos inflamables (gases, alcohol, éter, etc.) deben mantenerse alejados de las llamas de los

mecheros. Si hay que calentar tubos de ensayo con estos productos, se hará al baño María, nunca

directamente a la llama. Si se manejan mecheros de gas se debe tener mucho cuidado de cerrar las llaves de paso al apagar la llama.


15. Cuando se manejan productos corrosivos (ácidos, álcalis, etc.) deberá hacerse con cuidado para

evitar que salpiquen el cuerpo o los vestidos. Nunca se verterán bruscamente en los tubos de ensayo, sino que se dejarán resbalar suavemente por su pared.

16. Cuando se quiera diluir un ácido, nunca se debe echar agua sobre ellos; siempre al contrario: ácido

sobre agua.

17. Cuando se vierta un producto líquido, el frasco que lo contiene se inclinará de forma que la etiqueta quede en la parte superior para evitar que si escurre líquido se deteriore dicha etiqueta y no se pueda

identificar el contenido del frasco.

18. No pipetear nunca con la boca. Se debe utilizar la bomba manual, una jeringuilla o artilugio que se disponga en el laboratorio.

19. Las pipetas se tomarán de forma que sea el dedo índice el que tape su extremo superior para regular

la caída de líquido.

20. Al enrasar un líquido con una determinada división de escala graduada debe evitarse el error de

paralaje levantando el recipiente graduado a la altura de los ojos para que la visual al enrase sea horizontal.

21. Cuando se calientan a la llama tubos de ensayo que contienen líquidos debe evitarse la ebullición

violenta por el peligro que existe de producir salpicaduras. El tubo de ensayo se acercará a la llama inclinado y procurando que ésta actúe sobre la mitad superior del contenido y, cuando se observe que se

inicia la ebullición rápida, se retirará, acercándolo nuevamente a los pocos segundos y retirándolo otra vez

al producirse una nueva ebullición, realizando así un calentamiento intermitente. En cualquier caso, se evitará dirigir la boca del tubo hacia la cara o hacia otra persona.

22. Cualquier material de vidrio no debe enfriarse bruscamente justo después de haberlos calentado con

el fin de evitar roturas.

23. Los cubreobjetos y portaobjetos deben tomarse por los bordes para evitar que se engrasen.

Limpieza y conservación del microscopio.

1. Para la limpieza de los oculares y el condensador se debe usar papel para lentes (obtenerlo en casas de

fotografías). En caso de que estas lentes se hubieran manchado con algún reactivo se usará un paño

humedecido con agua destilada y luego se secará totalmente. Para limpiar la platina se usará un trapo seco o poco mojado en agua destilada. En caso de que la mancha sea de aceite, hay que utilizar un poco de xilol.

2. Si se ha usado el objetivo de inmersión, se debe limpiar cuidadosamente el objetivo para retirar el aceite

que lo impregna. Para ello se debe usar un paño fino mojado en xilol o etanol. A continuación, teniendo la debida precaución, se debe secar el objetivo, ya que el exceso de xilol disuelve los pegamentos entre las

lentes y su montura.

3. Nunca se debe mover el cabezal del ocular, ni el microscopio de forma brusca durante su uso ni después

de haberlo usado pues, la bombilla caliente se funde con facilidad.


NORMAS DE SEGURIDAD PARA SALIDAS DE CAMPO La planificación de la materia contempla la realización de salidas a campo, que constituye Trabajos

prácticos, cuyos objetivos son adquirir nuevos conocimientos y destrezas, fortalecer y aplicar conceptos

impartidos en el aula. El destino de la salida será previamente fijado por los docentes, teniendo en cuenta criterios como: pertinencia del escenario, accesibilidad, seguridad y costos. Asimismo, el destino elegido

contribuirá a reforzar los objetivos del de la materia y contribuir con el proceso formativo de otras materias

que forman parte de la curricula de la carrera.

Reglas generales • La salida a campo, conjuntamente con los trabajos prácticos previo y posterior a esta, es un requisito de la materia, se evalúan y posee el mismo valor ponderal de un Trabajo Práctico de Laboratorio.

• Durante todo el periodo que dure la práctica, el estudiante estará en actividad universitaria, por cuanto se

encuentra fuera de su lugar de residencia por motivos académicos. • Se espera del alumno una participación activa, con disciplina y rigor académico en todo el ejercicio

práctico, así como en las actividades previas y posteriores a ella.

• Se deberán cuidar las instalaciones, vehículos, implementos y equipo que, siendo propiedad de la

Universidad o terceros, se asignen para fines del Trabajo Práctico, y se deberá depositar la basura y cualquier otro desecho en los lugares indicados para tal fin.

• Se procurará convivir en armonía con los otros participantes, y se deberá poner especial atención a las

instrucciones previstas o emitidas por los profesores y /o ayudantes, antes o durante la práctica. • En todo momento se deberá guardar el respeto, y mantener el orden y la disciplina.

• Se deberá cuidar el área que se visite para minimizar el posible impacto que se pudiera generar sobre el

entorno.

Normas sanitarias y de seguridad

• Entregar, antes de la salida, la ficha médica debidamente completada. • Ante cualquier eventualidad comunicarse con los docentes y/o ayudantes.

• Para quienes utilizan lentes de contacto es aconsejable el uso de los anteojos de reserva, considerando el

viento y la elevada cantidad de polvo y tierra en el campo.

• Evitar comer ni fumar ni llevarse las manos a la boca mientras se está trabajando en el campo. Si es

posible utilizar guantes.

• Lavarse bien las manos luego del trabajo de campo.

• Evitar comer hierbas o frutos silvestres si no los conoce, menos aún hongos.

• Para evitar picaduras de insectos utilizar repelentes, y durante marchas prolongadas vista pantalones largos

y zapatos gruesos. En caso de mordedura de animal, o de sufrir una herida de consideración, comunicar a los docentes y/o ayudantes y buscar ayuda médica de inmediato.

• Evitar introducir la mano en huecos y actuar con precaución cuando se levantan piedras o troncos. En

caso de mordeduras de víboras no realizar torniquetes ni succión y comunicarse de inmediato con los docentes y/o ayudantes.

• Evitar tocar a perros vagabundos, ni otros mamíferos que pudiera encontrar en el campo.

• Evitar beber agua de ríos o arroyos ni consumir vegetales (berro, menta, etc.) de los que crecen en el

campo, especialmente de las orillas de los cursos de agua.

• Se recomienda que al menos uno de los participantes del grupo lleve consigo un equipo de comunicación (teléfono celular).

• Evitar que queden rastro de su presencia en el sitio visitado, regla de oro del respeto que todo

excursionista debe tener incorporada; por ello, limpiar el lugar y no dejar ningún tipo de destrozo o desperdicio. Esta debe ser la última tarea antes de emprender el regreso.


Recomendaciones sobre la vestimenta

Calzado: es indispensable contar con calzado cómodo. Las más apropiadas son las botas tipo borceguíes, montañismo, escalar o similares, con suelas corrugadas e impermeables. En caso de no poseer este tipo de

calzado, puede utilizar zapatillas o zapatos con suela de goma que resulten cómodos, aunque no sean

impermeables. No es apropiado el uso de sandalias, puesto que los pies quedan más expuestos a sufrir accidentes (cortes, mordeduras, picaduras, etc.). Con el calzado se deben usar medias de algodón, que

permitan disipar la humedad y proteger de lesiones o mosquitos.

Ropa: debe ser adecuada a la época del año. Preferentemente pantalones largos de lona o tela gruesa, camisas de manga larga y camperas impermeables, resistentes a las posible roturas por espinas. La ropa de

lana (los buzos son preferibles a las prendas de lana) y los pantalones de algodón no son recomendables por

su baja resistencia a las espinas y por ser un sustrato apto para la adhesión de abrojos y otros propágulos de

plantas. Si desea ir conformando su vestuario de biólogo de campo, en las casas de artículos de pesca y camping puede encontrar pantalones con cierres que permiten acortarlos según las necesidades y que poseen

varios bolsillos que son muy útiles a la hora de transportar los elementos de trabajo. También son

apropiados para este fin los chalecos de lona con bolsillos múltiples.

Alimentos Se recomienda no llevar alimentos rápidamente perecederos como leches, yogures o mayonesas. Son apropiadas las barras de cereal, las galletitas, o sándwiches sin manteca o mayonesa. Como bebida, la más

indicada es el agua de procedencia segura.


LA METODOLOGÍA DE LAS CIENCIAS BIOLÓGICAS

Objetivo:

Reconocer las diferentes formas de investigación que se utilizan en la construcción del

conocimiento de las Ciencias Biológicas.

Actividad

Realice la lectura del texto de Campbell y Reece, subraye las ideas fuerza de dicha lectura.

1. Los autores manifiestan que existen varias formas de investigación para explorar la vida.

Mediante un ejemplo, recree estas formas de investigación.

2. Explique este enunciado: “los científicos diseñan experimentos controlados para estudiar

una variable única impidiendo que se modifiquen todos los demás factores”.

3. Compare “teoría” con “hipótesis”.

4. Lea la lectura sobre la investigación de Spallanzani sobre el vuelo de los murciélagos.

Responda a los siguientes ítems:

a) ¿Cuál era el problema que trataba de resolver aquel científico?

b) ¿Qué hipótesis formuló en primer lugar?

c) ¿Qué predicción formuló en relación con esa hipótesis?

d) ¿Qué ocurrió con esa primera hipótesis? ¿Fue confirmada o refutada? ¿Por qué?

e) ¿Cuál fue la segunda hipótesis?

f) ¿Cómo procedió para decidir si la hipótesis era aceptable o no?

g) ¿Cuál fue el resultado de esta última investigación?

h) ¿Qué ocurrió con las conclusiones de Spallanzani?

5. Investigue en libros de biología o enciclopedias, como los murciélagos se orientan en la

oscuridad.

a) Formule una hipótesis alternativa a las hipótesis de Spallanzani para resolver ese

problema.

b) Elabore una predicción en base a su hipótesis.

c) Diagrame el o los experimentos adecuados para confirmarla o refutarla. Incluya en

este diagrama, las variables dependientes, independientes y controladas.

6. Elija un hecho histórico de la biología y realice, para el hecho elegido, dos relatos

históricos. El primer relato debe poner en evidencia el método inductivo. El segundo relato

debe poner en evidencia el método hipotético-deductivo. (La extensión de cada relato se

recomienda entre 10 y 20 renglones.)


Lectura para la actividad

Spallanzani había observado que los murciélagos podían desplazarse en la oscuridad sin tropezar con ningún obstáculo. ¿Cómo hacen los murciélagos para orientarse en la oscuridad? Esa pregunta implicaba un problema y así inició una investigación. Spallanzani formuló la siguiente hipótesis respecto de ese problema: “la visión les permite orientarse en la oscuridad” es decir, supuso que los murciélagos tenían un órgano de la visión apto para ver en la oscuridad. Teniendo en cuenta la hipótesis formulada, el investigador elaboró la predicción: “Si a los murciélagos se les priva de la visión entonces ellos deben perder la capacidad de orientarse en la oscuridad” En esas condiciones esos mamíferos deben chocar contra obstáculos cuando vuelan en la oscuridad. Spallanzani cubrió los ojos de los murciélagos y luego los dejó volar; ellos se movieron perfectamente sin chocar con ningún obstáculo. Por consiguiente la hipótesis formulada no fue validada. El investigador entonces elaboró una nueva hipótesis: “Los murciélagos se orientan en la oscuridad mediante la intervención del órgano auditivo” Si esta nueva hipótesis es validada debía verificarse la siguiente predicción: “Si a los murciélagos se les priva la audición entonces no podrán orientarse en la oscuridad” Spallanzani recurrió entonces a la experimentación; obstruyó los conductos auditivos de algunos murciélagos y luego los dejó en libertad en medio de obstáculos; en esas condiciones los murciélagos no se orientaron bien y chocaron con los obstáculos. La hipótesis fue confirmada. Spallanzani entonces pudo afirmar que los murciélagos se orientan mientras vuelan recurriendo a la audición. El problema parecía resuelto; sin embargo, y teniendo en cuenta que el órgano de la audición sólo es sensible a los sonidos, surgieron preguntas interesantes: ¿Cómo intervienen los oídos del murciélago en la detección de obstáculos? ¿Los obstáculos emiten sonidos que los oídos del murciélago registran? Lamentablemente el investigador no pudo dar respuesta a estas preguntas e inclusive sus conclusiones fueron ridiculizadas. Spallanzani continuó con la investigación y cuando falleció en 1799 estaba plenamente convencido de que los murciélagos se orientaban en la oscuridad gracias al oído; sospechaba que esos mamíferos producían al volar sonidos que al reflejarse sobre los obstáculos y luego actuar sobre los oídos de aquel acusaban la presencia de los obstáculos y así se los podía evitar. Pero esta hipótesis tenía un pero: el vuelo del murciélago es totalmente silencioso.

Ante esa evidencia la hipótesis fue totalmente rechazada: el profesor Vucier, del Museo de Historia Natural de Paris, fue uno de los científicos que más influyeron para que las opiniones de Spallanzani no fueran tenidas en cuenta.


SALIDA A CAMPO

RECONOCIMIENTO DE MUNDO BIOLÓGICO

Objetivo general:

Obtener una visión integral sobre la naturaleza y reconocer la importancia de su cuidado.

Objetivos específicos:

Observar y describir la diversidad de los seres vivos en sus ambientes naturales.

Identificar las relaciones mutuas entre los seres vivos y los factores abióticos.

Valorar el trabajo y la integración grupal.

Lograr una actitud responsable y constructiva en relación a las actividades en las que

participa.

Metodología de trabajo:

Salida de campo. Cada grupo observará y describirá el mundo natural a través de los

sentidos. Establecerá relaciones entre la diversidad de los seres vivos y su ambiente.

Discusión en grupos.

Introducción:

Materiales:

Lupa de mano

Binocular o monocular

Tijeras de podar

Palita de jardinería

Frascos de plástico

Gasa

Pinza punta fina

Guantes de látex

Hojas de diarios

Brújula

Hojas cuadriculadas y blancas A4, lápiz negro


PARTE I

Procedimiento:

1. En el lugar seleccionado, recorran, observen con detenimiento captando la mayor cantidad de

detalles y luego describan el ambiente que les ha tocado trabajar, utilizando todos los sentidos.

Se recomienda:

a. Tratar de hacer silencio y escuchar todos los sonidos, identificar si provienen de

seres vivos (¿cuáles?) o de otra fuentes, su intensidad, su persistencia, el lugar de

donde proviene. Trabajar de igual manera con el olfato, el tacto, la vista.

b. Dibujen el ambiente seleccionado.

c. Marquen en el dibujo los factores abióticos y bióticos que encuentran en ese

ambiente.

2. Recoger varias muestras: especímenes animales y vegetales, hongos, muestras de suelo, etc.

3. Elegir cinco objetos de estudio. Esquematizar las observaciones y describir los objetos

estudiados.

Preguntas para el análisis:

1. ¿Qué caracteriza a los ambientes estudiados?

2. ¿En donde observaron mayor diversidad? ¿Por qué?

3. ¿Qué adaptaciones al medio tienen los organismos recolectados?

4. ¿Qué diferencias esperarían encontrar si este estudio se hiciera en otra época o lugar

diferente? (medio urbano, ambiente natural, etc.)

5. ¿Qué les llamó más la atención del ambiente en el que trabajaron?

PARTE II: Cierre

Cada grupo preparará una exposición de no más de 10 minutos en la que comentará al resto de sus

compañeros las actividades desarrolladas.

Las actividades realizadas se entregarán al finalizar la clase.

PARTE III: actividad para la instancia no presencial Tipo de trabajo: individual

1. Teniendo presente la salida de campo, recuerde algún aspecto de la naturaleza que le llamó la atención durante las observaciones realizadas en esa actividad.

2. Plantee una pregunta relacionada con sus observaciones.

3. Indague en distintas fuentes bibliográficas acerca de lo que otros han estudiado y descubierto respecto al tema. Realice una breve síntesis, a modo de antecedentes, acerca del problema

planteado.

4. Proponga hipótesis, que den respuesta a su pregunta y que pueda probarse.


5. Usando las hipótesis como guía, realice una predicción: una propuesta sobre alguna condición que

debe existir si la hipótesis no está equivocada. Realizar predicciones es el llamado proceso del “si…entonces”; “si” es la hipótesis y “entonces” es la predicción.

6. Diseñe formas para poder probar la exactitud de la predicción, realizando experimentos,

observaciones u obteniendo información. Los experimentos pueden realizarse sobre un modelo, o

sistema análogo, cuando es imposible experimentar directamente con un objeto o evento. 7. Si es posible, evalúe los resultados de las pruebas. Los resultados que confirman la predicción

constituyen evidencia –datos- en apoyo de la hipótesis. Los resultados que refutan la predicción,

constituyen evidencias de que la hipótesis quizá tenga fallas.

8. Informe todos los pasos de su trabajo, junto con las conclusiones a las que llegó.


INTRODUCCIÓN A LA MICROSCOPIA

OBJETIVO GENERAL:

Analizar los instrumentos y técnicas auxiliares para el estudio de las células.

OBJETIVOS ESPECÍFICOS:

Identificar las distintas partes de un microscopio óptico compuesto.

Distinguir al microscopio óptico compuesto del microscopio estereoscópico.

Preparar y observar preparados vitales sencillos con el microscopio óptico.

PRIMERA PARTE: Lectura previa

EL MICROSCÓPIO ÓPTICO COMPUESTO

Se denomina microscopio (de “micro” = pequeño y “skopein” = mirar) al instrumento óptico

que amplía el tamaño de las estructuras que por su pequeñez no son visibles directamente.

A simple vista, y con cierto esfuerzo, se pueden apreciar objetos cuyo tamaño es, por lo menos,

de un décimo de milímetro; cuando se trata de objetos más grandes, se recurre al auxilio de

instrumentos ópticos.

Partículas menores de 0.1 mm no son visibles por el ojo humano en condiciones normales de

iluminación y distancia. Como muchos otros organismos vivos y la mayoría de las células tienen

diámetros menores a 0.1 mm y se encuentran a distancias inferiores al límite de resolución del ojo

humano, en biología se hace indispensable el uso de instrumentos que aumentado el ángulo visual

y el poder de resolución hagan posible la observación e individualización de los objetos.

Cuando se desea estudiar el detalle de las estructuras de los organismos se emplea el

microscopio compuesto de luz transmitida, que permite distinguir partículas cuyo tamaño oscila

entre diez milésimas de milímetro y 1 mm. En microscopia óptica se utiliza como unidad de

medida el micrómetro (µm), también llamado micra o micrón (µ), que corresponde a la milésima

parte del milímetro; por lo tanto, el tamaño microscópico de los objetos oscilará entre 0.15 y 1.000

micrómetros.

El microscopio óptico compuesto se caracteriza por poseer dos sistemas de lentes. El sistema

que se halla próximo al objeto se denomina objetivo, y el que se encuentra próximo al ojo del

observador se denomina ocular.

El microscopio óptico está formado por tres partes principales; la parte mecánica, el sistema óptico y el sistema de iluminación, las que a su vez están compuestas por otras estructuras a

saber:

PARTE MECANICA

Estativo del microscopio: constituye la estructura de soporte del microscopio. Su altura es de

aprox. 40 cm.

Pié: generalmente tiene forma de herradura o rectángulo y se lo fabrica lo más pesado posible.

Cualquiera sea su forma, debe asegurar la estabilidad del microscopio en los diferentes grados de

inclinación que tenga la columna.

Columna: es un vástago vertical que parte del pié. Lleva el mecanismo de enfoque. Es fijo y se

articula en la parte superior con el brazo.


Brazo: se une a la columna mediante una articulación llamada chamela. Suele estar inclinado

para facilitar el traslado.

Tubo: su función es soportar el ocular en el extremo superior y los objetivos en el inferior. Está

formado por un cilindro metálico de longitud única (160 mm.). Los oculares se colocan en el tubo

por simple deslizamiento, pero los objetivos (3,4 o más) están situados en una pieza metálica –el

“revolver”- ubicada en la parte inferior.

Platina: es una superficie plana, redonda o cuadrada, que lleva en su centro un orificio

destinado a permitir el paso de la luz proveniente del aparato de iluminación, situado por debajo.

Está ubicada perpendicularmente al eje óptico del microscopio y su función es sujetar el objeto a

observar. Generalmente es móvil y está gobernada por dos tornillos. Adosadas a la platina se

encuentran unas pequeñas pinzas o brazos con resortes que sujetan el portaobjetos. El preparado

puede desplazarse en sentido antero-posterior o sagital y lateral o frontal.

Subplatina: está formada por el conjunto de piezas situadas debajo de la platina, cuya función

es soportar el aparato de iluminación.

Tornillos de enfoque: está formado por dos tornillos, uno de enfoque grueso o Tornillo

Macrométrico y otro de enfoque fino o Tornillo Micrométrico. Se accionan mediante mandos

coaxiales ubicados a ambos lados de la columna. Su función es subir y bajar la platina para ubicar

el objeto en el plano de enfoque.

SISTEMA DE ILUMUNACION

Fuente de iluminación: se pueden usar lámparas eléctricas, pero la en mayoría de los

microscopios la fuente esta empotrada en el pié.

Espejos y prismas: cualquiera sea la fuente luminosa empleada, los rayos que parten de ella

deben dirigirse hacia el objeto siguiendo el eje óptico. En los microscopios con fuente incorporada

esta función la cumple un prisma. Cuando la fuente es externa, existe debajo de la platina un

espejo dotado de movimientos múltiples y con una cara plana y otra cóncava que cumple la

función de orientar los rayos.

Condensador: es un sistema de lentes convergentes cuya función es tomar los rayos

procedentes de la fuente y concentrarlos para lograr un haz compacto de luz dirigido sobre el

objeto.

Diafragma iris: se ubica en la subplatina. Tiene por finalidad regular la cantidad de luz que

recibe el objeto y fundamentalmente eliminar el paso de los rayos periféricos.

Filtros: son discos de cristal o vidrio de caras planas y paralelas que se interponen en la

trayectoria de los rayos antes del condensador. La función general es absorber una parte de las

radiaciones luminosas que llegan al objeto, permitiendo usar franjas estrechas de luz de una

longitud de onda seleccionada. Además de eso, usando filtros de colores complementarios, es

posible aumentar el contraste entre estructuras de otra forma poco diferenciables.

SISTEMA ÓPTICO

Está formado por un sistema de lentes centrado en un eje óptico: oculares y objetivos. Ambos

son dispositivos cuyos componentes funcionales son lentes convergentes, a través de las cuales se

refractan los rayos para formar la imagen. El objetivo es el sistema de lentes que se encuentra

cercano al objeto y el ocular es la lente por la cual el observador mira.


CUIDADOS ELEMENTALES QUE REQUIERE EL USO DEL MICROSCOPIO

1. Al trasladar el microscopio de un lugar a otro, tómalo con una mano por el brazo, y con

la otra sostén el pie.

2. No lo toques nunca con los dedos húmedos y mantén el lugar de trabajo lo más limpio

posible

3. No trabajes con el microscopio cerca de lugares donde haya sustancias volátiles, los

vapores de los ácidos son perjudiciales.

4. Seca cuidadosamente el exceso de líquido de un preparado antes de colocarlo sobre la

platina. Ésta y las lentes deben permanecer siempre secas

5. Nunca uses los objetivos de mayor aumento sin tener el objeto recubierto por el

cubreobjetos

6. Nunca enfoques un preparado sin antes estar seguro de que la distancia que lo separa de

la lente frontal del objetivo se la suficiente, para evitar ralladuras o choques

7. Al guardar el microscopio controla que en la caja correspondiente estén todas las

piezas, protéjalo del polvo y la humedad.

EL USO DEL MICROSCOPIO

Para la observación microscópica necesitaras seguir cuidadosamente el siguiente

procedimiento:

Iluminación del campo microscópico

1. Coloca una fuente luminosa frente al microscopio, o bien enciende la fuente que esta

empotrada en el pié, si lo tuviere.

2. Abre el diafragma totalmente y levanta al máximo el condensador

3. Utiliza el objetivo de menor aumento. Para ello gira el revólver hasta que dicho objetivo

quede en línea recta con el eje del tubo.

4. Con el tornillo macrométrico asciende la platina hasta que esta quede a alrededor de 1

cm de la lente frontal.

5. Observa por el ocular y regula la fuente de luz (en el tornillo regulador que se encuentra

en el pie) hasta ver iluminado el campo con la mayor intensidad y uniformidad posible,

controla el condensador y el diafragma.

6. Cuando necesites cambiar de objetivo, tendrás que volver a repetir lo expuesto en 5,

teniendo siempre la precaución de bajar la platina con el macrométrico antes de hacer

girar el revólver, si las distancias focales de los diferentes objetivos no están

coordinadas, para evitar daños en la lente frontal o en el preparado. La mayoría de

microscopios poseen las distancias focales de los diferentes objetivos coordinadas.

Enfoque del preparado

1. Coloca el preparado sobre la platina con el cubreobjetos hacia arriba, tratando que el

objeto a observar quede en el centro del orificio de la misma. Logrado esto sujeta el

portaobjetos con las pinzas.

2. Asciende la platina con la ayuda del tornillo macrométrico hasta que el preparado

quede cerca de la lente frontal

3. Observa por el ocular y sube aun más la platina hasta que aparezca más o menos clara

la imagen del preparado. En ese momento ajusta el enfoque mediante el micrométrico

hasta que la imagen sea lo más nítida posible. Si la platina es móvil (que lo es en la


mayoría de los casos), usa sus tornillos para recorrer el preparado y en caso contrario lo

moverás con las manos, no olvidando que el microscopio da una imagen invertida.

Debes acostumbrarte o observar manteniendo los dos ojos abiertos.

Determinación del aumento

Existen varios procedimientos para poder saber cuál es el aumento logrado por una

combinación de ocular y objetivo. Solo indicaremos una:

Si en el objetivo viene indicado su aumento propio (grabado en la montura del mismo), no

tendrás más que multiplicarlo por el aumento del ocular para obtener el aumento total.

Por ejemplo: objetivo 45 x y ocular 5x = 225x

Una vez completados todos los pasos anteriores, al proceder a la observación del

preparado, pueden surgir algunos de los inconvenientes que se citan a continuación junto con

las correspondientes indicaciones para solucionarlos.

El campo aparece totalmente oscuro: controla la posición del espejo, el encendido de la

luz y la abertura del diafragma. Eleva el condensador.

El campo aparece parcialmente oscuro: controla la posición del objetivo, puede estar

fuera del eje óptico. Mueve el revólver hasta sentir que el reten ajusta la posición correcta.

El campo aparece excesivamente iluminado y molesta la visión: cierra el diafragma. Si

hubiera tornillo regulador de la fuente luminosa, contrólalo.

Al cambiar a un objetivo de mayor aumento la imagen no aparece en el campo: no has

centrado correctamente el material del preparado antes de hacer en cambio

EL MICROSCOPIO ÓPTICO ESTEREOSCÓPICO (LUPA BINOCULAR)

La lupa binocular, Es un instrumento para la observación tridimensional de pequeños cuerpos. La

lupa no requiere que la luz atraviese la muestra, por lo que se pueden observar objetos opacos, a

diferencia de lo que ocurre con el microscopio óptico compuesto. En una lupa binocular se

distinguen dos partes diferentes: óptica y mecánica.

A) Parte óptica: compuesta por dos sistemas ópticos que deben converger sobre la muestra, para

que cada ojo reciba una imagen y se logre la visión estereoscópica del objeto. Cada grupo óptico

está constituido por un ocular, un objetivo y un cuerpo inversor.

- Oculares. (1) Son dos grupos de lentes que proporcionan aumentos, están montadas sobre sendos

tubos que pueden desplazarse para ajustar su posición a la distancia interpupilar del observador y

conseguir una buena visión estereoscópica.

- Objetivos. (2) Sistemas de lentes que proporcionan aumentos.

- Cuerpos inversores. (3) Son dos grupos de lentes que no proporcionan aumentos, pero invierten

la imagen para que el observador pueda percibirla en su posición correcta (en caso contrario sería

una imagen invertida).

El número de aumentos que proporciona el sistema objetivo-ocular de la lupa suele ser de 20x,

aunque existen otros.

B) Parte mecánica: sirve de soporte a la parte óptica y permite la manipulación del instrumento.


- Estativo o columna. (4) Cilindro metálico que permite el desplazamiento en altura del cuerpo de

la lupa y el giro completo sobre el eje de la columna.

- Brazo o soporte. (5) Pieza encajada en la columna, que desliza sobre la misma y soporta los

grupos ópticos.

- Mando de bloqueo (6). Tornillo que permite desplazar o bloquear el brazo a derecha e izquierda,

incluso para observaciones fuera de la platina.

- Anillo de sujeción (7). Permite colocar la lupa a la altura óptima sobre la columna.

- Mando de enfoque (8). Permite el enfoque sobre diferentes zonas de la muestra al mover los

grupos ópticos mediante un sistema de arrastre por cremallera y cola de milano.

- Platina (9). Placa de vidrio esmerilado sobre la que se coloca la muestra. Puede sustituirse por

otras de diferentes colores para mejorar la observación por contraste.

Sobre ella se disponen dos pinzas (10) para la sujeción de las muestras.

- Base (11). Pieza robusta y pesada sobre la que se inserta la columna y que da soporte al

instrumento.

Manejo de la lupa binocular

La lupa binocular es un instrumento de precisión que no debe ser sometido a golpes ni fuertes

vibraciones y que se manejará sin forzar ningún mecanismo. Para lograr una buena observación

debes seguir estas instrucciones en el mismo orden que figuran:

- Coloca una mano bajo el cuerpo de la lupa (grupos ópticos) para sujetarlo y, con la otra mano,

suelta el mando de bloqueo para que el soporte pueda deslizar sobre la columna.

- Mueve el cuerpo de la lupa sobre la columna hasta que esté situado 5 o 6 cm encima de la platina

y aprieta de nuevo el mando de bloqueo.

- Suelta el anillo de fijación y bloquéalo justo debajo del brazo. A partir de este momento puedes

aflojar el mando de bloqueo para “barrer” a derecha e izquierda de la muestra.

- Coloca la muestra sobre la platina y, si fuera necesario, sujétala con las pinzas.

- Mirando por los oculares, mueve el mando de enfoque hasta obtener buena imagen. Es

aconsejable realizar el enfoque sólo con el ojo derecho y después corregir la diferencia de visión

con el anillo corrector, que se encuentra rodeando el ocular izquierdo.

- La iluminación de la muestra puede ser natural, mediante la luz de una ventana, o artificial,

recurriendo a una lámpara auxiliar situada lateralmente. Algunos modelos incorporan dos

pequeñas bombillas que permiten una iluminación desde arriba o desde debajo de la platina.


PRIMERA PARTE

1| Elabore un cuadro sinóptico de las partes que forman parte del microscopio óptico compuesto y

de la lupa binocular.

2| Identifique las distintas partes del microscopio óptico compuesto y del microscopio óptico

estereoscópico (lupa) y señale en los esquemas las referencias correspondientes.


SEGUNDA PARTE: OBSERVACIÓN AL MICROSCOPIO ÓPTICO COMPUESTO

Observación de hojas de elodea

Materiales:

Hojas de Elodea

Porta y cubreobjetos

Pinza y gotero

Servilleta de papel

Procedimiento:

1| En primer lugar, debe lograrse la iluminación del campo

microscópico. Para ello, ubique el microscopio en la

proximidad de una fuente de luz, o utilice una lámpara.

Seleccione el objetivo de menor aumento.

2| Tome un portaobjetos, límpielo con una servilleta de

papel, y coloque sobre él una hoja de elodea. Agregue una

gota de agua con el gotero y tape con un cubreobjetos como

muestra la figura.

3| Levante el tubo del microscopio y coloque el preparado

sobre la platina. Baje el tubo al máximo, tratando de no romper el cubreobjetos. Levante el tubo

lentamente hasta que aparezca una imagen nítida. Corrija la iluminación con el espejo, si es

necesario.

4| Dibuje lo que observa en el círculo que representa el campo microscópico y complete la

información anexa al mismo.

M (muestra): …………………………………………

O (Observación): ……………………………………..

T (tinción): ……………………………………………

A (aumento):…………………………………………

D (descripción):……………………………………….

…………………………………………………………

…………………………………………………………

…………………………………………………………

………………………………………………………………………………………………………

………………………………………………………………………………………………………

NOTA: Señale las referencias en el esquema. Las ilustraciones se deben hacer en lápiz negro.


Observación de catáfilas de cebolla

Materiales:

Catáfila de cebolla

Colorante (verde metilo)

Bisturí

Pinza y aguja histológica


Servilleta de papel

Procedimiento:

1| Tome una de las hojas carnosas de la parte interna de

una cebolla. Practique un corte en forma de V con el

bisturí. Tire del vértice de la V de la epidermis con la

pinza y extienda la pequeña porción de tejido transparente

obtenido sobre un portaobjetos.

2| Cubra el material con verde metilo acético antes de que

se seque. Si el colorante se evapora, debe reponerlo

inmediatamente. El ácido acético de esta solución es la

sustancia que mata a la célula, fijándola en el estado en el

que se encuentra al hacer la preparación. El colorante debe

actuar, por lo menos, durante cinco minutos.

3| Con un gotero, bañe la epidermis con agua abundante hasta que no suelte más colorante.

Coloque el cubreobjetos y coloque sobre la platina del microscopio.

3| Observe el preparado obtenido siguiendo el procedimiento realizado con el preparado anterior.

4| Dibuje lo que observa en el interior del círculo que representa el campo microscópico.

M: …………………………………………………….

O: ………………………………………………………

T: ………………………………………………………

A: ………………………………………………………

D: ………………………………………………………

…………………………………………………………

…………………………………………………………

NOTA: Se realizarán los esquemas de al menos dos observaciones de la misma muestra, con

diferentes aumentos.


Observación de un insecto pequeño

Materiales:

Lupa binocular

Seres vivos pequeños: insectos.

Portaobjetos

Pinzas

Aguja de disección

Procedimiento:

1| Tome el objeto a observar, y colóquelo sobre un portaobjetos. Lleve el preparado y colóquelo

sobre la platina de la lupa binocular.

2| Observe en detalle el insecto o sus partes. Enfoque primero con el menor aumento y luego con

el mayor aumento.

3| Realice el esquema correspondiente de lo observado. Coloque las referencias pertinentes.

M: …………………………………………….

O: ……………………………………………..

T: ……………………………………………..

A:…………………………………………….

D:…………………………………………….

………………………………………………..

………………………………………………..

………………………………………………..

Conclusiones:

1. Señale las diferencias y semejanzas entre un microscopio óptico compuesto y un

microscopio estereoscópico. Para esta comparación tenga presente la estructura y la

función de estos instrumentos.

2. Una vez completadas las actividades anteriores, analice todas las observaciones

realizadas y escriba sus conclusiones con relación a las técnicas empleadas.


COMO PREPARAR Y ESTUDIAR UN COACERVADO

Objetivos:

Observar y describir un coacervado.

Manipular los materiales de laboratorio para obtener un coacervado.

Discutir críticamente la naturaleza de los elementos empleados.

Debatir las diferentes teorías sobre el origen de la vida.


Trabajo individual y grupal

Elaboración de hipótesis y predicciones

Control de variables

Preparación y observación de material a través del microscopio

Comparación y análisis de resultados

Introducción:

En la hipótesis del origen de la vida juegan un papel importante los coacervados. Estos son

microsistemas poli macromoleculares que están limitados por una especie de membrana a través de

la cual intercambian materia con el exterior, presentan cierta organización interior de “gotas dentro

de gotas”, “crecen” por adición de materia del medio ambiente, se realizan numerosas reacciones

químicas en su interior que no se llevan a cabo fuera de él y llegan a dividirse en dos o más partes

cuando llegan a determinada masa crítica.

Actividad de indagación y preparación para la acción

1. Elabore un esquema conceptual o mapa conceptual de los fundamentos teóricos del

práctico.

2. Indague las características de los reactivos a utilizar en el práctico.

3. Señale las hipótesis de trabajo y las predicciones.

4. Indique cuales son las variables dependientes, independientes y controladas de la

experiencia a realizar.

Materiales y métodos:

Materiales:

Solución acuosa de gelatina sin sabor al

0.67 %

Solución acuosa de goma arábiga al

0.67%

Acido clorhídrico 0.1 M

Solución diluida de los colorantes Rojo

Congo y Violeta de genciana

Pipetas de 5 y 10 ml

Pipetas Pasteur

Goteros con bulbo o pipetas Pasteur

Frascos o matraces erlenmeyer


Papel indicador de pH.


Procedimiento:

1. En un erlenmeyer mezclar 5 ml de la solución de gelatina con 3 ml de la solución de goma

arábiga.

2. Colocar una gota de la mezcla sobre un portaobjetos y observar al microscopio con pequeño

aumento.

3. Agregar cuidadosamente el ácido con una pipeta Pasteur. La adición del acido debe hacerse de

a pequeñísimas gotas, muy lentamente. Después de agregar cada gota, mezclar bien y esperar

algunos segundos para ver si la mezcla se enturbia. Si el líquido permanece límpido y transparente,

agregar otra gota y continuar así hasta que se enturbie.

4. Cuando se observa que el material esta turbio, colocar una gota del mismo sobre un

portaobjetos. De forma optativa, agregar una gota de colorante y colocar el cubreobjetos.

5. Observar cuidadosamente al microscopio óptico. Si no se observan estructuras similares a las

descriptas, ajustar la luz y probar con mayor aumento.

6. Si aún no se observan coacervados, repetir el procedimiento desde el comienzo, porque quizás

se agregó el ácido muy rápidamente.

7. Esquematizar lo observado, referenciando cada una de las estructuras observadas.

8. Describir las observaciones realizadas.


1. ¿Cómo describiría la organización interna de los coacervados que preparó? Relacione esta

estructura con el rol asignado a los mismos en la etapa precelular del origen de la vida sobre la

tierra.

2. ¿De qué naturaleza son los materiales empleados (soluciones de gelatina y goma arábiga)?

¿Podrían haber estado presentes en el océano primitivo?

3. ¿Quién describió por vez primera a los coacervados? ¿Cómo se llama la teoría que los

menciona y cuáles son los postulados de la misma?

4. En base a la discusión anterior, ¿Cree Ud. que es fácil establecer un límite entre lo vivo y lo

no vivo? ¿Por qué?

5. Elaborar un glosario de al menos 10 palabras clave referidas a la temática trabajada. Buscar

el origen etimológico y su definición.


COMPOSICIÓN QUÍMICA DE LA MATERIA VIVA

OBJETIVO:

Reconocer la presencia de algunos componentes químicos en materiales de origen

biológico.


Método experimental. Plantear hipótesis, realizar experimentación y conclusión de

acuerdo a lo que conoce sobre las sustancias en estudio.


1. Elabore un mapa o esquema conceptual de los fundamentos teóricos del práctico.

2. Indague sobre las características de los reactivos que se utilizarán en el práctico.


4. Indique cuales son las variables dependientes, independientes y controladas de las

experiencias a realizar.

ACTIVIDAD I

Objetivo:

Reconocer la presencia de almidón en alimentos comunes.


Materiales:

Cuatro tubos de ensayo

Una gradilla para los tubos

Una varilla de vidrio

Dos goteros comunes

Tintura de yodo o Lugol

Reactivo de Fehling A y B

Pinzas para sujetar los tubos

Mechero

Alimentos que contengan almidón (papa)

Microscopio

Papel de tornasol

Agua destilada



Procedimiento:

1. Con un bisturí realice un corte muy delgado de una porción de papa que contenga la cáscara.

Coloque en un portaobjetos y agregue unas gotas de lugol, lave con agua y monte con una gota de

agua y un cubreobjetos. Observe al microscopio.

2. Raspe con bisturí la pulpa del tubérculo y coloque el material sobre un portaobjeto, monte con

una gota de agua y observe al microscopio. Realice una tinción con lugol por capilaridad y

observe.

Observe y responda:

a. ¿Qué función tiene el tubérculo de papa?

b. ¿Qué tipo de sustancia almacena?

c. ¿Qué parte del tubérculo da reacción positiva con el lugol? ¿Cuál es la causa?

d. ¿Qué estructuras se observan al microscopio? ¿Cómo se presentan estas estructuras?

Esquematice.

3. Coloque en un tubo de ensayo una porción de fino raspado del tubérculo que ocupe

aproximadamente 1 cm. de altura del tubo, diluya con 8 ml de agua destilada y divida en dos

tubos.

a). Lea atentamente el desarrollo experimental propuesto y diseñe una planilla donde registrar

convenientemente los datos.

b). Añada al primer tubo 1 ml de Fehling. Mezcle y coloque a baño María durante 3 minutos.

Observe el color y registre.

c). Agregue al segundo tubo dos o tres gotas de lugol. Observe y registre.

Observe y responda:

a. ¿Qué ocurre con las primeras gotas de licor de Fehling?

b. ¿Qué cambios se producen cuando se coloca el primer tubo a baño María? ¿Cuál es la

causa de este cambio?

c. ¿Qué ocurre cuando se agrega lugol en la solución del tubo dos? ¿Cuál es la causa de este

cambio?

d. ¿Cuál es el control de este experimento? Justifique.


ACTIVIDAD II

Objetivo:

Realizar ensayos cualitativos para determinar proteínas.


Materiales:

Pipeta

Ocho tubos de ensayo

Una gradilla para los tubos

Una varilla de vidrio

Pinzas para sujetar los tubos

Mechero

Trípode

Vaso de precipitado 50 ml

Embudo

Papel de filtro

Solución de clara de huevo

Reactivo de Biuret

NaHO (hidróxido de sodio) 0.1 M

CuSO4 (sulfato de cobre) al 1%

Solución de lugol

Procedimiento:

A) Preparación de la solución

1. Vierta en un vaso de precipitados 5 ml de clara de huevo y 20 ml de agua. Agite bien.

2. Filtre la suspensión con cuidado y varias veces hasta obtener una solución límpida.

B) Experiencia de identificación

1. Vierta en un tubo de ensayo 2 ml de solución de clara de huevo.

2. Vierta en otro tubo de ensayo 2 ml de solución de clara de huevo y agregue 10 gotas de

reactivo de Biuret. Anote sus observaciones.

3. En otro tubo vierta 2 ml de solución de clara de huevo. Agrega 2 gotas de solución de Lugol.

Anote sus observaciones.

VARIANTE: Vierta en un tubo de ensayo 2 ml de solución de clara de huevo y agregue 2 ml de

NaOH. Agite la mezcla y luego agregue 4 o 5 gotas de solución de CuSO4. Anote sus

observaciones.

Observe y responda

a. Cuando se usaron reactivos especiales como Biuret o el CuSO4 ¿qué cambios de color se

verificaron en las reacciones?

b. ¿Podría considerar estos resultados como una reacción típica de las proteínas?

ACTIVIDAD III

Objetivo:

Realizar ensayos cualitativos para determinar lípidos.


Materiales:

3 trozos de papel blanco

Aceite comestible

Grasa de origen animal

Agua

Pinzas de disección

Agua


Procedimiento:

A) Preparación para lípidos sólidos

1. Tome un trozo de grasa de origen animal, frótela contra un papel blanco. Dejar reposar 5

minutos. Anote sus observaciones.

B) Preparación para lípidos líquidos

1. Tome un papel blanco y vierta sobre este algunas gotas de aceite. Dejar reposar 5 minutos.

Anote sus observaciones.

Observe y responda

¿Qué efectos tienen los lípidos sobre el papel que lo deja translúcido?

Conclusiones:

a. Escriba las conclusiones a las que llegó luego de la realización de este práctico.

b. Elabore un glosario de al menos 10 palabras clave indicando su origen etimológico y

definición.


REACTIVOS QUIMICOS

Lugol

El lugol es una solución saturada de Ioduro Potásico que da una coloración específica con el

almidón. Este es un polisacárido formado de la mezcla de dos fracciones principales: amilasa y

amilopectina. Ambas están compuestas por glucosa, pero la primera es una molécula lineal,

mientras que la segunda tiene estructura ramificada. Con la amilasa la reacción da un color azul,

mientras que con la amilopectina se produce un tono rojizo o púrpura. Con el almidón entero

(amilasa + amilopectina) la coloración es azul violeta.

Fehling

El reactivo Fehling está formado por dos soluciones:

A) solución de sulfato de cobre (SO4Cu) y

B) solución de Hidróxido de Potasio (KOH) y Retrato Sódico. Al mezclar estas dos soluciones se forma Hidróxido Cúprico (CuOH2) de color azul intenso e

insoluble, el que no precipita por formar un ión complejo con la sal orgánica.

Al adicionar el Licor de Fehling a un compuesto reductor el Cu++

pasa a Cu+, que en medio

básico da un color pardo.

Reaccion Biuret

Al mezclar con una proteína o un polipéptido una solución de NaOH y SO4Cu se produce un

color violeta rosáceo, debido a una reacción especifica de Cu2+

con el grupo –CO.NH- (enlace

peptídico) en medio alcalino. El reactivo se consigue como preparado comercial.


ESTRUCTURA Y ORGANIZACIÓN DE LA CÉLULA

Objetivos:

Reconocer y establecer diferencias entre células procariotas y eucariotas.

Identificar a través de la observación microscópica células vegetales y animales.

Reconocer los componentes estructurales de la célula, organelas e inclusiones.

Comparar y establecer relaciones entre cada una de las organelas observadas.


Trabajo grupal.

Observación microscópica en laboratorio de diferentes tipos celulares.

ACTIVIDAD I: Observación de células Procariotas

Materiales:

Yogurt

Colorante azul de metileno

Alcohol etílico

Microscopio


Placa de petri

Gotero

Mechero de bunsen o de alcohol

Procedimiento:

1. Tome unas gotas de yogurt y extiéndalo sobre un portaobjetos

2. Fijación por calor: tomando el portaobjetos con dos dedos, por el borde, con la muestra hacia

arriba y en posición horizontal, pasarlo por la llama del mechero de modo que se pueda tocar

con el dorso de la mano sin quemarse. Repetir la operación siempre probando y sin quemarse,

hasta que se haya secado la muestra.

3. Eliminación de grasas: Colocar la preparación sobre una caja de petri y poner unas gotas de

alcohol sobre la muestra fijada. Esperar unos minutos. Lavar con agua, con un gotero, y

escurrir.

4. Tinción: colocar nuevamente el preparado sobre la placa de petri y poner unas gotas de azul de

metileno. Esperar 5 minutos. Lavar con abundante agua (con un gotero). Colocar un cubre.

Secar la preparación con papel de filtro.

5. Observe al microscopio con el máximo aumento disponible.


6. Esquematice y describa todo lo observado.

ACTIVIDAD II: Observación de células Eucariotas

A) Células del estoma en hojas de Tradescantia sp. (Santa Lucia)

Materiales:

Hojas de Tradescantia u otra planta

Bisturí

Pinza


Procedimiento:

1. Realice un corte en forma de “V” en la epidermis de las hojas y efectúe un preparado

temporario.

2. Observe al microscopio: podrá notar dos células en forma arriñonada, con núcleos y

cloroplastos y las células propias de la epidermis, denominadas acompañantes.

3. Esquematice y describa lo observado.

B) Tricocitos o Pelos vegetales

Materiales:

Hojas de Malvón u otra planta pubescente

Bisturí

Pinza


Procedimiento:

1. Realice un corte en forma de “V” en la epidermis de la hoja y monte en un portaobjetos con

una gota de agua. (Observará al microscopio estructuras cónicas alargadas formadas por una o

varias células con núcleo y pared celular llamados tricocitos).



C) Células de la pared bucal

Materiales

Espátulas

Porta y cubre objetos

Azul de metileno

Procedimiento:

1. Con una espátula raspe el lado interno de la mejilla.

2. Coloque el raspado blanquecino que se obtiene en una gota de agua en un portaobjetos.

3. Agregue una gota de azul de metileno o yodo.

4. Ponga el cubreobjetos y examine el preparado al microscopio.


ACTIVIDAD III: Observación de organelas celulares

A) Cloroplastos en hoja de Elodea

Materiales:

Hojas de Elodea


Pinza

Procedimiento:

1. Tome una hoja de Elodea y móntela en un portaobjetos con la cara superior hacia arriba.

Colóquele un cubre.

2. Enfoque en el menor aumento y luego con objetivo de mayor aumento. (Observara primero un

conjunto de células, luego con el mayor aumento observara las paredes celulares y pequeños

corpúsculos de color verde (Cloroplastos) que describen un movimiento circular llamado

ciclosis).


Preguntas para el análisis

- ¿Qué forma tienen las distintas células observadas? ¿Se puede establecer alguna relación entre

la estructura y la o las funciones que llevan a cabo estas células?

- Señale algunas semejanzas y diferencias que pueda observar entre las células procariotas y

eucariotas y entre las células de los vegetales, la de los animales. Amplíe los resultados de esta

observación con la información bibliográfica.

- Elabore un glosario de al menos diez palabras clave del tema trabajado, incluya el origen

etimológico de las mismas y su definición.


FUNCIONES CELULARES

Objetivo:

Comprobar los procesos de difusión y osmosis.


Trabajo experimental, elaboración de hipótesis, análisis de resultados y conclusiones.







ACTIVIDAD I: Observación de plasmólisis y turgencia en hojas de Elodea

Materiales:

Hojas de Elodea sp.

Solución de sacarosa 0.01 M, 0.05 M, 0.1 M, 0.5M.


Gotero

Peso molecular de la sacarosa: 326

Procedimiento:

1. Tome una hoja de Elodea y colóquela sobre un portaobjetos con una gota de agua y el

cubreobjetos. Observe al microscopio.

2. Realice el mismo procedimiento con las diferentes soluciones de sacarosa. Observe que sucede

con el citoplasma.

3. Esquematice que sucede con las células en los distintos casos, describa y analice el fenómeno

observado.

¿Cómo haría para probar si la plasmólisis y la turgencia son fenómenos reversibles?

Realice un diseño experimental para responder a esta pregunta.


ACTIVIDAD II: Observación de hemólisis y crenación en células sanguíneas

Materiales:

Sangre

Solución de ClNa al 0.35%



Gotero


Tubos de ensayo

Procedimiento:

1. Tome una pequeña muestra de sangre por un tubo capilar y realice un preparado temporáneo.

Observe con rapidez para evitar que la preparación se deseque. Es bueno realizar la

observación con una buena iluminación y diafragmando. Esquematice las formas de las

células. ¿Cómo son las células observadas? Descríbalas.

2. Tome tres alícuotas de sangre con un tubo capilar y distribúyalas en tubos de ensayo que

contengan 5 ml de las soluciones de cloruro de sodio al 0.35%, 1.3% y 0.85%,

respectivamente.

3. Transcurridos dos minutos extraiga unas gotas de cada tubo y luego de realizar una

preparación temporaria, observe al microscopio.

4. Compare el aspecto de los eritrocitos ¿Cómo podría explicar el cambio de forma de los

mismos? Esquematice.

5. En función de lo observado ¿Cómo caracterizaría a las soluciones utilizadas desde el punto

de vista de su osmolaridad? ¿Qué osmolaridad le parece que tiene el líquido tisular?

6. ¿Tiene usted claro si el cambio de forma de las células se debe al pasaje de agua o al

pasaje de iones?

7. Esquematice con flechas cada una de las situaciones experimentales.

Observación: Recordar que deben tener cuidado cuando junten la sangre (utilizar guantes). Los

animales suelen tener parásitos, bacterias que pueden contagiar enfermedades; por

eso se recomienda conseguir sangre en una carnicería, que se supone, los animales

están bajo control sanitario.

Para que no se coagule agregar una solución al 2 % de citrato de sodio en la

proporción 1:4 (solución: sangre)

Elabore un glosario de al menos 10 palabras clave, relacionadas con esta experiencia, indicando el

origen etimológico y la definición de las mismas.


MITOSIS

Objetivos:

Realizar preparados temporarios de tejidos somáticos vegetales en donde observar células

en división.

Observar al microscopio óptico e identificar las diferentes fases de la división mitótica.

Interpretar el proceso citológico de la división nuclear (cariocinesis) y citoplasmática

(citocinesis).

Comprender el rol y significado biológico de esta división celular.


Trabajo grupal en laboratorio.

Realización de preparados de células vegetales y su

posterior observación al microscopio e interpretación.

Introducción:

Mitosis o Cariocinesis, proceso de división del núcleo de

las células somáticas (no sexuales) cuyo resultado es la

división exacta de la información genética que previamente

se había duplicado durante la interfase del ciclo celular. La

mitosis garantiza que el número de cromosomas de las

células se mantenga constante de generación en generación.

La célula progenitora da origen a dos células hijas,

genéticamente idénticas a la madre, que contienen un

número diploide de cromosomas característico de la especie.

Las células meristemáticas vegetales se encuentran en constante crecimiento y división, por lo

que en una muestra de dicho tejido es posible observar células en las distintas fases del ciclo

celular.





Materiales:

Raicillas de cebolla, ajo, etc.


Bisturí, agujas de disección, gotero

Papel de filtro

Solución acuosa de HCl al 10%

Fijador Farmer


Colorantes: orceína acética o lactopropionica, carmín acético1

Mechero de alcohol

Cajas de petri

Procedimiento:

Siga los pasos que a continuación se detallan:

1. Colocar un bulbo de cebolla o ajo en un recipiente con agua, procurando que esta moje la base

del bulbo. Previamente se habrán descartado raíces viejas. Dejar aproximadamente 96 Hs antes

del momento en que se realizara la técnica.

2. Retirar el bulbo del agua, extrayendo con un bisturí varias raicillas de aproximadamente 5 cm,

las que se colocan en unas cajas de Petri.

3. Se fija el material con Farmer durante por lo menos 15 minutos

4. Se trasladan con una pinza las raicillas ya fijadas a una caja de Petri conteniendo solución de

HCl al 10%. Se deja actuar de 10 a 30 minutos. Este paso se realiza para eliminar el segmento

péctico de las paredes celulares y de este modo permitir posteriormente la entrada del

colorante.

5. Se toman las raicillas con una pinza y se las coloca sobre el portaobjetos. Observando a través

de la lupa se podrá identificar la región meristemática como una zona blanquecina de unos

pocos milímetros antes del extremo apical. esta región está protegida por una estructura tisular

llamada cofia. Raspando apenas con un bisturí y siempre a través de la lupa, extraer y descartar

esta última. Deberá tenerse mucho cuidado de no descartar en esta operación el tejido

meristemático.

6. Colocar el cubreobjetos y con un trozo de papel de filtro realizar el Squash o aplastamiento.

Este paso tiene por objeto “aplastar” las células sobre el portaobjetos, de manera que queden en

un mismo plano. Se realiza sosteniendo con una mano (entre el pulgar y el índice) el

portaobjetos con su correspondiente cubre. Colocar un pedazo de papel de filtro y con el dedo

pulgar de la otra mano presionar suave pero firmemente con movimiento lateral, tratando de

que no se deslice el cubre. (y de que no se rompa el porta)

7. Flamear el preparado sobre la llama del mechero con la finalidad de “aclarar” el citoplasma. El

colorante no debe hervir.

8. Controlar los resultados al microscopio. Si falta coloración agregar colorante por el costado del

cubre (este entrara por capilaridad). Si el material no estuviera suficientemente disgregado,

golpear suavemente con la punta de una aguja.

9. Observar al microscopio óptico y reconocer los distintos estadios del ciclo vital de la célula.

Describir lo observado y esquematizarlo.

1 El carmín acético se prepara colocando 1 g de carmín en un recipiente, al que se le agregan 45 cm3 de ácido acético.

Luego, se calienta y se le agregan 55 cm3 de agua destilada. Se deja enfriar y se filtra con papel de filtro.



1.¿Cuáles son los dos acontecimientos que determinan el avance o la detención del ciclo

celular?

2. ¿Qué grupos de proteínas controladoras de estos acontecimientos promueven o inhiben?

3. ¿Qué funciones tienen los microtúbulos durante la división celular?

4. ¿Cuáles son los elementos que componen el llamado: Aparato mitótico? ¿Qué función

cumplen sus principales componentes?

5. ¿Qué estructuras se reconocen en un cromosoma metafásico? ¿Qué tipos morfológicos de

cromosomas pueden reconocerse? Esquematice.

6. ¿Hay diferencias entre la citocinesis de una célula animal y una vegetal? ¿Cuáles son estas?

Esquematice.

7.Elabore un glosario de al menos 10 palabras clave relacionadas a esta actividad, incluya el

origen etimológico de las mismas y su definición.


EXTRACCIÓN DE DNA

Objetivos

Comprender la estructura y composición química de la molécula de DNA.

Poner en evidencia las habilidades para manipular el material de laboratorio y diseñar

experimentos sencillos para realizar la transposición de los contenidos estudiados en la

unidad.


Trabajo grupal en laboratorio.

Extracción del DNA a través de técnicas sencillas.

Realización de protocolos de investigación.

Introducción:

En abril de 1953, James Watson y Francis Crick conmovieron al mundo científico con un

sofisticado modelo de doble hélice para la estructura del ácido desoxirribonucleico o DNA. En los

últimos cincuenta años su modelo ha evolucionado desde una nueva propuesta hasta convertirse en

un ícono de la biología moderna. La información hereditaria está codificada en el lenguaje químico

del DNA y reproducida en todas las células de los seres vivos. Este programa del DNA es el que

dirige el desarrollo de los rasgos bioquímicos, anatómicos, fisiológicos, y en cierta medida el

comportamiento de los seres vivos.

Actividad previa a la extracción de DNA:

Analice el protocolo de extracción que se presenta en el práctico, determinando cómo cada uno de

los ingredientes utilizados ayuda a extraer el DNA de las células, para ello indague en distintas

fuentes bibliográficas y responda las siguientes preguntas:

1. ¿Por qué es necesario procesar los tejidos?

2. ¿Para qué se agrega sal al comienzo del experimento?

3. El detergente contribuye a liberar el DNA nuclear. ¿Por qué?

4. ¿Por qué es necesario utilizar una enzima proteolítica como la peptina?

5. ¿Qué rol desempeña el agregado del alcohol?

Materiales:

Tejidos de animales y/o vegetales: hígado, cebolla, kiwis y arvejas secas.

Licuadora o procesadora.

Sal fina.

Cucharitas de té.

Detergente

Vasos de precipitados de 250 ml.

Embudos de vidrio.

Papel de filtro.

http://images.google.com.ar/imgres?imgurl=http://www.noseque.net/wordpress/media/imagenes/adn.gif&imgrefurl=http://www.noseque.net/wordpress/2007/04/page/2/&usg=__wqoNBB-zUbQ9v4Kkwez1tb4Cp8w=&h=633&w=452&sz=141&hl=es&start=9&um=1&itbs=1&tbnid=TWModbMd_6AoqM:&tbnh=137&tbnw=98&prev=/images?q=adn&um=1&hl=es&tbs=isch:1


Peptina (proteasa).

Agua tibia.

Alcohol etílico (96%)

Varillas de vidrio.

Procedimiento:

El protocolo de extracción es semejante al proceso utilizado por los científicos cuando comenzaron

a estudiar el DNA. Sin embargo, les llevó muchos años lo que usted será capaz de hacer en 40

minutos.

Siga los pasos que a continuación se detallan:

1. Disuelva una cucharadita de sal (1 gr) por cada 12º ml de agua tibia (50 – 60 °C) para hacer

una solución isotónica.

2. Elija de los tejidos propuestos por lo menos 2, uno de origen animal y otro de origen

vegetal. Procese en la licuadora o procesadora los tejidos elegidos, con suficiente solución

isotónica como para que queden totalmente cubiertos.

Nota:

- Las arvejas deben ser previamente remojadas en agua durante 3 a 4 horas. El licuado de las

mismas deberá tener una consistencia de sopa liviana.

- Los licuados de cebolla y kiwi deben quedar trozos pequeños.

- El licuado de hígado debe ser realizado a partir de un trozo de 1 a 2 gr.

3. Tome 1 volumen (aproximadamente 120 ml) de cada licuado y agréguele lentamente 1

volumen de detergente (diluido a la mitad con agua), mezclando suavemente, evitando

hacer burbujas.

4. Tome tantos vasos de precipitados como muestras de tejido tenga, realice dos marcas, una a

1/3 y la otra a 2/3 del volumen en cada vaso. Filtre cada una de las muestras llenando los

vasos hasta la primera marca. (Como la muestra de hígado es demasiado viscosa, le

conviene colarla sin filtro, o usando una gasa).

5. Agregue aproximadamente ½ cucharadita de peptina (proteasa) a cada vaso y mezcle

suavemente.

6. Adicione lentamente el alcohol a cada recipiente hasta la segunda marca. Observe

detenidamente el resultado. Esquematice todo lo observado.


1. Describa el resultado obtenido indicando en qué tercio (superior o inferior) del vaso

observó el DNA. Justifique su respuesta.

2. Explique qué aspecto presenta el DNA extraído.

3. Si la molécula de DNA tiene un diámetro de 2 nm, ¿cómo es posible verlo a simple vista al

finalizar la extracción?


4. Ahora es el momento para ser escépticos: ¿cómo sabe usted que lo que obtuvo es DNA?

¿Qué experimentos podría realizar para comprobarlo?

5. Recurra a sus conocimientos teóricos y responda:

a. Si las bases nitrogenadas son insolubles en agua, ¿por qué la molécula de DNA es

soluble en agua?

b. Si el contenido de GC de una molécula de DNA es del 56%, ¿cuáles son los

porcentajes de las cuatro bases?

6. En grupos (de no más de 4 integrantes) realicen un modelo (maqueta) de la molécula de

DNA.

7. Elabore un glosario de al menos 10 palabras claves referentes al práctico trabajado.


METABOLISMO: fotosíntesis

Objetivos:

Extraer y reconocer los pigmentos fotosintéticos.

Demostrar la actividad fotosintética de las hojas en las plantas, mediante un modelo de

laboratorio.


Trabajo grupal.

Actividades de laboratorio.

Actividades de significación



2. Indague sobre las características de los pigmentos vegetales que intervienen en el proceso

de fotosíntesis y los elementos que se utilizan en este práctico.




ACTIVIDAD I: Cromatografía en papel de extractos de pigmentos de las plantas

Introducción:

La sustancia fotosensible de las hojas, que dan su color característico, es una mezcla de

pigmentos.

Para demostrarlo se puede usar una técnica sencilla de separación e identificación de sustancias

químicas, que es la cromatografía en papel. Para ello se utilizan tiras de papel de filtro donde se

coloca un extracto de la sustancia que queremos separar y luego se trata el papel con un solvente

que, al moverse por capilaridad, genera una corriente.

Las sustancias se separan de acuerdo a:

Sus diferentes solubilidades en el solvente (los mas solubles migran más lejos)

Su grado de adsorción a la celulosa del papel.

El coeficiente de reparto, que es una medida de cómo la sustancia se disuelve entre las

dos fases liquidas presentes: el solvente y el agua retenida en el papel de filtro.

En el caso de los pigmentos no hidrosolubles de las hojas, cuando se realiza la cromatografía

se separan diferentes bandas que, con otras técnicas, han sido identificadas como:

Banda azul - verde: clorofila a

Banda verde – amarilla clorofila b

Banda amarilla: xantofilas


Banda naranja: carotenos

La ventaja que tiene esta técnica es su sencillez y rápidos resultados, teniendo en cuenta la

naturaleza de estos pigmentos que fácilmente se transforman en sus derivados.

Materiales: Mortero y pilón

Tubos de ensayo o probetas

Tapones

Papel de filtro

Capilar

Clip

Arena limpia

Embudo

Tiras de papel secante o de filtro.

Solvente (92% de éter de petróleo +

8 % de acetona)

Hojas verdes (acelga o espinaca)

Alcohol

Tijera, regla

Procedimiento:

1. Para extraer los pigmentos vegetales macerar una o dos hojas de acelga o espinaca en alcohol

durante 10 minutos y machacar luego en este liquido, con agregado de arena bien limpia (que

facilita la trituración)

2. Filtrar el producto obtenido con embudo y papel de filtro y

recoger en un tubo de ensayo.

3. Colocar el solvente (acetona mas éter de petróleo) en un

tubo de ensayo y tapar, dejando un momento para crear una

atmosfera saturada de los vapores del disolvente.

4. Preparar la tira del papel del papel de filtro cortándolo del

ancho aproximado del diámetro del tubo de ensayo y un

largo similar. Recortar un extremo de manera que termine en

punta (ver figura 1). A un centímetro a partir de la punta

aguda realizar dos muescas (este sitio se llama origen) y

sobre ella colocar, con un capilar cuatro gotas de extracto,

dejando secar la anterior antes de cada nueva instilación. El objetivo es tener la mayor

concentración en la menor superficie. Esto se denomina comúnmente siembra.

Es conveniente que la zona de las muescas no toque la mesa de trabajo mientras se instila la

gota.

5. Colocar la tira dentro del tubo y tapar, de manera que la punta

aguda toque el solvente. Evitar que el papel toque las paredes

del tubo (ver figura 2).

6. Dejar el dispositivo hasta que el frente del disolvente haya

ascendido hasta 1,5 cm. antes del tapón. El avance de los

pigmentos a lo largo de la tira se denomina corrida

cromatografía.

7. Una vez concluida la corrida cromatográfica, identificar los

pigmentos que se han separado.

8. Esquematizar y describir el proceso y los resultados

obtenidos.


Una vez concluida la corrida cromatográfica, se utiliza el líquido vegetal sobrante en

el tubo de ensayo, para efectuar la siguiente experiencia:

1. Enuncie brevemente cada pasa que debería realizar en la experiencia.

2. Describa el fenómeno observado al iluminar el líquido vegetal.

3. Explique los resultados de los dos experimentos teniendo presente los

fundamentos teóricos estudiados.

ACTIVIDAD II: Función fotosintética

Materiales: Plantas de elodea (Anacharis sp.)

2 embudos de vidrio

2 vasos de precipitación

Agua

2 Tubos de ensayo

Tubo o caño de goma o de plástico

Lámpara


Procedimiento:

1. Coloque las plantas de elodea (invertidas) dentro de un embudo de vidrio y éste dentro de un

vaso de precipitados. Debe asegurarse que las plantas acuáticas no han estado en contacto con

recipientes de zinc, antes del experimento.

2. Llene con agua el recipiente hasta cubrir parte del pico del embudo.

3. Coloque un tubo de ensayo invertido sobre el embudo.

4. Repita todo el montaje y deje un dispositivo a la luz y otro en la oscuridad.

5. Observe y registrar los resultados del experimento.

PPrreegguunnttaass ppaarraa eell aannáálliissiiss a) ¿Por qué es necesario que todo el sistema esté cubierto de agua?

b) ¿Por qué uno de los dispositivos se puso en la oscuridad y otro a la luz total?

c) ¿Cuál es la razón por la cual los tallos de las plantas están invertidos?

d) Elabore un glosario de al menos 10 palabras clave de la actividad, incluye el origen

etimológico y la definición.


ACTIVIDAD RESPIRATORIA EN ANIMALES Y PLANTAS

Objetivos:

Comprobar la actividad respiratoria y fotosintética en vegetales.

Mediante experimentos sencillos demostrar la actividad respiratoria en animales.


Trabajo grupal

Actividades en laboratorio



2. Indague sobre las características de los reactivos que se utilizan en esta experiencia.




ACTIVIDAD I: Actividad respiratoria y fotosintética en vegetales

Materiales: 4 tubos de ensayo

Papel negro

Solución de azul de bromotimol

1 pipeta

Vaselina liquida

Plantas jóvenes de Elodea

Procedimiento:

1. Rotular los tubos del 1 al 4.

2. Colocar en cada uno de 3 a 4 ml de agua y agregue

gota a gota la solución de azul de bromotimol hasta

que tomo apenas un color celeste.

3. Haga burbujear (con pipeta) aire espirado dentro de la

solución de los tubos 1 y 2, hasta que vire al amarillo.

4. Colocar un brote de la planta acuática en el tubo 2.

5. Agregar un pequeño volumen de vaselina hasta

formar un tapón en ambos tubos. Exponer a la luz

directa (solar o de una lámpara).

6. En el tubo 4 (celeste) colocar otro brote de la planta.

7. Agregar un pequeño volumen de vaselina hasta formar un tapón en los tubos 3 y 4. Envolver

con papel negro estos tubos de modo que no reciban luz.

8. Realizar controles cada hora desde el inicio y registrar los resultados obtenidos.


9. Confeccionar uh cuadro donde registrar los cambios obtenidos.

10. Interpretar los resultados. Para ello considere el rango de viraje del indicador de pH que se ha

usado.

ACTIVIDAD II: Actividad respiratoria en vegetales

Materiales: 2 tubos de ensayo

2 tapones de corcho o goma

Un trozo de alambre

Un disco de plástico perforado solución de bromotimol

Semillas germinando

Procedimiento:

Preparar dos tubos de ensayo de la siguiente manera: (ver figura 3)

1. Colocar 3 ml de agua en los tubos de ensayo y agregar unas gotas de azul de bromotimol

(indicador acido - base). La solución de azul de bromotimol debe ser inicialmente de color

apenas celeste.

2. Cortar dos circunferencias de placas radiográficas del diámetro interno de los tubos de ensayo

a utilizar en la experiencia.

3. Perforar cada una con un instrumento punzante.

4. Introducir estos discos en los tubos de la misma altura.

5. Colocar las semillas germinadas en el tubo 2.tapar cuidadosamente con tapones de goma.

6. Observar cada hora y registrar los cambios producidos en su sistema.



1. Investigue cuales son las propiedades del azul de bromotimol como indicador de pH.

2. ¿En cuál de los tubos se observa variación del color inicial? ¿Cómo explicaría usted esa

variación?

3. ¿Por qué se usan tubos cerrados? ¿a qué se debe que utilizamos semillas en germinación?

4. ¿Podrían utilizarse plantitas en lugar de semillas? ¿en qué variarían los resultados?

5. ¿Qué estima que ocurriría en el tubo N°1 (control del experimento) si al final de la actividad

se hace burbujear aire espirado? ¿Por qué no prueba hacerlo?

ACTIVIDAD III: Actividad respiratoria en animales

Materiales: 2 frascos transparentes con tapa

Un alfiler doblado

Una bolsita de tul o similar

Solución de azul de bromotimol

Animales pequeños vivos (langosta, grillos, cucaracha, mosca, bicho bolita, lombriz de

tierra, abeja, babosa. Etc.)

Procedimiento:

1. Armar dos dispositivos como lo indica la figura.

2. Dentro de las bolsitas colocar dos o tres animalitos.

3. Poner en cada frasco algunos mililitros de agua y agregar el indicador gota a gota. El azul de

bromotimol debe ser, inicialmente, una solución celeste.

4. Observar si se producen cambios en el color del indicador. Verificar cada 30 minutos los

cambios.

5. Interpretar los resultados obtenidos.



1. Elabore un cuadro comparativo entre respiración y fotosíntesis en el que se consigne: materias

primas, productos, intercambios energéticos, orgánulos celulares en los que se realizan, tipos

de organismos que lo llevan a cabo, etapas del proceso.

2. Elabore un esquema relacionando los productos de la respiración celular y la fotosíntesis con

los resultados de las actividades experimentales.

3. Escriba un párrafo reafirmando o refutando las siguientes proposiciones:

a) “A diferencia de los heterótrofos, los organismos vegetales obtienen energía (ATP) para

sus actividades vitales a través de la fotosíntesis”

b) “Toda la energía utilizada en los procesos anabólicos, en los heterótrofos, provienen de

energía química obtenida de los procesos catabólicos de dichos organismos”.

4. Elabore un glosario con palabras clave referidas a este trabajo.


BIOLOGÍA DE LAS PLANTAS

OObbjjeettiivvooss:: IIddeennttiiffiiccaarr llaass ccaarraacctteerrííssttiiccaass eexxoommoorrffoollóóggiiccaass ddee llooss ddiissttiinnttooss ggrruuppooss ddee mmeettááffiittaass..

EEssttaabblleecceerr sseemmeejjaannzzaass yy ddiiffeerreenncciiaass eennttrree llooss ddiissttiinnttooss ggrruuppooss ddee ppllaannttaass..

IIddeennttiiffiiccaarr llaass ddiissttiinnttaass ppaarrtteess ddeell ttaalloo yy ddeell ccoorrmmoo..

MMeettooddoollooggííaa ddee TTrraabbaajjoo TTrraabbaajjoo ddee llaabboorraattoorriioo:: oobbsseerrvvaacciióónn yy aannáálliissiiss eexxoommoorrffoollóóggiiccoo ddee eessppeeccíímmeenneess ddee ppllaannttaass..

TTrraabbaajjoo ggrruuppaall

OObbsseerrvvaacciióónn ddee pprreeppaarraaddooss ffiijjooss..

IInnttrroodduucccciióónn

EEll RReeiinnoo VVeeggeettaall ((PPllaannttaaee)) eessttáá ffoorrmmaaddoo ppoorr uunnaass 226600..000000 eessppeecciieess ccoonnoocciiddaass ddee mmuussggooss,,

hheeppááttiiccaass,, hheelleecchhooss,, ppllaannttaass hheerrbbáácceeaass yy lleeññoossaass,, aarrbbuussttooss,, ttrreeppaaddoorraass,, áárrbboolleess yy oottrraass ffoorrmmaass ddee

vviiddaa qquuee ccuubbrreenn llaa ttiieerrrraa yy vviivveenn ttaammbbiiéénn eenn eell aagguuaa.. DDeell mmiissmmoo mmooddoo ssoonn ccaappaacceess ddee ccoolloonniizzaarr llooss

aammbbiieenntteess eexxttrreemmooss,, ddeessddee llaass hheellaaddaass ttiieerrrraass ddee llaa AAnnttáárrttiiddaa eenn llaass qquuee vviivveenn aallgguunnooss llííqquueenneess

hhaassttaa llooss ddeessiieerrttooss mmááss sseeccooss yy ccáálliiddooss eenn llooss qquuee ssoobbrreevviivveenn cciieerrttaass aaccaacciiaass,, ppaassaannddoo ppoorr uunnaa

ggaammaa ddee ssuussttrraattooss ((ssuueelloo,, rrooccaass,, oottrraass ppllaannttaass,, aagguuaa))..

EEll ttaammaaññoo yy llaa ccoommpplleejjiiddaadd ddee llooss vveeggeettaalleess ssoonn mmuuyy vvaarriiaabblleess;; eessttee RReeiinnoo eenngglloobbaa ddeessddee

ppeeqquueeññooss mmuussggooss nnoo vvaassccuullaarreess,, qquuee nneecceessiittaann eessttaarr eenn ccoonnttaaccttoo ddiirreeccttoo ccoonn eell aagguuaa,, hhaassttaa

ggiiggaanntteessccaass sseeccuuooyyaass –– llooss mmaayyoorreess oorrggaanniissmmooss vviivviieenntteess –– ccaappaacceess,, ccoonn ssuu ssiisstteemmaa rraaddiiccuullaarr,, ddee

eelleevvaarr aagguuaa yy ccoommppuueessttooss mmiinneerraalleess hhaassttaa mmááss ddee cciieenn mmeettrrooss ddee aallttuurraa..

MMaatteerriiaalleess MMaatteerriiaall bbiioollóóggiiccoo:: PPllaannttiittaass ddee mmuussggoo,, hheelleecchhooss,, ggeerrmmiinnaaddoorreess ddee mmaaíízz yy ppoorroottoo,, ppllaannttiinneess

ddee ppiinnoo yy rraammaass ddee ppiinnoo ccoonn ssuuss ccoonnooss ffeemmeenniinnooss yy mmaassccuulliinnooss,, ppllaannttaass ddee ppaassttoo oo mmaaíízz,,

pplláánnttuullaass ddee cceeddrroo mmiissiioonneerroo uu oottrroo eejjeemmppllaarr ddee llaass mmiissmmaass ccaarraacctteerrííssttiiccaass..

PPrreeppaarraaddooss ffiijjooss

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PPrroocceeddiimmiieennttoo 11.. OObbsseerrvvaacciióónn yy aannáálliissiiss eexxoommoorrffoollóóggiiccoo ddee uunn mmuussggoo

aa.. TToommee uunn mmuussggoo yy oobbsséérrvveelloo ddeetteenniiddaammeennttee,, uuttiilliiccee eell mmaatteerriiaall óóppttiiccoo aaddeeccuuaaddoo aall oobbjjeettoo

ddee eessttuuddiioo.. EEssqquueemmaattiiccee..

bb.. CCoonn llaa aayyuuddaa ddee llaa bbiibblliiooggrraaffííaa ddeessccrriibbaa eell eejjeemmppllaarr ee iinnddiiqquuee llaass ppaarrtteess qquuee lloo ccoonnssttiittuuyyeenn..

22.. OObbsseerrvvaacciióónn yy aannáálliissiiss eexxoommoorrffoollóóggiiccoo ddee uunn hheelleecchhoo

aa.. TToommee uunn hheelleecchhoo,, oobbsséérrvveelloo ddeetteenniiddaammeennttee yy eessqquueemmaattiiccee..

bb.. OObbsseerrvvee ccoonn eell mmaatteerriiaall óóppttiiccoo aaddeeccuuaaddoo aall oobbjjeettoo ddee eessttuuddiioo,, eell eennvvééss ddeell eessppoorrooffiilloo..

RReeccoonnoozzccaa llaass eessttrruuccttuurraass qquuee pprreesseennttaa,, yy eessqquueemmaattiiccee..

cc.. CCoonn llaa aayyuuddaa bbiibblliiooggrrááffiiccaa ddeessccrriibbaa eell eejjeemmppllaarr yy ccoommpplleettee llooss eessqquueemmaass ccoonn llaass

rreeffeerreenncciiaass ccoorrrreessppoonnddiieenntteess..

dd.. OObbsseerrvvee llooss pprreeppaarraaddooss ffiijjooss eennttrreeggaaddooss ppoorr llaa ccáátteeddrraa,, rreeccoonnoozzccaa ccoonn llaa aayyuuddaa

bbiibblliiooggrrááffiiccaa llaass eessttrruuccttuurraass oobbsseerrvvaaddaass,, eessqquueemmaattiiccee yy rreeffeerreenncciiee ssuuss ppaarrtteess..

33.. OObbsseerrvvaacciióónn yy aannáálliissiiss ddee uunnaa ggiimmnnoossppeerrmmaa

aa.. TToommee eell ppllaannttiinn yy llaa rraammaa ddee ppiinnoo ccoonn ssuuss eessttrruuccttuurraass rreepprroodduuccttoorraass,, oobbsseerrvvee llaass mmiissmmaass,, yy

eessqquueemmaattiiccee..

bb.. CCoonn llaa aayyuuddaa bbiibblliiooggrrááffiiccaa ddeessccrriibbaa lloo oobbsseerrvvaaddoo yy ccoommpplleettee llooss eessqquueemmaass ccoonn llaass

rreeffeerreenncciiaass ccoorrrreessppoonnddiieenntteess..

cc.. RReeaalliiccee uunn ccoorrttee ttrraannssvveerrssaall ddee uunnaa hhoojjaa ddee ppiinnoo,, mmoonnttee llaa mmuueessttrraa yy oobbsseerrvvee aall

mmiiccrroossccooppiioo,, eessqquueemmaattiiccee,, yy rreeccoonnoozzccaa llaass eessttrruuccttuurraass oobbsseerrvvaaddaass..

dd.. RReeaalliiccee uunn ccoorrttee lloonnggiittuuddiinnaall ddeell ccoonnoo mmaassccuulliinnoo,, iiddeennttiiffiiqquuee llaass eessttrruuccttuurraass ddee eessttooss ccoonnooss..

EEssqquueemmaattiiccee..

ee.. TToommee uunn ccoonnoo mmaassccuulliinnoo yy ssaaccúúddaalloo ssoobbrree uunn ppoorrttaaoobbjjeettooss,, aaggrreegguuee uunnaa ggoottaa ddee aagguuaa..

OObbsseerrvvee aall mmiiccrroossccooppiioo.. EEssqquueemmaattiiccee yy rreeccoonnoozzccaa llaass eessttrruuccttuurraass qquuee lloo ccoonnffoorrmmaann..

ff.. RReeaalliiccee uunn ccoorrttee lloonnggiittuuddiinnaall ddeell ccoonnoo ffeemmeenniinnoo,, iiddeennttiiffiiqquuee llaass eessttrruuccttuurraass oobbsseerrvvaaddaass..

EEssqquueemmaattiiccee,, yy rreeccoonnoozzccaa llaass eessttrruuccttuurraass oobbsseerrvvaaddaass..

44.. OObbsseerrvvaacciióónn ddee uunnaa aannggiioossppeerrmmaa ddiiccoottiilleeddóónneeaa

aa.. TToommee ddee ssuu ggeerrmmiinnaaddoorr llaa ppllaannttiittaa ddee ppoorroottoo yy oobbsseerrvvee ccoonn eell iinnssttrruummeennttoo óóppttiiccoo aaddeeccuuaaddoo

aall oobbjjeettoo ddee eessttuuddiioo,, iiddeennttiiffiiqquuee ccaaddaa uunnaa ddee ssuuss ppaarrtteess.. EEssqquueemmaattiiccee..

bb.. OObbsseerrvvee llaa ppllaannttiittaa ddee cceeddrroo,, oobbsseerrvvee ccaaddaa uunnaa ddee ssuuss ppaarrtteess,, eessqquueemmaattiiccee..

55.. OObbsseerrvvaacciióónn ddee uunnaa aannggiioossppeerrmmaa mmoonnooccoottiilleeddóónneeaa

aa.. TToommee ddee ssuu ggeerrmmiinnaaddoorr llaa ppllaannttiittaa ddee mmaaíízz yy oobbsseerrvvee ccoonn eell iinnssttrruummeennttoo óóppttiiccoo aaddeeccuuaaddoo aall

oobbjjeettoo ddee eessttuuddiioo,, iiddeennttiiffiiqquuee ccaaddaa uunnaa ddee ssuuss ppaarrtteess.. EEssqquueemmaattiiccee..

bb.. OObbsseerrvvee llaa ppllaannttaa ddee ppaassttoo,, oobbsseerrvvee ccaaddaa uunnaa ddee ssuuss ppaarrtteess,, eessqquueemmaattiiccee..

PPrreegguunnttaass ppaarraa eell aannáálliissiiss

11.. IInnddiiqquuee llooss ddiissttiinnttooss nniivveelleess ddee oorrggaanniizzaacciióónn ddee llaass ppllaannttaass eessttuuddiiaaddaass..

22.. IInnvveessttiigguuee llaass ddiissttiinnttaass aaddaappttaacciioonneess qquuee ppuueeddeenn tteenneerr llaass rraaíícceess,, llooss ttaallllooss yy llaass hhoojjaass,,

eessqquueemmaattiiccee..

33.. IInnddiiqquuee llaa ddiiffeerreenncciiaa eennttrree hhoojjaass ssiimmpplleess yy hhoojjaass ccoommppuueessttaass.. EEssqquueemmaattiiccee..

44.. SSeeññaallee ddiissttiinnttooss ccrriitteerriiooss ddee ccoommppaarraacciióónn eennttrree llaass ppllaannttaass,, ccoonn eellllooss aarrmmee uunn ccuuaaddrroo

ccoommppaarraattiivvoo eennttrree mmuussggooss,, hheelleecchhooss,, aannggiioossppeerrmmaass yy ggiimmnnoossppeerrmmaass..


55.. EEllaabboorree uunn ccuuaaddrroo ccoommppaarraattiivvoo eennttrree mmoonnooccoottiilleeddóónneeaass yy ddiiccoottiilleeddóónneeaass..

66.. AAnnaalliiccee eell ssiigguuiieennttee eessqquueemmaa ssoobbrree llaa tteennddeenncciiaa eevvoolluuttiivvaa ddee llaass ggeenneerraacciioonneess

ggaammeettooffííttiiccaass yy eessppoorrooffííttiiccaass eenn eell RReeiinnoo vveeggeettaall.. EEssccrriibbaa uunn ppáárrrraaffoo iinntteeggrraannddoo llooss

ssiigguuiieenntteess aassppeeccttooss::

aa.. FFoorrmmaa yy ttaammaaññoo ddee llooss ccuueerrppooss ttaallooffííttiiccooss yy ccoorrmmooffííttiiccooss..

bb.. EEvvoolluucciióónn ddee llaa sseexxuuaalliiddaadd..

cc.. GGeenneerraacciioonneess ddoommiinnaanntteess yy ddeeppeennddiieenntteess..

dd.. VVaarriiaacciioonneess eenn ccuuaannttoo aa llaa ppllooiiddííaa ((hhaappllooiiddee,, ddiippllooiiddee))

ee.. EEnn ffuunncciióónn ddee llooss ppuunnttooss cc yy dd,, iinnffiieerraa qquuee ggeenneerraacciióónn eess mmááss ssuusscceeppttiibbllee ddee llaass

vvaarriiaacciioonneess ggeennééttiiccaass..

77.. EEllaabboorree uunn gglloossaarriioo ddee aall mmeennooss 1100 ppaallaabbrraass ccllaavvee,, iinncclluuyyaa eell oorriiggeenn eettiimmoollóóggiiccoo ddee llaass

mmiissmmaass yy ssuu ddeeffiinniicciióónn..


BIOLOGÍA DE LOS ANIMALES

Objetivos: Identificar las características exomorfológicas de los distintos grupos animales.

Establecer las semejanzas y diferencias entre los distintos Phyllum.

Identificar las características definitorias de cada Phyllum.

Metodología de trabajo: Trabajo de laboratorio: observación y análisis exomorfológico de especímenes de animales.

Trabajo grupal.

Observación de preparados fijos.

Materiales: Material biológico: esponjas, coral, gusano plano (geoplanaria), nemátodos (áscaris),

caracol, estrellas de mar, artrópodo (insectos, arañas, milpiés, cienpiés), vertebrado (pez,

pollito).

Lupa.

Microscopio.

Porta y cubre objetos.

Bandeja de tergopor.

Materiales de disección.

Guantes de latex.

Preparados fijos.

Procedimiento:

Actividad 1. Observación y análisis exomorfológico de un ejemplar del Phyllum Porífera:

1. Observe a simple vista y con sumo cuidado los especímenes de esponjas entregados por la

cátedra.

2. Esquematice lo observado.

3. Con ayuda de bibliografía rotule las distintas estructuras observadas.

4. Describa caracterizando el animal observado. (Tener presente: simetría, nivel de

organización, presencia o ausencia de celoma y capas embrionarias, tubo digestivo, además

de las características observables).

Actividad 2. Observación y análisis exomorfológico de un ejemplar del Phyllum Cnidario:

1. Observe a simple vista los especímenes de Cnidario entregados por la cátedra.

2. Esquematice lo observado.

3. Con ayuda de bibliografía rotule las distintas estructuras observadas.

4. Observe los preparados fijos que se les presenta y esquematice. Rotule las estructuras

observadas.





Actividad 3. Observación y análisis exomorfológico de un ejemplar del Phyllum Platelminto:

1. Observe a simple vista y con lupa los especímenes de estudio traídos por usted y los

conservados en formol entregados por la cátedra.

2. Esquematice lo observado y rotule con ayuda de bibliografía.

3. Observe la región ventral del individuo y esquematice las estructuras observadas. Coloque

las referencias.




Actividad 4. Observación y análisis exomorfológica de un ejemplar del Phyllum Nemátodo:

1. Observe a simple vista los especímenes de Nemátodos conservados en formol entregados

por la cátedra.

2. Esquematice lo observado y rotule con ayuda de bibliografía.




Actividad 5. Observación y análisis exomorfológico de un ejemplar del Phyllum Molusco:

1. Observe detalladamente a simple vista y con ayuda de la lupa el ejemplar de Molusco

traído por usted.

2. Esquematice lo observado y coloque las referencias con la ayuda de bibliografía.




Actividad 6. Observación y análisis exomorfológica de un ejemplar del Phyllum

Equinodermo:

1. Observe detalladamente a simple vista los ejemplares de Equinodermos entregados por la

cátedra.

2. Esquematice lo observado y coloque las referencias con ayuda de bibliografía.

3. Identifique las distintas estructuras tanto de la región oral como de la región aboral,

esquematícelas y coloque sus referencias con ayuda de bibliografía.




Actividad 7. Observación y análisis exomorfológico de un ejemplar del Phyllum Artrópodo:

1. Observe detalladamente a simple vista y con ayuda de una lupa, ejemplares de artrópodos

traídos por usted.

2. Esquematice lo observado y coloque las referencias con ayuda de material bibliográfico.





Actividad 8. Observación y análisis exomorfológica de un ejemplar del Sub Phyllum

Vertebrado:

1. Observe detalladamente el ejemplar de vertebrado traído por usted.

2. Esquematice el ejemplar en cuestión y coloque las referencias con ayuda de bibliografía.




Preguntas para el análisis: 1. Indique a qué se denomina simetría. ¿Qué tipos de simetría presentan los animales?

Esquematice un ejemplar animal con cada uno de los tipos de simetría.

2. Investigue a qué se denomina capas germinales. ¿Cómo se clasifican y que características

poseen las mismas?

3. ¿A qué se denomina celoma? Indique cuales son los procesos de formación del mismo y en

qué consisten cada uno. Esquematice.

4. Según la presencia o ausencia del celoma los animales se pueden clasificar en celomados,

pseudocelomados y acelomados. Esquematice un corte transversal a nivel del abdomen de

un animal acelomado, psedocelomado y celomado.

5. Realice un esquema filogenético con los ejemplares animales estudiados.

66.. Elabore un glosario de al menos 1º palabras claves referidas al práctico, iinncclluuyyaa eell oorriiggeenn

eettiimmoollóóggiiccoo ddee llaass mmiissmmaass yy ssuu ddeeffiinniicciióónn..


REPRODUCCIÓN

Objetivos Establecer similitudes y diferencias entre los diferentes tipos de reproducción de los

organismos vivos.

Reconocer distintos tipos de reproducción asexual.

Reconocer los órganos reproductores de una planta con flor.

Introducción

Los procesos por los cuales se reproducen los seres vivos suelen clasificarse en dos grandes

categorías:

La reproducción asexual

La reproducción sexual

Es característico de la reproducción asexual el hecho de que interviene un solo organismo o

parte de él en la producción de los descendientes. Esto significa que hay un solo tipo de

información hereditaria (la del organismo original) en los descendientes. Esta información, salvo

algún cambio accidental, es idéntica a la del progenitor.

La reproducción asexual lleva como ventaja básica la alta velocidad de producción de

descendientes.

En todos los organismos eucariontes, el proceso básico a nivel de las células es la mitosis,

la cual interviene en:

La formación de organismos unicelulares hijos (protistas ciliados).

La formación de esporas reproductoras (por ejemplo, en esporozoos y algunos hongos).

La producción de organismos complejos por multiplicación vegetativa, gemación, etc.

El caso de la reproducción sexual es muy diferente, salvo en aquellos cados donde se efectúa

por un mecanismo anormal y frustrado (partenogénesis).

Por lo tanto, los descendientes no son idénticos a sus progenitores en cuanto a la información

hereditaria que poseen.

Recordemos que este proceso tiene dos aspectos:

La característica fundamental de la reproducción asexual es la producción de descendientes

idénticos a su progenitor en cuanto a información hereditaria.

La reproducción sexual implica que los descendientes formados posean información

hereditaria recombinada de dos individuos diferentes

o de células distintas de un mismo organismo.


Uno es el reproductivo, que se refiere a la producción de nuevos individuos.

El otro es el sexual, que implica la recombinación de las informaciones pro-

genitoras.

Usualmente, no hay separación entre ambos aspectos, pero se observan algunos casos

interesantes en que no se realizan simultáneamente.

Estos son los casos en que se produce primero el fenómeno sexual, de recombinación de

información, sin que haya aumento del número de organismos. Posteriormente, se lleva a cabo la

reproducción, que puede efectuarse por una mitosis o por una división aún más simple (en

procariontes). El mejor ejemplo de este último caso es el fenómeno de conjugación en bacterias.

Ocurre un pasaje de material hereditario de una célula a otra y, posteriormente, esta célula origina

múltiples descendientes por división simple. También la conjugación de protozoos ofrece una

separación similar entre el proceso de recombinación y el proceso reproductivo propiamente dicho.

A efectos de que usted tenga una visión global de la temática a desarrollar en el transcurso

del práctico, le presentamos el siguiente cuadro:

binaria Igual

Escisión desigual

múltiple

Gemación o

Gemiparidad

Brotes activos Se desprenden una vez organi-zados

Quedan unidos a la madre Reproducción Asexual

Móviles

inmóviles Esporulación o

Esporogenia

Esporas Haploides Diploides

Mitosporas Meiosporas

Fragmentación Multiplicación vegeta-

tiva

Regeneración

Reproducción sexual Isogamia

Anisogamia o Heterogámia

Partenogénesis

Reproducción alter-nante

Metagénesis


Actividad 1

Materiales Cultivo de moho.

Microscopio.

Portaobjetos y cubreobjetos

Aguja de disección.

Nota: Para obtener un cultivo de moho coloque en una cápsula de Petri (o plato hondo) varios

trocitos de pan negro humedecido. Mantenga durante unos días en un lugar cálido y con abundante

humedad hasta que se forme una pelusa blanquecina que corresponde a la parte vegetativa del

moho (micelio formado por hifas).

Procedimiento: Con la aguja de disección tome unas hifas del hongo y colóquelas sobre un portaobjetos. Cubra el

preparado y observe al microscopio. Dibuje lo observado.

Con la aguja tome una hifa que tenga un corpúsculo oscuro en uno de los extremos. Obsérvelo al

microscopio, esquematice y describa su observación. Comprima sobre otro portaobjeto uno de esos

corpúsculos. Observe al microscopio, esquematice.

Preguntas para el análisis: 1. ¿Qué forma tienen los corpúsculos negros? ¿Y el material que contienen?

2. ¿Qué nombre reciben los corpúsculos negros? ¿Y el material que contienen?

3. Indique la función que cumple cada unos de esos elementos.

4. ¿Qué condiciones necesita el moho del pan para desarrollarse y reproducirse?

5. ¿Qué tipo de reproducción posee el moho del pan?

Actividad 2

Materiales: Vaso de precipitado de 100 ml.

Pipetas pasteur.

2 portaobjetos

2 cubreobjetos

Cuchara

Microscopio

Mechero

Trípode

Rejilla

Azúcar (1 cucharadita de 10 gr)

10 gr de levadura

Azul de metileno

Procedimiento Prepare una disolución de 50 ml de agua y levadura en un vaso de precipitados.

Tomar una gota de esta disolución y colocarla en el portaobjeto. Agregue una gota de azul de

metileno y luego coloque el cubreobjetos. Observe al microscopio y esquematice.


Agregue el azúcar al vaso de precipitados con la disolución de agua y levadura, disuelva y caliente

durante un minuto. No deje hervir la disolución.

Deje reposar la disolución por espacio de 5 – 10 minutos. Tome una gota de la disolución y

coloque sobre el portaobjetos. Agregue azul de metileno, coloque el cubreobjetos y observe al

microscopio. Esquematice.

Preguntas para el análisis 1. ¿Qué semejanzas y diferencias encontró entre las dos observaciones?

2. ¿Cuál es el efecto de la temperatura y el azúcar sobre las levaduras?

3. ¿Qué apariencia tienen las levaduras en reproducción?

4. ¿Qué tipo de reproducción poseen las levaduras?

Actividad 3

Materiales

Flores (de diferente tipo, en las que se puedan identificar claramente sus estructuras in-

ternas)

Pinza

Hoja de afeitar

Portaobjetos

Lupa

Microscopio

Material bibliográfico

Procedimiento

1. Observe la flor exteriormente. Dibuje lo que ve, describa su forma, tamaño y colores.

Busque en la bibliografía el nombre de las estructuras que observa y anótelas en el dibujo.

2. Retire delicadamente las estructuras más externas y observe el interior de la flor. Dibuje lo

que ve y de nombre a las partes que observa a partir de los datos que encuentre en la

bibliografía.

3. Retire un estambre de la flor y espolvoree polen sobre un portaobjetos, como muestra la

ilustración.

4. Corte longitudinalmente, cuidadosamente con la hoja de afeitar, el ovario y observe su

interior con la lupa. Dibuje lo que ve.

5. Retire del ovario, con ayuda de la pinza, las pequeñas estructuras que hay en su interior y

colóquelas sobre el mismo portaobjetos donde colocó el polen.

6. Observe este preparado al microscopio.

7. Describa y compare la forma y el tamaño de las estructuras observadas al microscopio.


Preguntas para el análisis 1. ¿Cuáles son las funciones de cada una de las partes de la flor?

2. ¿Las flores observadas, ¿tenían ambos sexos o solo uno de ellos? Indique cómo se

denominan las plantas que tienen los órganos masculinos y femeninos en un mismo

individuo, y en flores diferentes.

3. Alguna de las flores elegidas tiene aroma? ¿Para qué les sirve?

4. ¿Cómo podría demostrar que el aroma y no la vistosidad de sus pétalos es lo que atrae a

los animales polinizadores?

5. Tome una de las flores e imagínela después de la fecundación. Esquematice e indique los

cambios que se producirían

6. ¿Qué tipo de reproducción poseen las plantas con flor?

7. Compare los tipos de reproducción de los especímenes observados, teniendo presente,

estructuras implicadas, mecanismo de reproducción, entre otros aspectos.

8. Realice un cuadro comparativo de los tipos de reproducción que se presentan en las

plantas. Tenga presente estructuras que intervienen, mecanismos de reproducción y

ejemplos.

9. Realice un cuadro comparativo de los tipos de reproducción que se presentan en los

animales. Tenga presente para ello, estructuras que intervienen en este proceso, tipo de

fecundación, tipo de desarrollo, entre otros aspectos.

10. Elabore un glosario de al menos 10 palabras clave referidas a esta actividad, incluya el

origen etimológico de las mismas y su definición.


USO DE CLAVES – UBICACIÓN TAXONÓMICA DE LOS ORGANISMOS

Objetivos Comprender la estructura interna – jerárquica e inclusiva – de un sistema de Clasificación

Natural de los seres vivos, interpretando las relaciones que se pretenden poner en evidencia

a través del mismo.

Conocer el mecanismo en el que se basa la identificación de organismos mediante claves.

Reconocer la naturaleza de los criterios de clasificación utilizados en una clave.

Identificar organismos de los distintos Reinos, hasta la categoría taxonómica de Filum o

División y Clase, utilizando claves sencillas basadas en criterios morfológicos.

Introducción

¿Qué es una clave? Imaginemos que para clasificar a un organismo tuviéramos que buscar su descripción en,

por ejemplo, un códice donde estuvieran las descripciones de todos los organismos conocidos. Sin

duda, la tarea clasificatoria impediría el avance de cualquier otra investigación que quisiera hacerse

sobre el organismo en cuestión.

Una CLAVE es simplemente un instrumento que permite al taxónomo llegar a ubicar de

manera ordenada y metódica a un organismo en el sistema de clasificación. Es decir, permite

clasificarlo. Para ello, está construida utilizando una serie de clases que se excluyen mutuamente,

de manera que va invalidando elecciones hasta que se identifica el organismo en cuestión.

En el quehacer científico la mayoría de las veces se utilizan las llamadas Clasificaciones

para finalidades generales, basadas en un sistema natural. Es decir que los criterios que se elijan

para confeccionar la clave, aunque no necesariamente deben reflejar las relaciones evolutivas

planteadas entre organismos, si deben implicar nomenclatura y jerarquía linneanas.

Las claves, entonces, también importan clases jerárquicas e inclusivas o, como se prefiera,

exclusivas. Es útil volver a repetir: una clave no refleja el sistema de clasificación, sino que es una

forma de ubicar taxonómicamente e identificar organismos.

A tal efecto, hay claves para todas las categorías taxonómicas. Así, el especialista, usa cla-

ves para especies y subespecies, por ejemplo. Sin duda, estas claves contendrán un mayor caudal

de información, debiéndose utilizar varios tipos de caracteres y metodologías para obtener la

información.

(Hay otro tipo de claves, para finalidades especiales, que se basan en características parti-

culares, no necesariamente involucradas en la clasificación natural, por ejemplo: identificación de

árboles de acuerdo a su corteza, el tipo de hojas, el tiempo de floración, etc.).

Materiales Especímenes biológicos en condiciones de ser estudiados, ya sea en estado fresco, como

material fijado o herborizado.

Microscopio óptico compuesto y Estereoscópico.

Instrumental para disección.

Claves adecuadas.


Procedimiento 1. Clasifique y ubique taxonómicamente el material biológico aportado por la cátedra, utili-

zando las claves que se anexan en el práctico.

2. Esquematice los especímenes y el procedimiento realizado.

3. Haga un mapa conceptual de la diversidad de la vida teniendo presente las distintas formas

de clasificar a los organismos vivos.

4. Elabore un glosario de al menos 10 palabras clave referidas a esta actividad.


CLAVE DE LOS PRINCIPALES GRUPOS DE ORGANISMOS (REINO MONERA, PROTISTA, FUNGI Y PLATAS)

A – Unicelulares o pluricelulares, visibles al microscopio óptico o a simple vista, cuando

pluricelulares sin cormo (raíces, tallos, hojas, ni flores) diferenciados. Fotosintéticos o no.

B – Unicelulares, sin núcleo diferenciado. Se multiplican por división transversal.

Fotoautótrofos (pigmentos en tilacoides).

C – Liberan O2, móviles (presencia de flagelos) o inmóviles. Con pigmentos

fotosintéticos no en cloroplastos, de color verdeazulado.

DIVISIÓN CYANOBACTERIA

(CYANOPHYTA)

CC – No liberan O2, móviles (con flagelos) o inmóviles.

DIVISIÓN SCHIZOPHYTA

(BACTERIOPHYTA)

BB - Con núcleo diferenciado.

D – No fotosintéticos.

E – Sin pared celular, Fase vegetativa móvil, plasmodial. Habitualmente

sobre suelos húmedos o cubiertos de detritos.

DIVISIÓN MYXOMYCOTA

EE – Con pared celular quitinosa. Talo uni o pluricelular cenocítico o

tabicado.

DIVISIÓN EUMYCOTA

DD – Fotosintéticos

F – Acuáticos o de lugares húmedos

G – Unicelulares, coloniales o pluricelulares (talo filamentoso,

folioso, parenquimatoso, etc.) Reproducción sexual y asexual.

H – Unicelulares, flagelados. Se multiplican por división

longitudinal. Cromatóforos verdes.

DIVISIÓN EUGLENOPHYTA

HH – Uni o pluricelulares, flagelados. Cuando unicelulares

con dos flagelos laterales característicos. Algunos con placas

o armaduras.

DIVISIÓN PYRROPHYTA

I – Pigmentos en cromatóforos verdes. Almidón coloreable

con Iodo dentro de los cloroplastos.

DIVISIÓN CLOROPHYTA

II – Cromatóforos verdes enmascarados con otros pigmentos.

J – Cromatóforos verdes enmascarados por ficobili-

proteínas (color rojo azulado). Todas marinas.

DIVISIÓN RHODOPHYTA

JJ – Cromatóforos verdes enmascarados por ca-

rotenoides (color verde amarillento). En algunos

organismos (unicelulares) la pared formada por dos

pares solapadas iguales o diferentes (diatomeas).

Marinos y de agua dulce.

DIVISIÓN CHRYSOPHYTA


GG – Todos pluricelulares, hasta talos parenquimatosos sifonales

muy organizados. Pueden tener gran tamaño. Cromatóforos

enmascarados por carotenoides xantófilos. Color marrón pardo.

Marinas.

DIVISIÓN PHAEOPHYTA

FF – No acuáticos. Simbiontes formados generalmente por especies de

Cianófitas con Hongos. De morfología diversa.

LICHENES

AA – Pluricelulares visibles a simple vista, con talo o cormo diferenciados. Todos fotosintéticos.

K – Sin tejido vascular, talo diferenciado. Ciclo de vida haplodiplonte gametofito

fotosintético.

DIVISIÓN BRYOPHYTA

KK – Con tejido vascular y cormo diferenciado.

L – Sin flores ni semillas. Ciclo de vida haplodiplonte, esporofito dominante,

gametofito independiente.

DIVISIÓN PTERIDOPHYTA

LL – Con semillas. Esporofito dominante, gametofito no independiente.

DIVISIÓN SPERMATOPHYTA

M – Semillas desnudas, protegidas por brácteas

SUBDIVISIÓN GYMNOSPERMAE

MM – Semillas encerradas en una estructura carpelar (ovario). Desarrollo de

flores y frutos.

SUBDIVISIÓN ANGIOSPERMAE

N- Embrión con dos cotiledones. Flores tetra o pentámeras.

Crecimiento secundario. Láminas foliares retinervadas.

CLASE DICOTYLEDONEAE

NN – Embrión con un cotiledón. Flores trímeras. Sin crecimiento

secundario. Láminas foliares paralelinervadas.

CLASE MONOCOTYLEDONEAE


ECOLOGÍA

Objetivo Reconocer los ecosistemas que se presentan en el Jardín Botánico Selva

Misionera.

Aplicar distintos métodos de medición del tamaño de una población determinada.

Identificar los organismos que conforman la comunidad de estudio.

Establecer el hábitat, nicho ecológico y distribución de las especies estudiadas en la

comunidad.

Hipotetizar acerca de las relaciones intraespecíficas e interespecíficas que se desarrollan en

esa comunidad.

Identificar la diversidad de especies de la comunidad.

Introducción Este práctico está dedicado a la ecología (término que proviene de la palabra griega oikos, “casa”).

La ecología estudia las relaciones entre los seres vivos y su ambiente inanimado. El ambiente está

integrado por un componente abiótico (inanimado), que incluye el suelo, el agua, el clima, y un

componente biótico (organismos), que incluye todas las formas de vida. El término ecosistema se

refiere tanto al ambiente inanimado como a todos los organismos presentes en una zona definida,

por ejemplo la selva paranaense. Dentro de un ecosistema todas las poblaciones de organismos que

interactúan constituyen una comunidad.

ACTIVIDAD 1:

1. En el Jardín Botánico Selva Misionera, identifique y describa los distintos ambientes y/o

ecosistemas que se pueden observar.

2. Delimite una zona determinada del Jardín, e identifique la diversidad de especies que posee esa

comunidad:

a. Tener presente la riqueza de especies observables y la abundancia relativa de las

mismas

3. Especifique las relaciones alimentarias (Estructura trófica) de la comunidad, esquematizando

una cadena trófica y una red trófica de la misma.

4. Identifique en la comunidad estudiada las relaciones intraespecíficas e interespecíficas entre las

poblaciones (mutualismo, competencia, depredación, comensalismo, parasitismo, etc.).

5. Identifique cuál es la especie dominante de la comunidad estudiada, hipotetice por qué esa

especie se volvió dominante en esa comunidad.

6. Observe si hay presencia de especies invasoras. Justifique si estas son dominantes o no. ¿Qué

impacto puede tener esta especie sobre la comunidad?

ACTIVIDAD 2: Medición del tamaño poblacional

Un parámetro fundamental para el estudio de una población en un momento dado es su tamaño.

Para estimarlo, no alcanza con saber cuál es el número total de individuos que la componen, ya que

esta cifra puede resultar poco significativa si no se tiene en cuenta el área que ocupan y otros datos


como las dimensiones de los organismos. Por lo tanto, para definir el tamaño de una población es

necesario conocer su densidad y el espacio total que ocupa.

Se denomina densidad al número de individuos por unidad de superficie o de volumen.

Este parámetro brinda mayor información acerca de la población, puesto que no solo es conse-

cuencia del número de organismos sino que también es el resultado de las interacciones que se

establecen entre ellos y de la disponibilidad de los recursos que utilizan.

La densidad de una población cambia en el espacio y con el tiempo; también se modifica su

tamaño total.

Los parámetros que inciden directamente sobre el tamaño poblacional son la natalidad –

número de nacimientos – y la mortalidad – número de muertes – las migraciones, las edades y la

proporción de sexos.

Cuando se estudia una población en un momento dado es imprescindible conocer estas

variables, ya que solo así se tendrá una idea más precisa de su situación actual y futura.

¿Cómo organizar un censo de población?

Cuando se desea realizar estimaciones poblacionales, estudio de dispersión como así

también sobre sexo y edad de los individuos de diversas poblaciones, se utilizan distintas técnicas

de marcación.

Para marcar se pueden utilizar:

Pinturas y soluciones colorantes

Sustancias fluorescentes.

Rótulos y etiquetas.

Mutilaciones.

Isótopos radioactivos.

La aplicación de una marca a un individuo está sujeta, claro está, a que ella no lo afecte, vale

decir, que se tendrán que efectuar pruebas de laboratorio previas donde se compruebe el grado de

tolerancia de la marca, que no afecte el mimetismo natural del espécimen y su durabilidad.

El censo de población se puede realizar por dos procedimientos:

1º METODO DEL CONTEO

Se utiliza en el caso de animales grandes, tales como ciervos, llamas, guanacos, los cuales se

encierran en un área delimitada o corral. A medida que se los libera se realiza el conteo, tal como

se efectúa con el ganado en las estancias. Este método también lo podemos utilizar para ejemplares

de árboles, renovales, etc.

Actividad nº 2.1: censo por conteo

Materiales 4 estacas

1 piolín de 2m de largo

1 escoba o pincel (grande)


Procedimiento 1. Busque un lugar húmedo y compruebe la presencia de helechos de distintas especies.

2. Delimite con cuatro estacas y piolín un cuadrado de 4 decímetros de lado.

3. Determine el número de helechos encontrados, es decir realice un censo.

4. Exprese la cantidad de helechos hallados en la superficie delimitada. (Densidad).

5. Identifique el hábitat, nicho ecológico y distribución de una de las especies de helechos

encontradas.

6. ¿Qué factores intervienen en la distribución de estas plantas en el ambiente en el que

viven?

2º MÉTODO DEL MUESTREO

Se utiliza preferentemente cuando se trata de poblaciones de especies muy pequeñas y abundantes:

musgos, lombrices, caracoles, mejillones, plantas herbáceas, etc.

¿Cómo realizar un censo por muestreo? La respuesta a esta pregunta la obtendrá con la actividad

2.2.

Actividad nº 2.2: censo por muestreo

Supongamos que se desea conocer la cantidad de lombrices que habitan en una hectárea de terreno

(una manzana). Para poder efectuar el censo de la población Ud. necesita lo siguiente:

Materiales 1 recipiente de 10 litros o 2 de 5 litros

1 sachet (120 ml) de detergente biodegradable

20 estacas

21 m de hilo o piolín

Agua

1 recipiente pequeño (ej. lata de duraznos o tomates, frasco de mayonesa)


Procedimiento

1. Delimite sobre la Ha cinco cuadrados de 1 m de lado, con 4 estacas y un hilo en cada caso.

Si la superficie del terreno circunscripto es irregular, procure emparejarla,

2. Coloque 8 ml de detergente en 10 litros de agua. Revuelva evitando hacer espuma.

3. Con un recipiente más pequeño vuelque el agua sobre el cuadrado.

4. A medida que las lombrices salen a la superficie recójalas y enjuáguelas en el agua limpia.

5. Espere a que la lombriz salga completamente de su galería antes de tomarla con la mano.

6. En cada cuadrado vuelque en total 3 veces 10 litros de agua con detergente.

7. Registre los datos de las tres recolecciones en la tabla siguiente:

Cuadrado 1ª recolección 2ª recolección 3ª recolección Subtotal

1

2

3

4

5

Total general

Promedio

8. Calcule el promedio por m2 de las lombrices en los 5 m

2 censados:………………

9. Calcule el número de lombrices por Ha multiplicando ese promedio por 10.000 m2

10. Identifique el hábitat, el nicho ecológico, y la distribución de la población de lombrices

estudiada.

11. ¿Qué factores intervienen en la distribución de estos animales en el ambiente estudiado?

12. Realice una conclusión determinando las relaciones entre ecosistemas, comunidades,

poblaciones y los otros aspectos o conceptos estudiados en este práctico (muestra, distribución de

poblaciones, diversidad, riqueza, estructura trófica, etc.).

13. Realice un glosario con al menos 10 palabras claves que se han trabajado en el práctico.

Nº de lombrices en la Ha que ha censado……………..


EVOLUCIÓN: SELECCIÓN NATURAL

Objetivo Interpretar, a través de una simulación, el modo en que actúa la selección natural.

Introducción

Al igual que el darwinismo, la teoría sintética pone de relieve la naturaleza oportunista de

la evolución por selección natural, pues considera que las diferencias hereditarias, originadas de

generación en generación, se producen por azar y son seleccionadas en respuesta a las exigencias

del medio.

Materiales Bolitas de 6 colores diferentes (2 colores claros, incluido el blanco; 2 colores oscuros; dos

colores semejantes a los predominantes en los ambientes seleccionados, -verdes moteados): 100

bolitas de cada color.

8 estacas

20 m de piolín.

2 bolsas de nailon.

Reloj con segundero.

Procedimiento

1. Formen grupos de 4 a 5 integrantes. Designen un coordinador en cada grupo.

2. Seleccionen dos lugares en el patio que sean bien diferentes (por ejemplo, un lugar con pasto y

uno sin cubierta vegetal).

3. Delimiten con las estacas y el piolín un sector de 3 m2 en cada lugar elegido.

4. Denominen a cada uno de los ambientes A, y al otro, B.

5. Coloquen 20 bolitas de cada color en una bolsa (esto representará a la población inicial). Las

restantes quedarán en una bolsa de reserva.

6. El coordinador de cada equipo se encargará de esparcir su población inicial en cada uno de los

ambientes. Luego, con su reloj controlará 20 segundos, durante los cuales los otros integrantes

del equipo recolectarán la mayor cantidad de bolitas que sea posible.

7. Calculen cuántas bolitas de cada color no fueron recogidas y anoten estos resultados.

8. Ahora, simularán la reproducción entre las bolitas que permanecen esparcidas. Para esto agre-

garán 3 bolitas (de la bolsa de reserva) por cada uno de los diferentes colores y registren cómo

está conformada la segunda generación.

9. Repitan la recolección de bolitas durante 20 segundos y registren la cantidad de bolitas de cada

color que aún permanecen en el ambiente.

10. Elaboren una tabla donde registren: la población inicial de cada color, la población sobrevi-

viente a la primera recolección, la población sobreviviente más sus descendientes y al pobla-

ción sobreviviente a la segunda recolección.

11. Construyan un gráfico de barras con los datos obtenidos para cada población de bolitas.



1. ¿Qué relación interespecífica se simula en esta actividad?

2. Sobre la base de los últimos resultados y usando el criterio del punto 8, describa cómo

estaría conformada la tercera generación de la población.

3. Analizando el gráfico elaborado y comparando la estructura de la población inicial con la

obtenida para la tercera generación, ¿qué inferencias puede realizar con respecto a la

coloración y la relación de esta con el ambiente?

4. ¿Qué elemento del ambiente actuó como factor de selección?

5. Algunos biólogos cuestionan que la evolución de ciertas características adaptativas, como

la coloración críptica, sean el resultado de la selección natural. Un investigador

norteamericano se dedicó a un estudio completo del contenido estomacal de algunas

especies de pájaros, y encontró un gran número de formas de insectos que se suponían

protegidas por su color. Entonces no solo se opuso a la idea de coloración adaptativa, sino

que, además, concluyó que el estar camuflado carecía de valor adaptativo y que la selección

natural no producía individuos con estas características.

¿Qué información le aportaría a este científico para que reviera su postura? Justifique

la selección realizada.

6. La coloración críptica es solamente el resultado de la selección natural. ¿Es esta una

afirmación correcta? Justifique la respuesta.

7. Elabore un glosario de al menos 10 palabras clave relacionadas a esta actividad, incluya el

origen etimológico y la definición.

Documents

Cuadernillo de Biología 2015