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Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria Ediciones Biotecnología y Mejoramiento Vegetal II Consejo Argentino para la Información y el Desarrollo de la Biotecnología Editores: , Viviana Echenique, Clara Rubinstein, Esteban Hopp y Luis Mroginski Gabriela Levitus

Libro de mejoramiento y biotecnología vegetal

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  • 1. Instituto Nacional de Tecnologa Agropecuaria Ediciones Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II Consejo Argentino para la Informacin y el Desarrollo de la Biotecnologa Editores: , Viviana Echenique, Clara Rubinstein, Esteban Hopp y Luis Mroginski Gabriela Levitus Auspicios ArgenBio es el Consejo Argentino para la Informacin y Desarrollo de la Biotecnologa. Es una organizacin sin fines de lucro que tiene como misin divulgar informacin sobre la biotecnologa, contribuyendo a su comprensin a travs de la educacin y estimulando su desarrollo. Consideramos prioritario el apoyo a iniciativas relacionadas con la biotecnologa y dirigidas a la comunidad educativa de todos los niveles. En este sentido, este libro cubre una necesidad importante ya que aporta informacin completa y actualizada sobre las tecnologas de laboratorio que se aplican al mejoramiento vegetal, escrita por especialistas y en idioma espaol. Confiamos en que tanto estudiantes con profesionales encontrarn en este libro una excelente fuente de informacin. Para conocer ms sobre ArgenBio, visitar www.argenbio.org INSTITUTO NACIONAL DE TECNOLOGA AGROPECUARIA ARGENBIO - Consejo Argentino para la Informacin y el Desarrollo de la Biotecnologa
  • 2. 1Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II Editores: Dra. Gabriela Levitus, Dra. Viviana Echenique, Dra. Clara Rubinstein, Dr. Esteban Hopp Ing. Agr. Luis Mroginski.
  • 3. 2 Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II
  • 4. 3Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II ndice Prefacio ............................................................................................................................... Agradecimientos ................................................................................................................ Lista de Autores .................................................................................................................. Prlogo a la Primera Edicin. Dr. Francisco Garca Olmedo ............................................. Prlogo a la Segunda Edicin. Dr. Francisco Garca Olmedo ........................................... Parte I: Herramientas Bsicas ........................................................................................... Captulo 1: Establecimiento de cultivos de tejidos vegetales. Luis Mroginski, Pedro Sansberro y Eduardo Flaschland . Captulo2:Morfognesis.SilviaRadice ... Captulo 3: La citogentica molecular e inmunocitogentica en el estudio de los genomas ve- getales. Guillermo Seijo, Graciela I. Lavia, Germn Robledo, Aveliano Fernndez y Viviana G. Sols Neffa. .................................................................................................................................................. Captulo 4: Herramientas bsicas de ingeniera gentica. Ingrid Garbus, Marisa Gmez y Vi- viana Echenique. ................................................................................................................................ Captulo 5: Marcadores moleculares. Mara Carolina Martnez, Marcelo Helguera y Alicia Carrera. Captulo 6: Construccin de mapas de ligamiento gentico, localizacin de genes y regiones cromosmicas asociadas a caracteres de inters en plantas. Gerardo D. L. Cervigni, Juan Pa- blo A. Ortiz y Sergio E. Feingold. ......................................................................................................... Captulo 7: Genmica. Viviana Echenique, Juan P. Selva, Mauro Meier, Pablo Roncallo y Gustavo Schrauf. .............................................................................................................................................. Captulo 8: Transcriptmica. Silvina Pessino y Silvina Felitti. .......................................................... Captulo 9: Protemica. Paula Casati y Mara F. Drincovich ............................................................. Captulo 10: Metabolmica. Fernando Carrari, Telma E. Scarpeci, Luciano A. Abriata, Alejandro J. Vila y Estela M. Valle. ......................................................................................................................... Captulo 11: Metagenmica. O. Mario Aguilar y Daniel H. Grasso. ................................................... Captulo 12: Bioinformtica aplicada a la biotecnologa vegetal. Norma Paniego, Ruth Heinz, Paula Fernndez, Vernica Lia, Corina Fusari. ................................................................................... Parte II: Mtodos para generar y analizar diversidad Captulo 1: Polinizacin y fertilizacin in vitro. Susana Cardone, Gladys Prez Camargo y Aurora Picca. .................................................................................................................................................. Captulo 2: Hibridacin somtica. Pablo Polci y Pablo Friedrich. .................................................... 6 7 7 11 11 15 17 26 34 47 70 86 100 121 136 146 157 170 183 185 197
  • 5. 4 Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II 211 217 229 243 259 271 283 295 297 311 325 339 351 353 363 369 377 379 389 403 421 Captulo 3: Epigentica y evolucin. Ricardo W. Masuelli y Carlos F. Marfil .................................. Captulo 4. Mutagnesis, TILLING y EcoTILLING. Alberto Prina, Alejandra Landau, Mara Gabriela Pacheco y Esteban Hopp ................................................................................................................... Captulo 5: Variacin somaclonal. Susana Cardone, Sofa Olmos y Viviana Echenique. ............... Captulo 6: Aplicacin de la transformacin gentica al mejoramiento vegetal. Marina L. Daz, Diego C. Zappacosta, Pascual M. Franzone y Ral D. Ros ............................................................... Captulo 7: Usos del silenciamiento gnico para el anlisis funcional de genes candidatos. Cecilia Vzquez Rovere, Ariel Bazzini, Cecilia Rodrguez, Natalia Almasia y Sebastin Asurmendi .. Captulo 8: Anlisis de experimentos biolgicos. Sofa Olmos, Miguel DiRenzo, Mercedes Ib- ez, Nlida Winzer .............................................................................................................................. Captulo 9: Mtodos multivariados para estimar variabilidad gentica. Nlida Winzer, Miguel DiRenzo, Sofa Olmos y Mercedes Ibez. ......................................................................................... Parte III: Mtodos para acelerar programas de mejoramiento e identificacin varietal Captulo 1: Obtencin de plantas doblehaploides. Pablo Polci, Vernica Conti y Rubn Miranda y Nicols Gear. .................................................................................................................................... Captulo 2: Aplicaciones de los marcadores moleculares. Alicia Carrera, Gabriela Tranquilli, An- tonio Garayalde y Marcelo Helguera. .................................................................................................. Captulo 3: Marcadores moleculares y mejoramiento gentico de cultivos. Carlos Sala, Maria- no Bulos, Anala Fresco y Emiliano Altieri. .......................................................................................... Captulo 4: Identificacin y registro de variedades. Ana Laura Vicario, Marcelo Labarta y Mara Alicia Loray ......................................................................................................................................... Parte IV: Mtodos de propagacin y conservacin de germoplasma Captulo 1: Micropropagacin. Sofa Olmos, Gabriela Luciani y Ernestina Galdeano .................... Captulo 2: Semilla sinttica. Hebe Rey y Luis Mroginski ................................................................. Captulo 3: Conservacin de germoplasma in vitro. Adriana Scocchi y Hebe Rey. ....................... Parte V: Ejemplos de aplicaciones de la biotecnologa vegetal Captulo 1: Aportes de la citogentica al estudio de genomas vegetales. Lidia Poggio, Gra- ciela Gonzlez, Mara Rosa Ferrari, Ana Mara Garca, Arturo Wulff, Eduardo Greizerstein, Pablo Tomas y Gustavo Schrauf. .................................................................................................................. Captulo 2: Mejoramiento de plantas forrajeras en la era genmica. Germn Spangenberg, Mauro Meier y Viviana Echenique ....................................................................................................... Captulo 3: Caracterizacin molecular de la apomixis y su aplicacin en la agricultura. Silvi- na C. Pessino y Juan Pablo A. Ortiz .................................................................................................... Captulo 4: Avances de la biotecnologa en cultivos ornamentales. Alejandro S. Escandn, Pa- blo A. Marinangeli y Mariana Prez de la Torre. ..................................................................................
  • 6. 5Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II 435 447 457 467 481 495 507 519 529 539 545 559 569 571 583 595 603 613 621 631 633 Captulo 5: Aplicacin de la biotecnologa en la mejora y conservacin de especies forestales. Susana Marcucci Poltri, Leonardo Gallo, Noga Zelener, Susana Torales, Sandra Sharry .................... Captulo 6: Tcnicas de ingeniera gentica para conferir resistencia a virus en plantas. Maria- na del Vas, Ana Julia Distfano, Cecilia Vzquez-Rovere, Esteban H. Hopp. ..................................... Captulo 7: Obtencin de plantas resistentes a enfermedades bacterianas. Adrin Vojnov, Mer- cedes Rivero y Diego Zappacosta ....................................................................................................... Captulo 8: Aproximaciones biotecnolgicas para un manejo sustentable del estrs fngico en la agricultura. Juan Carlos Daz Ricci; Ursula Tonello; Gustavo Martnez-Zamora; Sergio Sala- zar; Nadia Chalfoun; Gabriel Vellicce; Carlos Grellet; Paula Filippone; Alicia Mamani; Marta Ontivero y Atilio Pedro Castagnaro. ................................................................................................................... Captulo 9: Utilizacin de cultivos de tejidos para la obtencin y conservacin de plantas li- bres de enfermedades. Vilma Conci. ................................................................................................ Captulo 10: Obtencin de plantas resistentes a insectos. Dalia Lewi y Clara Rubinstein ............... Captulo 11: Aplicaciones biotecnolgicas al manejo de malezas. Germn Ferrari y Julio E. De- lucchi. .................................................................................................................................................. Captulo 12: Obtencin de plantas tolerantes a distintos tipos de estreses abiticos. Florencia del Viso, Andrea F. Puebla, Nstor Carrillo y Raquel L. Chan ............................................................. Captulo 13: Manipulacin gentica del metabolismo secundario en plantas. Alicia Zelada, Ma- ra Binaghi ........................................................................................................................................... Captulo14:Mejorasdecalidadenalimentos.ClaraRubinstein,GabrielaLevitus ............................. Captulo 15: Fitorremediacin. Mara Eugenia Segretn, Paula Bey yAlejandro Mentaberry ............. Captulo 16: Plantas como biorreactores. Fernando Bravo Almonacid, Sonia Wirth, Mara Eugenia Segretin, Mauro Morgenfeld, Ezequiel Matas Lentz. ......................................................................... Parte VI: Manejo responsable de la tecnologa Captulo 1: Criterios cientficos para la evaluacin de la bioseguridad de Organismos Genti- camente Modificados. Clara Rubinstein ........................................................................................... Captulo 2: Bioseguridad de Organismos Genticamente Modificados - Marcos Regulatorios. Moiss Burachik .................................................................................................................................. Captulo 3: Flujo gnico y su posible impacto ambiental. Mnica Poverene, Soledad Ureta y Agustina Gutirrez. ............................................................................................................................. Captulo 4: Deteccin de OGM en la cadena agroalimentaria. Florencia Longo y Ana Vicario. ....... Captulo 5: Manejo integrado de plagas Programa de Refugios. Viviana Confalonieri y Cecilia Roca. ................................................................................................................................................... Captulo 6: Resistencia de malezas a herbicidas: evolucin y estrategias de manejo. Daniel Tuesca, Luisa Nisensohn, Mario R. Sabbatini, Guillermo Chantre. ..................................................... Parte VII: Biotecnologa y sociedad Captulo1:Latransformacintecnolgicaylosnuevosdesafos.CarmenVicin. ..........................
  • 7. 6 Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II Captulo 2: Adopcin de los cultivos genticamente modificados en Argentina y en el mun- do. Gabriela Levitus ......................................................................................................................... Captulo 3: Biotecnologa en la mira: el problema de la percepcin. Valeria Durand ............... 639 643
  • 8. 7Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II PREFACIO En oportunidad de la Primera Edicin de Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal, nos habamos propuesto responder a la necesidad de un texto en idioma espaol, dirigido a docentes y estudian- tes de los cursos de Agronoma y de otras formaciones relacionadas con las tecnologas aplicadas al mejoramiento vegetal, as como brindar un recurso de informacin general y consulta para no especialistas. Esta Segunda Edicin, intenta actualizar, profundizar y extender estas temticas, atendiendo a la rpida evolucin en este campo del conocimiento. En el contexto de los principios bsicos del mejoramiento, es decir, generar variabilidad genti- ca y seleccionar caractersticas deseables, las tecnologas evolucionan rpidamente y, del mismo modo, se acelera la transferencia del conocimiento bsico a las aplicaciones. Esta edicin intenta reflejar este proceso dinmico y aportar informacin actualizada con ejemplos de aplicaciones al mejoramiento de diferentes especies vegetales. En este trabajo se han reunido las contribuciones de investigadores y especialistas en diferentes campos relacionados con el mejoramiento. En las secciones dedicadas a las herramientas bsicas, se ha hecho foco en las tcnicas de cultivo de tejidos y micropropagacin que se utilizan en s mis- mas para generar variabilidad, conservar germoplasma, producir clones libres de enfermedades o como paso obligado en la construccin de plantas transgnicas. En la seccin que se ocupa de las aplicaciones de estas tcnicas a casos especficos, se brindan ejemplos de mejoramiento logrado en diferentes especies. La tecnologas omicas (genmica, transcriptmica, metabolmica) constituyen una de las herra- mientas ms importantes en el mejoramiento, por la potencialidad que presentan, tanto en el campo de la investigacin bsica, en el mapeo de genes y la identificacin de marcadores moleculares, como en la identificacin de funciones y redes regulatorias que influyen en las caractersticas que se desean mejorar: resistencia a enfermedades y plagas, rendimiento, calidad nutricional y respuestas a diferentes tipos de estrs ambiental, entre otras. Es claro que dentro de las tecnologas de mejoramiento, la transgnesis o transformacin ge- ntica es una de las herramientas ms verstiles y poderosas, ya que permite resolver problemas que por va del mejoramiento convencional no sera posible enfrentar. En esta edicin se presentan numerosos ejemplos de transgnesis para la obtencin de cultivos tolerantes a estrs bitico y abitico, a plagas y enfermedades o con mejoras en su calidad nutricional. Desde 1996, cuando se cultivaron por primera vez, la superficie mundial de cultivos transgnicos aument 80 veces, alcanzando las 134 millones de hectreas en 2009. Segn el ltimo informe del ISAAA (Servicio Internacional para las Adquisiciones Agrobiotecnolgicas) estas hectreas fueron cultivadas por 14 millones de agricultores de 25 pases, siendo Argentina uno de los lderes en adopcin, con el 16% del rea global. Por otro lado, es importante notar que se han establecido sistemas de control a nivel internacional para regular el desarrollo y la aplicacin de la ingeniera gentica al mejoramiento de organismos vivos (conocidos como organismos genticamente modificados u OGMs). Si bien stos no se limitan a plantas, en este trabajo se presentan slo los aspectos regulatorios y de bioseguridad relaciona- dos con los cultivos transgnicos. Esperamos que esta nueva edicin constituya una herramienta til y accesible para docentes, estudiantes y profesionales que se dedican y se dedicarn a la noble tarea de mejorar la agricultura. Los Editores
  • 9. 8 Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II AGRADECIMIENTOS A todos y cada uno de los 141 autores, en su mayora investigadores y profesionales de institu- ciones argentinas, que han contribuido con sus aportes. Al Dr. Francisco Garca Olmedo, reconocido investigador y catedrtico espaol, por regalarnos tambin el prlogo de esta segunda edicin. Al Consejo Argentino para la Informacin y el Desarrollo de la Biotecnologa (ArgenBio), por aus- piciar la publicacin del libro. A los revisores, colegas y personal de apoyo, por sus valiosas contribuciones para concretar este proyecto. Los Editores El uso de fuentes y nombres comerciales en este documento es slo para fines de identificacin y no implica ningn aval ni recomendacin. Adems, los contenidos u opiniones expresadas en esta publicacin son de exclusiva responsabilidad de los autores. LISTAS DE AUTORES (por orden alfabtico) Abriata Luciano A. Instituto de Biotecnologa, INTA Castelar Aguilar O. Mario IBBM, Facultad de Ciencias Exactas, UNLP Almasia Natalia Instituto de Biotecnologa, INTA Castelar Altieri Emiliano Nidera Semillas Asurmendi Sebastin Instituto de Biotecnologa, INTA Castelar Bazzini Ariel Instituto de Biotecnologa, INTA Castelar Bey Paula INGEBI, CONICET Binaghi Mara Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, UBA Bravo Almonacid Fernando INGEBI, CONICET Bulos Mariano Nidera Semillas Burachik Moiss Dir. de Biotecnologa, Min. de Agricultura, Ganadera y Pesca Cardone Susana Facultad de Agronoma, UBA Carrari Fernando Instituto de Biotecnologa, INTA Castelar Carrera Alicia Departamento de Agronoma, Universidad Nacional del Sur Carrillo Nstor IBR - Facultad de Cs Bioquimicas y Farmaceuticas, UNR Casati Paula CEFOBI, Universidad Nacional de Rosario Castagnaro Atilio Pedro EEAOC, Tucumn Cervigni Gerardo D. CEFOBI, Universidad Nacional de Rosario Chalfoun Nadia INSIBIO, CONICET, Universidad Nacional de Tucumn Chan Raquel L. Universidad Nacional del Litoral Chantre Guillermo CERZOS, CONICET, Universidad del Sur Conci Vilma INTA IFFIVE Confalonieri Viviana Facultad de Ciencias Exactas y Naturales (UBA) Conti Vernica INTA-EEA Bordenave del Vas Mariana Instituto de Biotecnologa, INTA Castelar del Viso Florencia Instituto de Biotecnologa, INTA Castelar Delucchi Julio E. Monsanto Argentina
  • 10. 9Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II Daz Marina L. CERZOS, CONICET, Universidad del Sur Daz Ricci Juan Carlos INSIBIO, CONICET, Universidad Nacional de Tucumn DiRienzo Miguel Facultad de Agronoma, Universidad Nacional de Crdoba Distfano Ana Julia Instituto de Biotecnologa, INTA Castelar Drincovich Mara F. CEFOBI, Universidad Nacional de Rosario Durand Valeria Ketchum Argentina - ArgenBio Echenique Viviana Departamento de Agronoma, Universidad Nacional del Sur Escandn Alejandro S. Instituto de Floricultura, INTA Castelar Feingold Sergio E. INTA - EEA Balcarce Felitti Silvina Universidad Nacional de Rosario Fernndez Aveliano Fac. Cs Exactas y Naturales y Agrimensura UNNE IBONE Fernndez Paula Instituto de Biotecnologa, INTA Castelar Ferrari Germn Monsanto Argentina Ferrari Mara Rosa Universidad Nacional de Buenos Aires Filippone Paula EEAOC, Tucumn Flaschland Eduardo Facultad de Ciencias Agrarias (UNNE) IBONE Franzone Pascual M. IGEAF INTA Castelar Fresco Anala Nidera Semillas Friedrich Pablo Universidad Nacional del Sur Fusari Corina Instituto de Biotecnologa, INTA Castelar Galdeano Ernestina Facultad de Ciencias Agrarias (UNNE) IBONE Gallo Leonardo INTA - EEA Bariloche Garayalde Antonio CERZOS, CONICET, Universidad Nacional del Sur Garbus Ingrid CERZOS, CONICET, Universidad Nacional del Sur Garca Ana Mara Facultad de Agronoma, UBA Garca Olmedo Francisco Universidad Politcnica de Madrid Gear Nicols Syngenta Gmez Marisa CERZOS, CONICET, Universidad Nacional del Sur Gonzlez Graciela Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, UBA Grasso Daniel H. Instituto de Suelos, INTA Castelar Greizerstein Eduardo Facultad de Ciencias Exactas y Naturales UBA Grellet Carlos INSIBIO, CONICET, Universidad Nacional de Tucumn Gutirrez Agustina Universidad Nacional del Sur Heinz Ruth Instituto de Biotecnologa, INTA Castelar Helguera Marcelo INTA EEA Marcos Jurez Hopp Esteban Instituto de Biotecnologa, INTA Castelar Ibez Mercedes Universidad Nacional de Ro Cuarto Labarta Marcelo Instituto Nacional de Semillas INASE Landau Alejandra Instituto de Biotecnologa, INTA Castelar Lavia Graciela I. Fac. de Cs Exactas y Naturales y Agrimensura UNNE, IBONE Lentz Ezequiel M. INGEBI, CONICET Levitus Gabriela ArgenBio Lewi Dalia IGEAF INTA Castelar Lia Vernica Instituto de Biotecnologa, INTA Castelar Longo Florencia Instituto de Biotecnologa, INTA Castelar Loray Mara Alicia Direccin de Calidad - INASE Luciani Gabriela CERZOS, CONICET, Universidad Nacional del Sur Mamani Alicia INSIBIO, CONICET, Universidad Nacional de Tucumn Marcucci Poltri Susana Instituto de Biotecnologa, INTA Castelar Marfil Carlos F. INTA - EEA Mendoza Marinangeli Pablo A. CERZOS, CONICET, Universidad Nacional del Sur Martnez Ma. Carolina Instituto de Biotecnologa, INTA Castelar
  • 11. 10 Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II Martnez-Zamora Gustavo INSIBIO, CONICET, Universidad Nacional de Tucumn Masuelli Ricardo W. INTA - EEA Mendoza Meier Mauro CERZOS, CONICET, Universidad Nacional del Sur Mentaberry Alejandro Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, UBA Miranda Rubn Asociacin Cooperativas Argentinas (ACA), Univ. del Sur Morgenfeld Mauro INGEBI, CONICET Mroginski Luis Facultad de Ciencias Agrarias (UNNE) IBONE Nisensohn Luisa Universidad Nacional de Rosario Olmos Sofa Laboratorio de Biotecnologa, INTA Pergamino Ontivero Marta INSIBIO, CONICET, Universidad Nacional de Tucumn Ortiz Juan Pablo Facultad de Ciencias Agrarias, UNR Pacheco Ma. Gabriela IGEAF INTA Castelar Paniego Norma Instituto de Biotecnologa, INTA Castelar Prez Camargo Gladys Facultad de Agronoma, UBA Prez de la Torre Mariana Instituto de Floricultura, INTA Castelar Pessino Silvina C. Facultad de Ciencias Agrarias, UNR Picca Aurora Departamento de Agronoma, Universidad Nacional del Sur Poggio Lidia Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, UBA Polci Pablo Departamento de Agronoma, Universidad Nacional del Sur Poverene Mnica Departamento de Agronoma, Universidad Nacional del Sur Prina Alberto IGEAF INTA Castelar Puebla Andrea F. Instituto de Biotecnologa, INTA Castelar Radice Silvia INTA Castelar Rey Hebe Facultad de Ciencias Agrarias (UNNE) - IBONE Ros Ral D. IGEAF INTA Castelar Rivero Mercedes Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, UBA Robledo Germn Fac. de Cs Exactas y Naturales y Agrimensura UNNE, IBONE Roca Cecilia Dow Agrosciences Rodrguez Cecilia Instituto de Biotecnologa, INTA Castelar Roncallo Pablo CERZOS, CONICET Rubinstein Clara Monsanto Argentina ILSI Sabbatini Mario R. CERZOS, CONICET, Universidad Nacional del Sur Sala Carlos Nidera Semillas Salazar Sergio INSIBIO, CONICET, Universidad Nacional de Tucumn Sansberro Pedro Facultad de Ciencias Agrarias (UNNE) - IBONE Scarpeci Telma E. IBR - Facultad de Cs Bioquimicas y Farmaceuticas, UNR Schrauf Gustavo Facultad de Agronoma, UBA Scocchi Adriana Facultad de Ciencias Agrarias (UNNE) - IBONE Segretin Ma. Eugenia INGEBI, CONICET Seijo Guillermo Fac. de Cs Exactas y Naturales y Agrimensura UNNE, IBONE Selva Juan P. CERZOS, CONICET, Universidad Nacional del Sur Sharry Sandra Facultad de Agronoma, Universidad Nacional de La Plata Sols Neffa Viviana G. Facultad de Ciencias Agrarias (UNNE) IBONE Spangenberg Germn Victorian Department of Primary Industries (DPI) Tomas Pablo FCA, Universidad Nacional del Litoral Tonello Ursula INSIBIO, CONICET, Universidad Nacional de Tucumn Torales Susana IRB, INTA Castelar Tranquilli Gabriela IRB, INTA Castelar Tuesca Daniel Facultad de Ciencias Agrarias, UNR Ureta Soledad CERZOS, CONICET, Universidad Nacional del Sur Valle Estela M. IBR - Facultad de Cs Bioqumicas y Farmaceuticas, UNR Vzquez Rovere Cecilia Instituto de Biotecnologa, INTA Castelar
  • 12. 11Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II Vellicce Gabriel EEAOC, Tucumn Vicario Ana Laura Direccin de Calidad INASE Vicin Carmen Facultad de Agronoma, UBA Vila Alejandro J. IBR - Facultad de Cs Bioqumicas y Farmaceuticas, UNR Vojnov Adrin Fundacin Pablo Cassar Winzer Nlida Universidad Nacional del Sur Wirth Sonia INGEBI, CONICET Wulff Arturo Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, UBA Zappacosta Diego C. Departamento de Agronoma, Universidad Nacional del Sur Zelada Alicia Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, UBA Zelener Noga IRB, INTA Castelar PRLOGOS Prlogo a la primera edicin Recientemente, un periodista, que comparta una ensalada con un bilogo, exclam: Si yo slo aspiro a que la lechuga que yo tenga que consumir no tenga genes! Cuando el bilogo le explic que al comer sta no haba ms opcin que engullir unos 25.000 genes del genoma de Lactuca sativa y varios miles de genes adicionales correspondientes a los genomas de los mi- croorganismos que habitual y cmodamente habitan en la superficie de las turgentes hojas, el periodista qued atnito. Segn un eurobarmetro de hace unos meses, ms de dos tercios de los europeos estaban en contra de los alimentos transgnicos. Sin embargo, en la misma encuesta se inclua una aseve- racin - los tomates normales no tienen genes, los transgnicos s - frente a la que tambin ms de dos tercios de los encuestados se mostraban de acuerdo o confesaban su ignorancia. Es una lstima que dicho eurobarmetro no registrara la proporcin correspondiente al encabezamiento no saben, pero s contestan, aunque es fcil colegir que dicha fraccin era alta y en extremo vergonzante. Los avances del conocimiento biolgico y de la biotecnologa destacan en el panorama cien- tfico-tcnico de este fin de siglo y han impregnado las ms diversas vertientes de nuestra vida cotidiana sin que se haya aceptado que un mnimo de estos conocimientos debera formar parte integral de la cultura general. La ignorancia de los hechos bsicos relativos a nuestra herencia gentica o a nuestra alimentacin se considera incluso de buen tono. Esto se refleja de entrada en el caos semntico que se ha creado en torno a la biotecnologa, del que hay que culpar no slo a la ignorancia del ciudadano sino tambin a la torpeza de los cientficos y a la dictadura de los medios de comunicacin. Es preciso despejar este caos si queremos entendernos a partir de la ciencia, y no a sus espaldas. Trminos tales como organismos genticamente modificados (OGMs), alimentos transgni- cos, ingeniera gentica, ADN recombinante, transferencia gnica, clonacin, alimentos natura- les, mejora gentica e, incluso, biotecnologa, han invadido nuestro lenguaje cotidiano sin orden ni concierto. A estas alturas empieza a ser difcil normalizar la situacin, pero tratemos de con- tribuir a ello. La definicin de biotecnologa abarca a todas las tecnologas mediadas por un ser vivo o por partes de l, sean stas clulas o enzimas aisladas. Bajo esta definicin se incluyen desde la propia agricultura, inventada hace diez milenios, y la fabricacin de las veinticuatro clases de cerveza mesopotmica, que tanto gustaban a Nabucodonosor, hasta la ltima forma de producir
  • 13. 12 Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II insulina humana. No es apropiado, por tanto, usar el trmino de forma restringida para referirse exclusivamente a los ltimos avances basados en la biologa molecular. Para esto ltimo resulta ms adecuado el uso de la expresin biotecnologa molecular. Prcticamente la totalidad de lo que ponemos en nuestra mesa ha sido genticamente modifi- cado. La domesticacin de plantas y animales supuso una alteracin muy drstica de sus geno- mas y la mejora gentica subsiguiente ha ido aadiendo modificaciones extensas y sustanciales. Lo importante es la naturaleza de los cambios introducidos y no los mtodos empleados para ello. De hecho, la ingeniera gentica es slo uno de esos mtodos - una modalidad ms de me- jora gentica - y slo sirve para modificar uno o pocos genes de forma muy selectiva. No servira para obtener razas de perro tan distintas - en su tamao, morfologa y temperamento - como el Chihuahua y el Pit Bull Terrier, que en cambio han surgido de la mano del hombre gracias a los mtodos genticos ms tradicionales. En consecuencia, resulta absurdo denominar OGMs slo a los productos de la ingeniera gentica para contraponerlos a los supuestamente naturales. Casi nada de lo que ponemos en nuestra mesa es natural, hasta el punto que la mayora de los organismos de los que derivamos nuestro alimento han perdido su capacidad de sobrevivir por s mismos en la naturaleza. Es ms, para llegar a nuestra mesa han debido sufrir alteraciones genticas que les priven de infinidad de sustancias naturales que son txicas o inhibitorias para el ser humano. Una variedad moderna, modificada por ingeniera gentica, est tan lejos de ser natural como las que la precedieron. Por fortuna! Ya que es obvio que natural no es sinnimo de inocuo. Se consideran organismos transgnicos aquellos cuyo genoma ha sido alterado por ingeniera gentica o, si se prefiere, por sastrera gentica, ya que las operaciones fundamentales de esta va experimental consisten en cortar y coser (unir) piezas de ADN. Un gen es un tramo de ADN (una secuencia construida con las bases A, T, G, C) que, en general, determina una protena (una secuencia de aminocidos), de acuerdo con las equivalencias plasmadas en la clave gentica. Mediante la nueva tecnologa se puede alterar un genoma por la adicin de uno o varios (pocos) genes que previamente no formaban parte de l o por la inutilizacin de uno o varios genes entre los ya existentes. Estas operaciones se hacen para conferir caracteres deseables y para eliminar caracteres indeseables del organismo, respectivamente, objetivos que no difieren de los de la mejora gentica tradicional. En lo que difieren la vieja y la nueva tecnologa es en el repertorio gnico que se puede mane- jar - genes de la misma especie, en el caso de la vieja, y de cualquier especie, en el de la nue- va - y en el modo de introducir y transferir la modificacin gentica, por va sexual o por adicin exgena (transformacin), respectivamente. Los organismos modificados por transformacin se suelen denominar transgnicos. Llamar transgnicos a los alimentos derivados de dichos orga- nismos resulta menos apropiado porque, como dice el refrn, degradado es todo gen que entra por boca de cristiano. Es absurdo llamar transgnico al azcar procedente de una remolacha transgnica, ya que es un producto qumico puro, esencialmente indistinguible del aislado de la remolacha normal o de la caa de azcar. Con acertado criterio, los editores de esta obra han adoptado un tratamiento integral de todos los mtodos, objetivos y logros de la alteracin gentica de las plantas con fines prcticos. Faltan en nuestro idioma obras que acerquen con rigor a una parte tan importante de nuestra cultura general. Las adaptaciones a los nuevos avances de textos preexistentes, hechas a menudo por un nico autor, suelen adolecer de falta de familiaridad con la nueva tecnologa. De aqu que la aproximacin adoptada en esta obra, segn la cual cada captulo est a cargo de verdaderos especialistas, sea la ms apropiada en la actualidad. Dr. Francisco Garca Olmedo, 2004
  • 14. 13Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II Prlogo a la segunda edicin La buena fortuna de un libro lleva aparejada la esclavitud de su autor o autores, que quedan encadenados a la necesidad de mantenerlo vivo en sucesivas ediciones. Estamos ante la segunda edicin de Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal, un texto que, hace seis aos, supuso una es- plndida y afortunada aportacin a la recensin de un rea tecno-cientfica en vigorosa ebullicin y de gran relevancia prctica. La necesidad de esta edicin surge de mltiples circunstancias, entre las que cabe resaltar el enorme avance del conocimiento que ha tenido lugar, la redefinicin de los retos entonces planteados y la aparicin de otros nuevos que han diversificado los objetivos prcticos de la disciplina. Adems, entre la aparicin de la primera edicin y la de esta segunda, ha ocurrido una crisis alimentaria significativa que no es separable de otras, tales como la econmica, la climtica o la energtica. Segn todos los indicios, la crisis alimentaria va a ser duradera y obedece a factores mltiples: la subida del precio del petrleo, el bajo nivel de reservas, la especulacin, el incremento de la pobla- cin y del consumo per capita, el desvo de una parte sustancial de la produccin agraria hacia la fabricacin de biocombustibles, la disminucin de los rendimientos por el estrs debido al cambio climtico y la falta de inversin en innovacin agropecuaria. Parece como si el xito relativo de las ltimas dcadas hubiera hecho bajar la guardia. En particular, la tasa de crecimiento de la produccin de alimentos ha ido por detrs de la del crecimiento de la poblacin durante la ltima dcada, justo el tipo de comportamiento relativo que propuso Malthus hace ms de dos siglos. En el ltimo medio siglo, ha sido la mejora gentica la que ha tenido el protagonismo tcnico en la derrota de la amenaza maltusiana, ya que la superfi- cie de suelo laborable apenas ha crecido. En la actualidad, se ha adquirido de pronto conciencia de que no se sabe bien cmo se va a conseguir el aumento de la produccin de alimentos en un 70-100 % para el ao 2050, necesidad que se considera mnima para alimentar una poblacin pro- yectada de unos 9.000 millones de seres humanos que, adems, tendrn una demanda per cpita significativamente superior a la actual. Si se quiere lograr dicho objetivo, habremos de ser an ms eficaces en las prximas dcadas de lo que lo hemos sido en las precedentes. Por supuesto, las respuestas a los retos planteados ni han sido ni sern exclusivamente tcni- cas, pero todas las estrategias posibles han tenido y tendrn un importante componente tcnico y es sobre este componente sobre el que se centra el libro que ahora se reedita. El cambio climtico est alterando los estreses biticos y abiticos a que deben hacer frente las cosechas, lo que hace prioritaria la investigacin bsica y aplicada tanto en el esclarecimiento de los mecanismos involucrados como en la adaptacin de las cosechas tradicionales a las nuevas condiciones, as como el desarrollo de nuevas cosechas que sean ms apropiadas para condicio- nes extremas. La crisis energtica ha impulsado un nuevo inters por los biocombustibles, en los que se han centrado algunas esperanzas infundadas que han dado lugar a la formulacin de objetivos polticos que pueden tener consecuencias perjudiciales para la alimentacin mundial. As por ejemplo, los objetivos declarados para fechas prximas, tanto por lo EEUU como por la UE, estn determinando una competencia por el suelo agrcola de la generacin de biocombustibles con la produccin de alimentos que no puede sino encarecer significativamente los alimentos y aumentar el nmero de hambrientos en el mundo, as como contribuir a la destruccin de bosque tropical. Por otra parte, La bsqueda de especies y variedades aptas para la produccin de biocombustibles plantea retos formidables a la investigacin de su agronoma y a su mejora convencional y biotecnolgica. Es en el escenario que a grandes rasgos acabamos de esbozar, donde la presente edicin de Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II manifiesta su pleno potencial y debe alcanzar su mxi- ma funcionalidad. Dr. Francisco Garca Olmedo, 2010
  • 15. 14 Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II
  • 16. 15Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II Parte I Herramientas bsicas
  • 17. 16 Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II
  • 18. 17Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II I - CAPTULO 1 Establecimiento de cultivos de tejidos vegetales Luis Mroginski, Pedro Sansberro y Eduardo Flaschland 1 Introduccin El cultivo de tejidos en su acepcin amplia puede ser definido como un conjunto muy hete- rogneo de tcnicas que presentan en comn el hecho de que un explante (una parte sepa- rada del vegetal que pueden ser protoplastos clulas desprovistas de pared celular clulas, tejidos u rganos) se cultiva aspticamente en un medio artificial de composicin qumica de- finida y se incuba en condiciones ambientales controladas. La imprecisin de esta definicin puede generar muchas polmicas, pero es ac- tualmente aceptada. Generalmente es comn dividir las tcnicas del cultivo de tejidos en dos grandes grupos: a) cultivos en medios semis- lidos y b) cultivos en medios lquidos, los que a su vez pueden ser agitados (mediante el em- pleo de agitadores de uso continuo) o estacio- narios. Tambin es frecuente dividir al cultivo de tejidos atendiendo a los niveles de comple- jidad en cultivo de rganos, cultivos celulares y cultivo de protoplastos. Para el establecimien- to de los cultivos utilizando cualquiera de los sistemas es necesario tener en cuenta algunos aspectos generales comunes relacionados con el explante, la asepsia, el medio de cultivo y las condiciones de incubacin. La discusin de estos aspectos constituye el objetivo de este captulo. Adicionalmente se incluye el tema de la aclimatacin de las plantas regeneradas in vitro, que es de gran importancia en la mayora de las aplicaciones del cultivo de tejidos en la agricultura. 2 Explante Varios factores deben ser tenidos en cuenta en la eleccin del explante apropiado para el establecimiento de los cultivos in vitro, entre ellos: 1. Objetivo del cultivo: si bien es difcil tratar de clasificar las aplicaciones que se persiguen con el cultivo de tejidos, se podra esquemati- zarlas en aplicaciones para: Estudios bsicos. En este caso, los explan- tes cultivados pueden ser diversos. Si lo nico que se quiere lograr es un sistema de callos para estudiar algn proceso fisiolgico, se puede cultivar cualquier rgano, tejido o clula viva. En este caso en que lo nico que se bus- ca es la induccin de callos lo ideal es cultivar explantes jvenes, derivados de semillas en germinacin, donde se obtienen respuestas r- pidas y, en general, hay menores problemas de contaminacin con microorganismos. A veces se hace uso del cultivo de tejidos porque repre- senta un sistema experimental que simplifica la complejidad generada por los fenmenos de correlacin entre las distintas partes que normalmente estn presentes en una planta entera. El explante que se usar estar condi- cionado por lo que se quiere estudiar. Un buen ejemplo lo constituye el cultivo de ovarios fe- cundados del tomate para estudiar los reque- rimientos nutricionales durante el crecimiento de los frutos. Asimismo, el cultivo de vulos ha sido muy til para estudiar aspectos relaciona- dos con la formacin de las fibras en algodn. El cultivo de discos de tallos brind una valiosa ayuda para estudiar la rizognesis in vitro. Obtencin de plantas con sanidad contro- lada. Es muy comn la utilizacin del cultivo de tejidos para la obtencin de plantas libres de virus (ver VIII.-9). El explante ideal para ello es el meristema (dependiendo de la especie, de 0,2-0,5mm de longitud) consistente del domo y de un par de primordios foliares. Micropropagacin. En este caso depende- r del sistema que se quiere utilizar. Si lo que se quiere explotar es la brotacin de meris- temas, los pices terminales y los segmentos uninodales de ramas jvenes constituyen ex- celentes explantes. En este caso el cultiva- dor de tejidos debe conocer perfectamente la biologa de la reproduccin de la planta para aprovechar aquellos explantes que en forma natural son propgulos. En cambio, si se pre- tende micropropagar mediante el empleo de semillas sintticas (ver Parte IV, captulo 2) el explante original deber posibilitar la induccin
  • 19. 18 Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II de la embriognesis somtica. En este caso, la utilizacin de embriones zigticos inmaduros u hojas, suelen ser frecuentes como explantes. Obtencin de hbridos interespecficos. Una de las primeras aplicaciones del cultivo de tejidos en la agricultura lo constituy su empleo como ayuda para la obtencin de hbridos deri- vados de cruzamientos interespecficos, donde se produce el aborto temprano de embriones. En estos casos, el explante cultivado es el embrin cigtico en estadios tempranos de su desarrollo. Con la misma finalidad tambin se utilizan ovarios u vulos fecundados. Obtencin de plantas de semillas con em- briones rudimentarios. Para esta finalidad los explantes pueden ser semillas (por ej. orqu- deas) o bien, se aslan los embriones en un es- tado temprano de desarrollo (corazn) como en el caso de yerba mate o de algunas varieda- des de duraznero. Obtencin de plantas haploides (consi- derando como haploide a un esporofito que contiene el complemento gamtico de cromo- somas). En este caso, los explantes ms uti- lizados son las anteras, aunque tambin pue- den emplearse microsporas aisladas, vulos y ovarios no fertilizados. Induccin de variacin somaclonal. En este caso se pueden utilizar varios explantes, pero si la finalidad de su utilizacin es la aplicacin en planes de mejoramiento gentico de plan- tas, los explantes utilizados deben posibilitar la regeneracin de plantas enteras. Produccin y/o conversin de sustancias tiles. Se puede utilizar una gran variedad de explantes. Los de races suelen ser muy utilizados. Obtencin de hbridos somticos. Para esta finalidad se recurre a la fusin de protoplastos. En la mayora de los casos se aslan los proto- plastos de mesfilos de hojas y de suspensio- nes celulares. Conservacin e intercambio de germo- plasma. Los meristemas son los explantes preferidos para el desarrollo de sistemas de conservacin a mediano y largo plazo (cro- conservacin con nitrgeno lquido) y para el intercambio de material gentico. Establecimiento de suspensiones celula- res. En este caso se recomienda iniciar los cul- tivos a partir de explantes extrados de semillas en germinacin (hipoctilo, epictilo, cotiledo- nes, races). 2. Posibilidad de contaminacin con mi- croorganismos. De ser posible, se deben cul- tivar explantes de plantas donantes que crecen en condiciones de invernadero, con ello se reduce sustancialmente las tasas de contami- nacin. Por otra parte, es recomendable evitar el uso de explantes sucios (races, rizomas) que provienen de plantas crecidas en macetas o en el campo, dado que en la mayora de los casos no es posible conseguir una buena des- infeccin de los mismos. 3. Edad fisiolgica. Este es un aspecto de gran influencia en la morfognesis. Como regla general se puede decir que cuando ms joven e indiferenciado se encuentre el explante a cul- tivar, mejor ser su respuesta in vitro. Es por ello que los meristemas apicales y axilares son ampliamente usados en numerosas especies. En el caso de la micropropagacin de plan- tas leosas, la edad del explante es un factor crtico. Si los tejidos son jvenes, la micropro- pagacin tiene mayores posibilidades de ser exitosa que con tejidos maduros. Este hecho genera la necesidad de realizar tratamientos de rejuvenecimiento de las plantas donantes de explantes. 4. Tamao. En general, cuanto ms grande sea el explante mayores sern las posibilida- des de inducir la proliferacin de callos o la re- generacin directa de rganos. Sin embargo, a mayor tamao de explante tambin son ma- yores las probabilidades de que los cultivos se contaminen con microorganismos. Tambin es necesario tener en cuenta que existe un ta- mao mnimo del explante, que depende de la especie y del material vegetal, por debajo del cual no es fcil lograr el establecimiento de los cultivos. Los explantes muy pequeos suelen requerir del empleo de medios ms complejos o de los denominados medios acondicionados. 5. Epoca del ao. Es un factor que suelen tener mucha importancia en la micropropa gacin y que generalmente est asociado al
  • 20. 19Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II grado de dormicin que presentan ciertos ex- plantes (yemas, por ejemplo) y tambin con la posibilidad de mayor o menor proliferacin de microorganismos. 3 Asepsia Uno de los principales problemas que se presentan cuando se tratan de establecer los cultivos es el de la contaminacin de los mis- mos con diversos tipos de microorganismos (hongos, levaduras, bacterias, fitoplasmas, vi- rus). El ambiente generado por explante-medio de cultivo-condiciones fsicas de incubacin es altamente propicio para la proliferacin de muchos de estos microorganismos que pue- den provocar la destruccin de los cultivos. Es difcil cuantificar el impacto de estas prdidas, pero en promedio, en laboratorios dedicados a la micropropagacin se lo puede estimar en al- rededor del 10%. En el mejor de los casos, es- tos microorganismos no destruyen los cultivos pero compiten con el explante por los nutrien- tes del medio de cultivo o bien lo modifican. Es muy difcil conseguir cultivos estrictamen- te aspticos dado que en la mayora de los casos es altamente probable que los mismos contengan virus y fitoplasmas, por lo que en la prctica, cuando se refiere a cultivos asp- ticos, en general se quiere significar que son cultivos donde no se produce la proliferacin de hongos y bacterias. Dos son las fuentes de contaminaciones: a) microorganismos presentes en el interior o en la superficie de los explantes y b) fallas en los procedimientos de cultivo en el laboratorio. La correcta deteccin de estas fuentes y del tipo de microorganismo son aspectos importantes para el xito de los cultivos, pues por un lado ayuda a determinar la fuente de contaminacin y por otro lado, ayuda a la planificacin de los procedimientos para controlarlos. Varios gne- ros de bacterias (Pseudomonas, Xanthomonas, Erwinia, Enterobacter,Agrobacterium, Bacillus, Micrococcus, Staphylococcus, Lactobacillus, Mycobacterium, Corynebacterium) y de hon- gos filamentosos (Aspergillus, Penicilium, Fusarium, Alternaria, Cladosporium y Neurospora) estn frecuentemente en los cul- tivos. Es conveniente inspeccionar visualmen- te con la ayuda de un microscopio estereos- cpico los cultivos en forma peridica (por lo menos semanalmente). Tambin se pueden realizar pruebas con medios de cultivo dife- renciales y test bioqumicos especficos. Para evitar y/o minimizar las contaminacio- nes de los cultivos con microorganismos es necesario: 1) Conocer el material vegetal con que se tra- baja y los posibles contaminantes especficos. 2) Realizar una adecuada preparacin de la planta dadora de explantes, cultivndola pre- ferentemente en invernaderos tratadas con productos qumicos que eliminen patgenos y eventuales microorganismos endfitos. 3) Proceder a la desinfeccin superficial de los explantes mediante el uso de compuestos qumicos con el objeto de eliminar los micro- organismos con el menor dao posible para el explante. Si bien no es posible recomendar un procedimiento general, se puede sealar que el procedimiento ms popularizado con- siste en una doble desinfeccin mediante la inmersin de los explantes en etanol (70%v/v) durante 20-60 segundos seguido de hipoclo- rito de sodio 1 -3%, contenido en el agua de lavandina comercial, durante 3 a 30 minutos, dependiendo de la naturaleza del explante. Algunos procedimientos se basan en el em- pleo de nicamente etanol o de hipoclorito de sodio. Finalmente, es necesario eliminar los restos de estos productos mediante varios la- vados con agua destilada estril. En este ltimo punto hay que aconsejar que se utilice agua destilada estril de reciente preparacin, dado que est demostrado que el almacenaje prolongado del agua estril puede ser la causa de contaminaciones con bacte- rias. Es aconsejable realizar estas operacio- nes de desinfeccin superficial en una cmara de transferencia con aire estril. En lugar del hipoclorito de sodio se puede utilizar hipoclori- to de calcio (6 -12 %) o el cloruro de mercurio (0,1%- 1,5%). Es preciso recomendar extrema cautela con el empleo de este ltimo compues- to, dado que es altamente txico y adems no es removido con facilidad del explante.
  • 21. 20 Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II En los casos en que no se utilice etanol, la adicin de agentes tensoactivos junto con el desinfectante es una prctica recomendada. Entre los ms usados figuran Tween-20 (0,01 0.1%) o unas gotas de Triton. El lavado pre- vio de los explantes con agua corriente y de- tergentes, ayuda a una mejor desinfeccin. La inmersin de los explantes en soluciones con- teniendo sustancias antibiticas y /o antimic- ticas (gentamicina, sulfato de estreptomicina, ampicilina, tetraciclina, carbenicilina, sulfato de gentamicina, pentacloronitrobenceno, rifam- picina, anfotericina B, benomil, carbendazim) puede ser de utilidad, pero deben ser utilizados en casos excepcionales. Estos productos tienen el inconveniente de que alteran la composicin de los medios de cultivo y adems pueden ser metabolizados por los explantes. ltimamente han aparecido soluciones bio- cidas que matan bacterias y hongos, previenen la germinacin de esporas y a altas concen- traciones pueden eliminar contaminaciones de microorganismos endfitos. Uno de estos compuestos es el PPM (Plant Preaservative Mixture). Otro ejemplo es el denominado G-1, un compuesto derivado de los furfurales de la caa de azcar. Este compuesto, qumicamen- te: 1-(5-bromofur-2-il)-2- bromo-2-nitroeteno fue desarrollado en la Universidad Central de las Villas (Cuba) y tiene efecto bactericida y fungicida de amplio espectro. En los casos en que se utilicen plntulas cre- cidas in vitro como plantas donantes de explan- tes, es necesario desinfectar las semillas para su cultivo y germinacin y luego es aconsejable desinfectar tambin las plntulas resultantes. En algunos materiales vegetales se utiliza la preincubacin de los explantes mediante lo cual stos son desinfectados suavemente y precultivados durante 24 horas en un medio conteniendo sacarosa, y finalmente son desin- fectados nuevamente y cultivados. 4) Emplear medios e instrumentos de cultivo esterilizados, es decir, liberados completamen- te de cualquier microorganismo vivo o espo- ras. Para la esterilizacin, en la mayora de los casos se hace uso del calor en sus diversas formas: llama directa, calor hmedo (en forma de vapor abierto o bajo presin), calor seco (aire caliente). Se pueden usar hornos a mi- croondas. El agua caliente tambin puede ser usada. En el caso de sustancias termolbiles, la esterilizacin se puede hacer mediante fil- tracin a travs de filtros bacteriolgicos. No es posible recomendar ningn sistema de esterilizacin dado que la exitosa destruc- cin de los microorganismos depende de ml- tiples factores entre los que interesan el tama- o del recipiente, el tiempo de esterilizacin y la naturaleza de la sustancia a esterilizar. Sin embargo, se pueden dar algunas sugerencias: La esterilizacin en estufas mediante calor seco (aire caliente) es recomendable para es- terilizar recipientes de vidrios secos (pipetas, cpsulas de Petri, tubos). En estos casos, 2-4 horas en estufas a 180-200 C brindan exce- lentes resultados. La esterilizacin con calor hmedo con va- por bajo presin (en autoclave o en una olla a presin). Es el procedimiento ms empleado para la esterilizacin de los medios de cultivo (salvo, como se indic ms arriba, para aque- llos que posean componentes termolbiles). En este caso, lo ms comn es usar una pre- sin de 1.46 kg.cm-2 durante 20 minutos, con lo que prcticamente se destruyen todas las formas de vida. Es importante que en todos los puntos del autoclave se alcance dicha tem- peratura, para lo cual hay disponibles cintas detectoras colorimtricas. 5) Cultivar los explantes en una cmara de transferencia con aire estril (gabinete de flu- jo laminar), localizada en un ambiente limpio y no expuesta a corrientes de aire. De no dis- poner este equipamiento, se pueden sustituir con cuartos esterilizados previamente con luz ultravioleta (nunca exponerse a la luz UV en forma directa). La mesada de trabajo y las pa- redes del gabinete deben ser desinfectadas previamente con etanol al 70%. De la misma manera deben ser desinfectados exteriormen- te todos los recipientes (conteniendo medios de cultivo, agua, etc.) que ingresen en el rea del aire estril. Los operarios constituyen frecuentemente una importante fuente primaria de contamina- cin, porque es recomendable que, antes de comenzar a trabajar laven sus manos y ante- brazos con abundante agua y jabn y se des-
  • 22. 21Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II infecten con etanol al 70 %. La utilizacin de guardapolvos, guantes y mscaras protectoras de la boca y de la nariz, as como los gorros protectores de los cabellos, ayudan a reducir sensiblemente los niveles de contaminacin. Los instrumentos de trabajo (pinzas, pipetas, tijeras, agujas, cpsulas de Petri) deben ser esterilizados antes de su uso. Muchos de es- tos instrumentos pueden ser colocados en eta- nol al 95% y, antes de ser usados, se deben flamear cuidadosamente en la llama de un me- chero. Tambin es necesario flamear la boca de los recipientes que contienen los medios de cultivo antes y despus de cultivar el explante. 6) Incubar los cultivos en cmaras o cuar- tos de cultivo, cerrados, libres de corrientes de aire y bien higienizados. En lo posible se debe restringir la circulacin de personas, y los recipientes con cultivos contaminados deben ser rpidamente eliminados de este sector. Es conveniente que antes del lavado, estos culti- vos sean esterilizados. 4 Medios de cultivo Un medio de cultivo puede ser definido como una formulacin de sales inorgnicas y compuestos orgnicos requeridos para la nu- tricin y manipulacin de los cultivos. Existen numerosas formulaciones, cada una de las cuales comprende entre 6 y 40 compuestos. Para dar una idea de la cantidad de formu- laciones disponibles, George y col., luego de revisar ms de 3.000 trabajos cientficos des- criben en dos tomos (casi 1.000 pginas en to- tal) ms de 2.000 medios de cultivo. Tambin dos empresas multinacionales ofrecen para la venta ms de 60 medios cada una, listos para su utilizacin especialmente en la micropropa- gacin comercial de plantas. En la Tabla 1 se presentan tres medios que son muy usados en la actualidad. Bsicamente, los medios de cultivo se com- ponen de compuestos que suministran: Una fuente de carbono Nutrientes minerales Sustancias vitamnicas Sustancias reguladoras del crecimiento Agente gelificante (en el caso de medios semislidos) Otros compuestos. Fuente de carbono: Prcticamente todos los cultivos son hetertrofos (comparativamente unos pocos son auttrofos) y por ende necesi- tan del suministro de una fuente de carbono. La sacarosa, en concentraciones de 2 al 5%, es el azcar ms utilizado. En algunos medios se la reemplaza por glucosa. En casos particu- lares se cita el empleo de maltosa o galacto- sa. Tambin myo-inositol (100 mg/L) suele ser incorporado a los medios resultando un mejor crecimiento de los cultivos. Nutrientes minerales: Los medios de cultivo deben suministrar los mismos macro y micro- nutrientes que son esenciales para el creci- miento de las plantas enteras. En general se destacan las concentraciones relativamente Tabla 1: Composicin de tres medios bsicos usados en el cultivo in vitro de tejidos. NH4NO3 1.650 ----- ----- KNO3 1.900 2.830 2.500 KH2PO4 170 400 ----- CaCl2.2H2O 440 166 150 (NH4)2SO4 ----- 463 134 MgSO4.7H 2O 370 185 250 NaH2PO4.4H2O ----- ----- 150 KI 0,83 0,80 0,75 MnSO4.H2O ----- ----- 10,00 H3BO3 6,20 1,60 3,00 MnSO4.4H2O 22,30 4,40 ----- ZnSO4.7H2O 8,60 1,50 2,00 Na2MoO4.2H2O 0,25 ----- 0,25 CuSO4.5H2O 0,025 ----- 0,025 FeSO4.7H2O 27,80 27,85 27,80 Na2EDTA 37,30 37,25 37,30 CoCl2.6H2O 0,025 ----- 0,025 Glicina 2,00 2,00 ----- Tiamina -HCl 0,10 1,00 10,00 Piridoxina-HCl 0,50 0,50 1,00 cido Nicotnico 0,50 0,50 1,00 Mioinositol 100,00 ----- 100,00 Sacarosa 30.000,00 50.000,00 20.000,00 PH 5,7 5,8 5,5 1) Composicin en mgL -1- 1 . MS = Medio de Murashige y Skoog (Physiol. Plant. 15: 473 - 97. 1962) N6 = Medio de Chu,C.C., Wang,C:C., Sun,C.S., Hsu, C., Yin, K,C., y Chu, C. (Sci. Sinica 18: 6 59- 668. 1975) B5 = Medio de Gamborg, O.L., Miller,R.A. y Ojima, K. (Exp.Cell Res. 50: 151 - 158. 1968) Medio bsico 1 Compuestos MS N6 B5
  • 23. 22 Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II altas de nitrgeno y potasio. El nitrgeno es suministrado en forma de amonio y/o nitrato. Tambin se pueden utilizar urea, glutamina y casena hidrolizada. Es fundamental que el hie- rro sea incorporado juntamente con un agente quelante (Na2EDTA), lo que lo hace disponible es un amplio rango de pH. Sustancias vitamnicas: De todas las que comnmente se incorporan a los medios, pa- reciera que la tiamina es la nica realmente imprescindible para el buen crecimiento de los cultivos. Sustancias reguladoras del crecimiento: En la mayora de los casos los medios utilizados para el establecimiento de los cultivos con- tienen auxinas (ANA, 2,4-D, AIA, AIB, NOA, Dicamba, Picloram) y/o citocininas (BA, KIN, ZEA, 2iP, Thidiazurn). Las giberelinas (es- pecialmente GA3) son requeridas en algunas ocasiones para el cultivo de meristemas o para la elongacin de brotes. El ABA, es usado en algunos casos. Agente gelificante (en el caso de medios se- mislidos): El agar (entre 0,6 y 1%) es el com- puesto ms utilizado. Tambin pueden em- plearse Agargel (0,40-0,60%), Transfergel (2,0-2,60%), Phytagel (0,25- 0,40%), agaro- sa (0,80-0.90%) y Gelrite (0,10-0,20%). Otros compuestos: Muchas sustancias, de variada composicin qumica, suelen ser adi- cionadas a los medios bsicos. Adems de la glicina, otros aminocidos se pueden agregar a los medios. Es el caso de L-tirosina, aspara- gina y cistena, aunque hay que tener presente que en dosis altas pueden inhibir el crecimien- to de los cultivos. El carbn activado (0,1 a 5%) suele ser incorporado al medio, dado que es probable que absorba metabolitos txicos para los cultivos. En algunos medios se incorporan cidos orgnicos como el mlico, el ctrico, el pirvi- co y el succnico y es frecuente el empleo de L-glutamina y de casena hidrolizada. An hoy se siguen utilizando ciertos componentes de composicin qumica no bien definida como el agua de coco (5 a 15%), jugo de tomate y pur de banana. Tambin en ocasiones es necesa- ria la incorporacin de agentes antioxidantes (L-cistena, cido ascrbico, polivinilpirrolido- na) para prevenir el ennegrecimiento tisular causado por la oxidacin de polifenoles pre- sentes en los explantes. Este ennegrecimiento puede causar la muerte de los mismos. La preparacin de los medios de cultivo pue- de llevarse a cabo de diferentes maneras, en lecturas recomendadas se citan manuales de laboratorio donde se describen detallada- mente este punto. 5. Condiciones ambientales para la incubacin. La incubacin de los cultivos se debe llevar a cabo en condiciones controladas. Por lo me- nos en lo que se refiere a temperatura, calidad e intensidad de luz, fotoperodo, humedad at- mosfrica e higiene. Estas condiciones se lo- gran con el empleo de cmaras climatizadas o cuartos especialmente preparados con aire acondicionado (fro-calor) y una buena y uni- forme circulacin de aire en el interior y dota- dos de un buen sistema de alarma para cortar la iluminacin en caso de no funcionar el aire acondicionado. En general, los cultivos son in- cubados a temperatura constante de 25-28 C, con ciclo de luz/oscuridad de 16/8horas. La luz es generalmente provista por lmparas fluo- rescentes del tipo luz da con una irradiancia de entre 50 y 200mol m-2s-1. La humedad at- mosfrica debe ser elevada (80- 90%). 6 Aclimatacin de las plantas regenera- das in vitro. Durante el perodo de incubacin, los cultivos son expuestos a condiciones ambientales dis- miles al ambiente externo. La atmsfera interna se caracteriza por presentar una considerable variacin diurna en la concentracin de CO2, humedad relativa elevada, temperatura cons- tante e intensidad lumnica baja. A su vez, el medio de cultivo compuesto por concentracio- nes elevadas de azcares (en aquellos siste- mas hetertrofos y semiauttrofos de micropro- pagacin), sales y reguladores del crecimiento,
  • 24. 23Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II sumado a la ausencia de microorganismos, generan anormalidades morfolgicas, anat- micas y fisiolgicas que las plantas debern corregir cuando son transferidas al ambiente externo. Este perodo de adaptacin al nuevo hbitat es llamado fase o etapa de aclimata- cin. La estrategia a implementarse durante el mencionado ciclo deber contemplar el control minucioso de los parmetros ambientales (hu- medad, temperatura y luz) de tal manera que permita disminuir la deshidratacin y, al mismo tiempo, estimular la fotosntesis con el objeto de generar un rpido crecimiento de los plantines. El retraso en el desarrollo de la cutcula y la escasa funcionalidad del aparato estomtico que presentan las hojas de la mayora de las especies cultivadas in vitro, determinan una alta tasa de transpiracin que puede ocasionar la muerte por deshidratacin. El control de este proceso fisiolgico es de vital importancia du- rante la aclimatacin, teniendo en cuenta que la disminucin de la transpiracin ser gradual y depender de la rehabilitacin de los estomas, as como tambin del desarrollo de la cutcu- la. El equipamiento necesario estar sujeto a la especie, pudiendo utilizarse desde tneles de polietileno para plantas que posean un elevado control de la transpiracin (por ej. Malus pumila o Agave tequilana) o bien, a travs del empleo de cmaras climatizadas (Fig.1) equipadas con sensores que permiten un descenso paulatino de la humedad relativa. En algunos casos pue- de resultar necesaria la aplicacin exgena de ABA (hormona involucrada en el control del cie- rre de los estomas) o bien, el empleo de sus- tancias antitranspirantes que forman una capa semipermeable en la superficie de la hoja. En este ltimo caso debern tomarse algunas pre- cauciones debido a que pueden observarse re- acciones de fitotoxicidad. Resulta imprescindible evitar la exposicin a temperaturas extremas tanto en la fase area como en el substrato. Mediante el empleo de extractores y/o acondicionadores de aire com- binados con un sistema de niebla, es posible establecer la temperatura de la fase gaseosa entre los 25 y 30 C durante la estacin estival, mientras que en la poca invernal es necesa- rio, a veces, el empleo de mantas trmicas o serpentinas, sea de agua o aire caliente a nivel del substrato, para mantener la temperatura por encima de los 18-20 C. Sin lugar a dudas, la opcin ms econmica es el empleo de la luz natural, disminuyendo su irradiancia (20-50%) mediante el agregado de mallas de sombreado (saram). No obstante, en aquellas latitudes donde el nivel medio de luz natural es bajo y los das son cortos du- rante una parte considerable del ao, la luz ar- tificial puede ser aplicada como complemento de la luz natural. Las lmparas tubulares fluo- rescentes del tipo luz da son empleadas en horticultura para prolongar el fotoperodo. Asimismo, las lmparas tubulares de sodio alta presin presentan una distribucin espectral de la energa adecuada para estimular fotosn- tesis y se emplean para tal fin en una amplia variedad de cultivos. Otro aspecto importante a tener en cuenta lo constituye la eleccin del substrato, siendo el adecuado aquel que permita el normal creci- miento y desarrollo de las races. Se puede em- plear: arena, perlita, turba, vermiculita, o mez- clas de ellos, teniendo la precaucin de rea- lizar una esterilizacin previa. Es conveniente el agregado de fertilizantes, sea a travs del substrato (fertilizantes de liberacin controla- da) o bien mediante el sistema de riego (fer- tilizantes solubles); emplendose proporcio- nes ricas en fsforo (N-P-K: 9-45-15) y potasio (N-P-K: 4-25-35) que favorecern el desarrollo radicular y la rustificacin de las plantas. En todo momento deber realizarse un rigu- roso control fitosanitario emplendose antibiti- cos, fungicidas e insecticidas de uso universal. En la Figura 1, se detalla un modelo de c- mara de aclimatacin diseada por los autores y empleada por el Laboratorio de Cultivo de Tejidos del Instituto de Botnica del Nordeste. Bsicamente, est compuesta por una fase area construida en aluminio y policarbonato alveolar (9) y un recipiente o batea (11) que contiene grnulos de arcilla expandida a fin de facilitar el drenaje. Mediante el agregado de arena u otro substrato adecuado, esta cmara puede ser utilizada tanto para el enraizamiento ex vitro de los brotes obtenidos en la etapa de multiplicacin, as como tambin, para el en- raizamiento convencional (a raz desnuda) de estacas de tallos u hojas.
  • 25. 24 Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II La humedad relativa de la fase area es con- trolada por un sensor (6) ubicado por encima de la tubera de riego (4). El sistema humidifi- cador est compuesto por picos tipo fog y es alimentado por una bomba de bajo caudal y alta presin (13). Con el propsito de evitar el goteo que pudiese ocasionar el agua rema- nente en las caeras, el sistema consta de una vlvula solenoide de descarga y desage (7). La fase gaseosa es renovada en forma in- termitente mediante el empleo de extractores ubicados en ambos extremos de la cmara (3) los que, conjuntamente, introducen o extraen aire, generando un movimiento masal. Debido a la latitud geogrfica en que se en- cuentra, la cmara est equipada con un acon- dicionador de aire (3000 frigoras) para evitar situaciones de estrs trmico en poca estival. A su vez, y dado que la mayora de las espe- cies estudiadas son originarias de climas tro- picales y subtropicales, el sistema cuenta con mantas trmicas que son colocadas por deba- jo de los tubetes, manteniendo la temperatura del substrato durante el invierno. En este lti- mo caso se agrega un material aislante entre la leca (10) y la malla de hierro (16) de tal manera de dirigir el calor hacia la fase area.
  • 26. 25Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II 7. Agradecimientos. Los autores agradecen al Ing. Pablo A. Luna por la planificacin digital de la cmara de acli- matacin. A la Secretara General de Ciencia y Tcnica (UNNE) y al Establecimiento La Ca- chuera por el aporte financiero recibido para construir la misma. 8. Lecturas Recomendadas GEORGE, E.F.; D.J.M. PUTTOCK y H.J. GEOR- GE. 1987. Plant Culture Media . Vol. 1 (Formu- lations and Uses). Exegetics Limited. England. 567 pg. GEORGE, E.F.; D.J.M. PUTTOCK y H.J. GEORGE. 1988. Plant Culture Media . Vol. 2 (Commentary and analysis). Exegetics Limited. England. 420 pg. HURTADO, D.V. y MERINO, M.E. 1991. Cultivo de Tejidos Vegetales. Ed.Trillas. Mxico. 232 pg. PREZ PONCE, J.N. 1998. Propagacin y Mejora Gentica de Plantas por Biotecnologa. Instituto de Biologa de Plantas.Santa Clara. Cuba. 390 pg. POSPOSILOVA, J.; I. TICHA, P. KADLECEK, D. HAISEL, S. PLZAKOVA. 1999. Acclimatization of micropropagated plants to ex vitro conditions. Biologia Plantarum 42: 481-497. ROCA, W.M. y L.A. MROGINSKI. 1993 (segunda edicin). Cultivo de tejidos en la Agricultura: Fundamentos y aplicaciones. CIAT. Cali, Colom- bia, 970 pg. TORRES, A.C.; L.A. CALDAS y J.A. BUSO. 1998. Cultura de Tecidos e Transformacao Gentica de Plantas. (Vol.1) Embrapa. Brasil.509 pg. TORRES, A.C.; L.A. CALDAS, y J.A. BUSO. 1999 Cultura de Tecidos e Transformacao Gentica de Plantas. (Vol.2) Embrapa. Brasil.355 pg.
  • 27. 26 Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II I - CAPTULO 2 Morfognesis Silvia Radice 1.- Introduccin La embriognesis somtica y la organognesis son dos procesos morfognicos muy frecuen- tes en el cultivo in vitro de especies vegetales. La embriognesis somtica es el proceso por el cual se obtiene una estructura similar a un embrin cigtico sin que medie la fertilizacin de las gametas, mientras que por organog- nesis pueden obtenerse tallos, races o flores. Estos rganos son inducidos a partir de una clula o de un grupo de clulas que, segn las condiciones de cultivo, tienen la propiedad de mantenerse en activa divisin. Esta totipotencialidad celular fue enunciada por Haberlandt en 1902, quien propuso la teo- ra de que todas las clulas vegetales tienen la capacidad de regenerar plantas completas. Haberlandt no lleg a demostrar su hiptesis debido a que no pudo lograr la divisin celu- lar. Los medios de cultivo que empleaba no incluan reguladores del crecimiento debido a que esos compuestos eran an desconocidos. Los avances en el cultivo de tejidos vegetales fueron muy lentos en sus inicios. En 1934, Whi- te pudo mantener, en forma ilimitada, el creci- miento de races en medios lquidos a partir de pices de tomate. Al mismo tiempo se identi- fic el cido indol actico (AIA), que posibilit el mantenimiento indefinido de callos de za- nahoria y tabaco in vitro. Posteriormente se descubri el efecto de la leche de coco como estimulante de la formacin de callo sobre el cultivo de embriones de Datura stramonium. En 1948 Skoog y Tsui, trabajando con cultivos de callo de tabaco, demostraron la existencia de una regulacin qumica en la parte area y en la raz. Trabajos posteriores en callos de la misma especie, con el agregado de cinetina, la primera citocinina descubierta, permitieron demostrar que la diferenciacin de brotes, ra- ces o de ambos, era regulada por el balance de auxinas/citocininas. 2.- Tipos de morfognesis. Definiciones En condiciones de cultivo in vitro, las clulas somticas pueden regenerar embriones (Fig 1) o brotes, races y/o flores (Fig 2) como res- puesta a un determinado estmulo. La regene- racin es un proceso que comprende diferen- tes fases que se suceden de manera similar para los tres tipos de morfognesis citadas. De Klerk y colaboradores, en 1997, denominaron a estas diferentes fases como adquisicin de la competencia; fase de induccin y fase de realizacin. En la primera fase, las clulas no respon- den al estmulo organognico pero adquieren esa competencia durante una fase de desdi- ferenciacin. En la segunda fase o fase de in- duccin, las clulas son receptivas al estmulo morfognico y hay una relacin directa con el tipo, concentracin y combinacin de regula- dores del crecimiento agregados al medio de cultivo y el rgano a desarrollar. En la fase de realizacin, la clula sufre las sucesivas divi- siones para formar el rgano determinado. A partir de la siembra in vitro de diferentes ex- plantes relativamente grandes y en condicio- nes de cultivo adecuadas, puede inducirse la formacin de nuevos rganos de manera direc- ta, sin la formacin de callo. Si la formacin es de brotes, races o flores se denomina organo- gnesis directa. Si en cambio se induce la for- macin de embriones somticos, este proceso se denominar embriognesis directa (Figs. 1 y 3). Si por el contrario, a partir de la siembra de un explante in vitro se observa la proliferacin de clulas en forma desordenada y sin ninguna funcin predeterminada, se iniciar la produc- cin de callos o suspensiones celulares (Figs. 2 A y 3). La diferenciacin de rganos a partir de callos, denominada morfognesis indirecta, estar condicionada a la previa formacin de los meristemoides. Morfognesis directa o in- directa fueron trminos propuestos por Hicks en1980. 3.- Histologa de la morfognesis Despus de 48 horas de realizada la siembra del explante en el medio de cultivo adecuado,
  • 28. 27Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II a partir de una clula epidrmica o del mesfilo foliar, como ocurre en las conferas, se suce- den una serie de divisiones mitticas. As se pueden observar, a travs del estudio histolgi- co, pequeas masas de clulas que contienen citoplasma denso y grandes nucleolos. Este conjunto de clulas, agrupadas a modo de es- feras, fueron denominadas meristemoides por Torrey en 1966, y son responsables de la dife- renciacin de los nuevos rganos. Este tipo de meristema puede iniciarse en forma directa, a partir de clulas diferenciadas pertenecientes a un explante cultivado in vitro, o indirectamente, a partir de una clula o grupo de clulas dife- renciadas que promueven la proliferacin celu- lar (Fig 4 A). Su evolucin determinar el cre- cimiento de un rgano, por ejemplo una yema adventicia (Fig 4 B). Figura 1: A-F embriognesis somtica obtenida por cultivo in vitro. A-C-E, embriognesis somtica en di- ferentes fases de crecimiento observada en Codiaeum variegatum (L) Blume cultivado en MS + 1 mg l-1 de BAP. B-D-F, embriognesis somtica obtenida en diversos cultivares de Prunus sp a partir de embriones zigticos inmaduros cultivados en MS + 0,1 mg l-1 de ANA + 1 mg l-1 de Kin con una previa induccin en MS + 2 mg l-1 de 2,4-D. Las reglillas representan 5 mm.
  • 29. 28 Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II Las clulas embriognicas son similares a las clulas meristemticas debido a que no son demasiado voluminosas, tienen gran cantidad de ribosomas, citoplasma denso, un nucleolo agrandado y pequeos granos de almidn. Es- tas clulas, que en general se agrupan, pueden variar en tamao y nmero. Dentro de un gru- po de clulas embriognicas, el desarrollo de las mismas no est sincronizado. Estas clulas son capaces de dividirse o de transformarse en embriones segn las condiciones del medio de cultivo. Aquellas clulas que no desarrollan proembriones comienzan el proceso de dife- renciacin, es decir se vacuolizan, disminuye Figura 2: A-E Organognesis somtica obtenida por cultivo in vitro. A, callo organognico obtenido en Abelia sp. (Andr) Rehder cultivada en MS + 1 mg l-1 de picloran. B, Inicio de brotes (flechas) en hojas crecidas in vitro de Crimson Gold (Prunus persica L.) cultivadas en MS + 0,1 mg l-1 de ANA + 1 mg l-1 de Kin. C, Brotes de Gerbera jamesonii Bolus obtenidos a partir del cultivo de captulos florales en MS 0,05 mg l-1 de IBA + 0.75 mg l-1 de BAP + 0,1 mg l-1 de GA3. D, brotes florecidos in vitro de Abelia sp. (Andr) Rehder cultivados en MS + 1 mg l-1 de BAP. E, races (flechas) crecidas de callo de Abelia sp. (Andr) Re- hder cultivadas en inducidas en MS + 1 mg l-1 de 2iP, previamente inducidas con 1 mg l-1 de picloran. Las reglillas representan 5 mm
  • 30. 29Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II el volumen de ncleo y nucleolo y desaparecen los grnulos de almidn. Las experiencias demuestran que las clulas embriognicas se desarrollan slo cuando se modifican las condiciones de cultivo. En gene- ral, cuando se reducen las cantidades de auxi- na y citocinina o se elimina la auxina. Las clulas embriognicas desarrollan como embriones cuando las condiciones experimen- tales permiten que estas expresen su poten- cial. Pueden ocurrir dos condiciones ontog- nicas diferentes, es decir que el origen de los embriones sea unicelular o pluricelular. En el caso de iniciarse a partir de una clula, la misma se asla de las dems por una importan- te modificacin en su pared celular, en particu- lar por la gelificacin de la laminilla media. Esta clula, rodeada por un polisacrido mucilagi- noso, sufre divisiones polarizadas formando un embrin globular. Previo a esta polarizacin se deposita almidn, luego se forma la epidermis y adquiere simetra bilateral. Sucesivamente se observa el crecimiento de uno o ms cotiledo- nes, el desarrollo de los tejidos provasculares, la iniciacin de los pices radicales y de tallo y una progresiva acumulacin de almidn, lpidos y protenas. En el caso de un origen multicelular de los em- briones somticos pueden observarse diversos patrones. Los embriones somticos se forman a partir de grupos de clulas epidrmicas y subepidrmicas (Fig 4 C). Este tipo de ontoge- nia de origen multicelular se llama comnmente budding o embriognesis adventicia. Estas c- lulas pequeas tienen una alta relacin ncleo/ citoplasma, citoplasma denso y un nucleolo vo- luminoso que se tie fuerte- mente. Se diferencian de las clulas embriognicas por la falta de sustancias de reser- va, por su delgada pared ce- lular y su frecuente divisin celular. Estas estructuras se denominan proembriones globulares (Fig 1 A, B). En una etapa posterior desarro- llan una epidermis, un tejido provascular, acumulan mate- rial de reserva y se polarizan. Estas estructuras globulares desarrollan cotiledones y se transforman en embriones somticos que presentan pices caulinar y radicular. Para una misma especie puede ocurrir uno u otro tipo de inicio segn las condicio- nes de cultivo. El desarrollo de un embrin somtico de origen unicelular es compa- rable a la de un embrin ci- gtico. En dicotiledneas, la Fig. 3: Esquema de los diferentes procesos morfognicos obtenidos a partir de la siembra in vitro de diferentes explantes. Las lneas con- tinuas expresan organognesis o embriognesis directa mientras que las lneas quebradas indican que la morfognesis se obtiene por va indirecta. etapa globular es seguida por una etapa corazn que se corresponde con la adqui- sicin de la simetra bilateral: desarrollo de la epidermis,
  • 31. 30 Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II de los estratos procambiales y de manera su- cesiva el desarrollo del pice radical. El pice de tallo se desarrolla ms tarde, durante la eta- pa cotiledonar. En los embriones somticos de algunas especies hay una etapa intermedia en- tre la globular y corazn llamada oblonga, que corresponde a la individualizacin del pice de la raz y al procambium en respuesta a la elon- gacin axial del embrin somtico debido al transporte de auxinas (Fig 1 C). Los embriones de origen multicelular obtenidos por budding muestran la misma ontogenia que los cigticos, como as tambin la produccin de sustancias de reserva. Figura 4: A-E Cortes histolgicos de diferentes explantes cultivados in vitro. A, meristemoides (flechas) observados en cultivo de Silybum marianum L. en MS + 1 mg l-1 de AIA + 5 mg l-1 de BAP 10 x. B, yemas adventicias (flechas) en pices de Fragaria x ananassa Duch. cultivados en Boxus + 0,1 mg l-1 de IBA + 0.5 mg l-1 de BAP + 0,1 mg l-1 de GA3 4 x. C, grupo de clulas embriognicas (flechas) en Codiaeum variegatum (L) Blume cultivados en 1 mg l-1 de tidiazurn. 20 x. D, embriones somticos en Codiaeum variegatum (L) Blume cultivados en 1 mg l-1 de tidiazurn 10 x. E, embriognesis secundaria en Codiaeum variegatum (L) Blume cultivados en 1 mg l-1 de tidiazurn 10 x.
  • 32. 31Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II Sin el seguimiento histolgico detallado, la for- macin del embrin somtico slo puede ser confirmada por la germinacin (Fig 1 F). Sin embargo, debido al bajo porcentaje de embrio- nes que llegan a esta etapa, esta tarea es casi imprescindible para una correcta evaluacin de las respuestas encontradas con los diversos medios de cultivo empleados. Comparados con los embriones cigticos de la misma especie, los embriones somticos fre- cuentemente desarrollan de manera anormal o son inmaduros. La anomala ms frecuente- mente encontrada es la formacin doble o tri- ple del sistema vascular, causada por la pobre polarizacin del transporte de auxinas. Tambin se puede encontrar un contenido excesivamen- te alto, reducido o ausente de las reservas de almidn y/o proteicas, que el meristema apical o radical no estn desarrollados o que la embrio- gnesis sea repetitiva o secundaria (Fig 4 E). La falta del meristema apical o una escasa deposicin de sustancias lipoproteicas en los embriones somticos de algunas especies no debe ser tomada como una anormala. Esto puede ser un sntoma de inmadurez debido a la rpida formacin de los mismos. En este caso una etapa intermedia que permita la ma- duracin de las estructuras formadas permitir incrementar el porcentaje de embriones som- ticos capaces de germinar. 4.- Factores que afectan los procesos morfognicos Los cuatro principales factores que condicio- nan la obtencin y el crecimiento de nuevos rganos in vitro son: 4.1.- el genotipo 4.2.- las condiciones qumicas seleccionadas para realizar el cultivo. 4.3.- las condiciones fsicas seleccionadas para realizar el cultivo. 4.4.- el explante. 4.1.- El genotipo es un factor determinante en todos los procesos morfognicos, desde la ca- pacidad del explante para su establecimiento en condiciones in vitro a la proliferacin de callo, o la diferenciacin y crecimiento de nuevos rga- nos. Por esta causa, no es posible generalizar metodologas o protocolos de trabajo debido a que los medios de cultivo, as como las condi- ciones de cultivo seleccionados, deben ser es- pecficos para cada situacin en particular. Un ejemplo de ello es el protocolo empleado por Stamp and Meredith en diferentes cultivares de Vitis vinifera. En cuatro de ellos fue posible la obtencin de embriones somticos a partir de embriones cigticos, pero estos resultados no se repitieron con el cultivar "Pinot Noir". 4.2.- Varios son los compuestos qumicos que influyen en los patrones morfognicos in vitro dentro de los cuales podemos considerar: 4.2.1.- la composicin salina del medio de culti- vo. La composicin salina ms empleada para inducir la formacin de callo, la organognesis directa o indirecta en la mayora de las espe- cies vegetales, es la de Murashige & Skoog (1962) (MS). Sin embargo, existen otras formu- laciones diseadas para inducir determinados patrones morfognicos. Existe adems una es- trecha relacin entre la composicin hormonal del explante y la concentracin de reguladores del crecimiento agregada al medio de cultivo. 4.2.2.- reguladores del crecimiento. Estos compuestos pueden promover la morfognesis an cuando la concentracin salina no sea la adecuada. En condiciones ptimas de cultivo pueden aumentar significativamente la dife- renciacin de rganos. Para la induccin de embriones somticos en muchas especies ve- getales es necesario el agregado de auxinas, como ocurre en Tilia spp. Sin embargo para otras, como es el caso del crotn (Codiaeum variegatum), es suficiente con el agregado de thidiazurn. El genotipo y el tipo y concentra- cin de reguladores del crecimiento empleados estn estrechamente relacionados. 4.2.3.- antibiticos. En procesos de transfor- macin con Agrobacterium tumefaciens es muy comn el agregado de antibiticos del tipo cefotaxime; kanamicina y carbenicilina para la eliminacin de la bacteria. En explantes de hoja de diferentes cultivares de Malus domes- tica se encontr que 250 mg L1 de cefotaxime aumentan significativamente la regeneracin de brotes mientras que 500 mg L1 de carbe- nicilina promueven la formacin de callo y la
  • 33. 32 Biotecnologa y Mejoramiento Vegetal II kanamicina inhibe los procesos morfognicos. 4.2.4.- carbn activado. En general se usa para adsorber compuestos txicos de la micro atms- fera gaseosa o el exceso de reguladores del cre- cimiento presentes en el medio de cultivo pero E.K. Pettersson y su equipo de colaboradores de la Swedish University of Agriculture, demostraron que puede promover la embriognesis somtica debido a la incorporacin de ciertos compuestos al medio de cultivo por difusin. 4.2.5.- agar. Otro aspecto importante a tener en cuenta es la consistencia del medio de cultivo. Puede emplearse como semi-slido o lquido. El agente gelificante ms utilizado en el cultivo in vitro es el agar, extrado de diversas algas ma- rinas. Las diferentes calidades existentes en el mercado modifican la expresin morfognica debido a que pueden contener sustancias inhi- bitorias o promotoras del crecimiento. Tal es el caso del cultivo de hojas de Actinidia chilensis (en medio de MS con el agregado de 0,1 mg/L de AIA + 1 mg/L de BAP) cuya respuesta morfogni- ca vari segn el tipo de agar utilizado. Cuando el gelificante empleado fue Chubut-agar, de pro- duccin nacional, se observ una gran diferen- ciacin de yemas adventicias, mientras que con el agregado de agar SIGMA R slo se indujo la proliferacin de callo. En caso de seleccionar medios de cultivo lqui- dos, la respuesta morfognica observada vara de manera considerable. El cultivo lquido es im- prescindible cuando se busca promover la mor- fognesis indirecta a travs de suspensiones ce- lulares. Para ello es necesario cultivar los callos en medio lquido con agitacin para permitir que las clulas se disgreguen y puedan diferenciar races, brotes o embriones somticos en forma aislada. La eleccin de un medio de cultivo lquido o slido depende, adems, de la especie con la que se trabaja. En Cymbidium, por ejemplo, se ha observado que el empleo de medio lquido promueve una mayor diferenciacin de proto- cormos respecto del mismo gelificado. A su vez, este proceso puede mantenerse durante varios subcultivos, mientras que en medio de cultivo ge- lificado se observ que los protocormos tienden a formar tallos. 4.2.6.- atmsfera gaseosa. Es un factor determi- nante en los procesos morfognicos y esta con- dicionada por el tipo y tamao del envase selec- cionado para el cultivo, as como tambin por el sistema de cobertura del mismo. Las tapas usa- das en cultivo in vitro varan desde el tapn de algodn; papel de aluminio; pelcula de resinite transparente o tapas rgidas de polipropileno. El intercambio gaseoso es diferente para cada tipo de tapa, en consecuencia la atmsfera interna tambin sufrir variaciones. En condiciones in vivo la atmsfera contiene 78 % de nitrgeno;