Upload
others
View
0
Download
0
Embed Size (px)
Citation preview
UNIVERZITA PALACKÉHO V OLOMOUCI
PŘÍRODOVĚDECKÁ FAKULTA
Katedra fyzikální chemie
PŘÍPRAVA KOLOIDNÍCH ČÁSTIC STŘÍBRA A JEJICH POUŽITÍ
V POVRCHEM ZESÍLENÉ RAMANOVĚ SPEKTROSKOPII VYBRANÝCH
VÝZNAMNÝCH LÁTEK
DIPLOMOVÁ PRÁCE
Autor: Bc. Olga Balzerová
Studijní obor: Materiálová chemie
Vedoucí práce: RNDr. Robert Prucek, Ph.D.
V Olomouci 2013
1
Bibliografická identifikace
Jméno a příjmení autora: Olga Balzerová
Název práce: Příprava koloidních částic stříbra a jejich použití
v povrchem zesílené Ramanově spektroskopii
vybraných významných látek
Typ práce: Diplomová
Pracoviště: Katedra fyzikální chemie
Vedoucí práce: RNDr. Robert Prucek, Ph.D.
Rok obhajoby práce: 2013
Abstrakt: Diplomová práce se zabývá přípravou nanočástic
stříbra s různou velikostí. Stříbrné nanočástice byly
připraveny redukcí glukosou nebo maltosou o různých
koncentracích. Také byl studován vliv koncentrace
amoniaku v disperzi na velikost částic. U disperzí
připravených redukcí maltosou nebyla prokázána
výrazná závislost velikosti nanočástic na různých
koncentracích maltosy ani amoniaku. Při přípravě
nanočástic stříbra redukcí komplexu [Ag(NH3)2]+
glukosou bylo dosaženo rozsahu velikostí nanočástic
od 40 nm po 100 nm změnou koncentrace amoniaku.
Připravené nanočástice stříbra byly testovány
v experimentech povrchem zesílené Ramanovi
spektroskopie. Bylo docíleno optimálního postupu pro
získání největšího zesílení Ramanova signálu a tímto
postupem byla naměřena spektra pro biogenní
aminokyseliny.
2
Klíčová slova: nanočástice stříbra, aminokyseliny, chemická syntéza,
povrchem zesílená Ramanova spektroskopie (SERS)
Počet stran: 67
Počet příloh: 1 × CD
Jazyk: Český
3
Bibliographical identification
Author’s first name and surname: Olga Balzerová
Title: Preparation of silver colloid particles and their
utilization in surface enhanced Raman spectroscopy
of important molecules
Type of thesis: Master
Department: Department of Physical Chemistry
Supervisor: RNDr. Robert Prucek, Ph.D.
The year of presentation: 2013
Abstract: This diploma thesis focused on preparation of silver
nanoparticles with different sizes. The silver
nanoparticles were prepared by reduction of the
complex [Ag(NH3)2]+ with glucose or maltose with
different concentrations. The influence of ammonia
concentration on particle sizes was also studied.
Different concentrations of maltose or ammonia (in
dispersions prepared with maltose) had no significant
effect on particles sizes. Preparation of silver
nanoparticles by reduction with glucose proved
influence of ammonia concentration on particles sizes.
By using different ammonia concentrations were
prepared silver nanoparticles with average particle
size in range from 40 nm to 100 nm. The prepared
silver nanoparticles were tested in surface enhanced
Raman spectroscopy experiments. The optimal
procedure for obtain the strongest enhance of Raman
4
signal was achieved and spectra for biogenic amino
acids were measured.
Keywords: silver nanoparticles, amino acids, chemical synthesis,
surface enhanced Raman spectroscopy (SERS)
Number of pages: 67
Number of appendices: 1 × CD
Language: Czech
5
PROHLÁŠENÍ
Prohlašuji, že jsem tuto práci vypracovala samostatně pod vedením pana
RNDr. Roberta Prucka, Ph.D. Veškeré informace a podkladové materiály,
které jsem při práci využila, jsou uvedeny v seznamu použité literatury.
V Olomouci dne…………… ....…………………………
podpis
6
PODĚKOVÁNÍ
Chtěla bych poděkovat vedoucímu mé diplomové práce RNDr. Robertu
Pruckovi, Ph.D. za odborné vedení, cenné připomínky a za pomoc při
zpracování této diplomové práce. Také bych chtěla poděkovat dalším
členům Katedry fyzikální chemie především RNDr. Aleši Panáčkovi, Ph.D. za
pořizování snímků z elektronového mikroskopu a Mgr. Arianě Fargašové za
pomoc při měření Ramanových spekter.
7
OBSAH
ÚVOD .............................................................................................................. 9
TEORETICKÁ ČÁST ............................................................................................ 10
1. Disperzní soustavy ........................................................................................ 10
2. Koloidní disperze – charakteristika ............................................................ 11
2.1. Kinetické vlastnosti ................................................................................... 12
2.2. Optické vlastnosti ..................................................................................... 13
2.2.1. Rozptyl záření .................................................................................... 14
2.2.2. Absorpce záření ............................................................................... 14
2.2.3. Plasmonová rezonance kovových nanočástic .......................... 15
2.3. Elektrické vlastnosti ................................................................................... 16
3. Příprava koloidních disperzí ........................................................................ 18
3.1. Dispergační metody ................................................................................ 18
3.2. Kondenzační metody .............................................................................. 19
4. Příprava nanočástic stříbra ........................................................................ 20
4.1. Redukce anorganickými látkami ........................................................... 20
4.2. Redukce organickými látkami ............................................................... 21
4.3. Laserová ablace ...................................................................................... 22
4.4. Redukce gama zářením ......................................................................... 23
4.5. Fotochemická metoda ........................................................................... 23
5. Aplikace nanočástic stříbra ....................................................................... 23
5.1. Povrchem zesílená Ramanova spektroskopie ..................................... 24
5.1.1. Historie ............................................................................................... 25
5.1.2. Princip ................................................................................................ 25
5.1.3. Uplatnění SERS .................................................................................. 26
5.2. Použití v medicíně a komerčních produktech .................................... 28
EXPERIMENTÁLNÍ ČÁST ..................................................................................... 30
6. Materiál a metody ....................................................................................... 30
6.1. Chemikálie ................................................................................................ 30
6.2. Přístrojové vybavení ................................................................................. 30
8
6.3. Příprava disperze nanočástic stříbra ..................................................... 30
6.4. Aktivace nanočástic stříbra a jejich kinetika ....................................... 31
6.5. Experimenty povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie .............. 32
7. Výsledky a diskuze ....................................................................................... 32
7.1. Příprava nanočástic redukcí komplexu [Ag(NH3)2]+ maltosou ......... 32
7.1.1. Příprava nanočástic stříbra redukcí komplexu [Ag(NH3)2]+
maltosou – metoda předpřipraveného komplexu [Ag(NH3)2]+ .................. 36
7.2. Příprava nanočástic redukcí komplexu [Ag(NH3)2]+ glukosou .......... 40
7.2.1. Příprava nanočástic stříbra redukcí komplexu [Ag(NH3)2]+
glukosou – metoda předpřipraveného komplexu [Ag(NH3)2]+ ................... 44
7.3. Aktivace stříbrných nanočástic a sledování kinetiky procesu
rekrystalizace ...................................................................................................... 48
7.4. Experimenty povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie .............. 51
7.4.1. Optimalizace postupu .................................................................... 51
7.4.2. Měření aminokyselin ........................................................................ 55
ZÁVĚR ............................................................................................................ 62
SUMMARY ...................................................................................................... 63
LITERATURA ..................................................................................................... 64
9
ÚVOD
Kovové nanočástice fascinují vědce již po staletí a v dnešní době jsou široce
využívány v biomedicínských vědách a inženýrství. Tomuto zájmu vděčí pro svůj
obrovský potenciál v oblasti nanotechnologií.1 Ty se týkají oblasti vědy a techniky
zabývající se materiály, které mají rozměry v řádech stovek nanometrů. Ačkoliv je oblast
nanotechnologií používaných v praxi stále ještě z velké části neprobádaná, na jejich velký
potenciál bylo poukazováno již v roce 1959 R. Feynmanem. Jeho přednáška, která nese
název „There´s Plenty of Room at the Bottom“, byla ve své době pouhou vizionářskou
myšlenkou poukazující na budoucnost technologií a pokroku ve zmenšování až na úroveň
pouhých atomů.2 S rozvojem nanotechnologií vznikly i nové nanomateriály, které mají
odlišné fyzikálně-chemické vlastnosti ve srovnání se svými makroskopickými formami.
Současné metody umožňují syntetizovat a modifikovat tyto materiály nejrůznějšími
funkčními skupinami, které umožňují jejich použití v oblasti biotechnologií, magnetické
separace, diagnostického zobrazování, cíleného poskytování léčiv nebo zakoncentrování
analytů. Pro účely lepšího studia těchto materiálů byly vyvinuty různé zobrazovací
a analytické metody jako je magnetická rezonance (MRI), počítačová tomografie (CT),
pozitronová emisní tomografie (PET), ultrazvuk či povrchem zesílená Ramanova
spektroskopie (SERS).1
Povrchem zesílená Ramanova spektroskopie je metoda vhodná pro mnoho různých
oblastí výzkumu, jako je materiálová chemie, biologie nebo povrchová chemie. Zesílení
Ramanova signálu se dosahuje díky povrchovému plasmonu, který vzniká v důsledku
laserového záření dopadajícího na povrch kovu. Excitace elektronů ve vodivostním pásu
způsobí kolektivní oscilaci nazývanou povrchový plasmon. Stříbro a jeho nanočástice patří
mezi nejvíce využívaný substrát právě pro použití v SERS.1, 3
Velikost nanočástic
a jejich tvar mají klíčový vliv na zesílení Ramanova signálu studovaného analytu. Při
vhodné přípravě je možné dosáhnou faktoru zesílení až 1015
. 3
Předkládaná práce se zabývá přípravou nanočástic stříbra s různou velikostí částic
a jejich použití v povrchem zesílené Ramanově spektroskopii. Také byly zkoumány různé
postupy aktivace těchto stříbrných nanočástic tak, aby se docílilo co největšího zesílení
Ramanova signálu. Po procesu optimalizace tohoto postupu byla změřena spektra pro
biogenní aminokyseliny, které patří mezi základní organické sloučeniny potřebné pro
život.
10
TEORETICKÁ ČÁST
1. Disperzní soustavy
Obsahuje-li soustava alespoň dvě složky, kdy je jedna rozptýlena ve formě částic ve
druhé, říkáme takovéto soustavě disperzní. Složku tvořenou částicemi označujeme jako
disperzní podíl a druhou, spojitou složku jako disperzní prostředí. Disperzní soustavy
můžeme rozdělovat podle mnoha různých faktorů, z nichž nejčastějším je velikost částic
disperzního podílu. Z tohoto hlediska dělíme disperzní soustavy do tří skupin, které však
nemají ostře vymezené hranice přechodu. Soustavy s velmi malými částicemi, které nejsou
viditelné ani v elektronovém mikroskopu, nazýváme analytické disperze. Tyto disperze
jsou stálé, nesedimentují a procházejí membránami a filtračními papíry. Obvykle se uvádí
jako horní mez velikosti částic 10-9
m. Disperze obsahující částice nad tuto mez do
přibližně 10-6
m jsou koloidní disperze. Ani tyto částice nemůžeme vidět v optickém
mikroskopu, na jejich pozorování však můžeme využít ultramikroskop či elektronový
mikroskop. Rychlost sedimentace závisí na velikosti částic, avšak sedimentují pomalu.
Také tyto disperze procházejí filtračními papíry, ale ne všemi membránami. Disperze,
které je možné filtrovat přes filtrační papíry, označujeme jako hrubé disperze. Částice
v hrubých disperzích mají zpravidla velikost od 10-6
m a více, jsou viditelné pouhým okem
či optickým mikroskopem a velmi rychle podléhají gravitační síle a sedimentují.4
Měřítkem velikosti disperzních částic a jejich následného rozdělení bývá veličina
stupeň disperzity, která nám udává jemnost, s jakou je disperzní podíl rozptýlen
v disperzním prostředí. Stupeň disperzity se vyjadřuje jako převrácená hodnota rozměru
částic. Pro určení a rozdělení na frakce dle velikostí částic se používají distribuční křivky.
Ve velké většině disperzních soustav můžeme pozorovat obsah mnoha různě velkých
částic – jedná se o polydisperzní systémy, nebo obsahují částice pouze několika velikostí –
v takovém případě hovoříme o systémech paucidisperzních. Ve výjimečných případech,
kdy jsou podmínky přísně hlídány a kontrolovány, může dojít ke vzniku disperzí s pouze
jednou velikostí částic – monodisperzí. Jako monodisperzní systémy však bývají
označovány i disperze s velmi úzkým rozmezím velikosti částic (kde průměrná odchylka
střední velikosti částic není větší jak 10 %).4, 5
11
2. Koloidní disperze – charakteristika
Ačkoliv nás koloidní systémy obklopují odjakživa, byl obor koloidní chemie
vymezen až v devatenáctém století díky Thomasu Grahamovi. Označení koloid je
odvozeno od řeckého názvu běžného představitele této skupiny – klihu (kolla). Díky
zkoumání a studiu koloidních systémů přišel Graham na princip dialýzi, která se stala
významnou součástí medicínských postupů.4
Rozsah výskytu koloidních systémů je jedním z nejširších na Zemi. Ať už se jedná
o jevy čistě přírodní (jíly, mlhy, mléko, krev, …) nebo o průmyslové či technologické
procesy (barviva, inkoust, papíry, plasty, kosmetické přípravky, …). Obecně koloidní
disperze rozdělujeme podle skupenství jak disperzního podílu, tak i disperzního prostředí
(Tabulka 1.).4, 6
Tabulka 1. Typy koloidních disperzí a jejich příklady
Disperzní
prostředí Disperzní
podíl Koloidní
systém Příklad
plynné
plynný netvoří koloidy
kapalný aerosoly mlha, spreje
pevný aerosoly kouř, dým
kapalné
plynný pěny šlehačka, pivní pěna
kapalný emulze mléko, majonéza
pevný lyosoly zubní pasta, inkoust,
krev
pevné
plynný tuhé pěny aerogel, pemza
kapalný tuhé emulze zmrzlina, sýry, másla
pevný tuhé lyosoly barevná skla,
drahokamy
Koloidní systémy, které mají v kapalném prostředí rozptýleny pevné
částice – lyosoly, dělíme dále do tří skupin: 1) Koloidní disperze (lyofobní disperze) jsou
termodynamicky nestálé, heterogenní systémy. Někdy označovány jako nevratné koloidy
pro jejich tendenci srážet se a shlukovat. 2) Koloidní roztoky (lyofilní koloidy) označují
homogenní, stálé systémy, které jsou pravými roztoky makromolekul. 3) Asociativní
koloidy (micelární koloidy) tvoří z dispergovaných povrchově aktivních částic po
překročení kritické koncentrace micely.4, 7
12
2.1. Kinetické vlastnosti
Ačkoliv částice obsažené v koloidních disperzích okem nevidíme, můžeme jejich
pohyb odvodit od výsledků pozorování Roberta Browna (1827), který si všiml a začal
studovat pohyb pylových zrn ve vodě pod mikroskopem. Dalšími studiemi vyloučil
možnost vlastního života pylových zrn a došel k závěru, že se částice nezávisle na druhu
látky v dostatečném množství disperzního prostředí neustále chaoticky pohybují. Teorii
tohoto jevu pojmenovaného Brownův pohyb objasnili až téměř o sto let později (1905)
Albert Einstein a Marian Smoluchowský.6, 8
Pohyb částic ovlivňuje mnoho faktorů
(teplota, jejich velikost, srážky mezi sebou) a není možné zjistit skutečnou délku trasy,
kterou urazí. Proto byla zavedena veličina střední kvadratický posuv částice, která
charakterizuje intenzitu Brownova pohybu zprůměrováním posunů částice v různých
směrech.4, 6
V makroskopickém měřítku je důsledkem tepelného pohybu snaha vyrovnávat
koncentrace – difundovat. Rychlost difuze byla v minulosti jedním z prvních původních
kritérií pro označení látky jako koloidu. Analytické disperze lze rozlišit pro jejich rychlou
difuzi, hrubé disperze naopak nedifundují vůbec. Prvním, kdo se zabýval tímto jevem
a popsal jej matematickou rovnicí, byl Adolf Fick (1855).
(1)
Tato rovnice, zvaná první Fickův zákon, nám zavádí veličiny J – difuzní tok
a D – difuzní koeficient, poměr dc/dx označuje koncentrační gradient.9
Charakterizaci difuzního koeficientu později rozpracoval Einstein a odvodil vztah
mezi částicemi a disperzním prostředím.
(2)
Difuzní koeficient D je přímo úměrný absolutní teplotě T a nepřímo úměrný
koeficientu tření fi. Koeficient tření je veličina závislá jak na tvaru a rozměru částic, tak
i na vlastnostech disperzního prostředí.
13
Pro kulovitou částici můžeme použít Einstein-Stokesovu rovnici pomocí níž lze
vypočítat poloměr velikosti částic.5, 6
(3)
Protože jsou všechny látky na Zemi pod vlivem vnějších sil, dochází k jevu
zvanému sedimentace. Rozhodující faktory na rychlost sedimentace jsou velikost působící
síly a velikost (váha) částic. U koloidních disperzí, obsahujících obvykle už jen malé
částice, je rychlost sedimentace v gravitačním poli Země téměř neměřitelná. Proti
gravitační síle totiž ještě působí síly vztlaková a třecí a také Brownův pohyb, což
způsobuje ustanovení sedimentační rovnováhy disperze. Jakmile se částice díky
sedimentaci nahromadí u dna nádoby a vytvoří tak rozdílné koncentrace v systému, jsou
okamžitě znovu rozptýleny zpět pomocí difuze. Po určité době, kdy se počet
sedimentujících částic rovná počtu částic, které difundují zpět, se ustanovuje sedimentační
rovnováha systému.
Chceme-li urychlit a podpořit sedimentaci částic, můžeme použít centrifugy
a ultracentrifugy. Díky jejich odstředivé síle (až 106 krát větší než je gravitační síla), kterou
působí na disperzi, dochází k ustanovení sedimentační rovnováhy mnohem rychleji.5, 7
Ultracentrifugy našly své uplatnění především v oblasti biochemie pro separaci proteinů,
také se využívají na rozdělení směsi nanomateriálů např. uhlíkových nanotrubiček.10, 11
2.2. Optické vlastnosti
Díky velikosti částic v koloidních disperzích, které jsou menší, než je vlnová délka
viditelného světla (400 nm – 700 nm) dopadajícího na systém, dochází k jedinečným
charakteristickým optickým vlastnostem. Když paprsek světla dopadá na koloidní disperzi,
část světla může být absorbována, část rozptýlena a zbývající část prochází vzorkem
nezměněná.8
14
2.2.1. Rozptyl záření
Osvětlujeme-li vzorek koloidní disperze paprskem světla, můžeme pozorovat jistou
opalescenci a jemný zákal, za podmínky dostatečné velikosti částic nebo vysokého indexu
lomu. Nejvýraznějším důsledkem rozptylu světla je však Tyndallův jev. Jedná se
o zviditelnění paprsku světla dopadajícího na disperzi z boku – pozorujeme tzv. Tyndallův
kužel s vrcholem v místě přechodu do disperze a postupným rozšiřováním směrem ven.5
Pro kulovité částice výrazně menší, než je vlnová délka dopadajícího světla, byla
vypracována teorie Lordem Rayleighem roku 1871. Dal tak obecný základ pro studium
rozptylu světla, který později dále rozpracovali Debye a Mie. Rayleigh odvodil rovnici pro
neabsorbující částici v plynném prostředí. Z částice se po dopadu elektromagnetického
záření (o intenzitě I0 a vlnové délce λ s polarizabilitou α) stává sekundární zdroj
rozptýleného záření o stejné vlnové délce jako má dopadající záření v důsledku vyvolání
oscilujících dipólů v částici. Pro nepolarizovaný dopadající paprsek je intenzita I0 ve
vzdálenosti r od částice dána rovnicí:
( ) (
). (4)
Výraz ( ) se nazývá Rayleighův poměr, kde číslo jedna v části ( )
vyjadřuje vertikálně polarizovanou složku a výraz naopak horizontálně
polarizovanou složku rozptýleného záření.7, 12
2.2.2. Absorpce záření
Pokud je určitá vlnová délka elektromagnetického záření pohlcována částicemi
disperzního systému - absorbována, disperze se nám jeví jako barevná (barva koloidu ale
také závisí na velikosti dispergovaných částic). Při absorpci dochází k přechodu molekul
do vyšších energetických stavů, tzn. k excitaci. Zvýšením vnitřní energie dochází k její
přeměně na energii tepelnou.6
Intenzitu procházejícího záření zeslabeného absorpcí
můžeme fotometricky změřit.5 Pro výpočet absorbovaného záření zavádíme veličinu
absorbance A a používáme Lambert-Beerův zákon:
, (5)
15
kde I označuje intenzitu prošlého záření, I0 intenzitu dopadajícího záření, ε je molární
absorpční koeficient (charakteristický pro každou látku), c je koncentrace látky a l značí
šířku vrstvy, kterou záření prochází.13
2.2.3. Plasmonová rezonance kovových nanočástic
Kovové nanočástice mají ještě jednu specifickou optickou vlastnost a tou je
povrchová plasmonová rezonance. K té dochází, je-li částice ozářena, což způsobí
kolektivní oscilaci elektronů ve vodivostním pásu. Kolektivní oscilace je dána jak excitací
vodivostních elektronů, tak také přítomností vratných sil (vyplývajících z indukované
polarizace jak částice, tak okolního prostředí) a také rozměrem částice, který je menší než
je vlnová délka záření. Elektromagnetické záření způsobí vznik elektrického pole, které
vytlačuje elektrony z jejich rovnováhy a vytváří tak spolu s vratnými silami oscilační
pohyb elektronů o určité frekvenci.
Tvar spektra povrchové plasmonové rezonance je určován dimenzionalitou částic.
Pro částice o mnoho menší než je vlnová délka záření a elektromagnetické pole je tak
v celé částici jednotné (tvoří pouze jeden dipól), je charakteristický jediný, úzký pík. Jak se
rozměr částice zvětšuje, dochází i ke zvyšování počtu dipólů (obrázek 1), což vede ke
vzniku několika píků ve spektru.
Obr. 1. Diagram zobrazující elektrické pole částic. Dipól (A), kvadrupól (B) a oktupól (C).
S rostoucí velikostí částic se také posouvá maximum píků k delším vlnovým
délkám. Příkladem mohou být spektra stříbrných suspenzí s různě velkými částicemi
(obrázek 2). Spektrum stříbrné suspenze s nejmenšími částicemi dosahuje maxima
16
v oblasti kolem 420 nm, u větších částic je patrné, že se maximum nejen posouvá, ale že
dochází i ke zmiňovanému vzniku dalších píků. Posouvání maxima píků ve spektrech je
důsledkem šíření povrchového náboje částice přes větší plochu povrchu, díky čemuž může
okolní prostředí lépe kompenzovat vratné síly, které zpomalují oscilaci elektronů.14
Obr. 2. UV/Vis spektra stříbrných suspenzí obsahujících 20 různě velkých nanočástic.14
2.3. Elektrické vlastnosti
Že koloidní částice mají elektrický náboj je známo už dlouhou dobu, přestože
celkový náboj koloidní disperze je neutrální. Za vznik elektrického náboje částic odpovídá
několik mechanismů. Může se jednat o disociaci funkčních skupin, které jsou součástí
povrchu částice nebo částečnou/úplnou adsorpci iontů z disperzního prostředí.8, 9
Rozdílné
náboje v koloidních disperzích byly zjištěny experimentálně a to F. F. Rejssem (1808),
když studoval elektrolýzu a její zákonitosti. Vložením vnějšího elektrického pole na
koloidní systém uvedl do pohybu molekuly disperzního prostředí – tomuto jevu se říká
elektroosmóza. Opačný jev – tedy pohyb koloidních částic v elektrickém poli – se nazývá
elektroforéza. Tyto úkazy jsou souhrnně označovány jako elektrokinetické jevy a patří mezi
ně ještě sedimentační potenciál a potenciál proudění. Později byl vysloven předpoklad, že
elektrokinetické jevy vděčí za svůj původ prostorovému rozložení nábojů částic
17
a disperzního prostředí ve vzájemné těsné blízkosti. Rozpracováním této myšlenky vznikly
teoretické předpoklady modelů elektrické dvojvrstvy.6
Prvním modelem a zároveň také nejjednodušším, byl model Helmholtzův.
Elektrickou dvojvrstvu si můžeme představit jako dvě rovnoběžné desky nabitého
kondenzátoru – jedna deska je tvořena ionty vázanými na povrch, druhá je tvořena opačně
nabitými ionty. Mezi deskami je mezivrstva disperzního prostředí. Tato teorie předpokládá
nehybnost vrstev, což je však mylný závěr. Proto byla přepracována a pohyblivost vrstvy
byla zakomponována do tzv. difuzní vrstvy. Oblast mezi vnitřní vrstvou a difuzní se
nazývá pohybové rozhraní. Tento model vypracovali nezávisle na sobě Goüy a Chapman,
proto nese jméno obou – Goüyův-Chapmanoův model. Nejpřesnějším modelem elektrické
dvojvrstvy je však model Sternův. K modelu difuzní vrstvy ještě přidal Sternovu vrstvu,
která je tvořena vrstvou protiiontů a je těsně přilehlá k povrchu částice, čímž spolu tvoří
kompaktní vnitřní vrstvu. Difuzní vrstva, která už neobsahuje takové množství protiiontů,
leží až za Sternovou vrstvou. Na jejich rozhraní nazýváme hodnotu potenciálu jako
ζ-potenciál nebo elektrokinetický potenciál, protože je to právě tento potenciál, který má za
následek elektrokinetické jevy zmíněné v předcházejícím odstavci.6, 13
Obr. 3. Modely elektrické dvojvrstvy. Helmholtzův model (a), Goüyův-Chapmanův model
(b) a Sternův model (c).15
18
3. Příprava koloidních disperzí
Protože velikost koloidních částic se pohybuje mezi velmi malými částicemi
analytických disperzí a mezi velkými částicemi hrubých disperzí, můžeme k technice jejich
přípravy přistupovat ze dvou různých směrů. Metoda, kdy se z makroskopického materiálu
tvoří pomocí vnější síly menší částice, se označuje jako dispergační. Chceme-li vytvořit
koloidní částice opačným postupem – tedy z menších částic větší, použijeme metodu
kondenzační. Principem této metody je vznik zárodečných center nové fáze a jejich
následný růst. Aby se však dosáhlo stabilní koloidní soustavy, je nutné pracovat za
takových podmínek, které zabraňují agregaci a flokulaci nově vzniklých částic.6, 9
3.1. Dispergační metody
Tyto metody bývají také často označovány anglickým termínem top-down, právě
pro směr postupu výroby koloidních částic – z vrchu (z velkých) dolů (na malé částice).
Metoda dispergování pevných látek je jednou z nejstarších a na Zemi velmi rozšířená.
Veškerá zemina a půda je v podstatě tvořená touto metodou a to postupným zvětráváním
a erozí hornin. Také v oblasti průmyslu se tato metoda široce využívá. Pod dispergační
metody spadá např. řezání, broušení, mletí, atd.6, 9
Tyto procesy však vyžadují velké
množství dodávané energie – práce, která se v soustavě přemění na energii nového
fázového rozhraní a zbytek na tepelnou energii.4
Nejrozšířenější dispergační metodou je mletí. To můžeme dělit podle stupně
disperzity mletého materiálu na drcení (vznikají částice o velikosti několika centimetrů
nebo milimetrů), mletí (částice s rozměrem desetin milimetrů) a jemné mletí.6 K mletí se
využívají různé typy konstrukcí mlýnů. Mezi základní patří mlýny kulové, kolové
a koloidní. Právě koloidní mlýny, jak již název napovídá, mohou dosáhnout výsledné
velikosti částic s rozměrem v nanometrech. Koloidní mlýn je uspořádán tak, že materiál je
protlačován mezi rotujícím kuželovým kotoučem a kuželovým sedlem mlýnu a tím zde
dochází k intenzivnímu tření a narušení větších částic. 16, 17
Další významnou technikou je laserová ablace, při níž je vysoce energetickým
laserem mířeno přímo na pevný materiál. Na místě vzniká směs nano útvarů, které jsou pak
třízeny a analyzovány.17
Tato metoda je především vhodná pro kovové materiály
19
a vyznačuje se svojí velkou rychlostí. Velikost vznikajících částic jsme schopni ovlivnit
např. výběrem laseru o určité vlnové délce. 18, 19
Na pomyslném rozhraní mezi metodami dispergačními a kondenzačními si stojí
metoda elektrického rozprašování. Zde totiž dochází ke vzniku koloidních částic jak
z materiálu elektrod (část dispergační), tak i zkondenzováním kovových iontů vypařených
do okolí (část kondenzační). Kovové elektrody jsou ponořeny do ochlazovaného
disperzního prostředí a je na ně přiváděno vysokofrekvenční stejnosměrné či střídavé
napětí.6, 8
Koloidní disperze byly touto metodou připravovány už v roce 1898 (Bredig)
a dodnes jsou velmi populární. Dokonce se na marketingovém trhu objevují přístroje pro
domácí použití (tvorba koloidního stříbra pro jeho léčebné účinky).20
3.2. Kondenzační metody
Pod anglickým pojmem bottom-up se skrývají metody kondenzační. Tyto metody
vycházejí z analytických disperzí a je zapotřebí dosáhnout dostatečného přesycení, aby
došlo ke vzniku nové fáze. Tento proces se skládá ze dvou kroků: vznik zárodků
(nukleace) a růst zárodků. Při vzniku zárodku musí systém překonat určitou energetickou
bariéru, která brání tomuto slučování částic. Po překonání energetické bariéry nastává růst
zárodku v důsledku vzniklých rozdílů chemických potenciálů látky a prostředí. Nové
částice se k zárodku dostávají pomocí difuze a její rychlost tedy hraje důležitou roli
i v rychlosti růstu nové fáze. To, v jakém poměru jsou rychlosti obou kroků, určuje
velikost nanočástic i stabilitu vzniklé koloidní disperze. Pro vysoce disperzní systém jsou
optimálními podmínkami rychlá nukleace a pomalý růst zárodků. Potřebné přesycení
systému a následnou tvorbu zárodečných center můžeme vyvolat buďto změnou
fyzikálních nebo chemických podmínek.7, 8
Jiných fyzikálních podmínek se obvykle dosahuje změnou teploty, složení
rozpouštědla, či méně obvyklou změnou tlaku. Běžným případem zkondenzování částic
poklesem teploty je tvorba mraků z vodní páry. Podchlazení systému se také široce
využívá v oblasti metalurgie, kde jsme díky tomu schopni vytvořit požadované
polykrystalické materiály.6 Přimícháme-li do roztoku s rozpuštěnou požadovanou látkou
rozpouštědlo, ve kterém není látka rozpustná, vytvoří se přesycený roztok a následně
koloidní částice této látky.4
Mnohem častější a jednoduší metodou je změna chemických podmínek. Tou je
v podstatě jakákoliv reakce vedoucí k vytvoření látky nerozpustné v daném disperzním
20
prostředí. Koloidní částice tak mohou vzniknout pomocí reakcí oxidačních, redukčních,
výměnných, hydrolytických nebo i srážecích.4 Vlastnosti (velikost, tvar, …) koloidních
částic lze snadno ovlivňovat různými faktory jako je teplota, koncentrace, pH anebo
rychlost míchání.8
4. Příprava nanočástic stříbra
Vlastnosti materiálu se výrazně mění s jeho zmenšováním objemu tj. zvětšováním
počtu povrchových atomů. Již dávno prozkoumané materiály tak nabízí ve své
nanometrové podobě nové jedinečné vlastnosti. Stříbro se stalo jedním z nejvíce
používaným kovem v oblasti nanotechnologií pro své fyzikálně-chemické vlastnosti a pro
velké množství různých postupů přípravy. Většina metod přípravy nanočástic stříbra je
založena na kondenzačních postupech pomocí organických či anorganických redukčních
činidel, ale objevují se i metody využívající různé druhy záření např. UV záření či γ záření.
Vlastnosti jako jsou velikost částic nebo jejich stabilita jsou klíčové pro jejich další využití.
Je tak důležité zvolit vhodnou metodu přípravy stříbrných nanočástic tak, aby co nejlépe
posloužily svému účelu.
4.1. Redukce anorganickými látkami
Chceme-li stříbrné koloidní částice vytvořit pomocí redukce anorganickou látkou,
velmi pravděpodobně narazíme na metodu využívající tetrahydridoboritan sodný. Tento
postup publikoval Creighton a kol.21
už v roce 1979 a stále se těší velké oblibě.22, 23, 24
Principem je smíchání 0,001 M vodného roztoku AgNO3 s 0,002 M roztokem NaBH4
(který je chlazený ledem) ve vzájemném poměru 1:3. Roztoky byly intenzivně míchány
a výsledná disperze se zbarvila žlutě. Velikost stříbrných částic se pohybovala v rozmezí
od 1 nm po 50 nm. Tyto disperze se ukázaly být vcelku stabilní – nezměnily se ani po
několika týdnech. V dnešní době se také pracuje s mnoha modifikacemi tohoto postupu,
které nám umožňují vytvářet částice s různými požadovanými vlastnostmi.25, 26
Velmi jednoduchou a rychlou metodu přípravy nanočástic stříbra publikovali
Leopold a Lendl.27
V zásaditém prostředí nechali zreagovat roztok dusičnanu stříbrného
s roztokem hydroxylamin hydrochloridu za pokojové teploty. Změnami koncentrací těchto
21
dvou roztoků vyzkoušeli možnost ovlivnit velikost vznikajících částic. Vzniklé částice
s velikostí kolem 100 nm se ukázaly být velmi vhodné pro jejich použití v SERS.
Použití stříbrných nanočástic v povrchem zesílené Ramanově spektroskopii (SERS)
je v dnešní době velmi oblíbené a proto bylo vyvinuto mnoho metod jejich přípravy tak,
aby k tomuto účelu byly co nejvhodnější. To se týká i přípravy koloidního stříbra
hydrazinem. Nickel a kol.28
připravili koloidní disperzi redukcí AgNO3 hydrazin
dihydrochloridem za vzniku převážně kulovitých částic, jejichž velikost (40 nm – 70 nm)
závisela na koncentraci stříbrných iontů. Pro dobrou funkci částic na SERS nesmí být příliš
malé, proto jsou tyto velikosti vhodné. Velkou výhodou této metody je stabilita vzniklé
disperze – nezměněná vydrží až několik měsíců a to bez přidání jakýchkoliv stabilizátorů.
Ve většině postupů přípravy redukce anorganickými látkami se totiž k roztokům přidávají
různé stabilizátory např. dodecylsulfát sodný (SDS), polyvinyl pyrrolidon (PVP) nebo
polyvinyl alkohol (PVA). 29, 30
4.2. Redukce organickými látkami
Tradiční metodou v této oblasti je metoda „Lee-Meisel“ 31
. Nese jména svých
autorů, kteří se však inspirovali v dřívější práci Turkeviche syntetizujícího zlaté
nanočástice.14
Lee a Meisel přidali k vařícímu vodnému roztoku 500 ml AgNO3
(90 mg) 10 ml 1% roztoku citrátu sodného. Směs byla ponechána za stálého varu po dobu
přibližně jedné hodiny. Výsledná disperze měla nazelenale žlutou barvu a obsahovala
velké množství částic s velikostí 50 nm až 100 nm. Další studie prokázaly, že citrát v této
reakci nepůsobí jen jako redukční činidlo, ale i jako stabilizátor částic. Ovlivňuje jak
velikost vznikajících částic, tak i jejich tvar.32
Dalším typickým příkladem syntézy stříbrných částic je Tollensova metoda, při níž
vzniká na povrchu skla stříbrný film - zrcátko. Jedná se o redukci komplexu
diaminstříbrného kationtu glukózou a je možné touto metodou připravit filmy s částicemi
60 – 180 nm nebo stabilní disperzi obsahující částice 20 – 50 nm v závislosti na
koncentraci roztoků. Modifikací Tollensovi metody je možné připravit velké množství
různých disperzí obsahujících částice s požadovanými vlastnostmi. K redukci komplexu
diaminstříbrného kationtu [Ag(NH3)2]+ můžeme totiž použít různé látky, jako jsou
sacharidy či aldehydy. Jedná se o velmi rychlou metodu – koloidní částice stříbra vznikají
už v řádech jednotek minut. Velikost vzniklých částic ovlivňuje nejen volba redukční
látky, ale také koncentrace amoniaku při tvorbě komplexu jak dokázali ve své práci např.
22
Kvítek a kol.33
. K redukci používali několik látek – xylosu, glukosu, fruktosu a maltosu.
Největší částice vznikaly při reakci s fruktózou, naopak nejmenší částice byly vytvořeny
pomocí maltózy. Vliv koncentrace amoniaku se projevoval u všech zkoumaných systémů
stejně. S rostoucí koncentrací amoniaku rostla také velikost částic (např. u maltózového
koloidu: 47 nm až 352 nm). Také v práci Panáčka a kol.34
se zabývali těmito vlivy, použili
však ještě i jiné látky – galaktosu a laktosu. Syntetizované disperze poskytli ke studiu
antibakteriální aktivity. Nejúčinnějšími disperzemi byly ty, kde se k redukci použili
disacharidy (maltosa a laktosa). Ty také vytvořili malé částice (maltosa 25nm). Naopak
velké částice, které byly vytvořeny galaktosou, vykazovaly nejmenší antibakteriální
aktivitu.
Jinou, avšak stále poměrně široce využívanou metodou je redukce kyselinou
askorbovou. V práci Qin a kol.35
můžeme například pozorovat vliv pH na velikost částic
a také vliv teploty na jejich tvar. Dusičnan stříbrný nechali zreagovat s redukčním činidlem
kyselinou askorbovou a pro stabilizaci částic přidali citrát sodný. Hodnoty pH měnili od
6.0 do 10.5. S rostoucím pH se velikost částic zmenšovala. Pokud byla směs zahřívána
při 30° C ve vodní lázni, vznikaly kulovité částice nepravidelného tvaru. Při zahřátí na
100° C po dobu 2 hodin nepravidelnosti částic vymizely a zůstaly jen výrazně kulovité
částice. Nevýhodou disperzí vzniklých kyselinou askorbovou je jejich nestabilita. Proto se
u těchto postupů přidávají různé stabilizační látky např. PVP, PVA, Daxad 19 (sodná sůl
polynaftalen sulfonátu s formaldehydem).30, 36
4.3. Laserová ablace
Laserová ablace pevného materiálu v nějakém roztoku je poměrně nová avšak
velmi slibná metoda přípravy nanočástic kovů. Velkou výhodou je vznik čistých koloidů,
protože odpadá nutnost přídavku chemických reakčních činidel. Čistota koloidu pak hraje
významnou roli v dalších aplikacích, např. SERS. To, jaké budou mít částice vlastnosti,
z velké většiny závisí na jejich velikosti. Proto se mnohé studie zabývají právě tímto
aspektem. Bylo zjištěno, že na velikost částic má vliv doba, intenzita pulzů, počet pulzů
i vlnová délka laseru. Právě posledně jmenovaným aspektem se zabývali Tsui a kol.19
, kdy
zkoušeli připravit stříbrné nanočástice pomocí laserů tří vlnových délek: 1064, 532
a 355 nm. Na stříbrný terčík položený ve vodě vysílali pulzy laseru po 30 minut za stálého
míchání vznikající disperze. Vznikly velmi malé částice stříbra (12 – 29 nm). Jejich
velikost klesala s klesající vlnovou délkou laseru.
23
4.4. Redukce gama zářením
Velmi malé nanočástice stříbra s rozměry v řádech jednotek nanometrů můžeme
získat díky ozařování γ-paprsky. Pozoruhodná je velká monodisperzita vzniklých koloidů.
Problémem však bývá krátká životnost takto malých částic ve vodném prostředí. Proto se
přidávají různé stabilizační látky, které umožní stálost částic i na několik měsíců.
Příkladem takovéhoto stabilizátoru může být chitosan. Ten se přidá k vodnému roztoku
AgNO3 a směs se ještě nechá určitou dobu probublávat dusíkem, aby se odstranil kyslík
z roztoků. Následně se ozařuje γ-paprsky za pokojové teploty. Vzniklé nanočástice mají
výrazný kulovitý tvar a velikostí se pohybují okolo 5 nm.37, 38
4.5. Fotochemická metoda
Snadnou metodou syntézy nanočástic je ozařování reakční směsi UV zářením.
V reakční směsi, která obsahuje stříbrnou sůl, vhodnou organickou látku a případně nějaký
stabilizátor, se pod UV zářením uvolní volné radikály z organické látky a ty pak fungují
jako redukční činidlo stříbrných iontů. Výhodné je najít takové látky, které by fungovaly
nejen jako zdroj volných radikálů, ale i jako stabilizátor částic. Příkladem takovéhoto
systému je práce Mallick a kol.39
Jako zdroj stříbrných částic použili dusičnan stříbrný
a redukční a zároveň stabilizační látku MPEG (methoxypolyethylen glykol). V závislosti
na čase ozařování syntetizovali disperze s částicemi o různé velikosti. Po 10 minutách se
pohybovala velikost částic kolem 7 – 15 nm, se vzrůstající dobou ozařování se tvořily
částice větší (po 25 min 35 – 60 nm), delší ozařování nevykazovalo žádné další změny ve
velikosti částic, protože veškeré stříbrné ionty už byly zredukované.
5. Aplikace nanočástic stříbra
Nanočástice stříbra se používají v mnoha odvětvích díky svým unikátním
vlastnostem. Kvůli velké ploše povrchu a vysoké povrchové energii je vhodné používat
tyto látky jako katalyzátory. Díky své vnitřní struktuře mají optické a vodivostní vlastnosti,
které se využívají v analytických technikách jako je povrchem zesílená Ramanova
spektroskopie a také pro konstrukci biosenzorů a nanosenzorů. Nejrozšířenější je však
24
0
200
400
600
800
1000
1980 1985 1990 1995 2000 2005 2010
Nu
mb
er
of
do
cum
en
ts
Year
jejich používání kvůli antibakteriální a antimykotické aktivitě. Těchto vlastností se
nevyužívá jen v oblasti medicíny, ale i v nejrůznějších komerčních produktech.
5.1. Povrchem zesílená Ramanova spektroskopie
Velmi citlivou spektroskopickou technikou pro detekce i nízkých koncentrací
chemických látek je povrchem zesílená Ramanova spektroskopie (označována zkratkou
z angličtiny SERS). V závislosti na použité metodě může dosahovat faktor zesílení
Ramanova signálu od 104 až po
10
15.3 Ačkoliv je tato technika známa už od konce
minulého století, jejího plného rozsahu a možností využití se dosahuje až v posledních
patnácti letech. Svědčí o tom i rostoucí zájem a množství publikací o této problematice
(obrázek 4). To je zapříčiněno nejen pokrokem v přístrojovém vybavení a rozvojem vědy
zabývající se nanočásticemi a nanotechnologiemi, ale také možností detekování jedné
molekuly (1997), což byl významný mezník v rozvoji SERS. Také příprava vzorku pro
SERS, kterého stačí i malé množství, je velmi snadná. Všechny tyto výhody dělají
z povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie oblíbenou a široce využívanou techniku
nejen v oblasti chemie, ale i fyziky, biologie, medicíny, farmakologie, atd.40
Obr. 4. Analýza dat publikací zabývajících se SERS od 1979. Data pocházejí z databáze
Scopus (www.scopus.com) z 10. 03. 2013 po zadání klíčových výrazů "surface-enhanced
raman" a "SERS" v oblastech Title, Abstract a Keywords.
25
5.1.1. Historie
V sedmdesátých letech minulého století se vědci zabývali možnými způsoby
pozorování molekul na površích pokrytých monovrstvou. Po úspěšných pokusech
pozorování různými optickými technikami (např. infračervená spektroskopie), se dostala
na řadu i Ramanova spektroskopie. Kvůli slabým signálům, které Ramanova spektroskopie
poskytuje, nebyla tato metoda považována za příliš vhodnou možnost. Přesto byl proveden
experiment pozorování pyridinu adsorbovaného na povrchu elektrochemicky zdrsněné
stříbrné elektrody. Výsledkem byl nezvykle zesílený signál, který autoři práce
(Fleischmann a kol., 1974) přičítali většímu povrchu elektrody díky jejímu zdrsnění. Tato
práce se stala první publikací se zaznamenaným povrchem zesíleným Ramanovým
signálem i přes fakt, že jej autoři nerozpoznali a pouze pozorovali.
Ačkoliv se zdálo vysvětlení původu většího signálu velmi logické, objevovaly
se výsledky prací, které nezapadaly do této teorie. Dvě nezávisle na sobě vypracované
práce – Jeanmarie a Van Duyne, Albrecht a Creighton – prokázaly a demonstrovaly roku
1977, že pozorovaný signál nemůže být důsledkem většího povrchu, ale že se jedná o jiný
typ signálu. Mechanismus a původ tohoto signálu (nazvaného povrchem zesílený Ramanův
signál) však byly dlouhou dobu nejasné a trvalo asi deset let, než se dospělo k dnešním
obecně přijímaným teoriím.40
5.1.2. Princip
Faktory zesilující Ramanův signál obecně rozdělujeme na dvě hlavní složky:
elektromagnetický mechanismus, který se podílí na celkovém zesílení větší měrou (asi 104)
a chemický mechanismus, o kterém se stále ještě vedou různé diskuze, ale do celkového
zesílení zasahuje poměrně nepatrně (102).
41
Elektromagnetický faktor závisí na lokálním elektromagnetickém poli vznikajícím
v blízkosti kovové nanočástice v důsledku excitací povrchových plasmonových rezonancí.
Abychom z toho získali co největší zesílení, musí být analyzovaná molekula v co největší
blízkosti povrchu nanočástice (nejlépe pod 10 nm od povrchu). V ideálním případě je
molekula adsorbována na povrch nanočástice.
O mnoho menší vliv na celkové zesílení má chemický mechanismus neboli také
mechanismus přenosu náboje. Tato teorie počítá s molekulou naadsorbovanou na povrch
kovové nanočástice chemickou vazbou a následným přenosem náboje mezi nimi.
26
Při vhodných podmínkách můžeme dosáhnout faktoru zesílení i přes 105. Faktor
zesílení velmi ovlivňuje používaný laser a veškeré aspekty s tím související, také volba
substrátu pro SERS hraje významnou roli, stejně tak i analyt a jeho vlastnosti.40
Pravidla
vhodného výběru substrátu pro SERS byla dokonce sepsána již v začátcích povrchem
zesílené Ramanovi spektroskopie roku 1982 M. Moskovitsem.42
5.1.3. Uplatnění SERS
Jedna kovová nanočástice může poskytovat zesílení Ramanova signálu i 106 krát,
ale už při agregaci dvou a více nanočástic dosahuje faktor zesílení až k 1014
. Mezi
nanočásticemi totiž vznikají místa zvaná „hot spots“, která poskytují toto mimořádně velké
zesílení. K takovéto agregaci nanočástic se využívá přídavku soli jako je chlorid sodný,
chlorid hořečnatý, síran hořečnatý, atd. Stříbrné nanočástice se ukázaly být vhodnou
volbou při SERS experimentech, díky jejich fyzikálně-chemickým vlastnostem. Běžnou
metodou přípravy stříbrných nanočástic je redukce dusičnanu stříbrného citrátem sodným.
Velikost částic můžeme korigovat změnou koncentrace citrátu. Dostaneme tak částice
o průměrné velikosti od 30 nm až po 200 nm.32
Pozorováním vlivu agregačních činidel na
zesílení Ramanova signálu se zabývali ve své práci Meyer a Smith.43
Dospěli k závěru, že
chloridové soli způsobují větší zesílení než sulfátové soli, zvláště pak chlorid hořečnatý.
Do třiceti minut po přídavku chloridu hořečnatého velikost nanočástic vzrostla
několikanásobně. Největšího zesílení Ramanova signálu bylo dosaženo při použití
stříbrných nanočástic zagregovaných do velikostí 220 až 290 nm. Větší agregáty (přes
340 nm) již poskytovaly špatné nebo žádné zesílení. Agregaci nanočástic a vliv analytu
zkoumali také Schenk a kol.44
V této práci nejprve pozorovali vliv přídavku adeninu na
zesílení Ramanova signálu. Jeho přítomnost již při přípravě nanočástic nezpůsobila téměř
žádnou agregaci a ani SERS signál nebyl nijak výrazný. Přidal-li se adenin až po ukončení
tvorby nanočástic, došlo pomalu k agregaci a po 25 minutách dosáhlo zesílení Ramanova
signálu maxima. Pokud se však spolu s adeninem přidal roztok chloridu sodného
do nanočástic, agregace proběhla mnohem rychleji a maximálního zesílení signálu bylo
dosaženo již po 8 minutách. Agregace nanočástic je tedy klíčová pro vznik „hot spots“,
díky nimž můžeme dosáhnout výrazného zesílení signálu, a použití aktivačních činidel –
chloridů je výhodný způsob jak tohoto dosáhnout.
Právě „hot spots“ umožňují detekci i jediné naadsorbované molekuly (SM SERS).
Mezi první práce, které se zabývají touto možností, patří i publikace Kneipp a kol.45
27
Zagregováním nanočástic stříbra pomocí NaCl se vytvořily shluky o velikosti
100 – 150 nm. Přídavek roztoku krystalové violeti o velmi nízké koncentraci byl zvolen
tak, aby poměr molekul barviva a stříbrných klastrů zajišťoval velmi vysokou
pravděpodobnost, že se na jeden klastr naadsorbuje pouze jedna molekula barviva. Bylo
dosaženo faktoru zesílení 1014
, což umožnilo pozorování jedné molekuly barviva na
jednom stříbrném agregátu. Ne všechny shluky však fungují jako „hot spots“. Je důležité,
aby tvorba těchto klastrů byla co nejpřesněji definovaná a tím pádem i reprodukovatelná.
V takovém případě se SM SERS stává velmi důležitým analytickým nástrojem.
Povrchem zesílená Ramanova spektroskopie se tedy prokázala být vhodnou
metodou pro detekci i opravdu nízkých koncentrací analytu za použití vhodného substrátu.
Pro studium kvantity analytu se však objevují určitá omezení související především se
SERS substrátem. V publikaci Sackmann a kol. 46
používali jako substrát stříbrný koloid
připravený redukcí citrátem. Modelovým analytem zvolili adenin. Ten byl sice snadno
detekován i při nejnižší studované koncentraci 1.10-7
mol·l-1
a byla zjištěna
i reprodukovatelnost SERS signálu, ale u vyšších koncentrací adeninu reprodukovatelnost
mizí pravděpodobně z důvodů nasycení, což způsobuje velké odchylky. Určení neznámé
koncentrace adeninu by tedy bylo možné pouze v omezeném rozsahu koncentrací. Hlavní
komplikací autoři považují právě přípravu substrátu, protože při redukci stříbrných
nanočástic hraje velkou roli mnoho různých faktorů a její kontrola je složitá. Při požití
SERS substrátu s nanočásticemi stříbra připravenými jinou metodou je však možné
dosáhnout dobrých výsledků kvantitativní analýzy.47
Velmi dobře prozkoumanou oblastí je použití povrchem zesílené Ramanovy
spektroskopie coby biosenzorů. Díky své časové nenáročnosti, potřebou pouze malého
množství vzorku a poskytnutím jednoznačných píků mají metody založené na SERS velký
potenciál pro detekci a identifikaci nejrůznějších biomolekul. U větších a složitějších
molekul jako jsou enzymy, proteiny či peptidy získáváme pomocí SERS i informace
o jejich strukturním uspořádání. Přes všechny výhody této metody je stále většina studií
prováděna ve výzkumu a nejsou ještě převedeny do aplikací reálného života. Pro použití
v biomedicíně a biodiagnostice je třeba zajistit např. více biokompatibilní SERS aktivní
substráty.48, 49
Naopak používání SERS v oblastech jako je např. forenzní chemie již
funguje. Na trhu se stále více objevují mobilní lehké Ramanovy spektrometry a i komerčně
vyráběné substráty pro tento účel. Je tak možné identifikovat a detekovat látky (např.
drogy) přímo na místě zásahu.50
Praktické využití našla SERS také při detekci
nebezpečných spór antraxu. Díky vysoké citlivosti dokáže odhalit přítomnost spórů již
28
v malém množství. Stále se však vyvíjí nové komerční substráty, které by dokázaly
detekovat tyto látky ještě při nižších koncentracích.51, 52
5.2. Použití v medicíně a komerčních produktech
Díky svým antibakteriálním účinkům bylo stříbro v minulosti široce využíváno, ať
už se jednalo o Hippokratovu léčbu vředů nebo o léčbu novorozenců s gonokokovými
infekcemi prováděnou C.S.F. Credem. Velkou nevýhodou však byla poměrně vysoká
toxicita iontů stříbra. Až díky možnosti vyrábět malé stříbrné částice se výrazně snížila
toxicita. Nanočástice stříbra vykazují antibakteriální účinky proti velkému množství
bakteriálních druhů (Escherichia coli, Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis, atd.) a dále
také antimykotické účinky (Penicillium citrinum, Aspergillus niger, Candida albicans).
Díky těmto vlastnostem se velká část výzkumu týkající se stříbrných nanočástic
soustřeďuje do oblasti zdravotnictví a možných medicínských aplikací.
Nanočástice stříbra se například přimíchávají do kostního cementu, který pomáhá
zabezpečit spoj mezi kostí a protézou. U těchto operací je poměrně vysoká infekčnost
(1 – 4 %), ale použitím kostního cementu dopovaného nanočásticemi stříbra klesá
infekčnost na 0,4 až 1,8 %. Nanočásticemi stříbra se také impregnují nejrůznější
chirurgické implantáty a katetry.53
Obrovské množství potenciálního využití nanočástic
stříbra je však ještě stále jen ve fázi výzkumu. Například práce o zabránění tvorby zubních
kazů, které jsou způsobovány bakterií Streptococcus mutans. Tomuto celosvětovému
problému se snad bude možné v budoucnosti již dopředu vyhnout.54, 55
Také výzkumu
a rozšiřování funkčnosti obvazového materiálu s nanočásticemi stříbra se věnují mnohé
práce. Tento typ obvazů se používá jak na nejrůznější povrchové rány, tak i na popáleniny
či vředy. Výzkum se zaměřuje především na zvyšování antibakteriální aktivity těchto
obvazů, což se daří v kombinaci chitosan-stříbro.53, 56, 57, 58
Komerční využití stříbrných nanočástic se rychle rozšířilo po celém světě.
Nejčastěji se nanočástice stříbra používají v textilním průmyslu pro zlepšení vlastností
funkčního prádla. Ponožky s přídavkem nanočástic stříbra se například vyznačují
neutralizací zápachu, který tvoří bakterie. Nanočástice stříbra se také uplatňují
v materiálech, které jsou v kontaktu s potravinami. Nejedná se jen o různé plastikové obaly
či kuchyňské nádobí, ale můžeme najít i ledničky, které se hlásí k stříbrným nanočásticím.
Také velké množství kosmetických přípravků a pomůcek obsahuje nanočástice stříbra
(př. krémy, deodoranty, make-up, zubní kartáčky, …). Nanočástice stříbra jsou v dnešní
29
době velmi populární a dělají dobrou reklamu, proto se občas objeví i produkty využívající
stříbrné nanočástice v neobvyklých nebo až zbytečných oblastech (mobilní telefon,
kondom, klika, hodinky, deštník, kancelářský papír, …).53, 59
30
EXPERIMENTÁLNÍ ČÁST
6. Materiál a metody
6.1. Chemikálie
Dusičnan stříbrný (p.a., Fargon), amoniak (25% vodný roztok, p.a., Lach-Ner),
hydroxid sodný (p.a., Lach-Ner), chlorid sodný (p.a., Sigma-Aldrich), D(+)-maltosa
monohydrát (p.a., Sigma-Aldrich), D-glukosa (p.a., Penta), adenin (p.a., Sigma-Aldirch),
aminokyseliny (Calbiochem, USA): alanin, arginin, asparagová kyselina, glutamová
kyselina, glycin, lysin, methionin, fenylalanin, prolin, serin, tryptofan. Chemikálie nebyly
dále čištěny pro následné použití. Pro přípravu vodných roztoků byla použita deionizovaná
voda.
6.2. Přístrojové vybavení
Velikost nanočástic stříbra byla určena přístrojem 90 Plus Particle Analyser
(Brookhaven Instruments Corporation, USA) pracujícím na principu dynamického
rozptylu světla (DLS). Veškerá UV-Vis absorpční spektra koloidních roztoků nanočástic
stříbra byla měřena spektrofotometrem Specord S600 (Analytic Jena AG, Německo). Pro
ověření velikosti nanočástic byly použity snímky z transmisního elektronového
mikroskopu (TEM) model JEM 2010 (JEOL, Japonsko) při urychlovacím napětí 160 kV.
Hodnoty pH byly kontrolovány přístrojem pH 2700 (Eutech Instruments, USA).
Experimenty zahrnující použití Ramanovy spektroskopie byly prováděny na přístroji DXR
Raman Microscope (Thermo Scientific, USA). Byl použit laser o vlnové délce 532 nm
a maximální síle na vzorek 10 mW.
6.3. Příprava disperze nanočástic stříbra
Nanočástice stříbra byly připraveny modifikovanou Tollensovou metodou
za použití maltosy a glukosy jakožto redukčních látek.
Nanočástice stříbra byly připravovány následujícím postupem: do kádinky
o objemu 50 ml bylo automatickou pipetou přidáno 5 ml roztoku dusičnanu stříbrného
31
(c = 5.10-3
mol·l-1
) a různé množství roztoku amoniaku (c = 0,1 mol·l-1
) potřebného pro
různé koncentrace ve výsledném objemu disperze (0,03; 0,02; 0,01; 0,0075
a 0,005 mol·l-1
), díky čemuž vznikl komplex diaminstříbrného kationtu [Ag(NH3)2]+. Tato
směs byla doplněna vhodným množstvím destilované vody (tak, aby konečný objem
disperze byl 25 ml), 1 ml roztoku hydroxidu sodného (c = 0,24 mol·l-1
) a na závěr byla
přidána redukční látka (c = 5.10-3
mol·l-1
) v množství odpovídající požadované výsledné
koncentraci (1.10-2
; 8.10-3
; 6.10-3
; 4.10-3
; 2.10-3
nebo 1.10-3
mol·l-1
). Po celou dobu
přípravy disperze byla směs míchána magnetickým míchadlem za laboratorní teploty.
Nanočástice stříbra byly také ještě připraveny pozměněním tohoto postupu.
Diaminstříbrný komplex [Ag(NH3)2]+ byl namíchán zvlášť do objemu 5 ml, což odpovídá
množství 2,5 ml dusičnanu stříbrného (c = 1.10-2
mol·l-1
) doplněného roztokem amoniaku
pro výsledné koncentrace od 0,01 po 0,001 mol·l-1
. Tento komplex se přidával do již
připravené směsi vody, hydroxidu a redukční látky (výsledné koncentrace 1.10-2
nebo 1.10-3
mol·l-1
), která byla intenzivně míchána magnetickým míchadlem. Po smíchání
obou složek (objem odpovídá 25 ml) se spustila reakce. Množstvím hydroxidu sodného se
regulovala hodnota pH disperze tak, aby stříbrné nanočástice vznikaly za pH 10,50.
Pro disperze s nízkou koncentrací amoniaku ve stříbrném komplexu postačilo pouze
několik desítek mikrolitrů hydroxidu, se zvyšující se koncentrací amoniaku rostlo
i potřebné množství hydroxidu sodného pro dosažení hodnoty pH 10,50.
Připravené nanočástice stříbra byly proměřeny metodou dynamického rozptylu
světla (DLS) pro určení jejich průměrné velikosti. Byla změřena absorpční spektra
desetinásobně zředěných vzorků na UV-Vis spektrofotometru. V případě některých vzorků
byly pořízeny snímky transmisním elektronovým mikroskopem (TEM).
6.4. Aktivace nanočástic stříbra a jejich kinetika
Stříbrné nanočástice byly pro další experimenty aktivovány chloridem sodným.
V křemenné kyvetě bylo smícháno 0,2 ml disperze připravených nanočástic stříbra s 0,7 ml
destilované vody a 0,1 ml chloridu sodného o koncentraci zásobního roztoku 4 mol·l-1
a směs byla řádně promíchána. Výsledná koncentrace chloridu sodného v reakčním
systému tak byla 400 mM.
Pro vybrané disperze nanočástic stříbra byl zkoumán průběh kinetiky jejich
aktivace chloridovými ionty. Reakční směs aktivovaných nanočástic byla ihned
po přídavku chloridu a důkladném promíchání sledována pomocí měření průměrné
32
velikosti částic a zaznamenáváním UV-Vis absorpčních spekter. Průměrná velikost částic
byla získána metodou dynamického rozptylu světla (DLS). Měření probíhalo po dobu
20 minut, kdy byla každou minutu zaznamenána průměrná hodnota. Absorpční spektra
roztoku aktivovaných nanočástic stříbra byla také měřena po dobu 20 minut v intervalu
jednotlivých snímání 20 sekund proti čisté destilované vodě.
6.5. Experimenty povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie
Měření spekter povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie bylo prováděno
za použití laseru o vlnové délce záření 532 nm. Jako modelový analyt byl použit adenin.
V první fázi byl zkoumán vliv pořadí, ve kterém se přidával chlorid sodný a analyt.
Chlorid sodný, který aktivuje stříbrné nanočástice, se přidával buď před přídavkem
analytu, nebo až po na závěr. Směs měřená Ramanovou spektroskopii obsahovala 0,2 ml
roztoku nanočástic stříbra, 0,69 ml destilované vody, 0,1 ml roztoku chloridu sodného
a 10 μl vodného roztoku adeninu (o koncentracích 1.10-5
, 1.10-6
nebo 1.10-7
mol·l-1
).
Pro SERS experimenty byly použity nanočástice stříbra s různou velikostí
připravené různými způsoby. Byla naměřena spektra adeninu na nanočásticích
připravených pomocí maltosy i glukosy. Postup a objemy jednotlivých složek měřené
směsi byly stejné jako v předchozím případě. Aktivační látka – chlorid sodný byl přidán
před analytem.
Po těchto experimentech a zhodnocení postupu dosahujícího nejlepší zesílení
signálu, byla naměřena spektra pro 11 aminokyselin.
7. Výsledky a diskuze
7.1. Příprava nanočástic redukcí komplexu [Ag(NH3)2]+ maltosou
Při přípravě nanočástic stříbra modifikovaným Tollensovým postupem byla nejprve
použita jako redukční látka maltosa. Na obrázku 5 můžeme pozorovat mírný trend, kdy
s rostoucí koncentrací maltosy vznikají menší částice. Mírný vliv na velikost nanočástic
má také koncentrace amoniaku. Nejvýrazněji se však vliv amoniaku projevil na době
reakce. Při nízkých koncentracích amoniaku reakční směs zreagovala do 10 minut, naopak
33
při nejvyšší koncentraci amoniaku (c = 0,03 mol·l-1
) se doba reakce přibližovala až jedné
hodině, obzvláště při použití maltosy o koncentraci 1.10-3
mol·l-1
.
Obr. 5. Závislost velikosti nanočástic na koncentraci maltosy pro různé koncentrace
amoniaku.
Pro každou koncentraci maltosy byla změřena kromě průměrné velikosti částic
i UV-Vis spektra. Jak je však patrné z obrázku 5, velikosti nanočástic se se změnou
koncentrace maltosy významně neměnily. Z tohoto důvodu jsou uvedena pouze vybraná
spektra pro některé koncentrace maltosy (obrázky 6 – 8).
0
10
20
30
40
50
60
0 0.002 0.004 0.006 0.008 0.01 0.012
Prů
mě
rná
velik
ot
část
ic (
nm
)
Koncentrace maltosy (mol·l-1)
0,03
0,02
0,01
0,0075
0,005
34
Obr. 6. Souhrn UV-Vis spekter nanočástic stříbra připravených redukční látkou maltosou
o koncentraci 1.10-2
mol·l-1
pro jednotlivé koncentrace amoniaku.
Obr. 7. Souhrn UV-Vis spekter nanočástic stříbra připravených redukční látkou maltosou
o koncentraci 6.10-3
mol·l-1
pro jednotlivé koncentrace amoniaku.
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
1.4
1.6
300 400 500 600 700 800
Ab
sorb
ance
Vlnová délka (nm)
0,03
0,02
0,01
0,0075
0,005
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
1.4
1.6
300 400 500 600 700 800
Ab
sorb
ance
Vlnová délka (nm)
0,03
0,02
0,01
0,0075
0,005
35
Obr. 8. Souhrn UV-Vis spekter nanočástic stříbra připravených redukční látkou maltosou
o koncentraci 1.10-3
mol·l-1
pro jednotlivé koncentrace amoniaku.
Obr. 9. TEM snímky nanočástic stříbra připravených redukční látkou maltosou
o koncentraci 1.10-3
mol·l-1
pro koncentraci amoniaku 0,03 mol·l-1
.
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
1.4
1.6
300 400 500 600 700 800
Ab
sorb
ance
Vlnová délka (nm)
0,03
0,02
0,01
0,0075
0,005
36
Obr. 10. TEM snímky nanočástic stříbra připravených redukční látkou maltosou
o koncentraci 1.10-3
mol·l-1
pro koncentraci amoniaku 0,005 mol·l-1
.
Snímky pořízené transmisním elektronovým mikroskopem zobrazují nanočástice
stříbra připravené při koncentraci maltosy 1.10-3
mol·l-1
, kdy vznikaly nepatrně větší
nanočástice než při použití vyšších koncentrací. Při srovnání obrázku 9, který odpovídá
použité koncentraci amoniaku 0,03 mol·l-1
a obrázku 10 (koncentrace amoniaku
0,005 mol·l-1
) je patrné, že při použití nižší koncentrace amoniaku má vzniklá disperze
nanočástic stříbra výrazně monodisperznější charakter. Velikosti částic u této disperze jsou
také v dobré shodě s výsledky naměřenými metodou DLS. Při použití vyšší koncentrace
amoniaku (0,03 mol·l-1
) dochází ke vzniku polydisperzního systému, kde jsou vedle částic
s velikostí okolo 20 nm i větší částice s velikostí 60 nm. Metoda DLS měření velikosti
částic tedy není pro tyto systémy příliš vhodná, jelikož z výsledné průměrné hodnoty
nemůžeme určit reálnou velikost částic.
7.1.1. Příprava nanočástic stříbra redukcí komplexu [Ag(NH3)2]+
maltosou – metoda předpřipraveného komplexu [Ag(NH3)2]+
Nanočástice stříbra byly také připravovány přidáním již vzniklého aminostříbrného
komplexu do redukční látky – maltosy. Experimenty byly uskutečněny pouze pro dvě
koncentrace maltosy (c = 1.10-3
nebo 1.10-2
mol·l-1
), jelikož bylo zjištěno z předchozích
37
experimentů, že koncentrace maltosy nemá výraznější vliv na velikost vznikajících
nanočástic. Naopak koncentrace amoniaku toto ovlivňuje, a proto byly připraveny disperze
koloidního stříbra s různou koncentrací amoniaku v rozsahu od 0,01 po 0,001 mol·l-1
.
Obr. 11. Závislost velikosti stříbrných nanočástic připravených redukcí [Ag(NH3)2]+
maltosou o koncentraci 1.10-3
mol·l-1
na koncentraci amoniaku.
30
40
50
60
70
80
90
100
110
120
130
0 0.002 0.004 0.006 0.008 0.01 0.012
Prů
mě
rná
velik
ot
část
ic (
nm
)
Koncentrace amoniaku (mol·l-1)
38
Obr. 12. Souhrn UV-Vis spekter stříbrných nanočástic připravených redukcí [Ag(NH3)2]+
maltosou o koncentraci 1.10-3
mol·l-1
pro jednotlivé koncentrace amoniaku.
Průměrnou velikost částic připravených stříbrných částic a její závislost na
koncentraci amoniaku při koncentraci maltosy 1.10-3
mol·l-1 znázorňuje obrázek 11.
Při nízké koncentraci maltosy a zároveň i nízké koncentraci amoniaku v roztoku se částice
velmi rychle srážely a vzniklá disperze byla zakalená. To naznačovalo vznik velkých
částic, což se potvrdilo nejen měřením na DLS, ale také i díky naměřeným UV-Vis
spektrům (obrázek 12). S rostoucí koncentrací amoniaku se velikost nanočástic
zmenšovala a pohybovala se okolo 40 nm. Píky v souhrnu grafů jsou u těchto vyšších
koncentrací amoniaku výraznější, než u koncentrací při nichž vznikaly velké částice.
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
1.4
1.6
300 400 500 600 700 800
Ab
sorb
ance
Vlnová délka (nm)
0,01
0,0075
0,003
0,005
0,002
0,001
39
Obr. 13. Závislost velikosti stříbrných nanočástic připravených redukcí [Ag(NH3)2]+
maltosou o koncentraci 1.10-2
mol·l-1
na koncentraci amoniaku.
Obr. 14. Souhrn UV-Vis spekter stříbrných nanočástic připravených redukcí [Ag(NH3)2]+
maltosou o koncentraci 1.10-2
mol·l-1
pro jednotlivé koncentrace amoniaku.
0
5
10
15
20
25
30
35
40
0 0.002 0.004 0.006 0.008 0.01 0.012
Prů
mě
rná
velik
ost
čás
tic
(nm
)
Koncentrace amoniaku (mol·l-1)
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
1.4
1.6
300 400 500 600 700 800
Ab
sorb
ance
Vlnová délka (nm)
0,01
0,0075
0,005
0,003
0,002
0,001
40
Při použití vyšší koncentrace maltosy (c = 1.10-2
mol·l-1
) měly vzniklé nanočástice
průměrnou velikost poměrně podobnou (obrázek 13). V závislosti na koncentraci
amoniaku je ovšem patrná minimální hodnota velikosti částic při koncentraci 0,003 mol·l-1
.
S rostoucí koncentrací od tohoto minima částice rostou do přibližně 35 nm. Obrázek 14
shrnuje spektra z UV-Vis spektrofotometru. Protože velikost všech vzniklých částic se
pohybuje pouze v malém rozmezí (32-35 nm), nelze tyto změny pozorovat na získaných
spektrech.
7.2. Příprava nanočástic redukcí komplexu [Ag(NH3)2]+ glukosou
Další látkou, pro kterou byl zkoumán vliv její koncentrace na velikost vytvořených
částic, byla glukosa. Průměrné velikosti nanočástic stříbra vzniklé při různých
koncentracích glukosy byly změřeny pomocí metody DLS a z těchto dat byl sestaven graf
na obrázku 15. Z tohoto grafu vyplývá, že změna koncentrace glukosy v uvedeném
rozsahu ovlivňovala pro danou koncentraci amoniaku velikost částic stříbra jen velmi
mírně. Ovlivnění velikosti částic bylo znatelnější se změnou koncentrace amoniaku.
Rozdíly velikostí nanočástic při použití nejvyšší a nejnižší studované koncentrace
amoniaku jsou okolo 20 nm. I v tomto případě záležela doba redukce na koncentraci
amoniaku. Doba potřebná pro kompletní redukci se měnila od 10 minut až po 1 hodinu
v závislosti na rostoucí koncentraci amoniaku.
Obr. 15. Závislost velikosti nanočástic na koncentraci glukosy pro různé koncentrace
amoniaku.
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
0 0.002 0.004 0.006 0.008 0.01 0.012
Prů
měr
ná
velik
ot
část
ic (
nm
)
Koncentrace glukosy (mol·l-1)
0,03
0,02
0,01
0,0075
0,005
41
Z každého vzorku disperze nanočástic stříbra byla zaznamenána UV-Vis spektra.
Ta byla zpracována do grafů tak, aby jednotlivé souhrny spekter odpovídaly vždy jedné
koncentraci glukosy (výsledky demonstrují pouze vybraná spektra, obrázky 16 – 18).
I z UV-Vis spekter je patrné, že nejmenší částice vznikaly při koncentraci amoniaku
0,005 mol·l-1
, což dokazuje vysoký úzký pík s maximem při 420 nm. Naopak vznik větších
nanočástic potvrzuje spektrum pro koncentraci amoniaku 0,03 mol·l-1
, pro které je typické,
že maximum píku je posunuté k delším vlnovým délkám a navíc je nižší a pík je širší.
Obr. 16. Souhrn UV-Vis spekter nanočástic stříbra připravených redukční látkou glukosou
o koncentraci 1.10-2
mol·l-1
pro jednotlivé koncentrace amoniaku.
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
1.4
1.6
300 400 500 600 700 800
Ab
sorb
ance
Vlnová délka (nm)
0,03
0,02
0,01
0,0075
0,005
42
Obr. 17. Souhrn UV-Vis spekter nanočástic stříbra připravených redukční látkou glukosou
o koncentraci 6.10-3
mol·l-1
pro jednotlivé koncentrace amoniaku.
Obr. 18. Souhrn UV-Vis spekter nanočástic stříbra připravených redukční látkou glukosou
o koncentraci 1.10-3
mol·l-1
pro jednotlivé koncentrace amoniaku.
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
1.4
1.6
300 400 500 600 700 800
Ab
sorb
ance
Vlnová délka (nm)
0,03
0,02
0,01
0,0075
0,005
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
1.4
1.6
300 400 500 600 700 800
Ab
sorb
ance
Vlnová délka (nm)
0,03
0,02
0,01
0,0075
0,005
43
Obr. 19. TEM snímky nanočástic stříbra připravených redukční látkou glukosou
o koncentraci 1.10-3
mol·l-1
pro koncentraci amoniaku 0,03 mol·l-1
.
Obr. 20. TEM snímky nanočástic stříbra připravených redukční látkou glukosou
o koncentraci 1.10-3
mol·l-1
pro koncentraci amoniaku 0,005 mol·l-1
.
Pro potvrzení výsledků získaných metodou DLS byly odebrány vzorky, které byly
dány na pozorování transmisním elektronovým mikroskopem. Tyto vzorky odpovídají
disperzím připraveným redukcí diaminstříbrného komplexu glukosou o koncentraci
1.10-3
mol·l-1
. TEM snímky na obrázku 19, které obsahují částice o velikosti přibližně
80 nm a snímky na obrázku 20 s částicemi okolo 40 nm potvrzují výsledky měření
44
velikosti částic metodou DLS. Navíc na snímcích vidíme, že použitím nižší koncentrace
amoniaku (obrázek 20) dochází ke vzniku monodisperznějšího systému.
7.2.1. Příprava nanočástic stříbra redukcí komplexu [Ag(NH3)2]+
glukosou – metoda předpřipraveného komplexu [Ag(NH3)2]+
Vliv koncentrace amoniaku na velikost nanočástic stříbra zredukovaných glukosou
byl také zkoumán při přípravě postupem, u kterého se smíchává zvlášť aminostříbrný
komplex a ten se pak následně přidává do redukční látky s upraveným pH na 10,5.
Ke studiu byly zvoleny dvě koncentrace glukosy (c = 1.10-3
a 1.10-2
mol·l-1
) tak, aby byl
patrný jejich vliv na průměrnou velikost částic. Bylo studováno šest různých koncentrací
amoniaku ve finální disperzi (0,01; 0,0075; 0,005; 0,003; 0,002 a 0,001 mol·l-1
).
Obr. 21. Závislost velikosti stříbrných nanočástic připravených redukcí [Ag(NH3)2]+
glukosou o koncentraci 1.10-3
a 1.10-2
mol·l-1
na koncentraci amoniaku.
Závislost velikosti vzniklých nanočástic stříbra pro dvě použité koncentrace
glukosy na koncentraci amoniaku shrnuje obrázek 21. Při nižší koncentraci glukosy se
tvořily větší nanočástice než při vyšší koncentraci. U obou koncentrací se však projevoval
podobně vliv amoniaku. Použitím nejnižší koncentrace amoniaku vznikaly částice
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
0 0.002 0.004 0.006 0.008 0.01 0.012
Prů
měr
ná
velik
ot
část
ic (
nm
)
Koncentrace amoniaku (mol·l-1)
1E-03
1E-02
45
s největší velikostí (± 90 nm). S rostoucí koncentrací amoniaku nejprve průměrná velikost
nanočástic klesala, až bylo dosaženo minima při koncentraci 0,005 mol·l-1
. Poté se velikost
částic opět zvětšovala.
Obr. 22. Souhrn UV-Vis spekter stříbrných nanočástic připravených redukcí [Ag(NH3)2]+
glukosou o koncentraci 1.10-3
mol·l-1
pro jednotlivé koncentrace amoniaku.
Obr. 23. Souhrn UV-Vis spekter stříbrných nanočástic připravených redukcí [Ag(NH3)2]+
glukosou o koncentraci 1.10-2
mol·l-1
pro jednotlivé koncentrace amoniaku.
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
1.4
1.6
300 400 500 600 700 800
Ab
sorb
ance
Vlnová délka (nm)
0,01
0,0075
0,005
0,003
0,002
0,001
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
1.4
1.6
300 400 500 600 700 800
Ab
sorb
ance
Vlnová délka (nm)
0,01
0,0075
0,005
0,003
0,002
0,001
46
Absorpční spektra potvrzují výsledky získané metodou DLS. Na obrázku 22, který
znázorňuje souhrn spekter disperzí připravených redukcí glukosy o koncentraci
1.10-3
mol·l-1
, vidíme široké píky s maximem okolo 450 nm. S rostoucí velikostí
nanočástic se snižuje výška píku, což koresponduje s výsledky z obrázku 17. Při
koncentraci glukosy 1.10-2
mol·l-1
vznikaly menší částice, čemuž odpovídají spektra na
obrázku 23. Vznik nejmenších nanočástic stříbra při koncentraci amoniaku 0,005 mol·l-1
i
v tomto případě potvrzuje nejvyšší pík.
Obr. 24. TEM snímky stříbrných nanočástic připravených redukcí [Ag(NH3)2]+ glukosou
o koncentraci 1.10-2
mol·l-1
při použití koncentrace amoniaku 0,001 mol·l-1
.
47
Obr. 25. TEM snímky stříbrných nanočástic připravených redukcí [Ag(NH3)2]+ glukosou
o koncentraci 1.10-2
mol·l-1
při použití koncentrace amoniaku 0,003 mol·l-1
.
Obr. 26. TEM snímky stříbrných nanočástic připravených redukcí [Ag(NH3)2]+ glukosou
o koncentraci 1.10-2
mol·l-1
při použití koncentrace amoniaku 0,0075 mol·l-1
.
TEM snímky nanočástic stříbra byly pořízeny ze tří disperzí připravených při
různých koncentracích amoniaku. Tyto snímky zobrazují, jak koncentrace amoniaku
ovlivňuje velikost vznikajících částic. Na obrázku 24, který odpovídá použití koncentrace
amoniaku 0,001 mol·l-1
, jsou patrné zagregované nanočástice stříbra. Ačkoliv jsou
v systému rozpoznatelné i částice o velikosti přibližně 60 nm, agregáty které tyto částice
48
tvoří, dosahují mnohem větších rozměrů, což způsobuje chybu měření metodou DLS.
Použitím amoniaku o koncentraci 0,003 mol·l-1
(obrázek 25) bylo dosaženo podle měření
DLS vzniku částic s nejmenší velikostí okolo 30 nm. Tyto výsledky jsou v dobré shodě
s TEM snímky, kde jsou patrné malé kulovité částice, které mají jen malou tendenci se
shlukovat do větších útvarů. Dalším zvyšováním koncentrace amoniaku dochází opět
ke vzniku větších částic (obrázek 26). Ze snímku je patrné, že se nejedná pouze o tvoření
shluků obsahujících malé částice, ale opravdu o vznik částic s větším průměrem. Výsledky
z měření metodou DLS tedy odpovídají reálné velikosti nanočástic stříbra.
7.3. Aktivace stříbrných nanočástic a sledování kinetiky procesu
rekrystalizace
Stříbrné nanočástice jsou vhodné pro použití v povrchem zesílené Ramanově
spektroskopii především po jejich aktivaci. Jako běžné aktivační činidlo bývají použity
halogenidové ionty, které způsobují tvoření shluků nanočástic a vznik míst zvaných
„hot spots“.
Obr. 27. Průběh změny průměrné velikosti stříbrných nanočástic po přídavku aktivačního
činidla – chloridů pro částice s původní velikostí 43,8 nm; 66,0 nm a 84,2 nm.
0
50
100
150
200
250
300
350
400
0 5 10 15 20
Prů
měr
ná
velik
ost
čás
tic
(nm
)
Čas (minuty)
43,8 nm bez NaCl
66,0 nm bez NaCl
84,2 nm bez NaCl
49
Obr. 28. Souhrn UV-Vis spekter nanočástic stříbra po přídavku chloridových iontů v čase.
Původní velikost stříbrných nanočástic byla 43,8 nm.
Obr. 29. Souhrn UV-Vis spekter nanočástic stříbra po přídavku chloridových iontů v čase.
Původní velikost stříbrných nanočástic byla 66,0 nm.
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
1.4
1.6
1.8
2
350 450 550 650 750
Ab
sorb
ance
Vlnová délka (nm)
bez NaCl
20 s
1 min
2 min
3 min
5 min
10 min
20 min
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
1.4
1.6
1.8
2
350 450 550 650 750
Ab
sorb
ance
Vlnová délka (nm)
bez NaCl
20 s
1 min
2 min
3 min
5 min
10 min
20 min
50
Obr. 30. Souhrn UV-Vis spekter nanočástic stříbra po přídavku chloridových iontů v čase.
Původní velikost stříbrných nanočástic byla 84,2 nm.
Změny, ke kterým došlo po aktivaci nanočástic stříbra chloridovými ionty byly
zaznamenávány měřením průměrné velikosti částic a UV-Vis absorpčními spektry. Byly
vybrány disperze s různou počáteční velikostí částic (40 nm, 60 nm a 80 nm). Pro přípravu
těchto nanočástic byly zvolen postup, v němž se již připravená směs aminostříbrného
komplexu přidává k redukční látce – glukose. Tímto postupem bylo snadno dosaženo
vzniku různě velkých nanočástic pouhou změnou koncentrace amoniaku. K připraveným
nanočásticím byly přidány chloridové ionty a směs byla okamžitě měřena metodou DLS.
Výsledky tohoto měření shrnuje graf na obrázku 27, kde můžeme vidět prudký nárůst
velikosti částic u všech vzorků. Během 20 minut po přídavku aktivačního činidla vzrostla
průměrná velikost až k 400 nm. Tento prudký nárůst velikostí potvrzují i naměřená
absorpční spektra (obrázky 28 – 30). Píky s největším maximem odpovídají původním
disperzím bez přídavku chloridových iontů. S časem se maxima píků rychle snižují, až
mají spektra plochý průběh bez výrazných absorpčních maxim. Tato plochá spektra
odpovídají již zcela rekrystalizovaným částicím o velikosti okolo 400 nm.
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
1.4
1.6
1.8
2
350 450 550 650 750
Ab
sorb
ance
Vlnová délka (nm)
bez NaCl
20 s
1 min
2 min
3 min
5 min
10 min
20 min
51
Obr. 31. TEM snímky stříbrných nanočástic připravených redukcí [Ag(NH3)2]+ glukosou.
Původní nanočástice před přídavkem chloridových iontů (A). Nanočástice stříbra
rekrystalizované po 10 minutách od aktivace chloridovými ionty (B).
Obrázek 31 zachycuje TEM snímky stříbrných nanočástic bez jakékoliv úpravy
(A) a dále nanočástice téže disperze, ke kterým byl přidán 400 mM roztok chloridu
sodného (B). Porovnání těchto dvou snímků potvrzuje výsledky naměřené metodou DLS.
Během 10 minut od přídavku chloridových iontů vzrostla velikost nanočástic
z průměrných 66,0 nm na přibližně 300 nm.
7.4. Experimenty povrchem zesílené Ramanovy spektroskopie
7.4.1. Optimalizace postupu
Pro následné použití aktivovaných nanočástic stříbra v povrchem zesílené
Ramanově spektroskopii byl zkoumán nejvhodnější postup, kterým lze dosáhnout
největšího zesílení signálu. V těchto experimentech byl využit jako modelový analyt
adenin. Adenin byl vybrán pro svoji velkou důležitost, kterou má mezi organickými
sloučeninami. Je součástí DNA, RNA nebo i ATP. Díky své struktuře – jde o derivát
purinu – má typický intenzivní pík při 735 cm-1
.
A B
52
Obr. 32. Strukturní vzorec purinu (A) a adeninu (B).
Nejprve byl zkoumán vliv pořadí přidávaných složek směsi měřené na SERS. Tato
směs obsahovala disperzi stříbrných nanočástic, vodu, roztok chloridu sodného a adenin.
Tyto experimenty proběhly s nanočásticemi připravenými redukcí maltosou, které měly
před aktivací velikost 29 nm. Byla zkoumána i možnost určení analytu při různých
koncentracích (c = 1.10-5
a 1.10-7
mol·l-1
) a jejich celkový vliv na spektra. Aktivační
činidlo (chlorid sodný) bylo přidáváno buď před přídavkem adeninu (v obrázku část A),
nebo až po smíchání adeninu s disperzí nanočástic a destilovanou vodou (v obrázku
část B).
A B
53
Obr. 33. Povrchem zesílené Ramanovo spektrum adeninu o koncentraci 1.10-5
mol·l-1
na maltosový nanočásticích stříbra aktivovaných chloridovými ionty. Přídavek aktivačního
činidla před adeninem (A) a po přidání adeninu (B).
Obr. 34. Povrchem zesílené Ramanovo spektrum adeninu o koncentraci 1.10-7
mol·l-1
na maltosových nanočásticích stříbra aktivovaných chloridovými ionty. Přídavek
aktivačního činidla před adeninem (A) a po přidání adeninu (B).
734,61
A
800
1200
1600
B
800
1200
1600
600 800 1000 1200 1400 1600
Raman shift (cm-1)
735,22 A
400
800
1200
1600
B
400
800
1200
1600
600 800 1000 1200 1400 1600
Raman shift (cm-1)
Ram
an
In
ten
sit
y (
cp
s)
Ram
an
In
ten
sit
y (
cp
s)
54
Pokud porovnáme píky adeninu v obrázku 33, kde byla použita koncentrace
adeninu 1.10-5
mol·l-1
, zjistíme, že pík odpovídající přídavku chloridových iontů až po
přidání adeninu je větší. Pozadí, které běžně poskytuje maltosový koloid, je naopak
utlumené. Při snížení koncentrace adeninu na 1.10-7
mol·l-1
však dostáváme opačné
výsledky (obrázek 34). Vyššího píku a tedy většího zesílení signálu bylo dosaženo, když se
aktivační činidlo přidalo již před adeninem. Koncentrace analytu tedy ovlivňuje průběh
aktivace a rekrystalizace nanočástic. Pro měření nízkých koncentrací, k nimž se povrchem
zesílená Ramanova spektroskopie hlavně využívá, je vhodné přidávat aktivační činidlo již
před samotným přídavkem analytu.
Obr. 35. Povrchem zesílené Ramanovo spektrum adeninu o koncentraci 1.10-6
mol·l-1
na nanočásticích stříbra aktivovaných chloridovými ionty. Nanočástice stříbra připraveny
redukcí [Ag(NH3)2]+ maltosou (A) a glukosou (B).
734,61
A
600
1000 1400 1800
B
600 1000
1400
1800
600 800 1000 1200 1400 1600
Raman shift (cm-1)
Ram
an
In
ten
sit
y (
cp
s)
55
Obr. 36. Povrchem zesílené Ramanovo spektrum adeninu o koncentraci 1.10-7
mol·l-1
na nanočásticích stříbra aktivovaných chloridovými ionty. Nanočástice stříbra připraveny
redukcí [Ag(NH3)2]+ maltosou (A) a glukosou (B).
V dalších experimentech byl adenin měřen na stříbrných nanočásticích
zredukovaných maltosou nebo glukosou a byla zkoumána vhodnost těchto disperzí pro
jejich následné praktické použití. I v tomto případě byla měřena spektra pro více
koncentrací adeninu, aby se tak lépe prokázaly výsledky. V obrázcích 35 a 36 můžeme
v horní části (A) vidět spektra odpovídající adeninu na maltosových nanočásticích (29 nm).
Spodní část (B) jsou spektra adeninu na nanočásticích zredukovaných glukosou (60 nm).
Z obou obrázků dostáváme stejné výsledky a to, že použitím glukosového koloidu
dosáhneme většího zesílení signálu. Další významnou výhodou je také mnohem menší
pozadí, které glukosový koloid poskytuje. To nám umožňuje zaznamenání a pozorování
píků i pro látky, které nejsou tak výrazné jako adenin.
7.4.2. Měření aminokyselin
Těmito experimenty byl zvolen optimální postup, který se dodržoval pro měření
dalších látek. Tato měření probíhala na stříbrných nanočásticích zredukovaných glukosou.
Aktivační činidlo se přidávalo před přídavkem analytu. Spektra látek byla měřena 15 minut
v tří minutových intervalech.
734,61 A
600
1000
1400
1800
B
600
1000
1400
1800
600 800 1000 1200 1400 1600
Raman shift (cm-1)
Ram
an
In
ten
sit
y (
cp
s)
56
Obr. 37. Povrchem zesílené Ramanovo spektrum glycinu na nanočásticích stříbra
aktivovaných chloridovými ionty.
Obr. 38. Povrchem zesílené Ramanovo spektrum alaninu na nanočásticích stříbra
aktivovaných chloridovými ionty.
0 3 6
9
12 15
600
800
1000
1200
1400
1600
1800
2000
2200
2400
500 1000 1500 2000 2500 3000
Raman shift (cm-1)
Ram
an
In
ten
sit
y (
cp
s)
0 3
6
9
12 15
200
400
600
800
1000
1200
1400
500 1000 1500 2000 2500 3000
Raman shift (cm-1)
Ram
an
In
ten
sit
y (
cp
s)
57
Obr. 39. Povrchem zesílené Ramanovo spektrum prolinu na nanočásticích stříbra
aktivovaných chloridovými ionty.
Obr. 40. Povrchem zesílené Ramanovo spektrum fenylalaninu na nanočásticích stříbra
aktivovaných chloridovými ionty.
0 3 6 9 12 15
400
600
800
1000
1200
1400
500 1000 1500 2000 2500 3000
Raman shift (cm-1)
Ram
an
In
ten
sit
y (
cp
s)
0 3
6
9
500
700
900
1100
1300
1500
500 1000 1500 2000 2500 3000
Raman shift (cm-1)
Ram
an
In
ten
sit
y (
cp
s)
58
Obr. 41. Povrchem zesílené Ramanovo spektrum tryptofanu na nanočásticích stříbra
aktivovaných chloridovými ionty.
Obr. 42. Povrchem zesílené Ramanovo spektrum serinu na nanočásticích stříbra
aktivovaných chloridovými ionty.
0 3 6
9 12
15
500
700
900
1100
1300
1500
1700
1900
500 1000 1500 2000 2500 3000
Raman shift (cm-1)
Ram
an
In
ten
sit
y (
cp
s)
0
3
6
9 12
15
700
900
1100
1300
1500
1700
1900
2100
2300
2500
500 1000 1500 2000 2500 3000
Raman shift (cm-1)
Ram
an
In
ten
sit
y (
cp
s)
59
Obr. 43. Povrchem zesílené Ramanovo spektrum methioninu na nanočásticích stříbra
aktivovaných chloridovými ionty.
Obr. 44. Povrchem zesílené Ramanovo spektrum lysinu na nanočásticích stříbra
aktivovaných chloridovými ionty.
0 3 6 9
12
15
200
400
600
800
1000
1200
1400
500 1000 1500 2000 2500 3000
Raman shift (cm-1)
Ram
an
In
ten
sit
y (
cp
s)
0
3
6
9
12
200
400
600
800
1000
1200
1400
500 1000 1500 2000 2500 3000
Raman shift (cm-1)
Ram
an
In
ten
sit
y (
cp
s)
60
Obr. 45. Povrchem zesílené Ramanovo spektrum argininu na nanočásticích stříbra
aktivovaných chloridovými ionty.
Obr. 46. Povrchem zesílené Ramanovo spektrum asparagové kyseliny na nanočásticích
stříbra aktivovaných chloridovými ionty.
0 3 6 9
12
15
500
700
900
1100
1300
1500
1700
1900
500 1000 1500 2000 2500 3000
Raman shift (cm-1)
Ram
an
In
ten
sit
y (
cp
s)
0
3 6
9
12
15
300
500
700
900
1100
1300
1500
500 1000 1500 2000 2500 3000
Raman shift (cm-1)
Ram
an
In
ten
sit
y (
cp
s)
61
Obr. 47. Povrchem zesílené Ramanovo spektrum glutamové kyseliny na nanočásticích
stříbra aktivovaných chloridovými ionty.
0 3 6
9
12
15
500
600
700
800
900
1000
1100
1200
1300
1400
1500
500 1000 1500 2000 2500 3000
Raman shift (cm-1)
Ram
an
In
ten
sit
y (
cp
s)
62
ZÁVĚR
Předložená diplomová práce se zabývala přípravou nanočástic stříbra
s různou velikostí. Tyto nanočástice byly připraveny redukcí komplexu
diaminstříbrného kationtu glukosou nebo maltosou o koncentracích 1.10-2
; 8.10-3
;
6.10-3
; 4.10-3
; 2.10-3
nebo 1.10-3
mol·l-1
. Ty však neměly na velikost nanočástic
významný vliv. Velikost stříbrných nanočástic byla snadno ovlivnitelná změnou
koncentrace amoniaku (0,03; 0,02; 0,01; 0,0075 a 0,005 mol·l-1
, případně 0,01;
0,0075; 0,005; 0,003; 0,002 a 0,001 mol·l-1
), především při postupu přípravy
nanočástic, ve kterém se předem namíchaný diaminstříbrný komplex přidával
k vodnému roztoku glukosy. V takové případě bylo dosaženo rozsahu velikostí
stříbrných nanočástic od 40 nm po 100 nm.
Připravené nanočástice stříbra byly použity v povrchem zesílené Ramanově
spektroskopii s laserem o vlnové délce 532 nm. Pro získání co největšího zesílení
signálu se nejprve hledaly optimální podmínky použití připravených nanočástic.
Byla zkoumána kinetika procesu aktivace stříbrných nanočástic roztokem chloridu
sodného o koncentraci 400 mM. Přídavek chloridových iontů způsobil
rekrystalizaci nanočástic stříbra a jejich velikost vzrostla až na 400 nm. Jako
optimální postup pro další použití v povrchem zesílené Ramanově spektroskopii
byly vybrány nanočástice stříbra redukované glukosou a aktivované chloridovými
ionty. Tyto nanočástice byly použity pro měření spekter biogenních aminokyselin.
63
SUMMARY
One of the aims of this diploma thesis was a preparation of silver nanoparticles with
different sizes. Nanoparticles were prepared through the reduction of silver ammonia
complex by glucose or maltose with various concentrations (1.10-2
; 8.10-3
; 6.10-3
; 4.10-3
;
2.10-3
and 1.10-3
mol·l-1
). Different concentrations of glucose or maltose don’t have any
effect on size of silver nanoparticles as the results showed. The size of silver nanoparticles
can be easily controlled by ammonia concentration (0,03; 0,02; 0,01; 0,0075 and 0,005
mol·l-1
or 0,01; 0,0075; 0,005; 0,003; 0,002 and 0,001 mol·l-1
). The most significant effect
of ammonia influence was observed during preparation of silver nanoparticles by a
reduction of the pre-prepared complex [Ag(NH3)2]+ cation with glucose. The average
particle size varied from 40 nm to 100 nm in dependence of ammonia concentration.
The prepared silver nanoparticles were tested in surface enhanced Raman
spectroscopy experiments with laser wavelength of 532 nm. The ideal conditions of using
prepared particles were studying for obtain the strongest enhance of Raman signal. The
activation of silver nanoparticles was study. By adding solution of sodium chloride with
concentration 400 mM was caused a recrystalization of silver nanoparticles and their size
increased to 400 nm. Using silver nanoparticles reduced by glucose and activated by
chloride ions appeared to be the best procedure for the other surface enhanced Raman
spectroscopy experiments. This procedure was followed to collected spectra of biogenic
amino acids.
64
LITERATURA
1. Mody, V. V., Siwale, R. a Singh, A. Introduction to metallic nanoparticles. Journal of
Pharmacy and BioAllied Sciences. 2010, 2, stránky 282-289.
2. Drexler, Eric. “There’s Plenty of Room at the Bottom”. [Online] 29. 12. 2009. [Citace:
25. 4. 2013.] http://metamodern.com/2009/12/29/theres-plenty-of-room-at-the-
bottom%E2%80%9D-feynman-1959/.
3. Hering, K., a další. SERS: a versatile tool in chemical and biochemical diagnostics.
Anal Bioanal Chem. 2008, 390, stránky 113-124.
4. Bartovská, L. a Šišková, M. Fyzikální chemie povrchů a koloidních soustav. 6 vyd.
Praha : VŠCHT Praha, 2010. str. 262. ISBN 978-80-7080-745-3.
5. Plouchý, J. Fyzikální chemie makromolekulárních a koloidních soustav. 3 vyd. Praha :
VŠCHT Praha, 2008. str. 205. ISBN 978-80-7080-674-6.
6. Ščukin, E. D., Percov, A. V. a Amelinová, E. A. Koloidní chemie. Praha : Academia
Praha, 1990. str. 488. ISBN 80-200-0259-6.
7. Shaw, D. J. Inroduction to Colloid and Surface Chemistry. 4. vyd. Oxford :
Butterworth-Heinemann, 1992. str. 306. ISBN 0 7506 1182 0.
8. Ghosh, P. Colloidal and Interface Science. New Delhi : PHI Learning Private Limited,
2009. str. 505. ISBN 978-81-203-3857-9.
9. Vold, R. D. a Vold, M. J. Colloid and Interfece Chemistry. Boston : Addision-Wesley,
1983. str. 694. ISBN 0-201-08195-4.
10. Lebowitz, J., Lewis, M. S. a Schuck, P. Modern analytical ultracentrifugation in
protein science: A tutorial review. Protein Science. 2002, 11, stránky 2067-2079.
11. Nikitskiy, I. A., Chernov, A. I. a Obraztsova, E. D. Sorting Carbon Nanotubes by
Density Gradient Ultracentrifugation. Journal of Nanoelectronics and Optoelectronics.
2012, 7, stránky 46-49.
12. Hiemenz, P. C. Principles of Colloid and Surface Chemistry. 2. vyd. New York :
Marcel Dekker, Inc., 1986. str. 815. ISBN 0-8247-7476-0.
13. Kvítek, L. a Panáček, A. Základy koloidní chemie. Olomouc : Univerzita Palackého,
2007. str. 52. ISBN 978-80-244-1669-4.
14. Evanoff, D. D. a Chumanov, G. Synthesis and Optical Properties of Silver
Nanoparticles and Arrays. ChemPhysChem. 2005, 6, stránky 1221-1231.
15. Modely elektrické dvojvrstvy. [Online] [Citace: 25. 2. 2013.]
http://vydavatelstvi.vscht.cz/knihy/uid_es-001/hesla/modely_elektricke_dvojvrstvy.html.
16. Hovorka, F. Technologie chemických látek. Praha : VŠCHT Praha, 2005. str. 166.
ISBN 80-7080-588-9.
17. Berg, J. C. An Introduction to Interface and Colloids. London : World Scientific
Publishing Co. Ptc. Ltd., 2010. str. 785. ISBN 978-981-4293-07-5.
18. Henglein, A. Physicochemical Properties of Small Metal Particles in Solution. Journal
of Physical Chemistry. 1993, 97, stránky 5457-5471.
19. Tsui, T., Iryo, K. a Watanabe, N. Preparation of silver nanoparticles by laser ablation
in solution: influence of laser wavelength on particle size. Applied Surface Science. 2002,
202, stránky 80-85.
20. Australian Colloidal Silver Generators. [Online] [Citace: 26. 2. 2013.]
http://www.colloidalsilver.com.au/.
21. Creighton, J. A., Blatchford, Ch., G. a Albrecht, M. G. Plasma resonance
enhancement of Raman scattering by pyridine adsorbed on silver or gold sol particles of
size comparable to the excitation wavelength. Journal of the Chemical Society, Faraday
Transactions 2. 1979, 75, stránky 790-798.
65
22. Song, Ki Chang, a další. Preparation of colloidal silver nanoparticles by chemical
reduction method. Korean J. Chem. Eng. 2009, 26, stránky 153-155.
23. Wojtysiak, S. a Kudelski, A. Influence of oxygen on the process of formation of silver
nanoparticles during citrate/borohydride synthesis of silver sols. Colloids and Surfaces A:
Physicochemical and Engineering Aspects. 2012, 410, stránky 45-51.
24. Liu, F., a další. Surface-enhanced Raman scattering study of riboflavin on
borohydride-reduced silver colloids: Dependence of concentration, halide anions and pH
values. Spectrochimica Acta Part A: Molecular and Biomolecular Spectroscopy. 2012, 85,
stránky 111-119.
25. Schneider, S., Halbig, P. a Graen, H. Photochemistry and Photobiology. 1994, 60,
str. 605.
26. Shirtcliffe, N., Nickel, U. a Schneider, S. Reproducible Preparation of Silver Sols
with Small Particle Size. Journal of Colloid and Interface Science. 1999, 211, stránky 122-
129.
27. Leopold, N. a Lendl, B. A New Method for Fast Preparation of Highly Surface-
Enhanced Raman Scattering (SERS) Active Silver Colloids at Room Temperature by
Reduction of Silver Nitrate with Hydroxylamine Hydrochloride. Journal of Physical
Chemistry B. 2003, 107, stránky 5723-5727.
28. Nickel, U., Castell, A. a Poppl, K. A Silver Colloid Produced by Reduction with
Hydrazine as Support for Highly Sensitive Surface-Enhanced Raman Spectroscopy.
Langmuir. 2000, 16, stránky 9087-9091.
29. Guzmán, M. G., Dille, J. a Godet, S. Synthesis of silver nanoparticles by chemical
reduction method and their antibacterial activity. Journal of Chemical and Biomolecular
Engineering. 2009, 3, stránky 104-111.
30. Zielińskaa, A., Skwarekb, E. a Zaleska, A. Preparation of silver nanoparticles with
controlled particle size. Procedia Chemistry. 2009, 2, stránky 1560-1566.
31. Lee, P. C. a Meisel, D. Adsorption and Surface-Enhanced Raman of Dyes on Silver
and Gold Sols. Journal of Physical Chemistry. 1982, 86, stránky 3391-3395.
32. Pillai, Z. S. a Kamat, P. V. What Factors Control the Size and Shape of Silver
Nanoparticles in the Citrate Ion Reduction Method. Journal of Physical Chemistry B.
2004, 108, stránky 945-951.
33. Kvitek, L., Prucek, R. a Panáček, A. The influence of complexing agent
concentration on particle size in the process of SERS active silver colloid synthesis.
Journal of Materials Chemistry. 2005, 15, stránky 1099-1105.
34. Panáček, A., Kvítek, L. a Prucek, R. Silver Colloid Nanoparticles: Synthesis,
Characterization, and Their Antibacterial Activity. Journal of Physical Chemistry B. 2006,
110, stránky 16248-16253.
35. Qin, Y., Ji, X. a Jing, J. Size control over spherical silver nanoparticles by ascorbic
acid reduction. Colloids and Surfaces A: Physicochemical and Engineering Aspects. 2010,
372, stránky 172-176.
36. Sondi, I., Goia, D. V. a Matijevic, E. Preparation of highly concentrated stable
dispersions of uniform silver nanoparticles. Journal of Colloid and Interface Science.
2003, 260, stránky 75-81.
37. Chena, P., Songa, L. a Liu, Y. Synthesis of silver nanoparticles by g-ray irradiation in
acetic water solution containing chitosan. Radiation Physics and Chemistry. 2007, 79,
stránky 1165–1168.
38. Long, D., Wu, G. a Chen, S. Preparation of oligochitosan stabilized silver
nanoparticles by gamma irradiation. Radiation Physics and Chemistry. 2006, 76, stránky
1126–1131.
66
39. Mallick, K., Witcomb, M. J. a Scurrell, M. S. Polymer stabilized silver
nanoparticles: A photochemical synthesis route. Journal of Materials Science. 2004, 39,
stránky 4459 – 4463.
40. Le Ru, E. a Etchegoin, P. Principles of Surface-Enhanced Raman Spectroscopy: and
related plasmonic effects. Oxford : Elsevier, 2009. str. 663. ISBN 978-0-444-52779-0.
41. Baia, M., Astilean, S. a Iliescu, T. Raman and SERS Investigations of
Pharmaceuticals. Berlin : Springer-Verlag, 2008. str. 241. ISBN 978-3-540-78282-7.
42. Moskovits, M. Surface selection rules. Journal of Chemical Physics. 1982, 77, stránky
4408-4417.
43. Meyer, M. W. a Smith, E. A. Optimalization of silver nanoparticles for surface
enhanced Raman spectroscopy of structurally diverse analytes using visible and near-
infrared excitation. Analyst. 2011, 136, stránky 3542-3549.
44. Schenk, J., a další. Simultaneous UV/Vis spectroscopy and surface enhanced Raman
scattering of nanoparticle formation and aggregation in levitated droplets. Analytical
Methods. 2012, 4, stránky 1252-1258.
45. Kneipp, K., a další. Single Molecule Detection Using Surface-Enhanced Raman
Scattering (SERS). Physical Review Letters. 1997, 78, stránky 1667-1670.
46. Sackmann, M. a Materny, A. Surface enhanced Raman scattering (SERS) – a
quantitative analytical tool? Journal of Raman Spectroscopy. 2006, 37, stránky 305-310.
47. Gu, Geun Hoi a Suh, Jung Sang. Silver nanorods used to promote SERS as a
quantitative analytical tool. Journal of Raman Spectroscopy. 2010, 41, stránky 624-627.
48. Bantz, K.C., a další. Recent Progress in SERS Biosensing. Phys Chem Chem Phys.
2011, 13(24), stránky 11551-11567.
49. Han, Xiao X., Zhao, Bing a Ozaki, Yukihiro. Surface-enhanced Raman scattering for
protein detection. Anal Bioanal Chem. 2009, 394, stránky 1719-1727.
50. Sagmuller, B., Schwartze, B. a Brehm, G. Application of SERS spectroscopy to the
identification of (3,4-methylenedioxy)amphetamine in forensic samples utilizing matrix
stabilized silver halides. Analyst. 2001, 126, stránky 2066-2071.
51. Zhang, X., a další. Rapid Detection of an Anthrax Biomarker by Surface-Enhanced
Raman Spectroscopy. J. Am. Chem. Soc. 2005, 127, stránky 4484-4489.
52. Alexander, T.A. a Le, D.M. Characterization of a commercialized SERS-active
substrate and its application to the identification of intact Bacillus endospores. Applied
Optics. 2007, 46, stránky 3878-3890.
53. Chaloupka, K., Malam, Y. a Seifalin, A.M. Nanosilver as a new generation of
nanoproduct in biomedical applications. Trends in Biotechnology. 2010, 28, stránky 580-
588.
54. Espinosa-Cristóbal, L.F., a další. Antimicrobial sensibility of Streptococcus mutans
serotypes to silver nanoparticles. Materials Science and Engineering C. 2012, 32, stránky
896-901.
55. Espinosa-Cristóbal, L.F., a další. Adherence inhibition of Streptococcus mutans on
dental enamel surface using silver nanoparticles. Materials Science and Engineering C.
2013, 33, stránky 2197-2202.
56. Rujitanaroj, P., Pimpha, N. a Supaphol, P. Wound-dressing materials with
antibacterial activity from electrospun gelatin fiber mats containing silver nanoparticles.
Polymer. 2008, 49, stránky 4723-4732.
57. Vimala, K., a další. Fabrication of porous chitosan films impregnated with silver
nanoparticles: A facile approach for superior antibacterial application. Colloids and
Surfaces B: Biointerfaces. 2010, 76, stránky 248–258.
67
58. Abdelgawad, A. M., Hudson, S.M. a Rojas, O.J. Antimicrobial wound dressing
nanofiber mats from multicomponent (chitosan/silver-NPs/polyvinyl alcohol) systems.
Carbohydrate Polymers. 2013.
59. Browse.Customers Products.Nanotechnology Project. [Online] [Citace: 8. 4. 2013.]
http://www.nanotechproject.org/inventories/consumer/browse/.