1

ФГБОУ ВПО «МОСКОВСКАЯ ГОСУДАРСТВЕННАЯ АКАДЕМИЯ

ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ И БИОТЕХНОЛОГИИ

имени К.И. СКРЯБИНА»

На правах рукописи

СИТНИКОВ ВАЛЕРИЙ ФЕДОРОВИЧ

ЭТИОЛОГИЯ И ПРОФИЛАКТИКА СИМПТОМАТИЧЕСКОГО

БЕСПЛОДИЯ ОВЕЦ

06.02.06 – Ветеринарное акушерство и биотехника репродукции животных

ДИССЕРТАЦИЯ

на соискание ученой степени

кандидата ветеринарных наук

Научный руководитель:

доктор ветеринарных наук,

Гнездилова Л.А.

Москва - 2012

2

Содержание

1. Введение

2. Обзор литературы

2.1 Основные нарушения воспроизводительной функции у овцематок

2.2 Процесс родов у овец и патология родового акта

2.3 Этиология послеродовых осложнений у овцематок

2.4 Методы лечения овец, больных эндометритом

2.5 Применение лекарственных препаратов для стимуляции

адаптогенных возможностей организма животных

2.6 Использование адаптогенных лекарственных средств на основе

гуминовых веществ

2.7 Адаптогенное, стресс-корректирующее действие гуминового

препарата лигфол

2.8 Заключение

3. Собственные исследования

3.1 Материал и методика работы

3.2 Этиологические факторы бесплодия овцематок, основные

нарушения воспроизводительной функции

3.3 Контроль состояния воспроизводства овец на основании

проведения акушерско–гинекологической диспансеризации

3.4 Применение адаптогена стресс-корректора Лигфол для

профилактики патологии послеродового периода овцематок

3.5 Общепрофилактические и специальные мероприятия при

симптоматическом бесплодии овец

3.6 Лечение овец при послеродовых эндометритах

4. Обсуждение результатов собственных исследований

5. Выводы

6. Практические предложения

7. Список литературы

3

1. Введение

Актуальность темы.

Одной из причин симптоматического бесплодия у овец является патология

беременности, родов и послеродового периода. Нарушение технологии

содержания, кормления, дисбаланс параметров микроклимата

животноводческих помещений, перегруппировки, зооветеринарные

мероприятия являются серьезными стресс-факторами для суягных овец.

Инфекционные болезни, поражающие органы воспроизводства, также

оказывают большое негативное воздействие на беременных животных.

Конечный результат всего этого – бесплодие маточного поголовья и

заболеваемость молодняка. В настоящее время нет еще единого мнения об

эффективности применения методов профилактики акушерско-

гинекологических заболеваний у овец. Для контроля воспроизводства

необходимо тщательно разбираться в причинах бесплодия и разрабатывать

научно-обоснованные схемы лечебно-профилактических мероприятий,

направленные на восстановление воспроизводительной функции овцематок и

их высокой продуктивности.

Цель работы – изучение этиологии симптоматического бесплодия овец,

проведение комплексной системы диагностики патологии

воспроизводительной функции, общей и специфической профилактики.

Задачи:

1. Выявить основные этиологические факторы возникновения

симптоматического бесплодия у овцематок.

1.1. Установить влияние воздействия факторов внешней среды на

организм суягных овцематок (параметров микроклимата, технологии

содержания, кормления, ветеринарно-санитарных мероприятий).

2.1. Воздействие возбудителей инфекции на воспроизводительную

функцию овец.

4

2. Провести контроль состояния воспроизводства животных на

основании проведения акушерско-гинекологической диспансеризации

овцематок в различные физиологические периоды их жизни (период половой

охоты, в период суягности, послеродовой период) в условиях хозяйств

Московской области.

3. Провести профилактические мероприятия.

3.1. Применить препарат Лигфол для профилактики акушерско-

гинекологической патологии родов и послеродового периода у овцематок

и повышения естественной резистентности организма.

3.2. Провести систему мероприятий по профилактике инфекционных

заболеваний с поражением репродуктивных органов, включающую

комплексную вакцинацию овцематок с использованием препарата Лигфол

и применение дезсредства Дезконтен.

4. Разработать схему и провести сравнительные методы лечение

овцематок при послеродовых эндометритах.

Научная новизна.

1. Установлены основные этиологические факторы нарушения

воспроизводительной функции у овцематок, приводящие к бесплодию (в

условиях СХП МО и ЮФО).

2. Проведена комплексная система контроля воспроизводства овец

путем проведения акушерско-гинекологической диспансеризации с учетом

различных периодов их физиологического состояния в условиях

сельскохозяйственных предприятий Московской области.

3. Испытан препарат – адаптоген стресс-корректор Лигфол для

профилактики патологии родов и послеродовых осложнений у овец.

4. Разработана система мероприятий по профилактике

симптоматического бесплодия у овец с использованием нового дезсредства

Дезконтен и комплексной вакцинации с применением препарата Лигфол.

5

Практическая значимость.

1. В результате проведенных исследований ветеринарным специалистам

для практического использования предложена система мероприятий по

контролю воспроизводства овец с применением акушерско-гинекологической

диспансеризации.

2. Для практического использования рекомендовано проведение

мероприятий по профилактике симптоматического бесплодия с

использованием адаптогена стресс-корректора Лигфол.

3. Предложено проведение специфической профилактики

инфекционных болезней овец с поражением репродуктивных органов путем

использования вакцины в сочетании с препаратом Лигфол. А также проведение

дезинфекции овцеводческих помещений с применением дезинфицирующего

средства Дезконтен.

4. Практическим ветеринарным специалистам рекомендованы

эффективные схемы лечения овец с послеродовым эндометритом.

Апробация работы.

Основные результаты проведенных исследований докладывались и

обсуждались на:

1. Международной научно-практической конференции «Проблемы и

перспективы овцеводства и козоводства» (г.Ставрополь, 2005).

2. Всероссийской научно-практической конференции «Итоги и

перспективы применения гуминовых препаратов в продуктивном

животноводстве, коневодстве и птицеводстве» (г.Москва, 2006).

3. Международной научно-практической конференции

«Нанобиотехнологии в сельском хозяйстве» (г.Москва, 2008).

4. Материалы исследований по теме диссертации изложены в

методических рекомендациях «Контроль воспроизводства овец и профилактика

симптоматического бесплодия» (г.Москва, 2009).

6

5. Международной научно-практической конференции «Современные

проблемы диагностики, лечения и профилактики болезней животных и птиц»

(г.Екатеринбург, 2010).

6. Международной научно-практической конференции «Современные

проблемы, перспективы и инновационные тенденции развития аграрной науки

(г.Махачкала, 2010)

Публикация результатов исследований.

По теме диссертационной работы опубликовано восемь научных статей и

методические рекомендации.

Объем и структура диссертации.

Диссертация изложена на 137страницах компьютерного текста,

иллюстрирована 16 таблицами, 9 фотографиями и 6 рисунками.

7

2. Обзор литературы

Введение

В настоящее время в Российской Федерации всё больше внимания

уделяется развитию одной из важнейших отраслей агропромышленного

комплекса – овцеводству.

Помимо выращивания пород шерстного и мясо-шерстного направления,

тонкорунных и полутонкорунных овец в ряде регионов России разработаны и

осуществляются целевые программы создания мясного овцеводства. Они

предусматривают скрещивание отечественных мясных пород с австралийскими

мериносами, текселями, остфризами, полдорсетами. Планируется дальнейший

рост поголовья овец.

Минсельхоз России и Россельхозакадемия разработали и утвердили

концепцию развития животноводства страны на период до 2010г. Она

основывается на результатах исследований и анализе состояния

животноводства, обобщении достижений науки и передового опыта. В

концепции сформулированы основные пути выхода отрасли из кризиса. Ее

реализация обеспечит стабилизацию, а затем динамичный рост численности

овец, производства шерсти, другой продукции отрасли (В. Шапочкин, 2002).

Процесс интенсификации этой важной отрасли во многом зависит от

правильной организации воспроизводства животных в овцеводческих

хозяйствах, что позволит увеличить производство животноводческой

продукции и сырья для населения.

Однако серьезной проблемой в реализации задач по увеличению поголовья

овец и повышения их продуктивности является низкая оплодотворяемость и

высокий процент бесплодия маточного поголовья, в частности

симптоматического, т.е. возникающего в результате развития патологических

процессов в половых органах животных.

А.П. Студенцов (1999) писал: «Бесплодие животных наносит огромный

ущерб, превышающий убытки, наносимые всеми другими заболеваниями

8

животных. Вот почему над проблемой борьбы с бесплодием работают многие

специалисты всех стран мира». Однако следует отметить, что и в настоящее

время она решается по-разному и подчас не находит действенных методов

профилактики и полного искоренения.

Одной из причин симптоматического бесплодия у овцематок является

патология родов, которая встречается у 4,9 – 34% животных. Нарушение

технологии содержания и кормления, несоответствие нормативным данным

параметров микроклимата животноводческих помещений, зооветеринарные

мероприятия являются серьезными стресс-факторами для беременных овец. На

фоне нарушения нейро-гуморального регулирования, обмена веществ,

процесса кроветворения, иммунной защиты, снижения естественной

резистентности организма развиваются акушерско-гинекологические

патологии. Это - аборты, патология родов, задержание последа, субинволюция

матки, развитие внутриутробной гипоксии молодняка.

С целью решения этих проблем в период беременности и родов овцематок

нами проводились испытания адаптогена стресс-корректора Лигфол. Это

композиционный препарат, основным действующим началом которого

являются гуминовые кислоты. В состав препарата входят: гуминовые кислоты,

натрия пирофосфат десятиводный, натрия хлорид и деминерализованная

апирогенная вода. Это стерильный препарат в форме инъекционного раствора

для парентерального применения.

В России изучение применения гуминовых препаратов в качестве

кормовой добавки для сельскохозяйственных животных начаты в 60х годах и

продолжаются до настоящего времени. Накоплен большой экспериментальный

материал, подтверждающий, что гуминовые вещества обладают широким

спектром биологической активности, оказывая воздействие на обменные

процессы в организме животных и человека. Они поставляют микроэлементы,

обогащая иммунную систему, что дает животным возможность эффективно

противостоять болезням. Гуминовые препараты применяются в качестве

биологических стимуляторов при выращивании сельскохозяйственных

9

животных. Активизируют рост и развитие, повышают продуктивность,

снижают заболеваемость и отход молодняка (В.С. Бузлама, 2006).

Установлено, что гуминовые вещества влияют на регуляторные системы

клетки. Механизм их фармакологического действия связан с интенсификацией

синтеза белка и иммунореактивных факторов клетками организма животных и

птиц.

Гуминовые, фульвокислоты, пиримидины, аминокислоты влияют на

аденилатциклазную систему клетки и систему ферментов, ответственных за

синтез олигоаденилата – медиатора действия интерферона. В частности их

действие опосредуется одновременной активацией АЦ (аденилатциклазы) и

ингибированием ФДЭ (фосфодиэстеразы), что приводит к усилению синтеза

цАМФ (аденозинмонофосфатазы). Повышение внутриклеточной концентрации

цАМФ может приводить к биологическим эффектам в зависимости от типа

клетки и её состояния в данный момент. Происходит регуляция ферментов

углеводного и жирового обмена, иммунных реакций, факторов естественной

резистентности организма (Д.Н. Уразаев, 1986).

В настоящее время нет еще единого мнения об эффективности применения

методов профилактики акушерско-гинекологических заболеваний у овец. Для

контроля воспроизводства необходимо тщательно разбираться в причинах

бесплодия и разрабатывать научно-обоснованные схемы лечебно-

профилактических мероприятий, направленные на восстановление

воспроизводительной функции овцематок и их высокой продуктивности.

Опыт применения препарата Лигфол в скотоводстве, свиноводстве,

коневодстве, птицеводстве показал широкую возможность его использования в

схемах лечебно-профилактических мероприятий, для повышения

резистентности, продуктивных и племенных качеств сельскохозяйственных

животных и птицы.

1.1 Основные нарушения воспроизводительной функции у овцематок

Аборт - прерывание беременности с последующим полным или частичным

рассасыванием зародыша, либо изгнанием из половых органов мертвого или

10

незрелого плода (В.А. Акатов, Г.А. Кононов и др., 1977; А.П. Студенцов, В.С.

Шипилов, В.Я. Никитин и др., 1999).

Экономический ущерб от абортов складывается из потери ожидаемого

приплода, падежа овцематок и прекращения или сильного снижения молочной

продуктивности. Кроме того, после абортов часто возникают различные

осложнения, которые во многих случаях обусловливают бесплодие овцематок,

а иногда и гибель животных (В.Г. Шаманов, 1954; Т. Ганчев, 1960; П. Маринов,

1962; С.Г. Казарян, 1967; К. Амануллаев,1969; А. Актаев, 1969; А.Н. Степанов,

1974; Ч.А. Рзаев, 1976; Р.А. Огурцов, 1980; А.И. Симонян, 1980; И.И.

Соколовская, 1988; Г.В. Небогатиков, 1993; П.Д. Устарханов, М.Г. Халипаев,

2003; Berri M. et al., 2002 и др.).

Аборты овец пока еще недостаточно изучены. Наиболее научная и

приемлемая классификация абортов сельскохозяйственных животных

предложена А.П. Студенцовым. Он делит аборты по их этиологии на три

основных вида: 1) незаразные 2) инфекционные 3) инвазионные. Эта

классификация приемлема и для овец (Ч.А. Рзаев, 1976) и согласно ей

инфекционные аборты подразделяются на идиопатические и

симптоматические.

К идиопатическим инфекционным абортам относятся бруцеллезные

аборты коров, овец и свиней, паратифозные аборты кобыл и овец,

кампилобактериозные – коров и овец. К симптоматическим инфекционным

абортам относятся: инфекционная анемия, туберкулез и другие инфекционные

заболевания матери.

И.А. Бочаров, 1956; Е.Т. Михайленко, 1985; М.В. Федорова, 1986; В.Е.

Радзинский, 1987; Г.М. Савельева, 1991; Д.Д. Логвинов, 1993; С.А. Власов,

2000; считают, что аборты и эмбриональная смертность возникают по причине

плацентарной недостаточности, возникающей в результате различных

отклонений в течении беременности. В 80% случаев этому способствует

попадание патогенной и условно-патогенной микрофлоры в гениталии самок.

11

Инфекционные аборты у овец изучали и описывали с 1956 года А.И.

Лопырин и Н.В. Логинова. По их сообщениям, аборты являются одной из

причин яловости овцематок. В первую очередь причиной заразного

заболевания является бруцеллез, который опасен и для человека. В организме

микробы скапливаются в лимфатических узлах, особенно в тех, которые

расположены вблизи половых органов и вымени. Во время суягности они

проникают в слизистую оболочку родовых путей, быстро размножаются и,

нарушая связь матки с плацентой, вызывают аборт. Чаще всего аборты на почве

бруцеллеза происходят на третьем месяце суягности. Во время аборта вместе с

плацентой и плодовыми водами выделяется большое количество бруцеллезных

микробов.

Приводит к абортам и яловости паратифозная инфекция. Попавшие в

организм суягной овцы микробы проникают в матку, нарушают связь её с

плацентой и вызывают аборт. Выкидыши, как правило происходят за 2-3

недели до окота. Абортированные плоды обладают шерстным покровом и часто

бывают уже разложившимися.

По наблюдениям Ч.А. Рзаева (1976) в овцеводстве чаще всего встречаются

аборты с рассасыванием зародыша, с изгнанием недоноска и изгнанием

мертвого плода. Причины этих абортов обычно инфекционные (бруцеллез,

паратиф, вибриоз, листериоз, лептоспироз), вирусные и инвазионные

заболевания, неправильное кормление беременных маток, различные травмы

брюшной стенки и болезни или ненормальное развитие половой системы

овцематки. Во всех случаях аборт возникает в результате нарушения

нормальных взаимоотношений между плодом и матерью вследствие

ненормального состояния плода, его оболочек, заболеваний женского полового

аппарата, а также других органов и организма матери в целом.

По сообщению автора, в условиях овцеводческих хозяйств особенно

опасны инфекционные аборты, т.к. они быстро распространяются и приносят

большой ущерб. Во многих хозяйствах встречаются бруцеллез, паратиф,

кампилобактериоз, лептоспироз, листериоз овец, вызывающие массовые

12

аборты и различные акушерско-гинекологические болезни (задержание

последа, воспаление матки и т.п.), приводящие к бесплодию. Немало овец

гибнет от этих болезней (А. Гордон, 1988).

В.В Михайленко (1999, 2000) при изучении клинико-морфологических

особенностей проявления хламидиоза овец в его ассоциации с микоплазмозом в

хозяйствах Ставропольского края и Калмыкии регистрировал массовые аборты

маток, преимущественно во второй период суягности. По данным автора

абортировали от 5 до 20% животных. Количество абортов напрямую зависело

от количества положительно реагирующих овец в хозяйстве.

У.М. Нарымбетова, Б.Т. Толысбаев (2001) изучали инфекционную

патологию овец в хозяйствах Казахстана. Установлено, что за последние годы

наиболее широкое распространение среди инфекционных болезней овец имеют

сальмонеллез, бруцеллез и хламидиоз, представляющие потенциальную

опасность для здоровья человека и животных. Эпизоотологические вспышки

абортогенных инфекций овец нередко протекают в ассоциативной форме. Это

приводит к массовому заболеванию животных (большое количество абортов),

трудностям диагностики и лечения.

К.С. Шманов и др. (2002) проводили исследования по эпизоотологии,

диагностике и специфической профилактике абортогенных инфекций овец в

хозяйствах республики Казахстан. Установлено, что инфекционная патология

репродуктивных органов овцематок обусловливается такими возбудителями,

как кампилобактерии, хламидии и сальмонеллы, проявляется эмбриональной

смертностью зародыша, недополучением приплода, массовыми ранними и

поздними абортами, бесплодием маточного поголовья.

1.2 Процесс родов у овец и патология родового акта

Роды (Partus) – физиологический процесс, в результате которого зрелый

плод, плодные оболочки вместе с плодной частью плаценты и околоплодными

водами выводятся из полости матки (Г.А. Кононов и др., 1977; А.Г. Нежданов

1991; А.П. Студенцов и др., 1999;).

13

В норме у овец роды начинаются после полного завершения беременности.

Строение таза у овец в основном обеспечивает легкость родового акта, поэтому

у них сравнительно редко встречаются трудные роды. Трудные роды

возникают или при слишком больших плодах, или при неправильном

положении ягненка в родовых путях (Ч.А. Рзаев, 1976).

В конце беременности, особенно за 5-10 дней до начала родов, у овец

появляются предвестники родов. За 3-4 дня до родов заметно западание

крестца, сильный отек половых губ, увеличение объема молочной железы,

появление молозива. За 12-24 часа до начала родов овцематка начинает

беспокоится, часто при этом блеет, уединяется, как будто подготавливает

“гнездо” для родов. Процесс родов у овец слагается из трех стадий:

1) подготовительная стадия, или раскрытия шейки матки;

2) стадия выведения плода;

3) стадия изгнания последа.

Каждая стадия сопровождается соответствующими потугами. Стадия

раскрытия шейки матки длится от 3 до 30 часов и проходит без особых

клинических признаков. Стадия выведения плода продолжается 5-30 минут. В

это время овцы очень беспокоятся, переступают ногами, стонут, оглядываются

на живот и блеют. Выводится плод из полости матки благодаря сокращениям

мускулатуры её и брюшного пресса. При многоплодной беременности плоды

появляются с интервалом от 5 минут до одного часа. Стадия изгнания последа

непродолжительная - от 20 минут до 2 часов. Чаще послед отделяется в течение

первого часа после выведения плода. С изгнанием последа завершаются роды и

начинается послеродовой период (Ч.А. Рзаев, 1976; M.A. Sharafeldin, 1971; L.S.

Wyk, 1972; J. Robimson, 1979; E.L. Harman, 1980; G. P. Thorburn, 1984;).

Патологические роды возникают под влиянием многих причин. Часто они

являются следствием расстройств сократительной функции матки и брюшного

пресса (слабые или слишком сильные схватки и потуги). Они наблюдаются

также при аномалии вульвы и влагалища, неполном раскрытии и спазмах

шейки матки, при скручивании матки, водянке плодных оболочек и маловодии,

14

при водянке и уродствах плода. Особенно часто патологические роды являются

следствием неправильных расположений и членорасположений плода при

родах и несоответствии размеров плода или отдельных его частей и размеров

тазовой полости матери (В.А. Павлов, 1969; В.А. Акатов, 1977; L.P. Cahill,

1976; F.W. Baser, 1983; F.J. Grommers, 1985).

Серьезной причиной патологии родов у овец является воздействие на

организм животных возбудителей инфекционных заболеваний или продуктов

их жизнедеятельности. Указанное нарушение встречается, по наблюдениям

Н.Я. Алиева (1976), в 14,4-15,9% случаев. По J. George (1976) в Австралии у

овец в 34% случаев наблюдали затрудненные роды. Однако анализ

специальной литературы показал не изученность вопроса конкретной

взаимосвязи специфики нарушений в организме матери с воздействием

возбудителей инфекционных заболеваний.

Частым проявлением патологических родов у овец является нераскрытие

шейки матки. Это заболевание встречается у овцематок в Англии, Германии,

Швейцарии, Польше и других странах (А.Н. Лавор, 1987; Gunn R.G., 1968;

J. Maxwell, 1970; K.P. Mc Natty, 1972; R.D. Mc. Sporran, 1977; Hils Jean-

Louis, 1980;). По данным George J.M. (1976), K.D. Mc. Sporran, Buchanan R.,

E.D. Fielden (1977) патология регистрируется у 6-37% животных в зависимости

от породы и возраста. В.А. Карпов (1984) сообщает о том, что в отдельных

хозяйствах на долю нераскрытия шейки матки приходится до 15-25% всех

случаев патологических родов. А.Н. Лавор (1986), проводя анализ 14661 окота

в овцеводческих хозяйствах Белоруссии в период с 1982 по 1984гг., показал,

что нераскрытие шейки матки регистрируется у 3,8-13,8% овцематок. В 1987

автором было учтено 1116 ягнений овец, среди которых заболевание

наблюдалось у 76 голов, что составляет 6,8%.

Наиболее часто эта патология отмечалась в январе (55,7%), которая

снижалась в два раза в феврале (25,1%) и незначительное количество случаев

приходилось на декабрь и март, соответственно, 8,7 и 10,5% (А.Н. Лавор, 1986).

15

Продолжительность суягности у овцематок с нераскрытием шейки матки

была на 2,2 дня короче в сравнении с овцематками, ягнившимися в

физиологические сроки. Автор регистрировал заболевание у овец породы

прекос, тогда как у овцематок романовской породы это заболевание не

наблюдалось.

Нераскрытие шейки матки проявлялось в одинаковой степени у овцематок

всех возрастов и в 82% случаев ему предшествовало выпадение влагалища,

возникающее спонтанно, как правило, за 10-12 дней до родов, иногда раньше, а

в ряде случаев непосредственно перед родами (А.Н. Лавор, 1987).

Этиологические факторы этого заболевания окончательно не выяснены.

Наиболее частой причиной нераскрытия шейки матки является нарушение её

иннервации, происходящее в результате воспаления, возникающего на почве

переболевания овцематок различными инфекционными заболеваниями.

Определенную роль в патогенезе заболевания играет неблагоприятное

воздействие факторов внешней среды, снижающее естественную

резистентность организма животных (А.Я. Губаревич, 1952; В.А. Карпов, 1984;

А.Н. Лавор, 1984; J.L. Hils, 1980; J. Shulz, 1985; Maxwell, 1970; R.G. Gunn,

1969).

Я.Г. Губаревич (1952) сообщает, что нераскрытие шейки матки возникает

вследствие недостаточной инфильтрации её мышечных слоёв. Заболевание

может быть обусловлено сильным рубцовым стягиванием ткани в связи с

травмированием при оказании помощи или сильным натяжением плода,

обусловившим разрыв тканей шейки.

По В.А. Карпову (1984), при заболевании, в отличие от нормальных родов,

понижается содержание в тканях шейки матки воды и не происходит

достаточного разрыхления фибриллярного основного (межклеточного)

вещества.

К нераскрытию шейки матки предрасположены овцы преимущественно

первородящие, многоплодные, с большой массой отдельных плодов (с

преобладанием баранчиков в приплоде), содержащиеся до ягнения на пышных

16

обильных пастбищах, ожиревшие животные или определенные породы овец

(мясные) и другие.

Автор опровергает прежние представления, согласно которым причина

указанной дисфункции шейки матки приписывалась слабым сокращениям

мускулатуры матки, обусловленным, например, перерастяжением стенок матки

при многоплодной беременности.

Многоплодная беременность может играть роль способствующего

фактора, поскольку она предрасполагает к нарушению обмена веществ. По

исследованиям В.А. Карпова (1984) у овец с нераскрытием шейки матки

отмечалось понижение содержания кальция в сыворотке крови. Тот факт, что

рассматриваемая патология у овец не регистрируется в некоторых стадах,

областях или странах (например, в Перу), автор объясняет влиянием внешних

факторов, как предпосылкой для возникновения этого заболевания.

А.Н. Лавор (1985) для изучения этиологии этой патологии проводил

изучение гормональных показателей при нераскрытии шейки матки у овец,

выявлял динамику и роль стероидных гормонов (прогестерона, эстрадиола,

кортизола) и простагландина Ф2α при нормальном течении родов и при

патологии.

Было установлено, что у овцематок с выпадением влагалища за 15-10 и 5-3

суток до предполагаемого окота содержание прогестерона в крови резко

понижено (в 2,69-3,36 раза) при относительно высоком уровне эстрадиола 17-

бета (в 1,2-1,4 раза) и кортизола (в 4,1-5,2 раза) по сравнению с нормально

протекающей беременностью. У овец с нераскрытием шейки матки не

происходит к началу родов резкого снижения в крови концентрации

прогестерона, повышения уровня эстрадиола-17 бета, кортизола и

простагландина Ф2α, свойственных нормальному течению родов.

А.П. Студенцов, В.С. Шипилов (1999) считают, что в основе нераскрытия

шейки матки лежат патологические изменения в половом аппарате или

поражение нервных элементов возникающие вследствие перенесенных

воспалительных процессов разной этиологии, чаще всего, инфекционной.

17

Некоторые исследователи (J.L. Hils, 1980; Shulz, 1985; А.Н. Лавор, 1987;

М.П. Чернышева, 1998) утверждают, что главенствующая роль в этиологии

нераскрытия шейки матки принадлежит нарушению минерального и

гормонального обменов.

В.А. Акатов и др. (1977) считают, что наиболее частой причиной

нераскрытия шейки матки является дискоординация сократительной функции

матки, при которой сокращение её рогов и тела не способствуют раскрытию

шейки матки. Указанная патология возникает при нарушениях её иннервации,

обусловленных воспалением и другими патологическими процессами,

возникающими на почве переболевания различными инфекционными

заболеваниями.

1.2 Этиология послеродовых осложнений у овцематок

Послеродовой период, границы которого порой не могут точно

определить, представляет собой своеобразный переходный этап от

беременности и родов к новому состоянию организма матери до следующей

беременности. Процессам гипертрофии, гиперплазии, гиперемии и

пролиферации во время беременности противостоят явления атрофии,

дегенерации, распада и рассасывания в послеродовом периоде. Многие из

указанных процессов считаются физиологическими для послеродового

периода, тогда как обнаружение их вне этого периода свидетельствовало бы о

глубоких патологических нарушениях в организме. Процессы обратного

развития после родов в отношении своей интенсивности и темпов зависят от

ряда факторов, среди которых играют исключительную роль возраст,

количество предшествующих родов, течение беременности и родов, болезни,

кормление и содержание животного в период беременности и др. Отдельные из

указанных факторов способны удлинять или сокращать срок послеродового

периода (Ч.А. Рзаев, 1976).

К сожалению, до последнего времени в овцеводческих хозяйствах все еще

мало обращают внимание на течение послеродового периода и особенно на

послеродовую патологию половых органов овец. Больше того, среди многих

18

практиков-овцеводов и научных работников распространено неправильное и

необоснованное мнение, что послеродовые заболевания у овец встречаются

лишь в единичных случаях и не оказывают решающего влияния на дальнейшую

плодовитость.

Одним из осложнений родового акта у овец является задержание последа.

Оно занимает особое место в акушерской патологии. Задержание последа у

овец в некоторых хозяйствах Узбекистана встречается по Ш.М. Гузиеву в 4,9-

21,9%, а по Н.А. Алиеву (1976) – в 15,9-16,7% случаев. С.Г. Казарян (1967)

регистрировал задержание последа у 2-8% овец. Единого мнения о

продолжительности последовой стадии нет. По мнению И.Я. Чистякова (1973),

И.Я. Чистякова, П.Е. Ким (1983), о задержании последа можно говорить в том

случае, если он не отделился в течение 4 часов; по В.А. Карпову (1984), Г.В.

Зверевой и др. (1985) - 5 часов; по Я.Г. Губаревичу (1949), Ч.А. Рзаеву (1969,

1976), Н.Д. Мухамедову (1979)- в течение 6 часов после рождения ягненка.

Я.Г. Губаревич (1949), Ч.А. Рзаев (1959, 1969, 1976), В.Е. Старков и др.

(1972), И.Я. Чистяков (1973), В.А. Карпов (1984) причиной задержания последа

считают недостаточные сокращения матки (гипотония) или отсутствие

сокращений (атония). Предрасполагающими факторами, как отмечают эти

авторы, могут быть неполноценное кормление, истощение или ожирение

животного, отсутствие моциона в период беременности, перерастяжение матки

при большом количестве плодов, утомление роженицы вообще и миометрия в

частности после продолжительного периода выведения плода (плодов);

слишком плотное соединение ворсинок с криптами, что наблюдается при

отечности их тканей и воспалительных процессах в результате инфекционных

заболеваний; механические препятствия для изгнания последа: сужение или

закрытие канала шейки матки или отверстий рогов в местах их перехода в тело

матки, перегибы и инвагинация матки.

По мнению Т. Ганчева (1960), П. Маринова (1962), Т.А. Мамедова (1964),

Н.Т. Зиновьевой (1972), В.Л. Ковалева (1975), Г.А. Кононова (1977), В.К.

Ивахненко (1980) возникновению задержания последа у животных

19

способствуют аборты инфекционной этиологии, происходящие по причине

гнойно-катарального, фибринозного, геморрагического или гангренозного

плацентита.

Литературные данные по бесплодию сельскохозяйственных животных

свидетельствуют о том, что заболевания половых органов у овец и, в

особенности вопросы инфекционной патологии, изучены крайне недостаточно.

Одним из наиболее частых заболеваний полового аппарата у овец являются

послеродовые эндометриты.

По данным В.Г. Шиманова (1954, 1957, 1982), в некоторых хозяйствах

более половины (55,79-55,8%) из числа обследованных животных остаются

бесплодными вследствие хронических эндометритов и вагинитов.

З.М. Шахмарданов (1964, 1968), исследовавший овцематок, сдаваемых на

мясокомбинат, наблюдал, что у 1,29% животных наблюдалось поражение

яичников, у 0,73% овцематок были воспалительные процессы матки. При

проведении исследований непосредственно в хозяйстве он установил, что 1,6-

3,4% овцематок к общему числу маточного поголовья в отарах остаются

бесплодными на почве эндометритов и вагинитов.

S.M. Sokkar et al (1980) из 100 обследованных после убоя овец выявил

эндометриты в 44 случаях.

З.А. Шахмарданов и др. (1968) сообщают, что из числа бесплодных овец у

28,1% встречаются хронические эндометриты и вагиниты.

По сообщениям Н.Я. Алиева (1976), Ш.М. Гузиева (1976), в хозяйствах

Узбекистана послеродовые заболевания у овец составляют 3,8-17,5%.

Послеродовые эндометриты возникают в результате травмирования

эндометрия и внедрения различных микроорганизмов через родовые пути в

матку при патологических родах, субинволюции матки (Ч.А. Рзаев, 1976; В.А.

Карпов, 1984).

Бактериологические исследования выделений из матки при воспалении её

показали, что при этом выявляется смешанная инфекция: стрептококки,

стафилококки, гноеродная палочка, кишечная палочка, диплококки,

20

сальмонеллы (Ф.Т. Панасенко, 1957; Ч.А. Рзаев, 1974, 1976; S.V. Sokkar et al.,

1980). Немаловажное значение имеют предрасполагающие факторы,

снижающие резистентность организма: неполноценное кормление, отсутствие

моциона в период беременности и после родов, антисанитарные условия

содержания и др. (H. Sandbu, 1956; А.М. Силаев, 1971; Ф.З. Меерсон, 1981;

В.А. Карпов, 1984; И.Н. Никитченко, 1988; К. Петров, 1988; Н.С.

Марзанов, 1991).

При проведении патолого-гистологической диагностики послеродовых

эндометритов у овец Ч.А. Рзаев (1976) установил, что при острых воспалениях

в матке происходят значительные изменения: отечность, увеличение объема,

асимметрия рогов матки, гиперемия и набухание слизистой оболочки,

увеличение размеров маточных карункулов, иногда заметна задержка развития

желтого тела, наличие воспалительных пузырьков в яйцепроводах, сращения и

рубцевания в слизистой оболочке матки и яйцепроводах. Сильно выражена

клеточная инфильтрация всех слоев матки, в слизистой оболочке встречаются

атрофические изменения маточных желез и стенок мелких кровеносных

сосудов, вокруг них имеется клеточная инфильтрация. В слизистой оболочке

яйцепроводов отсутствует мерцательный эпителий, а иногда выражен некроз. В

яичниках задерживается желтое тело, встречается атрезия фолликулов,

отсутствие яйцеклетки. Характерные изменения обнаруживаются в половых

органах овец при хронических воспалительных процессах. В таких случаях

обнаруживаются уплотнения маточной стромы, застой крови, очаговая

инфильтрация с полиморфноядерными лейкоцитами, лимфоидными

элементами, плазматическими клетками.

Основной причиной воспаления матки у овец Ч.А. Рзаев (1976) считает

внедрение инфекции в организм животного через родовые пути или попадание

её в матку гематогенным путем. При проведении бактериологических

исследований выделений из матки при воспалении её автор установил наличие

смешанной микрофлоры.

21

С.С. Юдович (1939) при исследовании полового аппарата овцематок,

больных острым и хроническим гнойно-катаральным эндометритом, установил,

что изменения со стороны слизистой оболочки могут представлять

разнообразные картины. Так, в одних случаях наблюдалась лишь инфильтрация

межуточной ткани слизистой оболочки лейкоцитами и плазматическими

клетками и десквамация эпителия; в других происходило фибринозное

перерождение стромы; наконец, долго продолжающееся воспаление вело за

собой атрофию слизистой оболочки, характеризующуюся истончением её,

атрофией покровного эпителия, исчезновением желез.

При гистологическом исследовании полового аппарата овцематок с

хроническим послеродовым эндометритом автор установил наличие маточных

желез в недеятельном состоянии в глубине слизистой оболочки, которые

увеличивались в размерах по мере приближения к поверхности, выводные

протоки расширялись, клетки содержали секрет. В некоторых участках

эпителиального слоя были обнаружены кистозно расширенные железистые

канальцы, сливающиеся между собой в небольшие полости с совершенно

дегенерированным железистым эпителием. Выстилающий полость матки

эпителий был разрушен и сохранялся лишь в отдельных участках. Матка одной

овцы была поражена разлитым гнойным процессом, стенка её совершенно

утратила характерные структурные элементы и представляла собой на

продольном разрезе расположенную несколькими слоями плотную

соединительную ткань.

Только в наружной оболочке сохранялись еще следы гладких мышечных

волокон, все остальные структурные элементы стенки матки исчезли.

Карункулы отсутствовали, поверхностный эпителий был совершенно разрушен.

На внутренней поверхности стенки матки имелись отложения фибринозных

масс. Причиной указанных патологических изменений при воспалении матки у

овец являлась инфекция, которая была выделена из экссудата: стрептококки,

кишечная палочка, стафилококки, сальмонеллы.

22

По мнению А.И. Лопырина и Н.В. Логинова (1956) задержание последа и

гнойные воспаления слизистой оболочки матки у овец являются в большинстве

случаев осложнением после абортов инфекционной этиологии, в частности,

бруцеллезного и паратифозного характера.

В.В. Михайленко и др. (1999), изучая клинико-морфологические

особенности ассоциированного течения хламидиоза и микоплазмоза у овец,

регистрировал массовые аборты у животных, которые осложнялись

послеродовыми эндометритами.

К.С. Шманов и др. (2002) указывают на то, что одной из основных причин

бесплодия овец в хозяйствах Казахстана являются массовые аборты животных,

послеродовые осложнения в виде воспалений матки, эмбриональная

смертность, возникающие по причине смешанных инфекций:

кампилобактериоза, хламидиоза и сальмонеллеза овец.

В.А. Карпов (1984) отмечает, что послеродовой эндометрит возникает в

виде катарального, вскоре переходит в гнойно-катаральную и гнойную форму.

В.Г. Шиманов (1987) установил, что из 100 овец, переболевших

эндометритом, роды произошли только у 10, причем у 5 из них плоды были

«мертворожденными». Все овцы, больные эндометритом и не подвергавшиеся

лечению, остались бесплодными.

2.4 Методы лечения овец, больных эндометритом

По Ч.А. Рзаеву (1976), В.А. Карпову (1984), послеродовой эндометрит

протекает в виде катарального, вскоре переходит в гнойно-катаральную и

гнойную форму. Ч.А. Рзаев (1976) отмечает, что при несвоевременном лечении

часть овец погибает, а некоторые остаются бесплодными вследствие перехода

эндометрита в хроническую форму.

В.Г. Шиманов (1957) установил, что из 100 овец, переболевших

эндометритом, роды произошли только у 10, причем у 5 из них плоды были

мертворожденными. Все овцы, больные эндометритом и не подвергавшиеся

лечению, остались бесплодными.

23

Первоочередным мероприятием при лечении овец, больных эндометритом,

большинство авторов (Ч.А. Рзаев, 1976; Н.Я. Алиев, 1976; Ш.М. Гузиев, 1976;

В.А. Карпов, 1984) считают изменение условий содержания животных и

рекомендуют отделить их от общего стада, обеспечить полноценным

кормлением, надлежащим уходом и содержанием. Для лечения эндометритов

овец Ч.А. Рзаев (1976), В.А. Карпов (1984) рекомендуют средства местной,

общей и комплексной терапии, при этом осуществляются следующие

принципы лечения: 1) стимуляция защитных сил организма; 2) повышение

сократительной способности матки; 3) подавление жизнедеятельности

микробов, находящихся в матке; 4) улучшение кровоснабжения половых

органов.

Для механического удаления экссудата и подавления жизнедеятельности

микробов в полости матки применяются промывание ее дезинфицирующими

растворами (Ч.А. Рзаев, 1957; И.Я. Чистяков, П.Е. Ким, 1974; В.А. Карпов,

1984), но как отмечает Кудряшов М.В. (1948), такая терапия в большинстве

случаев малоэффективна, и патологические процессы из острых переходят в

хронические. Как указывает Ф.Т. Непасенко (1957), промывание дезрастворами

не дает лечебного эффекта и усиливает атонию матки, понижая резистентность

и барьерную функцию ее эпителия. Он рекомендует вводить в полость матки

овцам 200-300 мл кислого молока и одновременно инъецировать питуитрин или

синэстрол. При таком лечении клиническое выздоровление наступало через 8-

12 дней.

Очень часто в практических условиях лечение заболеваний полового

аппарата у овец обычно ограничивается глубоким спринцеванием влагалища

различными дезинфицирующими и солеными растворами. Такая терапия в

большинстве случаев малоэффективна и патологические процессы из острых

переходят в хронические (М.Ф.Кудряшов, 1970).

Г.А.Немчинов (1956) лечил животных карбахолином и прозерином и

получил высокий терапевтический эффект. Больной овце делали по одной

24

инъекции в день с промежутком в 24 часа, всего 3 инъекции. При неполном

выздоровлении курс лечения повторяли через 2-3 дня.

Ф.Т.Панасенко (1956) считает, что лечение послеродовых эндометритов у

овец антисептическим средствами, применяемыми в виде спринцевания матки

нецелесообразно. Антисептические средства вследствие анатомических

особенностей половых органов овец можно ввести в полость матки только в

первые часы после родов. Кроме того, они угнетают функцию фагоцитов. Для

предупреждения эндометритов у овец он рекомендует вводить в полость матки

или влагалища 200-300 мл кислого молока (простокваши).

Для лечения животных, больных эндометритом, В.Г. Шиманов (1957)

применял синэстрол в дозе 0,2-0,4 мл. Он делал три инъекции в комбинации со

спринцеванием матки дезинфицирующими растворами (перманганат калия,

пиоктанина, риванола, метиленовой синьки). По его данным, синэстрол в

сочетании с местной терапией обеспечивает выздоровление 83,4 % животных.

Также он указывает на удачное применение пенициллина при гнойных и

гнойно-геморрагических эндометритах. Препарат вводили внутримышечно 3-4

раза в сутки в дозе 75-100 тыс. ЕД в течение 3-8 дней.

В.К. Ивахненко (1965) на шести овцах, больных эндометритом, применял

карбахолин и прозерин с дополнительным внутримышечным введением 2 раза

в сутки 250 тыс. ЕД пенициллина. Выздоровели 4 овцы с катаральным

эндометритом.

В.Н. Егунов (1965) при лечении эндометритов у овец применял глюкозу,

хлористый калий, глюконат кальция, питуитрин «Р». Наряду с применением

средств, усиливающих сокращение матки, массажировал матку через брюшную

полость. Для лечения овцы, больной гнойным эндометритом, в среднем

затрачивали 12 дней, а с массажем - 9.

З.А. Шахмарданов (1967) считает, что эффективный результат при

различных формах эндометритов у овец дает подкожное введение 1%-го

масляного раствора синэстрола (по 0,4 мл 3 дня), курс пенициллинотерапии и

двукратная новокаиновая блокада по В.В. Мосину с интервалом в 5 дней.

25

В.Е. Старков (1974) отмечает, что хорошие результаты дает применение

биохинола. В результате внутримышечного введения его в течение трех дней в

дозе 0,3 мл в день на 10 кг веса животного, больные катаральными формами

эндометрита выздоравливали через 9-12 дней, а при гнойно-катаральном

эндометрите – через 10-15 дней.

И.Я. Чистяков (1973) применял для лечения эндометритов у овец

сульфаниламиды. Наилучший эффект получали при даче белого стрептоцида,

норсульфазола 2 раза в день в течение трех недель. Сульфаниламидные

препараты задавали внутрь, растворяя их в воде, или в виде суспензии. Дозы

норсульфазола 0,02-0,05 на 1 кг веса животного.

А.Т. Таракулов (1976) одну группу больных эндометритом овец лечил

путем спринцевания матки раствором марганцовокислого калия, подкожно

применял синэстрол и внутримышечно пенициллин. Животным второй группы

через каждые 48 часов интрааортально вводили 1% раствор новокаина и в

третьей группе вводили интрааортально 1% раствор новокаина и

внутримышечно бициллин-3. Выздоровление наступало у овец первой группы

на 10-12 день, второй группы - на 12-13 день и третьей группы на 10-12 день.

Ч.А. Рзаев (1976) рекомендует при лечении эндометритов у овец

применять пенициллин, нафталанскую нефть. С успехом применяли

внутриматочно нафталанскую нефть в подогретом до 400 С в дозе 60-100 мл.

В.Р. Тарасов (1980) рекомендует при эндометритах у овец, наряду с

маточными средствами, применять для подавления микрофлоры трициллин

(3-5г вводят в матку). Можно назначать норсульфазол натрия в рыбьем жире

или вазелиновом масле (3г норсульфазола натрия смешивают со 100 мл

рыбьего жира или вазелинового масла). Хорошо действуют и таблетки экзутера

или палочки фуразолидона.

В.А. Карпов (1984) рекомендует в острой стадии эндометрита применять

надплевральную новокаиновую блокаду по В.В. Мосину (однократно).

Хорошие результаты дает также околопочечная новокаиновая блокада по

В.Г.Мартынову (одно- или двукратно с интервалом 4-5 дней) или

26

внутриаортальное введение 1% раствора новокаина в дозе 15 мл (две-четыре

инъекции с интервалом в 48 часов). Для лечения овец, больных эндометритом,

надплевральную новокаиновую блокаду по В.В. Мосину применяли

В.А.Берестов (1959), А.И. Чернышев (1964), П.А. Солодков (1964),А.М.Миняев

(1968). Клинические наблюдения показали, что надплевральная новокаиновая

блокада весьма эффективна при послеродовых острых и гнойно-катаральных

эндометритах. При этом методе лечения овцы выздоравливают на 5-6 день

(В.В. Мосин, 1975).

С.Б. Иванищенко ОАО ТД «Агрофарм» (2006) предлагает применять

палочки внутриматочные «Фурокс 1» для лечения и профилактики

воспалительных процессов матки у коров, овец и коз после оказания

родовспоможения, оперативного отделения последа, при послеродовых

эндометритах. Препарат вводят в полость матки:

-с лечебной целью овцам и козам по 1-2 палочки через каждые 24 часа до

клинического выздоровления (но не более 5 раз);

-с профилактической целью (после оказания родовспоможения или

оперативного отделения последа) овцам и козам по 0,5-1 палочке однократно.

Перед введением препарата проводят санитарную обработку наружных

половых органов и корня хвоста. При необходимости освобождают полость

матки от воспалительного экссудата. Палочки вводят в шейку матки рукой,

одетой в полиэтиленовую перчатку разового использования, или с помощью

корнцанга и проталкивают в полость матки.

М. Дорош (2007) рекомендует применять при эндометритах для

повышения тонуса матки и удаления экссудата питуитрин, окситоцин, 1% р-р

синэстрола внутримышечно. Также эффективно использовать антибиотики,

проводить массаж матки через брюшную стенку. В полость матки вводить

комбинации антибиотиков, сульфаниламидных препаратов, нитрофуранов в

форме суспензии и растворов, приготовленных на масляной и водной основе.

А.М. Голубцов (2007) рекомендует применять в воспроизводстве тканевой

препарат из плаценты коров.

27

2.5 Применение лекарственных препаратов для стимуляции

адаптационных возможностей организма животных

Известно, что пул адаптационных возможностей каждого вида

предопределен генетически. Он обеспечивает сбалансированное соблюдение

основных законов самосохранения и воспроизводства себе подобных.

Направленная селекция высокой продуктивности существенно деформировала

их, заметно снизив потенциал жизнеспособности. Это привело к тому, что у

высокопродуктивного животного возможности адаптации к изменяющимся

условиям и неблагоприятным воздействиям внешней среды, а также

соблюдение указанных законов оказались подмененными преимущественно

биосинтезом молока, мяса, яиц, шерсти.

Стало совершенно ясно, что успешное ведение высокопродуктивного

животноводства возможно только при соблюдении человеком по отношению к

продуктивным животным ряда условий. Они практически отрывают их от

природной среды обитания и приближают к биологической машине, задачей

которой является производство целевой продукции. Такими условиями

являются: 1) обеспечение полноценным пластически и энергетически

насыщенным питанием; 2) обеспечение комфортными условиями

существования; 3) защита от болезней; 4) обеспечение возможностей для

реализации функции самовоспроизводства; 5) обеспечение дозированной

информацией; 6) содержание животных заданный промежуток времени в

неестественной экологической среде; 7) искусственная регуляция численности

(В.С. Бузлама, 2003).

Однако оказалось, что даже при соблюдении этих основных условий

возникают нежелательные последствия, чаще всего в виде стрессовых

дезадаптаций. Как известно, у маточного поголовья их исходом являются

патологии органов размножения и нарушение функции воспроизводства. У

молодняка - болезни систем органов пищеварения и дыхания. Трудно найти

животных без признаков гепатодистрофии, язв желудка у свиней, нарушений

иммунологической резистентности . В итоге – потери продуктивного здоровья,

28

качества продукции, сроков использования маточного поголовья. И это

несмотря на ежегодно нарастающий вал использования фармакологических и

биопрепаратов для профилактики и лечения болезней животных (В.С.Бузлама,

2004; С.В. Шабунин, 2009).

Здесь уместно акцентировать внимание на следующем. В современной

гуманной и ветеринарной медицине выделяют два типа фармакологических

препаратов: 1 – лекарства от болезней и 2 – лекарства для здоровья. Лекарства

от болезней насчитывают тысячи, для здоровья – в пределах сотен. Хотя, если

быть справедливым, стоит подчеркнуть, что лекарства для здоровья (женьшень,

золотой корень и др.) родились, по крайней мере, не позднее лекарств от

болезней. Однако до последних десятилетий низко цивилизованное общество

вынужденно было, в основном, заниматься лечением и отдавать предпочтение

специфическим, например, химиотерапевтическим, противопаразитарным и

другим средствам. При этом оказалось, что разнообразие и масштабы

нозологически дифференцируемых патологий отнюдь не уменьшились, а порой

и возросли. Сама собой родилась, а точнее возродилась стратегическая

проблема о дальнейших путях развития ветеринарной фармакологии будущего.

На сцене все чаще стали появляться лекарства не от болезней, а для здоровья

животных ( А.М. Беркович, 2003, В.И.Беляев, 2004).

Лекарства для здоровья имеют синонимы: адаптогены, стресс-корректоры.

В современном понимании к ним относят лекарственные средства, которые

через узловые молекулярно-биохимические механизмы обеспечивают

сохранение продуктивного здоровья организма при изменяющихся условиях и

неблагоприятных воздействиях среды его обитания. Лекарства для здоровья

(адаптогены, стресс-корректоры) проявляют эффект повышения общей

резистентности организма или организации в нем состояния неспецифически

повышенной сопротивляемости только при раскрытии потенциальной

избыточности биологической системы в условиях функциональной нагрузки на

нее. Адаптогены повышают резистентность организма к неблагоприятным

воздействиям независимо от характера изменяющихся условий и

29

неблагоприятных воздействий внешней среды (факторы физической,

химической, биологической, информационной природы). Наиболее

характерной особенностью лекарств для здоровья является то, что они

повышают резистентность организма на фоне обязательного сохранения

здоровья и нормальной жизнедеятельности без последующего истощения

жизненных сил. Они должны быть практически нетоксичны и, что особенно

важно, не проявлять эффекта адаптации к ксенобиотику в фазе интоксикации.

И еще один важный момент: лекарства для здоровья, в противоположность

лекарствам от болезней, могут применяться неопределенно долгий срок,

независимо от состояния здоровья животного и без отрицательных последствий

для него (Дардымов, 1976).

Наиболее оптимально введение адаптогенных препаратов в технологию

получения, выращивания и использования животных. Сегодня не подлежит

сомнению, что ведение современного животноводства невозможно без

стрессовых ситуаций. Их много. Можно лишь выделить низкую

физиологичность: с одной стороны – самих высокопродуктивных животных, а с

другой – их среды обитания. Затем это процесс родов, смена кормления,

перегруппировки, перевозки, высокие антигенные нагрузки, информационный

дискомфорт и другие. Единственным способом уменьшения отрицательных

последствий влияния технологически обусловленных стрессогенных факторов

является поддержание продуктивного здоровья адаптогенами (Бузлама В.С.,

2004, Мещеряков Н.П., 2004).

2.6 Использование адаптогенных лекарственных средств на основе

гуминовых веществ

Издавна известно, что природные фенолы занимают важное место в

обеспечении здоровья млекопитающих животных и птиц. Чтобы подчеркнуть

это, достаточно указать витамин Е. С растительной пищей он попадает в

животный организм. Являясь одним из наиболее активных природных

биоантиоксидантов, а-токоферол в комплексной системе антиоксидантной

защиты организма принимает участие в гашении, нейтрализации чрезмерной

30

пероксидации липидов мембран клеток. Это способствует физиологичности

течения стресс-реакции и предотвращает переход ее на стадии тревоги в

патологический процесс (Барабой В.А., 1974; Евстигнеев Р.П. и др., 1998).

В практике ветеринарной медицины природные гуминовые вещества (в

основном торфяного происхождения) их различные модификаты (главным

образом натрия, калия, аммония) и композиционные препараты используются в

следующих основных направлениях: 1) в качестве эффективных

энтеросорбентов для выведения из организма токсинов микробного, грибного

происхождения, химических ядов, солей тяжелых металлов, радиотоксинов;

2) для стимуляции продуктивности животных, выступая в качестве

средств, способствующих повышению эффективности пищеварения; 3) как

иммуномодуляторы; 4) в качестве лечебных препаратов, обладающих

противоопухолевым, антимикробным, ранозаживляющим и другим действием.

Наконец, показано, что гуминовые вещества способны повышать

сопротивляемость организма к неблагоприятным воздействиям и обеспечивать,

облегчать приспособление к изменяющимся условиям внешней среды. Иными

словами, проявлять адаптогенное стресс-корректорное действие, то есть быть

лекарствами для здоровья. (Бузлама В.С., 2000).

В республике Беларусь с целью увеличения продуктивности и сохранности

кур-несушек успешно используют оксидат торфа. (Бузлама В.С., 2000).

В Германии фирмой Rudgers-Werke запатентовано и налажено

производство препарата гумин HS-1500. Это щелочная соль гуминовой кислоты

высокой чистоты. Препарат вводят в дозах от 0,1 до 2,0г на 1 кг корма;

высокоэффективен для улучшения продуктивности цыплят-бройлеров.

(Бузлама В.С. 2000).

В последние годы в России приобрел популярность препарат Гувитан. Это,

по сути, щелочной экстракт торфяной смеси, или гумат натрия. Кроме

гуминовых веществ он содержит в себе другие биологически активные

вещества, в частности, белки, аминокислоты, витамины, макро- и

микроэлементы. Гувитан предназначен для повышения резистентности и

31

продуктивности животных. Его спектр действия достаточно широк. Гувитан

способствует профилактике желудочно-кишечных заболеваний молодняка и

кормовых отравлений, проявляет стресс-корректорное действие, обеспечивает

повышение яйценоскости, ускоряет откорм бройлеров. (Бузлама В.С. 2000).

Известен препарат гумусовой природы – торфобиолин. Он проявил себя в

качестве средства предупреждения язвообразования на слизистой оболочке

желудка при стрессе. Понятны перспективы использования и торфобиолина, и

подобных гуминовых веществ для профилактики стрессорных язвобразований

в желудке, расклеве, погрызании и самопогрызании у свиней, кур, пушных

зверей (Бузлама В.С. 2000).

Лисун Н.К. (2007) успешно применяла кормовую добавку гумивал для

повышения продуктивности и резистентности цыплят-бройлеров в

промышленном птицеводстве.

Однако, следует подчеркнуть, что все описанные и ряд других препаратов

имеют торфяное происхождения. Они, как правило, низко концентрированы.

При их промышленном применении нарушается природный баланс (Бузлама

В.С. 2004).

2.7 Адаптогенное стресс-корректорное действие гуминового препарата

Лигфола

Препарат Лигфол (олипифат) изначально предложен и в настоящее время

проходит клинические испытания в гуманной и ветеринарной медицине в

качестве противоопухолевого средства. Однако оказалось, что его

противоопухолевая активность не обусловлена цитотоксическим действием.

Олипифат индуцирует в организме некий механизм, ответственный за

естественную гибель опухолевых клеток. Дальнейшие исследования выявили

его противовирусную, но не вирулицидную активность. Более того, оказалось,

что этот, можно сказать, необычный препарат стимулировал деление клеток и

защищал их от повреждения (Бузлама В.С. 2003, Беркович А.М. 2003).

Так родилась проблема изучения адаптогенного стресс-корректорного

действия нового препарата. Она истекала из признанного постулата о том, что

32

именно стрессовые дезадаптации (Ф.З.Меерсон) являются неспецифическими

предшественниками всех нозологически дифференцируемых патологий, не

исключая опухоли. Решение главных вопросов проблемы виделось в оценке

адаптогенного стресс-корректорного действия Лигфола в эксперименте

(Бузлама В.С. 2003).

Методологической основой изучения адаптогенного стресс-корректорного

действия Лигфола явились следующие положения: 1) проявление

адаптогенного действия изучаемого препарата происходит только при

раскрытии потенциальной избыточности биологической системы; 2)

потенциальная избыточность организма проявляется при функциональной

нагрузке на него; 3) валеоположительный эффект адаптогенов проявляется

нормальной или повышенной активной жизнедеятельностью без последующего

истощения жизненных сил (Бузлама В.С. 2004).

Многолетние испытания адаптогена стресс-корректора Лигфола показали

его эффективность на разных видах животных.

В работе Берковича А.М., Бузламы В.С., Бузламы С.В. Лобашовой О.В.

(2003) представлены данные и обсуждаются результаты исследований по

применению адаптогена и стресс-корректора - препарата Лигфол (гуминовые

вещества, полученные при гидролизе природного (древесного) лигнина, натрия

пирофосфат десятиводный, натрия хлорид и апирогенная вода) на различных

видах сельскохозяйственных животных, а также у собак. Показана его

эффективность при целом ряде заболеваний (Лободин К.А., 2006, 2007).

В племенном центре хорьков проводили испытание Лигфола для

повышения резистентности самок норок перед гоном. Получили следующие

результаты. Лигфол высоко эффективен для повышения резистентной,

репродуктивной функции и улучшения качества потомства. Препарат в два раза

уменьшает падеж самок. Самки, которым ввели Лигфол, полностью и

полноценно осеменились и ощенились. Тогда как в контроле, а это

соответствовало всему стаду на предприятии, уровень ощенения был на 16,4%

ниже.

33

Улучшение состояния здоровья и осеменяемости самок сказалось

положительно на качестве потомства. В опытной группе получено на 17,5%

больше щенков. В то же время мертворожденных оказалось на 14,5% меньше.

В конечном итоге, выход щенят на момент отъема оказался в опытной группе

на 13,0% больше, чем в контрольной (www.f33.ru/stats/ligfol.htm).

Применение Лигфола поросятам в период отъема на свинокомплексе

«Владимирский» Владимировской области способствовало снижению отхода

поросят на 2,3% и повышению их продуктивности на 10,5%. Экономическая

эффективность составила 9,6 руб. на рубль затрат (К.С. Сошитов, 2006).

Положительные результаты были получены в результате изучения влияния

препарата Лигфол на организм коров и эффективность их оплодотворения в

условиях хозяйств Ленинградской области (Андреева Г.М., Племяшов К.В.,

2006). Исследователи показали, что препарат повышает резистентность

новорожденных телят, укрепляет иммунную систему, снижает процент

заболеваемости молодняка.

Изучением влияния Лигфола при разных сроках его введения до отъема на

гуморальные, неспецифические факторы поросят-отъемышей в условиях КСХ

ЗАО «Краснодонское» Иловлинского района Волгоградской области

занимались А.А. Ряднов, Е.В. Петруха, В.В. Саломатин, (2006). Было

установлено, что введение Лигфола поросятам-отъемышам за 2 дня и особенно

за 3 дня до отъема положительно сказалось на сохранности, на показателях

неспецифической резистентности и показателях среднесуточного прироста

живой массы.

Испытанием препарата Лигфол в практике лечения лошадей занималась

М.В. Андреева (2006). Успешно применяла его в качестве антиоксиданта,

стресс-корректора, иммуностимулятора при проведении комплексной терапии

различных заболеваний лошадей (при бронхо-легочных заболеваниях, при

оперативных вмешательствах и др.).

Клейменов Д.И. (2005) также получил хорошие результаты от применения

инъекционного препарата Лигфол и кормовой добавки Гумивал в ветеринарной

34

практике лечения крупного рогатого скота для профилактики послеродовых

заболеваний у коров и повышения их продуктивности.

2.8 Заключение

Проблема борьбы с бесплодием овец и повышения их многоплодия весьма

актуальна и требует дальнейшего разрешения. Для этого необходимо, прежде

всего, разобраться в её причинах.

Анализ специальной литературы, посвященной изучению этиологических

факторов симптоматического бесплодия овец, в частности, специфических и

неспецифических, позволил установить недостаточность данных по этому

вопросу. Проблема эта остается актуальной, так как без установления основных

причин нарушения воспроизводительной функции овцематок невозможно

разрабатывать и применять научно-обоснованные схемы лечебно-

профилактических мероприятий, направленные на борьбу с бесплодием,

наносящим значительный ущерб важнейшей отрасли животноводства –

овцеводству.

Ликвидация бесплодия овец до настоящего времени является важной

задачей зооветеринарной науки и практики овцеводства; улучшение

воспроизводства и ликвидация бесплодия животных невозможны без

устранения их причин.

В литературе практически нет сведений о роли возбудителей

инфекционных заболеваний в нарушении воспроизводительной функции

овцематок, о значении комплексной системы диагностики на основании

проведения акушерско-гинекологической диспансеризации животных.

В сельскохозяйственных предприятиях РФ не осуществляется

систематический контроль за состоянием воспроизводства овец, не

разработаны схемы, не проводятся общепрофилактические и специальные

ветеринарные мероприятия, направленные на борьбу с симптоматическим

бесплодием овец инфекционной и неинфекционной этиологии.

Анализ специальной литературы свидетельствует о незначительном

арсенале средств и методов профилактики патологии беременности, родов и

35

послеродового периода у овцематок (абортов, задержания последа,

эндометритов, субинволюции матки).

Имеющиеся в специальной литературе данные в отношении бесплодия

овец нельзя считать достаточными. Особенно мало данных об акушерско-

гинекологических заболеваниях овец и их лечении, профилактике. И совсем нет

сведений о применении гуминовых препаратов (Лигфол, Гумивал) для

профилактики симптоматического бесплодия овцематок.

Исходя из вышеизложенного мы поставили цель – более детально изучить

некоторые вопросы этиологии и профилактики бесплодия овец, возникающего

в результате развития патологических процессов в половых органах.

36

2. Собственные исследования

1.2 Материал и методика работы

Исследования проводятся с 2005 года на кафедре клинической

диагностики и болезней молодняка МГАВМиБ, в ветеринарной лаборатории

Одинцовского, Воскресенского районов Московской области, ТНВ ООО

«Группа август и К» Шаховского района, ООО Орехово-Зуевского района,

Ставропольского НИИ животноводства и кормопроизводства, ЦНМВЛ,

совместно с ООО Лигфарм.

В ходе проведения научно-исследовательской работы проводится анализ

отчетности ветотдела МСХ и Московской области по заболеваемости овец,

анализ данных журналов бактериологических, серологических,

вирусологических, токсикологических отделов районных ветлабораторий МО.

В СХП Московской области и ЮФО устанавливались основные причины

нарушения воспроизводительной функции овец, приводящего к бесплодию

маточного поголовья.

Были разработаны и внедрены схемы проведения общепрофилактических

и специальных ветеринарных мероприятий с использованием вакцинации и

проведением дезинфекции с применением средства Дезконтен (действующее

вещество – тетраметилендиэтилентетрамин).

Проводился анализ данных годовых отчетов, журналов

бактериологического, серологического, гистологического, вирусологического,

токсикологического отделов межобластной ветлаборатории на предмет

проведения комплексной диагностики инфекционных болезней овец с

синдромом поражения репродуктивных органов в хозяйствах различных

регионов. Анализировались данные о количестве исследуемого материала и

положительных результатах по ряду заболеваний овец, регистрировавшихся в

отдельных хозяйствах края в течение нескольких лет. В бактериологическом,

серологическом отделах районных ветеринарных лабораторий проводили

37

исследование патологического материала, абортплодов, сыворотки крови

животных, типизацию культур.

В период ягнения (стойловое содержание) животных проводилось

изучение норм санитарно-гигиенического состояния овцеводческих

помещений. Исследовали пробы питьевой воды, находящейся в поилках у

животных (выборочно по 6 проб в одном помещении ежемесячно в течение

стойлового периода). Определяли органолептические, физические свойства,

химический состав, проводили бактериологический анализ. Определяли

санитарно-гигиеническое состояние кормов, проводили их химико-

токсикологический анализ, определяли питательность. Исследования

проводились в химико-токсикологических отделах районных ветеринарных

лабораторий. Отправляли пробы грубых, сочных, концентрированных кормов.

Определяли содержание каротина, сырого протеина, фосфора, кальция, меди,

цинка, масляной кислоты.

Для изучения результатов воздействия факторов внешней среды на

организм овцематок проводили гематологические исследования, определение

биохимических показателей крови, факторов резистентности организма

животных.

Были созданы опытная и контрольная группы овцематок по 20 голов.

Животные опытной группы – содержащиеся в естественных условиях при

нарушении санитарно-гигиенических норм, контрольной – в условиях их

оптимизации.

Кровь брали у овцематок после родов (на 2-3 день), маточную слизь во

время родов и в послеродовой период.

При определении гематологических показателей изучали: содержание

гемоглобина и количество эритроцитов фотометрическим методом по

оптической плотности с помощью ФЭК; лейкоцитов в камере Горяева;

лейкоцитарную формулу по общепринятой методике.

Из биохимических тестов определяли: общий белок сыворотки крови

рефрактометрическим методом; содержание каротина в сыворотке крови – с

38

помощью фотоэлектроколориметра; общий кальций – комплексометрическим

методом по Д.Я.Луцкому (1975); неорганический фосфор по общепринятой

методике с помощью молибдено-кислого аммония. Резервную щелочность

сыворотки крови – по И.П.Кондрахину (1985). Определение фагоцитарной

функции лейкоцитов проводили путем постановки опсоно-фагоцитарной

реакции. К свежевзятой крови – 0,5 мл добавляли 0,25 мл суточной микробной

взвеси (Streptococcus – штамм 209-Г) и 2% р-р лимоннокислого натрия

(соотношение 1:1:1), пробирки выдерживали в термостате при t = 37-380 в

течение 30 мин. Мазки окрашивали методом Романовского-Гимза. При

микроскопии мазка подсчитывают число фагоцитировавших нейтрофилов с

оценкой фагоцитарной активности (ФА) – в %, фагоцитарного индекса и

фагоцитарного числа. Определение бактерицидной активности сыворотки

крови проводили методом, основанном на изменении оптической плотности

МПБ при росте в нем кишечной палочки с добавлением и без добавления

испытуемой сыворотки (прибор – ФЭК). Определение лизоцимной активности

сыворотки крови проводили методом, основанным на изменении оптической

плотности среды в результате способности лизоцима крови лизировать тест-

культуру. Micrococcus lijodecticus (штамм 19) в 0,5% р-ре поваренной соли.

Для изучения воздействия факторов внешней среды на организм

овцематок в опытных и контрольных группах устанавливали фагоцитарную

активность нейтрофилов и количество глюкозоаминогликанов в маточной

слизи.

Метод определения фагоцитарной активности нейтрофилов маточной

слизи основан на визуальном учете числа бактерий, захваченных нейтрофилами

в процессе естественного фагоцитоза в полости матки животного. Мазки

маточной слизи высушивали на воздухе, фиксировали, окрашивали по

Романовскому-Гимза и микроскопировали. При этом оценивали

захватывающую способность нейтрофилов по двум показателям:

фагоцитарному индексу (количество бактерий, захваченных одним

39

нейтрофилом) и проценту фагоцитоза (отношение количества нейтрофилов,

участвующих в фагоцитозе, к общему числу подсчитанных).

Метод определения мукополисахаридов в маточной слизи заключается в

том, что при наличии мукополисахаридов в исследуемой пробе добавление к

ней 1 мл 1%-го раствора уксусной кислоты вызывает образование сгустка,

который не разрушается при встряхивании. Учет реакции проводили через 6,

12, 24, 48, 72 часа.

Проводили цитохимические исследования мазков маточной слизи

(влагалищных мазков) овцематок с нормально протекающим половым циклом

и животных, не приходящих в охоту. Определяли показатели пероксидазной

активности в эпителиальных клетках по следующей методике.

Пероксидазу выявляли с диаминобензидином (ДАБ). Этот метод,

предложенный Novicoff, Goldfisher (1969) в модификации Lojda (1982), основан

на способности фермента окислять ароматические амины до окрашенных

соединений (Луппа Х., 1980). Он позволяет выявлять пероксидазу в

пероксисомах. Конечный продукт –ДАБ-коричневый –является аморфным,

нерастворимым в липидах осмиофильным соединением. Инкубацию проводили

в среде, содержащей 3,3 – ДАБ и 0,2% р-р перекисли водорода при рН – 7,8.

Для контроля специфичности реакции инкубацию проводили в среде без ДАБ;

в рабочей среде, но после инактивации фермента тепловым шоком. Об

активности пероксидазы судили по количеству включений в 100 эпителиальных

клетках каждого мазка.

В опытном хозяйстве проводилась акушерско-гинекологическая

диспансеризация овцематок. За указанный период были обследованы 300

овцематок в период их осеменения и после родов планово, в период суягности

и родов при необходимости. Животных подвергали клиническому, акушерско-

гинекологическому обследованию, проводили лабораторные исследования,

включающие патоморфологическую, бактериологическую, серологическую

диагностику, определяли показатели естественной резистентности организма

овец, проводили цитохимические исследования влагалищных мазков. При этом

40

учитывалась и анализировалась заболеваемость овцематок инфекционными

болезнями с синдромом поражения репродуктивных органов, их плодовитость

и процент выхода молодняка.

Для сравнительной оценки методов лечения овцематок, больных

послеродовыми эндометритами при смешанных инфекциях, нами были

сформированы 3 группы животных по 30 голов в каждой.

Для лечения овцематок с различными формами послеродовых

эндометритов нами были разработаны и испытаны следующие схемы.

Схема 1.

1. Байтрил-5% р-р для инъекций. Вводить подкожно, 1 раз в сутки в течение 3-

5 дней. Разовая доза-1мл / 20 кг живой массы.

2. Катозал-10% р-р для инъекций. Вводить внутримышечно, однократно в дозе

2,5-8 мл на животное. В случае необходимости повторить на следующий

день.

3. Йодинол-1% р-р. Вводить внутриматочно, один раз в день в течение 3-5

суток. Разовая доза 50 мл.

4. Синэстрол-1% р-р для инъекций. Вводить подкожно, 1 раз в день в течение 3

–5 суток. Разовая доза 0,5 мл.

Схема 2.

1. Тетразол-20% р-р для инъекций. Вводить внутримышечно, однократно, 1 раз

в 3 дня. Разовая доза 1 мл / 10 кг живой массы.

2. Пресакральная новокаиновая блокада – 1% р-р новокаина, 30мл. Вводить 1

раз в 3 дня.

3. Адаптоген стресс-корректор Лигфол. Вводить внутримышечно, 1 раз в 3

дня. Разовая доза 1 мл на животное.

4. АСД (фракция 2 или 3). Вводить внутриматочно, 1 раз в день в течение 5-7

суток. Разовая доза 20 мл АСД + 30 мл растительного масла (смешать перед

применением).

Схема 3. Эта схема лечения овцематок, больных гнойно-катаральным

эндометритом применялась в хозяйстве (контрольная группа). Животным

41

вводили внутримышечно бициллин-3 (600 тыс. ЕД) 1 раз в 3 дня и ежедневно

внутриматочно фуразолидоновые палочки.

У всех животных каждой группы эксперимента до лечения, через 3, 6 и 9

дней после проведенного лечения исследовали кровь. Определяли количество

эритроцитов, лейкоцитов, общий белок, количество гемоглобина, выводили

лейкоцитарную формулу.

Определение экономической эффективности лечебных мероприятий

проводили по методике, утвержденной Главным управлением ветеринарии

МСХ СССР 4 мая 1982 года.

Экономический ущерб от вынужденного убоя животных (У1)

рассчитывали как разницу между стоимостью животных в закупочных ценах и

денежной выручкой от реализации продуктов убоя. Расчет проводили по

формуле:

У1 = М Х Ж Х Ц – Сф,

где М – количество вынуждено убитых животных, голов;

Ж – средняя живая масса животных каждой группы, кг;

Ц – закупочная цена единицы продукции, руб.;

Сф – денежная выручка от реализации продуктов убоя (овчин), руб.;

Ущерб, предотвращенный в результате лечения больных животных (Пу2)

определяли как разницу между возможным и фактическим ущербом,

причиняемым болезнью в результате переболевания овцематок

Пу2 = Мл х Кл х Ж х Ц –У,

где М л – количество животных, подвергнутых лечению;

К л – коэффициент летальности; Кл = К павших: К заболевших;

Ж - живая масса (кг);

У - ущерб.

Затраты на проведение ветеринарных мероприятий складывались из

совокупности всех расходов, связанных с их осуществлением.

Экономическую эффективность ветеринарных мероприятий определяли по

формуле:

42

Эв = Пу – Зв,

где Эв – ветеринарные затраты;

Пу – предотвращенный экономический ущерб.

Экономическая эффективность на рубль затрат:

Эр = Эв : Зв,

где Эв – экономическая эффективность ветеринарных мероприятий;

Зв – затраты ветеринарные.

При расчете экономического ущерба от вынужденного убоя животных

использовали данные по реализации сельскохозяйственной продукции

сельскохозяйственных предприятий.

Изучали проявление воздействия возбудителей инфекции и факторов

внешней среды на воспроизводительную функцию овцематок. В период

осеменения животных устанавливали некоторые проявления нарушения

воспроизводительной функции у переболевших маток (опытная группа 40

голов). Контролем служили здоровые овцематки (40 голов). Учитывалась

интенсивность прихода животных в охоту в течение двух половых циклов,

количество повторно осемененных овец и не проявивших стадии возбуждения

полового цикла. В дальнейшем определяли процент бесплодия маточного

поголовья, количество патологических родов и послеродовых осложнений.

Проводилось испытание действия адаптогена стресс-корректора Лигфол

для профилактики акушерско-гинекологической патологии родов и

послеродового периода овцематок, а также для улучшения продуктивных

качеств ягнят. Из овцематок ставропольской породы возраста 1,5 лет были

сформированы опытная и контрольная группы по 15 голов в каждой.

Проводили клинические, акушерско-гинекологические обследования

животных.

За 10 дней до ягнения овцам инъецировали Лигфол в опытной и

физраствор в контрольной группе. Через 5 дней после обработки проводили

контроль естественной резистентности организма овцематок, определяли

неспецифические иммунные факторы местной защиты, биохимический,

43

физико-химический, морфологический анализ крови. Определяли содержание

эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина, общего белка, АлАТ, АсАТ, глюкозы,

резервной щелочности, железа. Проводили контроль показателей естественной

резистентности организма. Определяли бактерицидную, лизоцимную

активность сыворотки крови, фагоцитарную функцию. Изучали

неспецифические иммунные факторы местной защиты – фагоцитарный индекс

и % фагоцитоза в мазках маточной слизи.

В период осеменения овцематок в опытном хозяйстве проводилась

иммунизация животных с использованием вакцины против листериоза овец.

Опыт проводили на 30 животных в ОПХ «Темнолесское», Шпаковского

района Ставропольского края. Перед постановкой опыта провели выборочное

клинико-гематологическое исследование. Установленные показатели

соответствовали физиологической норме для данного вид животных: средняя

температура тела 39,1 ± 0,1 0С, пульс в среднем был равен 80,5 ± 0,4 ударов в

минуту, дыхание 20,4 ± 0,5. Термометрию и клиническое обследование овец

проводили также и после вакцинации.

Для проведения опыта были сформированы 2 опытные и 1 контрольная

группы по 10 животных в каждой. Животных иммунизировали перед

осеменением. Перед вакцинацией сыворотки крови всех овец исследовали на

листериоз в РА (для определения фона антител).

Первая группа – вводили внутримышечно 1,5 мл вакцины сухой живой

ассоциированной против листериоза овец из штамма «АУФ» в область

внутренней поверхности бедра. Через 10 дней животных ревакцинировали

листериозной вакциной в дозе 3,0 мл.

Вторая группа – вакцинировали аналогично и одновременно делали

инъекцию Лигфола в дозе 1,0 мл на животное.

Третья группа – вводили физраствор внутримышечно в дозе 1 мл на

животное.

С целью изучения динамики накопления антител при различных методах

иммунизации в процессе опытов кровь для постановки РА с листериозными

44

антигенами у овец брали также через 14, 30, 90 дней после иммунизации.

Определяли также количество эритроцитов, гемоглобина, общего белка.

О реактогенности вакцины судили по общему состоянию животного,

аппетиту, температуре тела, воспалительной реакции в месте введения

биопрепаратов.

До и после вакцинации и ревакцинации проводили термометрию

животных, клиническое обследование. Кровь для постановки РА с

сальмонеллезным и листериозным антигенами брали до иммунизации, через 2

недели, 3 месяца, 6 месяцев после неё.

Результаты экспериментов подвергали вариационно-статистической

обработке по методике Г.Ф. Лакина (1990), а также использовали статистический

модуль Microsoft Excel и программу Primer of Biostatistics (Version 4.03).

3.2 Этиология бесплодия овцематок, основные нарушения

воспроизводительной функции

В соответствие с классификацией по А.П. Студенцову (1999) у животных

различают следующие основные формы бесплодия:

1. Врожденное

2. Старческое

3. Симптоматическое

4. Алиментарное

5. Климатическое

6. Эксплуатационное

Врожденное бесплодие у овцематок встречается редко. Выражается оно в

неспособности животного к воспроизводству. Происходит это в результате

различных нарушений внутриутробного развития плода. Причиной

ненормального развития иногда является биологическая неполноценность

яйцеклетки, спермиев или зачатия в начальном периоде. Встречается у овец

гермафродитизм и фримартинизм. Встречаются овцы с различными другими

нарушениями в развитии полового аппарата: узкое влагалище, матка без одного

или двух рогов, различные аномалии шейки матки.

45

Старческое бесплодие. По данным многих авторов с 6-8 летнего возраста

в организме овец, особенно в половой системе, начинаются постоянные

возрастные старческие изменения. В частности, постепенно атрофируется

матка, яичники, уменьшается их вес, объем, ослабевают их функции,

нарушается половая цикличность, прекращается течка, половая охота и

овуляция.

Алиментарное бесплодие – бесплодие овцематок, возникающее на почве

нарушения плодовитости вследствие количественной и качественной

недостаточности кормов.

Климатическое бесплодие – нарушение плодовитости животных

вследствие угнетения половой функции под воздействием метеорологических

факторов. Резкие перемены климата, избыток тепла и света, сильный холод

могут нарушить половую функцию овец и привести к бесплодию. На организм

овцематки влияет макро- и микроклимат. При климатическом бесплодии

угнетается функция яичников, половой цикл не полноценный, он ослабевает,

иногда выпадают отдельные фазы его.

Симптоматическое бесплодие - бесплодие, возникающее на почве

заболевания половых органов. Сущность его объясняется следующими

факторами: 1) гибелью спермиев в женской половой системе вследствие их

попадания в неблагоприятную среду; 2) гибелью яйцевой клетки или зиготы;

3) невозможностью проникновения зиготы в полость матки; 4) нарушением

полового цикла животного.

Одной из причин симптоматического бесплодия у овец является патология

беременности, родов и послеродового периода. Нарушение технологии

содержания, кормления, дисбаланс параметров микроклимата

животноводческих помещений, перегруппировки, зооветеринарные

мероприятия являются серьезными стресс факторами для суягных овец.

Неудовлетворительное ветеринарно-санитарное состояние ферм, нарушение

гигиенических норм эксплуатации, кормления и содержания оказывает

негативное влияние на животных. Ухудшается физиологическое состояние,

46

снижается общая резистентность организма овцематок, что способствует их

заболеванию.

Фото 1. Содержание овцематок с ягнятами в овцеводческом помещении

При изучении этиологических факторов симптоматического бесплодия

овцематок в «ИП Манохин», Раменского района, Московской области

проводили клинические обследования животных, гематологические

исследования, определение биохимических показателей крови, факторов

резистентности организма животных.

В результате проведения исследования маточного поголовья овец нами

были выявлены две формы бесплодия – симптоматическое и алиментарное.

Всего было обследовано 300 овцематок, из которых, как оказалось, 18% были

признаны бесплодными (60 животных). Из них с симптоматическим

бесплодием выявлено 35 овец и с алиментарным бесплодием 25 овец, что

составило, соответственно, 12% и 8% от общего поголовья обследованных

овцематок.

47

Проведенный нами анализ условий содержания и кормления овцематок,

показал нарушения санитарно-гигиенических норм, неполноценность рационов

кормления, что оказывало отрицательное влияние на показатели естественной

резистентности их организма. Также это сказывалось на полноценной половой

цикличности самок, их оплодотворяемости и плодовитости.

Фото 2. Послеродовое отделение в овцеводческом помещении

При исследовании проб питьевой воды из поилок в овцеводческих

помещениях было установлено несоответствие её качества нормам санитарно-

гигиенической оценки по следующим показателям:

цвет – желтоватая окраска;

прозрачность – 15-16 см (норма 20 см и выше);

окисляемость – 12-14 мг/л (норма 4-6 мг/л);

нитраты – 16 мг/л (норма 10 мг/л).

48

Бактериологический анализ показал увеличение общего количества

бактерий в 1 мл воды в 3,5 раза выше нормы, была выявлена патогенная

микрофлора: Salmonella typhimurium, Salmonella abortus ovis, E. coli,

Campylobacter fetus intestinalis, Echerichia coli.

Фото 3. Система поения овец

Также в результате химико-токсикологических и микологических

исследований 30 проб грубых, 20 проб сочных кормов, 15 проб

концентрированного корма установлено: в силосе снижение содержания

каротина в 2,5 раза, сырого протеина в 2 раза по сравнению с нормой, в 2 раза

повышено содержание масляной кислоты. В пробах сена установлен дефицит

каротина – следы (при норме 10-11 мг/кг), фосфора в 3 раза, меди – в 4 раза,

цинка в 2 раза по сравнению с нормой.

Анализ 15 проб сенажа показал снижение содержания каротина в 32%

проб, кальция – в 51% проб, фосфора в 43% проб, повышение содержания

масляной кислоты в 16% проб от исследованных. Микологический анализ

49

комбикорма показал рост грибов: Aspergilius flavus, А.fumigatus, Penicillum,

Mucor raremosus, единичные случаи Fusarium.

Неудовлетворительное качество корма, используемого для овец,

отрицательно воздействует на их организм, о чем свидетельствуют результаты

исследования сыворотки крови маток.

В результате исследования 30 проб сыворотки крови от овцематок,

принадлежащих «ИП Манохин», Раменского района Московской области

установлено: гипокальцемия - в 60% проб, гипофосфатемия - в 60% проб,

гиперкетонемия - в 50% проб, гипопротеинемия - в 20% проб, снижение

резервной щелочности - в 60% проб, гипогликемия в 50% проб.

При определении: фагоцитарной активности нейтрофилов, бактерицидной,

лизоцимной активности сыворотки крови, фагоцитарной активности

нейтрофилов и количества глюкозоаминогликанов в маточной слизи были

получены следующие результаты (Таблица 1).

Таблица 1

Показатели неспецифической резистентности организма овцематок

№ группы Лизоцимная

активность (%)

Бактерицидная

активность (%)

Фагоцитарная

активность (%)

1 2 3 4

Опытная (20

овцематок) 50,6 ± 0,3 70,5 ± 1,04 40,4 ± 0,29

Контрольная

(норма) 66,4 ± 0,4 78,2 ± 1,2 55,02 ± 0,45

p<0,1

Анализ полученных данных показал значительное снижение показателей

неспецифической резистентности у животных, находящихся в условиях

нарушения норм содержания и кормления (опытная группа). У этих овцематок

были снижены показатели лизоцимной активности сыворотки крови в среднем

на 15,8% по сравнению с контрольной группой, бактерицидной активности на

7,7%, фагоцитарной активности на 14,6%.

50

Снижение факторов местной защиты организма овцематок было

установлено и при определении фагоцитарной активности нейтрофилов

маточной слизи (Таблица 2). У животных опытной группы в среднем в 2 раза

был снижен фагоцитарный индекс и процент фагоцитоза по сравнению с

овцематками контрольной группы.

Таблица 2

Фагоцитарная активность и процент фагоцитоза нейтрофилов маточной

слизи овцематок

№ группы Фагоцитарный индекс Процент фагоцитоза

1 2 3

Опытная (20 овец) 2,0 ± 0,2 30,0 ± 1,02

Контрольная (20 овец) 4,4 ± 0,3 60,0 ± 2,2

В результате исследования 20 проб цервикальной слизи овцематок

опытной группы в 10 пробах (50%) мукополисахариды были разрушены

(отрицательный результат), в 10 пробах (50%) образовался сгусток, который не

разрушался при встряхивании (положительные результаты). В контрольной

группе (n = 20) мукополисахариды были разрушены в 3 пробах – 15%

(отрицательный результат), образование сгустка (наличие мукополисахаридов)

отмечалось в 17 пробах – 85% (положительные результаты). Таким образом, у

овец опытной группы было зарегистрировано разрушение мукополисахаридов

маточной слизи в 3 раза чаще, чем у животных контрольной группы, что также

подтверждает снижение неспецифических иммунных факторов местной

защиты. Всё это свидетельствует о предрасположенности животных к

заболеваемости.

Инфекционные болезни, поражающие органы воспроизводства

(сальмонеллез, листериоз, кампилобактериоз, хламидиоз и др.), также являются

причиной массовых абортов животных, патологических родов, тяжелых

послеродовых осложнений и приводят к бесплодию.

51

Анализируя данные исследований ветеринарной лаборатории нами было

установлено, что у овец наибольший процент составляет сальмонеллез и

листериоз (до 8 и 19%), а также кампилобактериоз – до 4% положительных

проб от общего количества происследованных (Таблица3).

Таблица 3

Сравнительные данные об исследовании проб патологического материала

Наименование

заболевания

2005г 2006г 2007г 2008г К

ол-в

о п

роб

По

ло

жи

тельн

о

% К

ол-в

о п

роб

По

ло

жи

тельн

о

%

Ко

л-в

о п

роб

По

ло

жи

тельн

о

%

Ко

л-в

о п

роб

По

ло

жи

тельн

о

%

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13

Колибактериоз 413 20 5 508 32 6 545 36 7 381 14 4

Кампилобакте-

риоз 806 24 3 650 18 3 710 28 4 780 30 4

Листериоз 80 10 12 104 16 15 114 18 16 56 11 19

Сальмонеллез 800 45 6 630 48 8 700 29 4 860 34 4

В период осеменения овцематок нами изучались некоторые проявления

нарушения воспроизводительной функции у овцематок, переболевших

инфекционными заболеваниями с синдромом поражения репродуктивных

органов (опытная группа). Контролем служили здоровые животные.

Анализ проведенных исследований нарушения воспроизводительной

функции у переболевших инфекционными заболеваниями овцематок показал,

что 60% животных опытной группы не проявили стадии возбуждения в течение

двух половых циклов и остались яловыми, патологические роды и

послеродовые осложнения регистрировались у 63% маток. В контрольной

группе объягнились 90,0% овец, патологические роды наблюдались у 8%,

послеродовые осложнения – у 5,0% маток (Таблица 4).

52

Таблица 4

Результаты воздействия возбудителей инфекций на воспроизводительную

функцию маток Г

ру

пп

ы ж

иво

тны

х

Ко

л-в

о

При

шли

в о

хо

ту в

пер

вы

е 17

дн

ей, го

л.

При

шли

в о

хо

ту в

по

след

ую

щи

е 14

дн

ей, го

л.

По

вто

рн

о п

ри

шли

в о

хо

ту, го

л.

Не

при

шли

в о

хо

ту, го

л.

Объяг-

нились яловые

Пато-

логи-

ческие

роды

После-

родовые

ослож-

нения

гол % гол % гол % гол %

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14

1

(опытная) 40 14 2 2 24 16 40 24 60 10 63 10 63

2

(контроль-

ная)

40 34 2 6 4 36 90 4 10 3 8 2 5

53

Фото 4. Переболевшие овцематки с нижесредней упитанностью

3.3 Контроль состояния воспроизводства овец на основании

проведения акушерско-гинекологической диспансеризации

В настоящих условиях реформирования сельскохозяйственного

производства всё острее встают вопросы интенсивного воспроизводства стада.

Для контроля состояния воспроизводства в овцеводческих хозяйствах

необходимо проводить акушерско-гинекологическую диспансеризацию. Это

позволяет осуществлять контроль за состоянием воспроизводства овец,

своевременно выявлять больных животных и проводить профилактические и

лечебные мероприятия.

Акушерско-гинекологическая диспансеризация – это комплекс

диагностических, лечебных и профилактических мероприятий, направленных

на выявление причин и форм бесплодия самок, восстановление

воспроизводительной функции и их высокой продуктивности (Шипилов В.С. и

др., 2000).

54

В овцеводческих предприятиях акушерско-гинекологическая

диспансеризация должна проводиться в период их осеменения и после родов -

планово, в период суягности животных – при необходимости (см. схему). При

этом важное значение имеет последовательное соблюдение всех этапов,

систематичность, проведение мероприятий в течение года в связи с

особенностями технологии выращивания овец и их физиологии).

Основные задачи акушерско-гинекологической диспансеризации овец:

1. Изучение физиологического состояния животных путем общего

клинического исследования.

2. Диагностика состояния репродуктивных органов овцематок в период

полового цикла.

3. Выявление наиболее характерных признаков патологических

изменений в половых органов с применением акушерско-гинекологического

исследования. Прогнозирование патологии родового акта.

4. Постановка точного диагноза заболевания. Определение полного

состава возбудителей инфекций.

5. Разработка схем лечебных и профилактических мероприятий.

В связи с противоречиями о сроках проведения акушерско-

гинекологической диспансеризации овец в производственных условиях в «ИП

Гаспарян», Щелковского района Московской области нами было проведено

обследование 300 овцематок романовской породы в возрасте от 1,5 до 4,5 лет. В

период осеменения овец проводили исследование животных непосредственно

перед осеменением, а также изучали причины отсутствия стадии возбуждения у

маток в течение двух половых циклов.

Животных подвергали клиническому обследованию, определяли

показатели естественной резистентности организма – фагоцитарную функцию

лейкоцитов, бактерицидную, лизоцимную активность сыворотки крови,

фагоцитарную активность нейтрофилов маточной слизи.

55

Фото5. Проведение клинического обследования овец

Фото 6. Аускультация овцематки

56

Обследованные животные были клинически здоровы, но 10 овцематок

имели нижесреднюю упитанность.

Выборочно у 30 клинически здоровых овец со средней упитанностью

исследовали показатели неспецифической резистентности организма (Табл. 5).

Таблица 5

Показатели неспецифической резистентности организма клинически

здоровых овец

№

овце-

матки

Лизоцим-

ная

активность

(%)

Бактери-

цидная

активность

(%)

Фагоци-

тарная

активность

(%)

Фагоци-

тарный

индекс

Процент

фагоци-тоза

1 2 3 4 5 6

1 62,3 76, 3 51,4 4,0 60,5

2 58,6 75,0 48,4 3,8 55,6

3 57,3 72,8 49,0 3,6 52,4

4 60, 4 64,5 50,3 3,9 56,2

5 61,8 68,2 50,6 4,0 58,0

6 57,2 64,0 49,9 3,5 50,2

7 58,6 66,1 48,6 3,7 53,2

8 61,2 67,7 50,1 3,9 54,8

9 60,4 65,6 50,4 3,8 54,4

10 54, 2 62,3 48,6 3,4 46,5

11 56,0 63,4 49,8 3,6 48,0

12 56,5 64,0 50,7 3,6 43, 6

13 61,3 68,0 50,3 3,8 56,8

14 64.4 77,2 52,6 4,2 62,6

15 59,0 68,0 49,8 3,9 56,6

16 54,8 64,0 48,8 3,6 42,6

17 58,8 65,8 49,0 3,8 52,6

57

1 2 3 4 5 6

18 55,3 64,6 49,2 3,6 46,2

19 58,1 74, 8 47,3 3,8 50,4

20 58,8 68,3 48,2 3,9 43,0

21 52,4 62,7 47,7 3,5 42,6

22 60,1 64,8 50,3 3,7 48,6

23 58,4 64,2 48,6 3,6 44,2

24 52, 2 62,0 48,1 3,2 42,8

25 54,3 64,4 48,6 3,3 41,6

26 56, 8 64,8 50,0 3,8 45,8

27 59,0 70,2 49,6 3,9 46,2

28 60,2 68,7 50,9 3,9 48, 4

29 57,4 67,2 50,8 3,6 46,0

30 58,1 70,4 51,3 3,8 45,6

M±m 58,1 ± 0,5 67,3 ± 0,7 49,6 ± 0,2 3.7 ± 0,03 49,9 ± 1.1

p< 0,1

Показатели естественной резистентности организма обследованных

овцематок находились в пределах нормы при этом физиологическом состоянии.

У 10 овцематок, имеющих нижесреднюю упитанность, эти показатели

были снижены (Таблица 6).

58

Таблица 6

Показатели неспецифической резистентности организма овец, имеющих

нижесреднюю упитанность

№

овце-

матки

Лизоцим-

ная

активность

(%)

Бактери-

цидная

активность

(%)

Фагоци-

тарная

активность

(%)

Фагоци-

тарный

индекс

Процент

фагоцитоза

1 2 3 4 5 6

1 50,2 60,0 37,8 2,0 30,0

2 48,4 55,4 35,2 1,8 28,6

3 45,6 54,2 34,6 1,6 26,9

4 48,6 54,0 36,0 1,8 27,6

5 50,1 58,6 36,8 2,0 29,1

6 46,8 52,6 34,8 1,8 28,0

7 48,4 54,0 36,6 1,9 28,5

8 49,2 55,8 38,6 2,1 29,0

9 46,3 52,9 36,7 1, 9 28,2

10 50,1 56,4 37,0 2,0 30,0

M±m 48,4 ± 0,5 55,4 ± 0,7 36,6 ± 0,4 1,9 ± 0,04 28,6 ± 0,3

p < 0,1

В результате проведенного обследования 300 животных было установлено,

что в первые 17 дней в охоту пришли и были осеменены 180 овцематок (60%), в

последующие 17 дней 65 (22%). Не пришли в охоту в течение двух половых

циклов 55 овцематок (18%).

С целью исключения инфекционных заболеваний применяли

бактериологическую диагностику с идентификацией и типизацией выделенных

микроорганизмов, методы серологических исследований, люминесцентной

микроскопии, ИФА, ПЦР и др.

59

В результате проведенных лабораторных исследований у овец были

выделены возбудители сальмонеллеза, кампилобактериоза, листериоза,

хламидиоза в разных ассоциациях. Клинических проявлений указанных

заболеваний выявлено не было. Животные являлись микробоносителями.

Овцематок, не проявляющих половой охоты, подвергали акушерско-

гинекологическим исследованиям с использованием специальных

лабораторных тестов, включающих цитохимический анализ влагалищных

мазков, исследование влагалищной слизи и патоморфологические исследования

участков полового аппарата животных с целью изучения особенностей

протекания патологических процессов.

60

Фото 7,8,9 Проведение акушерско-гинекологичеких исследований овец

61

При проведении цитохимического анализа влагалищных мазков

определяли показатели пероксидазной активности в эпителиальных клетках

мазков влагалищной слизи овцематок. В основе этого цитохимического теста

лежит зависимость уровня активности пероксидазы в эпителиальных клетках

влагалищных мазков от уровня концентрации эстрадиола в организме овец. Этот

фермент обеспечивает проходящий в пероксисомах путь свободного окисления

веществ, посредством которого происходит обезвреживание ряда токсически

действующих и нежелательных для организма веществ. Пероксисомы содержат

системы, генерирующие перекись водорода и каталазу, которая при низких

концентрациях обладает пероксидазной активностью. Они осуществляют

антимикробную, пищеварительную функцию и участвуют в процессах синтеза.

Пероксидаза, обеспечивая биосинтез ряда биологически важных веществ

(стероидных гормонов), взаимопревращение некоторых аминокислот, является

движущим звеном метаболизма (В.А. Усольцева, 1973). Проведенный нами

анализ показал следующее (Таблица7).

Динамику активности пероксидазы определяли посредством подсчета

количества пероксисом, которые выявлялись в виде четких коричнево-черных

гранул в цитоплазме эпителиальных клеток влагалищных мазков овцематок с

нарушением воспроизводительной функции и нормальным проявлением

полового цикла.

В результате исследования влагалищных мазков здоровых овец и

животных с отсутствием половой охоты было установлено среднее содержание

гранул пероксидазы в цитоплазме клеток: 14,95 ± 0,6 (при нормальном половом

цикле) и 0,92 ± 0,1 (при патологии).

У овцематок с нормальным половым циклом гранулы пероксидазы были

хорошо окрашены, округлой формы, распределялись по всей цитоплазме

эпителиальных клеток влагалищных мазков. У животных с отсутствием

половой охоты распределение пероксисом в цитоплазме была крайне

неравномерна, общее количество гранул фермента сильно снижено по

62

сравнению с нормой, в некоторых клетках они не были обнаружены совсем.

Окраска внутриклеточных включений у больных животных была слабее по

сравнению с нормой. Таким образом, на основании проведенных исследований

было установлено снижение активности фермента пероксидазы в

эпителиальных клетках влагалищных мазков овцематок с отсутствием половой

охоты по сравнению с овцематками с нормальным половым циклом. Исходя из

того, что уровень активности пероксидазы в эпителии влагалища зависит от

уровня концентрации эстрадиола в организме животного, мы сделали вывод о

его низкой эстрогенной насыщенности, что свидетельствует о существенных

гормональных нарушениях, происходящих в результате воздействия различных

экзогенных и эндогенных факторов.

Таблица 7

Содержание пероксидазы в эпителиальных клетках влагалищных мазков

овцематок при нормальном половом цикле и при отсутствии половой охоты

№ о/м

Среднее количество гранул пероксидазы в эпителиальных клетках

влагалищного мазка

при нормальном половом цикле при отсутствии половой охоты

1 2 3

1 12,8 1,5

2 14,2 1,6

3 13,4 0,9

4 12,6 0,8

5 14,4 0,6

6 13,7 0,5

7 14,5 0,8

8 18,4 0,6

9 17,6 1,0

10 17,9 0,9

M±m 14,95 ± 0,6 0,92 ± 0,1

p < 0,1

63

В результате исследования 10 проб цервикальной слизи овцематок не

проявляющих стадии возбуждения полового цикла в 6 пробах (60%)

мукополисахариды были разрушены (отрицательный результат), в 4 пробах

(40%) образовался сгусток, который не разрушался при встряхивании

(положительные результаты). В пробах цервикальной слизи от овец с

нормальным половым циклом (n = 10) мукополисахариды были разрушены в 1

пробе – 10% (отрицательный результат), образование сгустка (наличие

мукополисахаридов) отмечалось в 9 пробах – 90% (положительные

результаты). Таким образом, у овец с нарушением стадии возбуждения

полового цикла зарегистрировано разрушение мукополисахаридов маточной

слизи в 6 раза чаще, чем у животных с нормальным половым циклом, что также

подтверждает снижение неспецифических иммунных факторов местной

защиты.

При проведении патоморфологической диагностики были выявлены

следующие изменения.

Проводимый нами гистологический анализ различных участков половых

органов бесплодных овец показал морфофункциональные изменения,

связанные с гипофункцией. Наблюдалось нарушение структуры эпителиальных

клеток маточных желез, десквамация и атрофия железистого эпителия,

уплотнение некоторых участков стромы тела матки за счет разрастания

соединительной ткани, клеточная инфильтрация эпителия отдельных складок

рогов матки. В некоторых участках отмечалось расслоение мышечного слоя. В

яичниках наблюдали отсутствие вторичных и зрелых фолликулов в корковом

слое, разрастание соединительной ткани в некоторых участках, утолщение

стенки сосудов стромы яичника.

В период суягности проводили обследование больных (абортировавших)

животных и наблюдение за матками - микробоносителями, выявленными в

процессе проведения первого этапа акушерско-гинекологической

диспансеризации. Больных животных исследовали путем применения методов

клинической, акушерско-гинекологической диагностики, проводили

64

патоморфологические и бактериологические исследования абортированных

плодов с целью исключения стационарных инфекций. Больных и

микробоносителей метили и изолировали.

Перед родами с целью прогнозирования их течения у овцематок

выборочно проводили цитохимические исследования влагалищных мазков.

Проводили также определение фагоцитарной активности нейтрофилов и

количества глюкозоаминогликанов в маточной слизи, как факторов местной

защиты в половом аппарате овцематок.

В результате проведения комплексных исследований было установлено,

что основной причиной абортов овец являются возбудители сальмонеллеза,

кампилобактериоза, листериоза, хламидиоза.

В послеродовой период осуществляли клиническое, гинекологическое

обследование овец на 7, 14, 20 день с целью контроля послеродовой инволюции

матки с исследованием лохий и выявления патологических процессов.

У больных животных изучали особенности течения патологического

процесса - исследовали экссудат при эндометритах с определением их

клинических форм, выявляли и идентифицировали в лаборатории возбудителей

инфекции, используя специальные лабораторные методы исследования:

бактериологический, серологический, иммунофлуоресцентный, ПЦР.

Проводили исследование влагалищной слизи овцематок для диагностики

функционального состояния половых органов.

1. Исследовали пробы слизи (экссудата) в физиологические периоды

полового цикла и при изучении критериев патологических процессов.

Одновременно оценивали послеродовую инволюцию матки (по стадиям),

определяли соответствие цвета и консистенции выделений стадиям инволюции.

Для получения проб маточной слизи мы использовали «акушерскую ложку

Панкова» (АЛП).

В первые 7 дней после окота АЛП хорошо входит во влагалище до шейки

матки, заполняется лохиями, характерными по консистенции и цвету стадиям

инволюции (от темно-красного цвета и жидкой консистенции до прозрачной

65

густой слизи). На 14-15 день после окота в ложечке содержалось небольшое

количество мутноватой или прозрачной слизи, у здоровых маток в этот период

выделения лохий заканчивается. К 21-му дню после ягнения АЛП лишь

частично входила во влагалище, лохии отсутствовали.

2. Определяли формы клинических эндометритов, исследуя экссудат на

цвет, запах, консистенцию, рН, учитывали показатели акушерско-

гинекологического и общего клинического исследования, а также особенности

течения болезни.

С целью диагностики критериев патологических процессов также

использовали АЛП.

При всех формах клинически выраженного эндометрита слизистая

оболочка преддверия влагалища была гиперемирована с синюшным оттенком.

Акушерская ложка легко входила во влагалище овцы, всегда была заполнена

экссудатом, характерным для различных форм эндометритов.

При этом при различных формах эндометритов были установлены

следующие изменения:

-при остром гнойно-катаральном эндометрите – на 5-6 день после ягнения

экссудат был слизисто-гнойный, жидкой консистенции, желто-бурого цвета с

неприятным запахом.

-при катарально-гнойном эндометрите – на 10-12 день после ягнения

экссудат имел вид мутной слизи с примесью желтовато-серых хлопьев и

прожилок гноя.

-при послеродовом фибринозном или гнойно-фибринозном эндометрите

экссудат был серо-коричневого цвета, жидким с примесью фибрина в виде

плотных крупинок или полужидкий с примесью фибрина и прожилок гноя.

-при послеродовом некротическом эндометрите экссудат был красно-

бурого цвета со сгустками фибрина и примесью крошкообразных

некротических масс, имел зловонный запах. Слизистая оболочка влагалища

болезненная, животное угнетено.

66

-при хроническом эндометрите – через 30 дней после ягнения образец

содержал мутный слизисто-гнойный экссудат сливкообразной консистенции с

примесью прожилок гноя.

По мере выздоровления животных в пробе из влагалища уменьшалось

содержание примесей фибрина, гноя, слизь густела, светлела и становилась

прозрачной.

Проведение разработанной нами акушерско-гинекологической

диспансеризации, а также в последующем лечебно–профилактических

мероприятий позволило в ряде сельскохозяйственных предприятий Московской

области снизить процент заболеваемости овец с 40 до 10%, повысить

плодовитость овцематок до 110%, а сохранность молодняка – до 96%. Были

установлены причины нарушения у них половых циклов. В последующем

осуществлялись мероприятия по стимуляции половой функции, повышению

неспецифической резистентности организма овцематок (применение

адаптогена стресс–корректора Лигфол), проводились общие и специфические

профилактические мероприятия с использованием дезинфицирующего средства

нового поколения Дезконтен и путем проведения комплексной вакцинации с

применением препарата Лигфол.

67

Рис.1 Схема проведения акушерско-гинекологической диспансеризации

овец (Гнездилова Л.А., 2004)

Живот-

ные пе-

ред осе-

менени-

ем

Клиниче-

ские ис-

следова-

ния

Живот-

ные не

пришед-

шие в

охоту

Больные

(абортиров-

шие) живот-

ные

Клиниче-

ские ис-

следова-

ния

Гинеко-

логиче-

ское об-

следова-

ние

Клиниче-

ские ис-

следова-

ния

Специальные

лаборатор-

ные иссле-

дования

Бак-

те-

ри

о

ло

-

ги-

че-

ски

е

Гинеко-

логиче-

ское об-

следова-

ние

Клиниче-

ские ис-

следова-

ния

Гинеко-

логиче-

ское об-

следова-

ние

Клиниче-

ские ис-

следова-

ния

лаборатор-

ные ис-

следова-

ния

Гинекологи-

ческое об-

следование

лаборатор-

ные ис-

следова-

ния

Период

суягности

Больные

животные

Матки

после

родов

Микро-

боноси-

тели

Послеродо-

вой период

Период

осеменения

Се-

ро

ло

-

гиче-

ские

Оп

ре

де-

ле-

ни

е

ЕРО

лаборатор-

ные иссле-

дования

Ци

-

то-

хи-

ми

-

че-

ские

Ис-

сле

до

-

ва-

ни

е

сли

-

зи

Лаборатор-

ные иссле-

дования

Патоморфоло-

гические ис-

следования

абортплодов

Оп

ред

еле

-

ни

е факто

-

ро

в мест-

но

й защ

и-

ты

Бак-

те-

ри

о-

ло

-

ги-

че-

ские

Серологи-

ческие

Ци

то-

хим

и-

ческие

иссл

е-

до

ва-

ни

я

68

3.4 Применение адаптогена стресс-корректора Лигфол для профилактики

патологии послеродового периода у овцематок

Одной из причин симптоматического бесплодия у овцематок является

патология родов, которая встречается у 4,9 – 34% животных. Нарушение

технологии содержания и кормления, дисбаланс параметров микроклимата

животноводческих помещений, зооветеринарные мероприятия являются

серьезными стресс-факторами для беременных овец. Развитию акушерско-

гинекологической патологии способствуют изменения, происходящие в

организме животных: нарушение нейро-гуморального регулирования, обмена

веществ, процесса кроветворения, иммунной защиты, снижение естественной

резистентности. Результат всего этого - аборты, патология родов, задержание

последа, субинволюция матки, развитие внутриутробной гипоксии молодняка.

С целью решения этих проблем в период беременности и родов овцематок

нами проводились испытания адаптогена стресс-корректора Лигфол совместно

с сотрудниками Ставропольского НИИЖК. Это композиционный препарат,

основным действующим началом которого являются гуминовые кислоты. В

состав препарата входят: гуминовые кислоты, натрия пирофосфат

десятиводный, натрия хлорид и деминерализованная апирогенная вода. Это

стерильный препарат в форме инъекционного раствора для парентерального

применения.

В России изучение применения гуминовых препаратов в качестве

кормовой добавки для сельскохозяйственных животных начаты в 60-х годах и

продолжаются до настоящего времени. Накоплен большой экспериментальный

материал, подтверждающий, что гуминовые вещества обладают широким

спектром биологической активности, оказывая воздействие на обменные

процессы в организме животных и человека. Они поставляют микроэлементы,

обогащая иммунную систему, что дает животным возможность эффективно

противостоять болезням. Гуминовые препараты применяются в качестве

биологических стимуляторов при выращивании сельскохозяйственных

69

животных. Активизируют рост и развитие, повышают продуктивность,

снижают заболеваемость и отход молодняка.

Установлено, что гуминовые вещества влияют на регуляторные системы

клетки. Механизм их фармакологического действия связан с интенсификацией

синтеза белка и иммунореактивных факторов клетками организма животных и

птиц (А.М. Беркович, В.С. Бузлама, 2006).

Гуминовые, фульвокислоты, пиримидины, аминокислоты влияют на

аденилатциклазную систему клетки и систему ферментов, ответственных за

синтез олигоаденилата – медиатора действия интерферона. В частности их

действие опосредуется одновременной активацией АЦ (аденилатциклазы) и

ингибированием ФДЭ (фосфодиэстеразы), что приводит к усилению синтеза

цАМФ (аденозинмонофосфатазы). Повышение внутриклеточной концентрации

цАМФ может приводить к биологическим эффектам в зависимости от типа

клетки и её состояния в данный момент. Происходит регуляция ферментов

углеводного и жирового обмена, иммунных реакций, факторов естественной

резистентности организма (А.М. Беркович, В.С. Бузлама, 2003).

Учитывая данные предпосылки перед нами была поставлена задача

оценить возможность использования адаптогена стресс-корректора Лигфол для

повышения естественной резистентности организма овец в период ягнения, для

профилактики патологий родов и послеродовых осложнений, а также для

улучшения продуктивных качеств ягнят.

В ООО СП «Гвардеец», Красногвардейского района, Ставропольского

края из овцематок ставропольской породы возраста 1,5 лет были

сформированы опытная и контрольная группы по 15 голов в каждой.

Проводили клинические, акушерско-гинекологические обследования

животных.

За 10 дней до ягнения овец инъецировали Лигфолом в дозе 1мл на

животное в опытной и физраствором (1мл) в контрольной группе. Через 5 дней

после обработки проводили контроль естественной резистентности организма

овцематок, определяли неспецифические иммунные факторы местной защиты,

70

проводили биохимический, физико-химический, морфологический анализ

крови. Определяли содержание эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина, общего

белка, АлАТ, АсАТ, глюкозы, резервной щелочности, железа. Проводили

контроль показателей естественной резистентности организма. Определяли

бактерицидную, лизоцимную активность сыворотки крови, фагоцитарную

функцию. Изучали неспецифические иммунные факторы местной защиты –

фагоцитарный индекс и % фагоцитоза в мазках маточной слизи.

Для изучения воздействия факторов внешней среды на организм

овцематок в опытных и контрольных группах устанавливали фагоцитарную

активность нейтрофилов и количество глюкозоаминогликанов в маточной

слизи.

Метод определения фагоцитарной активности нейтрофилов маточной

слизи основан на визуальном учете числа бактерий, захваченных нейтрофилами

в процессе естественного фагоцитоза в полости матки животного. Мазки

маточной слизи высушивали на воздухе, фиксировали метиловым спиртом,

окрашивали по Романовскому-Гимза и микроскопировали. При этом оценивали

захватывающую способность нейтрофилов по двум показателям:

фагоцитарному индексу (количество бактерий, захваченных одним

нейтрофилом) и проценту фагоцитоза (отношение количества нейтрофилов,

участвующих в фагоцитозе, к общему числу подсчитанных).

Метод определения мукополисахаридов в маточной слизи заключается в

том, что при наличии мукополисахаридов в исследуемой пробе добавление к

ней 1 мл 1%-го раствора уксусной кислоты вызывает образование сгустка,

который не разрушается при встряхивании. Учет реакции проводили через 6,

12, 24, 48, 72 часа.

За 5-6 дней до ягнения – повторные инъекции Лигфола (1мл на животное)

и физраствора (1 мл на животное) в обеих группах.

В период ягнения провели клинические, акушерско-гинекологические

обследования животных опытной и контрольной группы. Учитывали при

рождении живую массу ягнят в опытной и контрольной группе, количество

71

случаев патологических родов, послеродовых осложнений, мертворождения

ягнят с определением основных причин отхода (патологоанатомические,

гистологические, бактериологические исследования). На 7 сутки после ягнения

контроль естественной резистентности организма овцематок, биохимические,

физико-химические, морфологические исследования крови (по вышеуказанным

показателям).

Через 14 дней после ягнения овец определяли процент заболеваемости

ягнят, полученных от овцематок опытной и контрольной групп. Определяли

естественную резистентность организма овец, проводили биохимические,

морфологические, физико-химические исследования крови.

Через 4 месяца после ягнения овец (отбивка ягнят) проводили оценку

качества потомства (ягнят), полученных от овец обеих групп. Определяли

процент сохранности поголовья, живую массу молодняка при отбивке, высоту в

холке, косую длину туловища, глубину, ширину, обхват груди, пясти.

Анализ результатов проведенных исследований показал, что двукратное

введение Лигфола в дозе 1 мл на овцематку не оказывает отрицательного

влияния на животных до и после родов. Все показатели крови овец в процессе

эксперимента находились в пределах физиологических норм. Установлено

достоверное повышение количества эритроцитов в крови овцематок опытной

группы в послеродовой период по сравнению с контролем. Данные сочетаются

с уровнем гемоглобина, что подчеркивает усиление процессов кроветворения у

животных после применения Лигфола.

Достоверная разница в показаниях общего белка на 14е сутки после родов

подтверждает активацию обменных процессов, улучшение пристеночного

пищеварения, клеточного метаболизма (что подтверждается повышением

активности трансаминаз). Уровень резервной щелочности, глюкозы, железа не

понизился в крови животных опытной группы.

На основании представленных данных можно утверждать, что введение

Лигфола не провоцирует нарушений обменных процессов и дисфункций

72

внутренних органов, гомеостаза, не вызывает изменений в биохимической

картине крови, характерных для токсигенных процессов.

При изучении показателей естественной резистентности организма

животных отмечено повышение в опытной группе всех показателей:

лизоцимной, бактерицидной активности сыворотки крови, фагоцитарной

функции в динамике проведения исследований (Таблица 8, Рис. 2,3,4,5,6).

Таблица 8

Результаты исследования крови и маточной слизи овцематок при

испытании препарата Лигфол

группа БАСК, % ЛАСК, % ФАК, %

Фагоци-

тарный

индекс

%

фагоцито-

за

1 2 3 4 5 6

Опытная –

до родов 52,4±0,22* 32,43±1,05* 30,2±0,3* 4,0±0,3* 52,3±2,0

Контроль –

до родов 49,54±0,01 30,12±0,3 26,4±1,02 3,2±0,2 43,4±3,0

Опыт – через

7 дней после

родов

56,3±1,79* 33,13±1,08* 32,4±0,2* 4,5±0,2* 55,1±1,0*

Контроль –

через 7 дней

после родов

50,0±0,2** 30,3±0,5** 23,2±0,9 3,0±0,4 41,0±0,8

Опыт – через

14 дней

после родов

58,6±0,3* 34,0±0,22 33,2±0,3 4,8±0,2* 56,7±0,9*

Контроль –

через 14 дней

после родов

50,2±0,2 30,8±0,4 22,8±0,2 3,1±1,2** 41,5±1,0

* р < 0,05, ** р > 0,05

73

В опытной группе овцематок бактерицидная активность сыворотки крови

после введения препарата Лигфол увеличилась в динамике на 6,2% к 14 дню

после родов (с 52,4% до 58,6%), в контрольной группе на 0,6%. Прирост

показателя бактерицидной активности в опытной группе повысился в 9,4 раза

по сравнению с контролем (Рис. 2).

Рис.2

Показатель лизоцимной активности сыворотки крови животных опытной

группы увеличился после инъекций препарата в динамике на 1,57 % в

контрольной на 0,68 %. Прирост показателя лизоцимной активности в опытной

группе повысился в 2,3 раза по сравнению с контролем (Рис.3).

74

Рис.3

Установлено также достоверное повышение фагоцитарной активности

крови овец в опытной группе к 14 дню после родов, в то время как в

контрольной после родов у животных имело место снижение указанного

показателя (Рис. 4).

Рис.4

В результате проведения исследования маточной слизи животных

установлено повышение факторов местной защиты организма овцематок в

75

результате применения препарата Лигфол. Важность этих тестов обусловлена

тем, что мукополисахариды слизистых оболочек гениталий играют важную

местную защитно-барьерную функцию. С одной стороны, они адсорбируют

микробы, клеточные элементы, продукты распада белков и микробов и этим

механически очищают половые органы овец. С другой стороны, препятствуют

проникновению вирусов в эпителиальные клетки, подавляют рост и развитие

бактерий и грибов. Разрушение мукополисахаридов слизистых оболочек

гениталий и, соответственно, маточной слизи способствует развитию

воспалительных процессов в матке. У животных опытной группы в результате

применения препарата Лигфол регистрировалось разрушение

мукополисахаридов маточной слизи в 3 раза реже, чем у животных

контрольной группы. Отмечено также увеличение в 1,4 раза уровня фагоцитоза

нейтрофилов маточной слизи у овец опытной группы после ягнения по

сравнению с животными контрольной группы. (Рис. 5).

Рис. 5

В ходе эксперимента было установлено, что после применения Лигфола у

овец после родов в 1,5 раза повысился фагоцитарный индекс нейтрофилов

маточной слизи по сравнению с животными, которым инъецировали

физиологический раствор (Рис.6).

76

Рис. 6

Таким образом, анализируя полученные результаты, мы пришли к выводу,

что применение овцематкам перед родами адаптогена стресс-корректора

Лигфола увеличивает общую резистентность организма беременных животных,

повышает неспецифические иммунные факторы местной защиты.

При бактериологическом исследовании послеродовых маточных

выделений от овцематок контрольной группы в 60% проб (в 9 из 15) были

выделены микроорганизмы: стафилококки, гноеродная палочка, кишечная

палочка, диплококки. В то время, как у животных опытной группы отмечено

наличие указанных микроорганизмов в 20% проб (в 3 из 15).

Считаем, что применение Лигфола профилактирует патологии родов и

послеродового периода, способствует рождению здорового жизнеспособного

потомства. Подтверждением этого является отсутствие случаев заболеваемости

овец опытной группы в процессе эксперимента. У всех животных благополучно

прошли роды, не было зарегистрировано субинволюции матки, задержания

последа, послеродовых эндометритов. Родились полноценные здоровые ягнята.

Имело место достоверное увеличение живой массы баранчиков и ярочек

при рождении, полученных от овцематок опытной группы (в среднем 4,43 ±

77

0,33кг и 3,87 ± 0,12кг, соответственно) по сравнению с живой массой ягнят

контрольной группы (4,17 ± 0,46 кг и 3,68 ± 0,33кг).

В результате анализа заболеваемости ягнят через 14 дней после родов в

контрольной группе установлена заболеваемость 2 ягнят контрольной группы:

№1678 и № 1394, что составило 20% от количества животных в группе. У

молодняка отмечалось отсутствие аппетита, депрессия, атаксия, диарея.

Фекалии жидкой консистенции, желто-серого цвета. Температура 39,50 и

39,90С, пульс 155 и 157, дыхание 47 и 54, соответственно. В дальнейшем,

ягненок №1678 пал, а ягненок № 1394 в результате проводимого лечения

выздоровел.

Таким образом, в результате проведенных исследований было

установлено, что:

1. Двукратное введение Лигфола в дозе 1 мл на овцематку не оказывает

отрицательного влияния на животных до и после родов. Все показатели крови

овец в процессе эксперимента находились в пределах физиологических норм.

На основании представленных данных можно утверждать, что введение

Лигфола не провоцирует нарушений обменных процессов и дисфункций

внутренних органов, гомеостаза, не вызывает изменений в биохимической

картине крови, характерных для токсигенных процессов.

2. Установлено достоверное повышение количества эритроцитов в крови

овцематок опытной группы в послеродовой период по сравнению с контролем.

Данные сочетаются с уровнем гемоглобина, что подчеркивает усиление

процессов кроветворения у животных после применения Лигфола.

3. Достоверная разница в показаниях общего белка на 14е сутки после

родов подтверждает активацию обменных процессов, улучшение

пристеночного пищеварения, клеточного метаболизма (что подтверждается

повышением активности трансаминаз). Уровень резервной щелочности,

глюкозы, железа не понизился в крови животных опытной группы.

4. При изучении показателей естественной резистентности организма

животных отмечено повышение в опытной группе всех показателей:

78

лизоцимной, бактерицидной активности сыворотки крови, фагоцитарной

функции в динамике проведения исследований.

5. В результате проведения исследования маточной слизи животных

установлено повышение факторов местной защиты организма овцематок в

результате применения препарата Лигфол.

6. Считаем, что применение Лигфола профилактирует патологии родов и

послеродового периода, способствует рождению здорового жизнеспособного

потомства.

Подтверждением этого является отсутствие случаев заболеваемости овец

опытной группы в процессе эксперимента. У всех животных благополучно

прошли роды, не было зарегистрировано субинволюции матки, задержания

последа, послеродовых эндометритов. Родились полноценные здоровые ягнята.

3.5 Общепрофилактические и специальные ветеринарные

мероприятия при симптоматическом бесплодии овцематок

Общепрофилактические и специальные ветеринарные мероприятия

В неблагополучных хозяйствах по инфекционным болезням овец с

поражением репродуктивных органов нами проводился комплекс

общепрофилактических и специальных ветеринарных мероприятий по

следующей схеме.

№

Наименование

мероприятий

Сроки проведения Примечание

1 2 3 4

1.

Карантинирование вновь

поступивших животных

30 дней

2.

Акушерско-

гинекологическая

диспансеризация

овцематок

Период осеменения,

суягности,

послеродовой период

Проводили согласно

«Методическим

рекомендациям»

79

1 2 3 4

3.

Контроль на станциях

искусственного

осеменения овец

Период осеменения

4.

Санитарно-гигиеническая

оценка состояния

овцеводческих

помещений

Период стойлового

содержания овец

Осуществлять

санитарно-

микробиологичес-

кие исследования и

контроль

параметров

микроклимата

5.

Санитарно-

гигиенический анализ

качества кормов и воды,

бактериологический,

микологический контроль

за состоянием пастбищ.

В течение года

6.

Технологическая

дезинфекция помещений,

выгульных площадок,

инвентаря

2-3 квартал, после

вывода животных на

пастбище; 4 квартал –

перед постановкой на

стойло

Использовали

дезсредства с

учетом

одновременного

воздействия на

несколько

возбудителей и

устойчивости к ним

микроорганизмов

7.

Дератизация на

территории ферм и

прилегающих участках

В течение года

Учитывали

сезонную миграцию

грызунов

80

1 2 3 4

8. Противоклещевые

мероприятия 2-3 квартал года

Устанавливали

видовой состав

клещей,

распределение и

динамику их

паразитирования

9.

Профилактическая

комплексная или

ассоциированная

вакцинация овец.

Согласно

разработанных схем

10.

Применение

биологически активных

веществ для повышения

естественной

резистентности

организма животных.

В период осеменения,

перед родами, в

послеродовой период

11. Лечение заболевших

овцематок

Период суягности,

родов, послеродовой

период

Учитывали

результаты

диспансеризации

Необходимость профилактики инфекционных болезней овец с поражением

репродуктивных органов обусловлена зооантропонозным характером

некоторых из них (листериоз, хламидиоз, сальмонеллез, кампилобактериоз) и

определенной опасностью, которую они представляют для людей.

Проведение общих и специфических профилактических мероприятий

предусматривало следующее:

1. Не допускался ввод вновь поступивших животных в общее стадо без

предварительного карантинирования их в течение 30 дней.

81

2. Во время карантина проводили клиническое обследование овец и

выявляли животных, являющихся скрытыми источниками возбудителей

инфекционных заболеваний путем проведения комплексной диагностики.

3. Вели учет случаев абортов, мертворождения и падежа животных и

направляли патматериал в ветлабораторию с обязательным

бактериологическим исследованием, типизацией и идентификацией

выделенных микроорганизмов.

4. При маститах проводили бактериологическое исследование молока.

Отбор и направление материалов на бактериологические исследования

проводили в соответствии с инструкцией.

5. Оценивали условия содержания овец, осуществляли контроль на

станциях искусственного осеменения.

6. Проводили технологические дезинфекции помещений, выгульных

площадок, инвентаря, транспорта.

7. Проводили дератизацию на территории ферм и на прилегающих

зонах, учитывая сезонную миграцию грызунов. Осуществляли комплекс

противоклещевых мероприятий.

8. Повышали неспецифическую реактивность организма животных.

9. В случае угрозы заноса возбудителей болезни в хозяйство проводили

профилактическую комплексную вакцинацию овец или использовали

ассоциированные вакцины.

10. Вакцинировали животных против инфекционных заболеваний:

- при выявлении клинически больных овец с окончательно установленным

диагнозом;

- при наличии абортов инфекционной этиологии;

- при выявлении микробоносителей;

- при наличии природных очагов и стационарного благополучия по

инфекционным болезням.

82

11. При специфической профилактике инфекционных болезней

учитывали составы выделенных ассоциатов возбудителей инфекции,

эпизоотическую ситуацию.

В соответствии с разработанной нами схемой профилактических

мероприятий на станции искусственного осеменения животных проводился

контроль качества спермы.

Исследовали сперму от баранов-производителей возраста 2-3 лет (всего 10

проб). Определяли: цвет, запах, консистенцию, объем эякулята, густоту,

активность, процент живых и мертвых спермиев, процент патологических

форм, концентрацию спермы по общепринятым методикам. Проводили

бактериологический анализ спермы производителей.

В результате проведенных исследований было установлено соответствие

качества спермы баранов основным нормативным показателям: объем эякулята

1,0 мл, цвет белый с желтоватым оттенком, запах жиропота, густая, активность

9-10 баллов, концентрация 2,2-2,8 млрд/мл, живых спермиев 92-95%,

патологических форм 2,0- 4,0 % (допускается до 14%).

Бактериологический анализ проб спермы от баранов-производителей

показал следующее: в двух образцах была выделена культура кишечной

палочки (не патогенная для белых мышей). В одной пробе выделена культура

Staphylococcus aureus.

На пункте искусственного осеменения овец проводилась санитарная

оценка технологических процессов. С помощью стерильного физиологического

раствора делали смывы с подготовленной искусственной вагины, шприца-

катетера и влагалищного зеркала. Определяли их бактериологическую

загрязненность. Также определяли микробную и грибковую загрязненность

воздуха лаборатории, манежа и помещения для производителей. Были

выделены Streptococcus, E.coli серотипов 09, 078, Staphylococcus aureus.

Проводилась дезинфекция помещений после предварительной

механической очистки овчарен и выгульных площадок, кормушек и поилок. В

период ягнения дезинфицировали по мере необходимости родильные секции,

83

клетки-кучки, групповые оцарки для маток с ягнятами (в случае аборта и

падежа животных). Проводили контроль за качеством дезинфекции в

соответствии с методикой, изложенной в действующих "Правилах проведения

дезинфекции и дезинвазии объектов государственного ветеринарного надзора"

(2002г).

С этой целью в опытном хозяйстве использовали средство Дезконтэн

(организация-производитель ООО «ДЕЗКОН» г.Москва, Россия).

1. Дезконтэн - дезинфицирующее средство, содержащее в качестве

действующего вещества тетраметилендиэтилентетрамин (35%), а также

поверхностно-активные вещества (алкилдиметилбензиламмоний хлорид 8%,

дидецилдиметиламмоний хлорид 7%), краситель (0,02%), отдушку (1%) и воду

(до 100%).

По внешнему виду представляет собой прозрачную жидкость от светло-

желтого до светло-коричневого цвета со слабым специфическим запахом,

смешивается с водой в любых соотношениях.

2. Дезконтэн выпускают расфасованным по 1,0; 5,0 или 10 л

полиэтиленовых канистрах, укупоренные навинчиваемыми, плотно

закрывающимися крышками.

3. Дезконтэн хранят в защищенных от влаги и солнечных лучей, хорошо

вентилируемых, недоступных для посторонних лиц и животных помещениях,

при температуре от 0оС до 30°С.

Срок годности Дезконтэна при соблюдении условий хранения составляет 1

год со дня изготовления. Срок хранения рабочих растворов - 30 суток.

4. Дезконтэн обладает широким спектром действия в отношении

грамположительных и грамотрицательных бактерий, вирусов и грибов.

Дезинфицирующая активность обусловлена его способностью проникать в

бактериальные клетки и вирусы, взаимодействовать с аминогруппами

пуриновых и пиримидиновых оснований нуклеиновых кислот, блокируя их

матрично-генетическую функцию.

84

5. По степени воздействия на организм Дезконтэн относится к 3 классу

умеренно опасных веществ в соответствии с ГОСТ 12.1.007-76. В насыщающих

концентрациях паров мало опасен (4 класс по степени летучести). В

концентрированном виде проявляет умеренно выраженное местно-

раздражающее действие на слизистые оболочки глаз и кожу. Обладает слабо

выраженными кумулятивными свойствами и сенсибилизирующим действием.

В рекомендуемых для применения концентрациях, не вызывает раздражения

органов дыхательных путей, слизистых оболочек глаз и кожи. Дезконтэн не

обладает коррозионными свойствами, не портит изделия из пластика, резины и

дерева, не обесцвечивает и не портит ткани, не фиксирует органические

загрязнения.

Порядок применения препарата

1. Перед проведением дезинфекции проводили тщательную механическую

очистку, мойку и обезжиривание обрабатываемых поверхностей, т.к.

органические загрязнения снижают дезинфицирующую активность средства.

2. Дезконтэн применяли для профилактической и вынужденной

дезинфекции овцеводческих помещений, находящегося в них технологического

оборудования, вспомогательных объектов овцеводства и инвентаря по уходу за

животными;

3. Дезинфекцию проводили путем мелкокапельного орошения

поверхностей помещений и технологического оборудования в отсутствие

животных с использованием дезустановок.

Рабочие растворы готовили путем добавления соответствующих количеств

Дезконтэна к водопроводной воде. При расчете концентрации рабочих

растворов препарат принимается за 100%-ое вещество (Таблица 9).

85

Таблица 9

Расчет концентрации рабочих растворов Дезконтена

Концентрация

рабочего раствора

(%)

Количества средства и воды, необходимые для

приготовления рабочего раствора

Дезконтэн (мл) Вода (мл)

1 2 3

0,2 2 998

0.5 5 995

1 10 990

3 30 970

4. Профилактическую дезинфекцию поверхностей овцеводческих помещений и

технологического оборудования проводили 0,2-0,5% раствором при норме

расхода 0,3 - 0,5л/м2 и экспозиции 6ч.

5. Допускалось проведение локальной дезинфекции отдельных свободных

от животных станкомест в занятых овцеводческих помещениях, отдельных

единиц оборудования и участков поверхности (столов, пола, стен и др.) при

условии наличия вентиляции помещений и отсутствия людей и животных в

непосредственной близости к обрабатываемым объектам.

6. По истечении установленной экспозиции обеззараживания кормушки,

поилки и другие доступные для животных участки поверхностей, места

непосредственного контакта с сырьем, продукцией животного происхождения,

места возможного скопления остатков Дезконтэна обмывали водой. С

остальных поверхностей смывания остатков Дезконтэна не требовалось.

Животных вводили в помещения после проветривания (открывали окна, двери,

люки, включали вентиляцию) и полного исчезновения запаха.

7. В ходе исследований была определена кратность проведения

дезинфекции животноводческих объектов. Установлено, что уровень

микробной обсемененности, остается сравнительно низким на одинаковом

уровне от 2х до 6ти суток. На 7е – 8е сутки происходит его резкое повышение

86

более чем на 60-80%. Исходя из этого, данное мероприятие проводили каждые

7 дней.

8. Кроме того, установлено, что в первые 10 суток при систематическом

применении препарата «Дезконтэн» после механической очистки и мойки

горячей водой контаминация снижалась на 10-12% от первоначального уровня.

После систематической дезинфекции через 20-30 суток степень контаминации

снижалась на 20-30% от первоначальной.

Проанализировав результаты сравнительных испытаний ряда дезсредств,

проведенных организацией – производителем ООО «ДЕЗКОН» г.Москва,

Россия совместно с ГНУ ВНИИВСГЭ (РАСХН), ФГУЗ Волгоградским НИПЧИ

(Роспотребнадзор) и учитывая результаты собственных исследований мы

пришли к выводу, что дезинфицируемое средство Дезконтен обладает высокой

антимикробной активностью, способно обеспечить инактивацию

микроорганизмов в короткие сроки при малых концентрациях действующих

веществ. Препарат хорошо растворим в воде при температуре от 20С. Обладает

низкой коррозионной активностью в отношении различных материалов и

оборудования, низкой токсичностью для человека, животных. Стоимость одной

обработки 1м2 при расходе 0,5л рабочего раствора на 1м2 невысокая, составляет

0,85-1,43 руб. Средство Дезконтен отвечает требованиям, предъявляемым к

современным средствам дезинфекции для ветеринарии и может использоваться

для профилактики инфекционных болезней овец.

В последнее время появился ряд новых дезинфицирующих средств, спо-

собных остановить распространение заболеваний. Данные средства

легализованы органами Россельхознадзора для применения на территории

Российской Федерации. Эффективность этих препаратов подтверждена

широкими научными и производственными опытами.

87

Сравнительный анализ дезинфекционных средств, применяемых в

ветеринарии.

В системе ветеринарной санитарии применяются дезсредства,

предназначенные для проведения профилактической и вынужденной

дезинфекции при болезнях бактериальной и вирусной этиологии I и II группы.

I группа – контроль по кишечной палочке.

II группа – контроль по золотистому стафилококку.

Критерием стоимости дезсредства является количество и концентрация

рабочего раствора, необходимого для обработки 1м² поверхности.

Количество и концентрация рабочих растворов зависит от группы

устойчивости возбудителей (I и II) и материала обрабатываемой поверхности

(бетон, металл, кафельная плитка и т.д.), а также времени инактивации

бактерий и вирусов (Таблица 10).

88

Таблица 10

Сравнительная характеристика дезсредств, применяемых в ветеринарии

Дез.средство АДВ

Страна-

изгото-

витель

Цена/литр

Концентрация

(%)

Цена 1го литра

рабочего раствора

(руб.)

Стоимость

обработки 1

м2 при

расходе 0.5л.

раб. р-ра на

1м2 (II

группа)

I

группа

II

группа

I

группа

II

группа

1 2 3 4 5 6 7 8 9

Виркон

Тройная соль

персульфата калия

Словения 600 руб. 2.0 2.0 12.0 12.0 6.0

Бромосепт

Дидецилметиламоний

бромид-50%

Этанол-40%

Израиль 1600 руб. 0.1 0.2 1.6 3.2 1.6

Септабик

Дидецилметиламоний

бромид-30%

Мочевина-70%

Израиль 1700 руб. 0.1 0.2 1.8 3.5 1.75

89

1 2 3 4 5 6 7 8 9

Глютекс

ЧАС-10%

Глютаровый альдегид-

4%

Испания 400 руб. 0.3-0.5 0.5-1 1.2-2.0 2.0-4.0 1.0-2.0

Делеголь

Парахлорметилкрезол-

4,5%

Ортифенилфенол-7%

Глютаровый альдегид-

3,75%

Германия 450 руб. 0.3-0.6 0.6-1 1.4-2.3 2.3-4.5 1.15-2.25

Дезконтэн ТМДЭТ Россия 572 руб. 0.2 0.3-0.5 1.14 1.7-2.86 0.85-1.43

Дезэфект

Алкилдиметилбензил-

аммоний хлорид 4,5%

Алкилдиметил (этил-

бензил)аммоний хлорид

4,5%

Россия 375 руб. 2.0 3.0 6.0 9.0 4.5

Бриллиант

0,9% алкилдиметил-

бензиламмоний

хлорида, 0,8%

Глютаровый альдегид

Россия 250 руб. 4.0 8.0 10.0 20.0 10.0

90

1 2 3 4 5 6 7 8 9

Самаровка

алкилдиметилбензил-

аммоний хлорид,

алкилдиметил (этил)

бензиламмоний хлорид,

функциональные

добавки.

Россия 250 руб. 2.0 3.0 5.0 7,5 3.75

Бианол

4% Глутаровый

альдегид,

2,8% глиоксаль,

4% алкилдиметилбензил

аммоний хлорид, ПАВ

Россия 165 руб. 2.0 4.0 1,3 2,6 1.3

Формалин 37% формальдегид Россия 20 руб. 5.0 10.0 1.0 2.0 1.0

Хлоромин Активный хлор Россия 160 руб/кг 1.0 3.0 1.6 4.8 2.4

91

Специфическая профилактика инфекционных болезней овец с поражением

репродуктивных органов.

В период осеменения овцематок в опытном хозяйстве проводилась

профилактическая иммунизация животных с использованием вакцины против

листериоза овец.

Опыт проводили на 30 овцах в ОПХ «Темнолесское», Шпаковского района

Ставропольского края. Перед постановкой опыта провели выборочное клинико-

гематологическое исследование. Установленные показатели соответствовали

физиологической норме для данного вида животных: средняя температура тела

39,1 ± 0,10С, пульс в среднем был равен 80,5 ± 0,4 ударов в минуту, дыхание

20,4 ± 0,5. Термометрию и клиническое обследование овец проводили также и

после вакцинации.

Для проведения опыта были сформированы 2 опытные и 1 контрольная

группы по 10 животных в каждой. Животных иммунизировали перед

осеменением. Перед вакцинацией сыворотки крови всех овец исследовали на

листериоз в РА (для определения фона антител).

Первая группа – вводили внутримышечно 1,5 мл вакцины сухой живой

ассоциированной против листериоза овец из штамма «АУФ» в область

внутренней поверхности бедра. Через 10 дней проводили ревакцинацию

животных той же вакциной в дозе 3,0 мл.

Вторая группа – вакцинировали аналогично и одновременно делали

инъекцию Лигфола в дозе 1,0 мл на животное.

Третья группа – вводили физраствор внутримышечно в дозе 1 мл на

животное.

С целью изучения динамики накопления антител при различных методах

иммунизации в процессе опытов кровь для постановки РА с листериозным

антигенами у овец брали также через 14, 30, 90 дней после иммунизации.

Определяли количество эритроцитов, гемоглобина, общего белка.

92

О реактогенности вакцины судили по общему состоянию животного,

аппетиту, температуре тела, воспалительной реакции в месте введения

биопрепаратов.

В процессе проведенной работы были получены следующие результаты

(Таблица 11).

Таблица 11

Результаты постановки РА сывороток крови овец в трех опытных

группах с сальмонеллезным и листериозным антигенами

№ гр.

Средний титр антител в сыворотке после прививки, через

до прививки 14 дней 30 дней 90 дней

L** L L L

1 2 3 4 5

1 отр. до 1:50 1:160 ± 10,4 1:240 ± 25,3 1:160 ± 16,4

2 - 1:200 ± 15,8 1:280 ± 22,5 1:160 ± 15,6

3 - - - -

L** - титр антител против листериоза овец.

В первой группе животных до иммунизации сыворотка крови оказалась

негативной по отношению к возбудителю листериоза. Через 14 дней после

вакцинации у овцематок выявились антитела против возбудителя листериоза в

титре 1:160 (p < 0,001). Максимальное накопление титров выявилось на 30 день

после иммунизации и составило в среднем - листериозных 1:240 (p < 0,05).

Через 90 дней после вакцинации титры антител удерживались на достаточном

уровне, но имело место их снижение. Титр антител против листериоза составил

1:160 (p < 0,001).

Во второй опытной группе овец достоверное накопление титров антител

отмечалось на 14 день после иммунизации. Выявлены антитела против

возбудителя листериоза в титре 1:200 (p < 0,001), что выше аналогичных

показателей у животных первой группы. Наибольшие титры установлены на

93

30ый день после вакцинации: против возбудителя листериоза 1:280 (p < 0,05),

что также превышает уровень антител в сыворотке крови овец первой группы.

Через 90 дней после иммунизации титры антител снижались и составили 1:160

(p < 0,001).

В третьей опытной группе животных сыворотка крови оказалась

негативной по отношению к возбудителю листериоза.

Анализируя полученные данные можно сделать вывод, что при

иммунизации овец с использованием сухой живой ассоциированной вакцины

против листериоза овец из штамма «АУФ» в сочетании с адаптогеном стресс-

корректором Лигфолом имеет место наибольшее накопление титров антител в

сыворотке крови овец против возбудителей листериоза уже на 14 день после

вакцинации, на 30 день отмечалось их максимальной повышение, на 90 день

титры антител начинали снижаться.

Результатами исследований по изучению динамики гематологических

показателей установлено, что при иммунизации животных количество

эритроцитов и гемоглобина находилось в пределах физиологической нормы

(Таблица 12).

Таблица 12

Динамика гематологических показателей опытных овцематок

№

груп

пы

До вакцинации Через 14 дней Через 30 дней Через 90 дней

Э

(млн) Нв (%)

Э

(млн) Нв (%)

Э

(млн) Нв (%) Э Нв

1 2 3 4 5 6 7 8 9

1 8,8

±0,6

10,2

±0,5

8,4

±1,6

11,3

±1,4

9,0

±0,8

10,9

±0,5

9,1

±0,8

10,2

±0,4

2 8,9

±1,4

10,4

±1,6

8,2

±0,5

12,5

±0,1

9,5

±0,4

11,6

±0,4

9,4

±0,7

10,6

±0,4

3 9,4

±0,8

10,8

±1,5

9,6

±0,7

11,2

±0,5

9,4

±0,9

10,6

±0,3

9,5

±0,2

9,8

±0,5

94

Содержание общего белка в сыворотке крови овец опытных групп на 14

день после иммунизации недостоверно снизилось и составило: в первой группе

84,0 ± 0,5, во второй 82,8 ± 0,3, в контрольной третьей группе 86,0 ± 0,6г/л. На

30 день после вакцинации установлено достоверное повышение указанного

показателя: у животных первой группы — 87,0 ± 0,2г/л; во второй группе – 88,3

± 0,4г/л. в третьей группе уровень общего белка несколько снизился и составил

83,0 ± 0,2г/л (норма 73-9 г/л для овец в сентябре-октябре). Через 90 дней после

иммунизации содержание общего белка в первой и второй группе несколько

снизилось и стало, соответственно, 86,0 ± 0,5 и 87,0 ± 0,1г/л, а в третьей группе

отмечалось его недостоверное увеличение и составило, в среднем, - 84,0 ±

0,8г/л (Таблица 13).

Таблица 13

Содержание общего белка в сыворотке крови опытных овцематок

№

группы

Общий белок

(г/л)

до вакцинации

Общий белок

(г/л)

Через 14 дней

Общий белок

(г/л)

Через 30 дней

Общий белок

(г/л)

Через 90 дней

1 2 3 4 5

1 86,5 ± 0,3 84,0 ± 0,5 87,0 ± 0,2 86,0 ± 0,5

2 85,2 ± 0,8 82,8 ± 0,3 88,3 ± 0,4 87,0 ± 0,1

3 87,0 ± 0,4 86,0 ± 0,6 83,0 ± 0,2 84,0 ± 0,8

Опыты показали, что в течение поствакцинального периода отклонений в

общем состоянии организма овец второй опытной группы не наблюдалось, за

исключением незначительного снижения аппетита у отдельных животных на

первый день после вакцинации.

У животных 1 группы в течение 3-4 дней после вакцинации отмечалась

припухлость на месте введения вакцины против листериоза в области

внутренней поверхности бедра и незначительная хромота, которая усиливалась

после ревакцинации животных. Температура тела повышалась в течение 1-2

дней на 0,5 - 1,00С после иммунизации и на 0,4 - 1,20С после ревакцинации.

95

Через 3 дня после иммунизации и ревакцинации у всех животных температура

тела снижалась до нормы.

В результате наблюдения за животными во время осеменения, суягности,

родов и послеродового периода установлено следующее (Таблица 14). Во всех

группах животные проявили стадию возбуждения полового цикла и были

осеменены; оплодотворяемость овцематок в опытных группах составила 100%;

плодовитость: 110% (1 группа), 120% (2 группа). В контрольной группе

объягнились 90% животных. Абортов, патологии родов и послеродового

периода у овцематок не наблюдалось (Таблица 14).

Таблица 14

Показатели репродуктивной функции иммунизированных овцематок

Груп-

пы

ж-х

Кол-

во

Пришли в

охоту в

первые 17

дней

Пришли в

охоту в

последу-

ющие 14

дней

Яловые Объягни-

лись

Вы-

ход

яг-

нят

Пло-

дови-

тость

ма-

ток

К-во % К-во % К-во % К-во % К-во %

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12

1 10 9 90 1 10 - - 10 100 11 110

2 10 9 90 1 10 - - 10 100 12 120

контр 10 6 60 4 40 1 10 9 90 9 90

3.6 Лечение овцематок при послеродовых эндометритах

При заболевании овец послеродовыми эндометритами необходимо

применять комплексные методы лечения. Схема проведения терапевтических

мероприятий должна учитывать результаты диспансеризации, клинические

проявления, степень тяжести заболевания и уровень резистентности организма

животных. Основными средствами этиотропной терапии являются

антибактериальные препараты, используемые в комбинации со средствами

симптоматического и патогенетического лечения и иммуностимуляторами.

96

Применяются антибиотики пролонгированного и широкого спектра действия с

учетом чувствительности возбудителей инфекции.

В процессе проведения лечебных мероприятий при послеродовых

эндометритах овец в сельскохозяйственных предприятиях мы применяли

следующие препараты.

1. Антибактериальные препараты

1.1. Байтрил – 5% раствор для инъекции; Энромаг – 5% и 10% раствор;

Энросепт – 5% и 10% инъекционный раствор.

Это антимикробные препараты широкого спектра действия для лечения

инфекционных заболеваний сельскохозяйственных животных.

Активнодействующим веществом является энрофлоксацин, действующий на

грамотрицательных микроорганизмов и микоплазм, в т.ч. эшерихий,

сальмонелл, пастерелл, стафилококков, стрептококков, клебсиелл,

псевдомонад, бордетелл, кампилобактерий, клостридий, коринобактерий,

микоплазм.

Энрофлоксацин эффективен в отношении возбудителей, резистентных к

тетрациклинам, аминогликозидам, макролидам, хлораморениколу,

сульфаниламидам и триметоприму.

Указанные антибактериальные препараты быстро поступают в кровь,

проникают практически во все органы и ткани, достигая максимальной

концентрации через 0,5-1 ч после введения, которая сохраняется на протяжении

24 часов.

1.2. Тиломаг – 5% и 20% раствор для инъекций – антибактериальный

препарат, содержащий в качестве действующего вещества антибиотик тилозин

в водно-органическом растворителе и вспомогательные вещества.

Тилозин – антибиотик из группы макролидов. Активен в отношении

большинства грамположительных и грамотрицательных бактерий:

стафилококков, стрептококков, коринобактерий, клостридий, пастерелл,

возбудителя сибирской язвы, псевдомонад, фузобактерий, спирохет, включая

лептоспиру, хламидий, микоплазм и др. После однократной инъекции 20%

97

раствора терапевтическая концентрация тилозина сохраняется в организме не

менее чем в течение 20 часов.

1.3. Окситетрамаг – лекарственный препарат, содержащий в качестве

действующего вещества антибиотик окситетрациклин, раствор для инъекций.

Активен в отношении многих грамположительных и грамотрицательных

микроорганизмов, а также спирохет. Терапевтическая концентрация

антибиотика сохраняется до 48 часов.

1.4. Римокс Л.А. – антибактериальный препарат пролонгированного

действия в форме масляной суспензии для инъекций. 1 мл которого содержит

150г амоксициллина в виде тригидрата.

Амоксициллин является полусинтетическим пенициллином с широким

спектром бактерицидного действия в отношении грамположительных и

грамотрицательных бактерий, включая кишечную палочку, бактерии рода

актинобациллюс, протеус, бордетелла, фузиформис, гемофилюс, некрофорус,

клебсиелла, эризипелотрикс, пастерелла, стрептококки, стафилококки,

сальмонеллы, клостридиум, коринебактериум и др.

Римокс Л.А. быстро проникает в органы и ткани, максимальная

концентрация достигается через 2 часа после внутримышечного и подкожного

введения препарата и сохраняется на терапевтическом уровне в течение 48

часов.

1.5. Тетразол Л.А. – антибактериальный препарат в форме раствора для

инъекции, содержащий в 1 мл – 200 г окситетрациклина дигидрата.

Это антибиотик широкого спектра действия, действующий на

большинство грамположительных и грамотрицательных микроорганизмов,

некоторые виды микоплазм, спирохет, риккетсий, простейших и хламидий.

Данная пролонгированная форма антибиотика после однократной

внутримышечной инъекции обеспечивает ее высокий уровень в крови и тканях

в течение 3 суток.

98

2. Стимуляторы обмена веществ и иммуномодуляторы:

2.1. Катазал – 10% раствор для инъекций. Применяют для животных с

целью профилактики и лечения нарушений обмена веществ, бесплодия и

послеродовых осложнений, повышения сопротивляемости организма к

различным заболеваниям и т.д. В состав препарата входит: бутафосфан,

цианкобаламин, метил-4-гидроксибензоат. Уникальный стимулятор обмена

веществ.

2.2. Гликопин – иммуномодулирующий препарат для животных,

выпускается в форме таблеток, порошка и ампул для инъекций. Применяют для

лечения и профилактики инфекционных заболеваний, для снятия

поствакцинальных осложнений и стрессового состояния у животных, для

повышения общей резистентности беременных самок и их приплода,

сокращения периода инволюционных послеродовых процессов в матке.

2.3. Адаптоген стресс-корректор Лигфол. Это композиционный препарат,

основным действующим началом которого являются гуминовые кислоты. В

состав препарата входят: гуминовые кислоты, натрия пирофосфат

десятиводный, натрия хлорид и деминерализованная апирогенная вода.

Опыт применения нами указанного препарата овцематкам перед родами

показал увеличение общей резистентности организма беременных животных,

повышение неспецифических иммунных факторов местной защиты. Это

облегчает ягнение, профилактирует патологии родов и послеродового периода,

способствует рождению здорового жизнеспособного потомства.

Подтверждением этого являлось отсутствие случаев заболеваемости овец

опытной группы (которым инъецировали Лигфол) в процессе эксперимента. У

всех животных благополучно прошли роды, не было зарегистрировано

субинволюции матки, задержания последа, послеродовых эндометритов.

Родились полноценные здоровые ягнята.

3. Из средств патогенетической терапии могут применяться: надплевральная

новокаиновая блокада по В.В. Мосину – 0,5% раствор новокаина 40 мл;

пресакральная новокаиновая блокада – 1% раствор новокаина, 30 мл.

99

При лечении овцематок, больных гнойно-катаральным эндометритом

рекомендуем проводить также этиопатогенетическую терапию - применять

пресакральную новокаиновую блокаду в сочетании с антимикробными

препаратами (с учетом чувствительности выделенных возбудителей инфекции)

и внутриматочным введением лекарственных веществ (йодинол, спумосан,

АСД фракция 3,2 и др.).

Для лечения овцематок с различными формами послеродовых

эндометритов нами были разработаны и испытаны на животных,

принадлежавших «ИП Манохин», Раменского района Московской области

следующие схемы (Таблица 15).

Схема 1.

1. Байтрил-5% р-р для инъекций. Вводить подкожно, 1 раз в сутки в

течение 3-5 дней. Разовая доза-1мл / 20 кг живой массы.

2. Катозал - 10% р-р для инъекций. Вводить внутримышечно, однократно в

дозе 2,5-8 мл на животное. В случае необходимости повторить на следующий

день.

3. Йодинол - 1% р-р. Вводить внутриматочно, один раз в день в течение 3-5

суток. Разовая доза 50 мл.

4. Синэстрол - 1% р-р для инъекций. Вводить подкожно, 1 раз в день в

течение 3–5 суток. Разовая доза 0,5 мл.

Схема 2.

1. Тетразол - 20% р-р для инъекций. Вводить внутримышечно, однократно,

1 раз в 3 дня. Разовая доза 1 мл / 10 кг живой массы.

2. Пресакральная новокаиновая блокада – 1% р-р новокаина, 30мл.

Вводить 1 раз в 3 дня.

3. Адаптоген стресс-корректор Лигфол. Вводить внутримышечно, 1 раз в 3

дня. Разовая доза 1 мл на животное.

4. АСД (фракция 2 или 3). Вводить внутриматочно, 1 раз в день в течение

5-7 суток. Разовая доза 20 мл АСД + 30 мл растительного масла (смешать перед

применением).

100

Схема 3. Эта схема лечения овцематок, больных гнойно-катаральным

эндометритом применялась в хозяйстве (контрольная группа).

Животным вводили внутримышечно бициллин-3 (600 тыс. ЕД) 1 раз в 3

дня и ежедневно внутриматочно фуразолидоновые палочки.

Таблица 15

Сравнительные методы лечения овцематок, больных

гнойно-катаральным эндометритом

Группы

живот-

ных

Коли-

чество

живот-

ных

Методы

лечения

Длитель-

ность

лечения,

дни

Выздоровели Оплодотворились

голов % голов %

1 2 3 4 5 6 7 8

1 30 Схема 1 9,0 ± 0,05 24 80 19 76

2 30 Схема 2 6,0 ± 0,07 28 95 25 89

3 30 Схема 3 14,0 ±

0,25 18 60 9 50

В первой группе животных (применяли байтрил-5% р-р, катозал-10% р-р

для инъекций, синэстрол-1% р-р, йодинол-1% р-р) длительность лечения

составляла 9,0 ± 0,05 дней, во второй группе овцематок (применяли тетразол-

20% р-р для инъекций, пресакральную новокаиновую блокаду, адаптоген

стресс-корректор Лигфол, АСД - фракцию 2) – 6,0 ± 0,07, в третьей группе

животных (метод применяемый в хозяйстве для лечения овец) – 14,0 ± 0,25 дня.

Анализируя полученные результаты, мы пришли к выводу, что лучшие

результаты отмечаются при лечении овцематок с гнойно-катаральным

эндометритом путем применения пресакральной новокаиновой блокады в

сочетании с внутримышечным введением 20% р-ра тетразола,

внутримышечным введением адаптогена стресс-корректора Лигфол и

101

внутриматочным введением АСД - фракции 2. Длительность лечения животных

этим методом наименьшая – 5,0 ± 0,05 дней, выздоровление наибольшее – 95%

маток, оплодотворяемость овцематок выше по сравнению с животными других

групп и составляет 89%.

Динамика гематологических показателей в определенной степени

согласовывалась с течением заболевания и защитными силами организма

больных животных. При незначительном изменении в общем состоянии

наблюдался лейкоцитоз за счет резкого увеличения сегментоядерных и

палочкоядерных нейтрофилов и эозинофилов. У овцематок с гнойно-

катаральным эндометритом наблюдалось снижение количества общего белка,

некоторое уменьшение эозинофилов, сегментоядерных нейтрофилов и

лимфоцитов. В последующие сутки развития заболевания увеличивалось

количество лейкоцитов, главным образом за счет палочкоядерных

нейтрофилов, лимфоцитов и частично моноцитов.

В результате проводимого лечения происходила постепенная

нормализация гематологических показателей. У овцематок всех подопытных

групп отмечалось повышение количества общего белка, лейкоцитоз в первые

дни лечения за счет нейтрофилии, а затем возращение числа лейкоцитов к

нормальному уровню, стабилизация количества эритроцитов и гемоглобина. У

животных контрольной группы отмечалось замедленное улучшение

гематологических показателей, процесс восстановления крови шел медленно.

Анализ показателей крови при лечении овцематок всех групп

свидетельствовал о том, что в результате применения пресакральной

новокаиновой блокады в сочетании с внутримышечным введением 20%-го р-ра

тетразола, внутримышечным введением адаптогена стресс-корректора Лигфол

и внутриматочным введением масляного р-ра АСД - фракция 2 происходит

лучшая стабилизация гематологических параметров.

Положительные результаты при лечении этим методом проявились

несколько ускоренным снижением температуры тела, нормализацией общего

состояния, показателей пульса и дыхания, повышением аппетита у больных

102

животных по сравнению с овцематками других групп. Со стороны крови

отмечался нейтрофильный лейкоцитоз, эозинофилия, повышение общего белка,

количества эритроцитов и гемоглобина.

Экономическая эффективность лечебных и специфических

профилактических мероприятий

При сравнении методов лечения овцематок, больных гнойно-катаральным

эндометритом, рассчитывали экономическую эффективность проведенных

лечебных мероприятий по каждой группе животных (Таблица 16).

В первой группе маток для их лечения применяли: байтрил -5% раствор

(при стоимости 100 мл / 363 руб.), катозал – 10% раствор (100 мл / 330 руб.),

йодинол –1% раствор (100 мл / 12 руб.), синэстрол –1% раствор (1мл / 1,5 руб.).

У = 6 х 50 х 28 – 300 = 8100;

Кл = Кп : Кз : Кл = 141 : 580 = 0,24;

Пу = 30 х 0,24 х 50 х 28 – 8100 = 1980;

Зв = 4181;

Эв = 1980 – 4181 = -2201;

Эр = -2201 : 4181 = -0,5.

Во второй группе маток для их лечения применяли: тетразол – 20%

раствор (50 мл / 50 руб.), пресакральную новокаиновую блокаду – 1% р-р

новокаина (100 мл / 3,5 руб.), адаптоген стресс-корректор Лигфол (100 мл / 400

руб.), АСД – фракция №3 (100 мл / 7,6 руб.).

У = 2 х 50 х 28 – 100 = 2700;

Пу = 30 х 0,24 х 50 х 28 – 2700 = 7380;

Зв = 1398;

Эв = 7380 – 1398 = 5982;

Эр = 5982 : 1398 = 4,3.

В третьей группе для лечения маток применяли бициллин-3 (600 ЕД / 6,65

руб.) и фуразолидоновые палочки (10 шт. / 14,3 руб.).

У = 12 х 50 х 28 – 600 = 16200;

Пу = 30 х 0,24 х 50 х 28 – 16200 = - 6120;

103

Зв = 2198;

Эв = -6020 - 2198 = -8218;

Эр = -8218 : 2198 = -3,7.

Таблица 16

Экономическая эффективность методов лечения овцематок, больных

гнойно-катаральным эндометритом при смешанных инфекциях (руб.)

Группы

животных

n = 30

Экономи-

ческий

ущерб (У)

Затраты на

лечение

(Зв)

Предотвра-

щенный

ущерб (Пу)

Экономическая

эффективность

Общая

(Эв)

На 1 рубль

затрат (Эр)

1 2 3 4 5 6

1 8100 4181 1980 -2201 -0,5

2 2700 1491 7380 5982 4,3

3 16200 2198 -6120 -8218 -3,8

Анализируя полученные данные, можно сделать вывод, что с

экономической точки зрения, наиболее эффективным является лечение

больных овцематок по схеме № 2: применение 20%-ного раствора тетразола,

пресакральной новокаиновой блокады (1% р-р новокаина), адаптогена стресс-

корректора Лигфол, АСД (фракция 3). При указанном методе проведения

ветеринарных мероприятий предотвращенный экономический ущерб составил

7380 рублей, затраты на лечение 1398 рублей, общая экономическая

эффективность 5982 рубля, экономическая эффективность на рубль затрат 4,3

руб. Наилучшая экономическая эффективность указанного метода лечения

больных овцематок обусловлена сокращением срока их переболевания и

небольшими (по сравнению с другими методами) затратами на лечение. Не

эффективными оказались схемы проведения лечебных мероприятий №1 и №3

(применяемая в хозяйстве) из-за высокой стоимости ветеринарных препаратов

и длительности лечения животных.

104

4. Обсуждение результатов собственных исследований

Овцеводство всегда являлось практически единственным источником

важнейших видов продукции – шерсти, мяса, молока, смушков, меховых и

шубных овчин.

В условиях перехода к рыночной экономике в овцеводстве России

сложилась критическая ситуация, выразившаяся в резком сокращении

численности овец, уменьшении производства всех видов овцеводческой

продукции, ухудшении материально–технического оснащения и научного

обеспечения этой важнейшей отрасли народного хозяйства.

Успешное восстановление овцеводства, его адаптация к условиям

внешнего и внутреннего рынка потребовало разработки научно-обоснованных

программ на длительную перспективу, определяющих как основные концепции

его развития, так и меры государственной поддержки отрасли.

В настоящее время в России всё больше внимания уделяется развитию

одной из важнейших отраслей АПК – овцеводству. Выращиваются породы

шерстного и мясошерстного направления, тонкорунные и полутонкорунные. В

ряде регионов России разработаны и осуществляется «Целевые программы

создания мясного овцеводства». Они предусматривают скрещивание местных

тонкорунных маток с баранами импортных пород: тексель, полл дорсет,

остфризская, австралийский меринос.

Работа над этим проектом, наравне с другими, включает в себя такие

задачи, как:

- Создание высокопродуктивного типа овец мясного направления,

максимально приспособленного и адаптированного к природно-климатическим

условиям зон разведения, обладающего отличными вкусовыми качествами

мяса, плодовитостью, молочностью и хорошим материнским инстинктом.

- Разработку и внедрение эффективных систем воспроизводства,

интенсивного нагула и откорма ягнят и молодняка овец.

105

- Проведение ветеринарных мероприятий по борьбе с бесплодием овец и

профилактике заболеваемости молодняка.

Однако серьезной проблемой в реализации задач по увеличению поголовья

овец и повышения их продуктивности является низкая оплодотворяемость и

высокий процент бесплодия маточного поголовья, в частности

симптоматического, т.е. возникающего в результате развития патологических

процессов в половых органах животных.

Одной из причин симптоматического бесплодия у овцематок является

патология родов, которая встречается у 4,9 – 34% животных. Нарушение

технологии содержания и кормления, стрижка овец, отбивка ягнят, дисбаланс

параметров микроклимата животноводческих помещений, зооветеринарные

мероприятия являются серьезными стресс-факторами для беременных овец.

Развитию акушерско-гинекологической патологии способствует нарушение

нейро-гуморального регулирования, обмена веществ, кроветворения, иммунной

защиты, снижение естественной резистентности организма. Результат всего

этого - аборты, патология родов, задержание последа, субинволюция матки,

развитие внутриутробной гипоксии молодняка. Конечный результат –

бесплодие маточного поголовья и заболеваемость молодняка.

В результате проведения исследования маточного поголовья овец в

овцеводческих хозяйствах Раменского района Московской области нами были

выявлены две формы бесплодия – симптоматическое и алиментарное. Всего

было обследовано 300 овцематок, из которых 18% были признаны

бесплодными (55 животных). Из них с симптоматическим бесплодием

выявлено 35 овец и с алиментарным бесплодием 25 овец, что составило,

соответственно, 12% и 8% от общего поголовья обследованных овцематок.

Анализ условий содержания и кормления овцематок показал нарушения

санитарно-гигиенических норм, неполноценность рационов кормления, что

оказывало отрицательное влияние на биохимические показатели сыворотки

крови овцематок, естественной резистентности их организма. В конечном итоге

106

это также сказывалось на полноценной половой цикличности самок, их

оплодотворяемости и плодовитости.

При исследования 30 проб сыворотки крови от овцематок, принадлежащих

«ИП Манохин», Раменского района Московской области было установлено:

гипокальцемия - в 60% проб, гипофосфатемия - в 60% проб, гиперкетонемия - в

50% проб, гипопротеинемия - в 20% проб, снижение резервной щелочности - в

60% проб, гипогликемия в 50% проб.

Другие полученные нами данные свидетельствуют о значительном

ухудшении показателей неспецифической резистентности у животных,

находящихся в условиях нарушения норм содержания и кормления. У них

были снижены показатели: лизоцимной активности сыворотки крови в среднем

на 15,8%, бактерицидной активности на 7,7%, фагоцитарной активности на

14,6% по сравнению с аналогичными показателями животных, находящихся в

условиях оптимизации санитарно-гигиенических норм (контрольная группа).

Снижение факторов местной защиты организма овцематок было

установлено и при определении фагоцитарной активности нейтрофилов

маточной слизи. У животных опытной группы в среднем в 2 раза был снижен

фагоцитарный индекс и процент фагоцитоза по сравнению с овцематками

контрольной группы.

При проведении исследований маточного поголовья овец нами было

установлено, что причиной массовых абортов животных, патологических

родов, тяжелых послеродовых осложнений являются инфекционные болезни,

поражающие органы воспроизводства (сальмонеллез, листериоз,

кампилобактериоз, хламидиоз и др.). Это подтверждает литературные данные

многих исследователей: А.И. Лопырина и Н.В. Логинова (1956), Ч.А. Рзаева

(1976), В.В. Михайленко (1999, 2000), У.М. Нарымбетовой, Б.Т. Толысбаева

(2001), К.С. Шманова (2002), Л.А. Гнездиловой (2005) и др.

Анализ данных ветеринарной лаборатории показал, что у овец наибольший

процент составляет сальмонеллез и листериоз (до 8 и 19%), а также

107

кампилобактериоз – до 4% положительных проб от общего количества

исследованных.

Указанные болезни отрицательно воздействуют на организм овцематок,

приводят к нарушению их воспроизводительной функции и, как следствие, к

симптоматическому бесплодию. Это было установлено нами в периоды

осеменения, ягнения и после родов овец.

Анализ проведенных исследований нарушения воспроизводительной

функции у переболевших инфекционными заболеваниями овцематок (опытная

группа) показал, что 60% животных не проявили стадии возбуждения в течение

двух половых циклов и остались яловыми, патологические роды и

послеродовые осложнения регистрировались у 63% маток. В контрольной

группе (не переболевшие животные) объягнились 90,0% овец, патологические

роды наблюдались у 8%, послеродовые осложнения – у 5,0% маток.

Считаем, что несоблюдение санитарно-гигиенических норм следует

рассматривать как существенный стресс-фактор, действующий на организм,

который способствует возникновению значительных функциональных и

органических нарушений в нервной, сердечно-сосудистой, эндокринной и др.

системах.

В результате этого снижается естественная резистентность овцематок,

активизируется патогенная микрофлора, которая может вызвать инфекционные

болезни с синдромом поражения репродуктивных органов, приводящие в

дальнейшем к бесплодию животных.

Анализ ветеринарных отчетов по Московской области показал, что

имеющиеся сведения об акушерско–гинекологической патологии и

инфекционных болезнях овец с синдромом поражения репродуктивных органов

в отдельных хозяйствах или даже районах чаще получены спорадически. Они

не позволяют реально оценить степень суммарного ущерба, наносимого этими

заболеваниями и планировать проведение ветеринарно–санитарных

мероприятий на комплексной основе.

108

В сельскохозяйственных предприятиях РФ не осуществляется

систематический контроль за состоянием воспроизводства овец, не

разработаны схемы, не проводятся общепрофилактические и специальные

ветеринарные мероприятия, направленные на борьбу с симптоматическим

бесплодием овец инфекционной и неинфекционной этиологии.

Считаем, что единственным методологическим приемом, позволяющим

осуществлять контроль за состоянием воспроизводства овец, своевременно

выявлять больных животных и проводить профилактические и лечебные

мероприятия может быть акушерско-гинекологическая диспансеризация.

Указанная система проведения диагностической работы позволяет

осуществлять систематический контроль за состоянием воспроизводства

животных, устанавливать причины нарушения половых циклов у овцематок,

проводить мероприятия по стимуляции их половой функции, своевременно

выявлять больных овец и животных-микробоносителей, прогнозировать

течение родового процесса, проводить профилактические и лечебные

мероприятия.

Проведение разработанной нами акушерско-гинекологической

диспансеризации, а также в последующем лечебно–профилактических

мероприятий позволило в ряде сельскохозяйственных предприятий Московской

области снизить процент заболеваемости овец с 40 до 10%, повысить

плодовитость овцематок до 110%, а сохранность молодняка – до 96%. Были

установлены причины нарушения у них половых циклов. В последующем

осуществлялись мероприятия по стимуляции половой функции, повышению

неспецифической резистентности организма овцематок (применение

адаптогена стресс–корректора Лигфол), проводились общие и специфические

профилактические мероприятия с использованием дезинфицирующего средства

нового поколения Дезконтен и путем проведения комплексной вакцинации с

применением препарата Лигфол.

Результаты проведенных нами многолетних наблюдений показали, что

инфекционные болезни, поражающие органы воспроизводства, являются

109

причиной массовых абортов животных, патологических родов, тяжелых

послеродовых осложнений, приводят к бесплодию и наносят значительный

экономический ущерб овцеводству в различных регионах РФ.

В настоящее время всё ещё нет единого мнения об эффективности

применяемых методов профилактики аушерско-гинекологических заболеваний

у овец.

С целью решения этих проблем в период беременности и родов овцематок

нами совместно с сотрудниками Ставропольского НИИЖК проводились

испытания адаптогена стресс-корректора Лигфол. Это композиционный

препарат, основным действующим началом которого являются гуминовые

кислоты. В состав препарата входят: гуминовые кислоты, натрия пирофосфат

десятиводный, натрия хлорид и деминерализованная апирогенная вода. Это

стерильный препарат в форме инъекционного раствора для парентерального

применения.

Многолетние испытания адаптогена стресс-корректора Лигфола показали

его эффективность на разных видах животных.

В работах Берковича А.М., Бузламы В.С., Бузламы С.В., Лобашовой О.В. и

др. (2003, 2005, 2006) представлены данные и обсуждаются результаты

исследований по применению адаптогена стресс-корректора - препарата

Лигфол (гуминовые вещества, полученные при гидролизе природного

(древесного) лигнина, натрия пирофосфат десятиводный, натрия хлорид и

апирогенная вода) на различных видах сельскохозяйственных животных, а

также у собак. Показана его эффективность при целом ряде заболеваний.

Проведенные нами испытания показали, что применение овцематкам

перед родами адаптогена стресс–корректора Лигфола увеличивает общую

резистентность организма беременных животных, повышает неспецифические

иммунные факторы местной защиты. Применение Лигфола профилактирует

патологии родов и послеродового периода. Подтверждением этого является

отсутствие случаев заболеваемости овец опытной группы в процессе

эксперимента. У всех животных благополучно прошли роды, не было

110

зарегистрировано субинволюции матки, задержания последа, послеродовых

эндометритов. Кроме того, использование адаптогена стресс-корректора

Лигфола суягным овцематкам способствует рождению здоровых

жизнеспособных ягнят с большей живой массой тела по сравнению с

животными контрольной группы. Имело место достоверное увеличение живой

массы баранчиков и ярочек при рождении, полученных от овцематок опытной

группы (в среднем 4,43 ± 0,33кг и 3,87 ± 0,12кг, соответственно) по сравнению

с живой массой ягнят контрольной группы (4,17 ± 0,46 кг и 3,68 ± 0,33кг).

Эти животные полноценно развивались, в группе не было

зарегистрировано случаев заболевания и к моменту отбивки. Также отмечалось

достоверное увеличение их продуктивных качеств по сравнению с контролем.

В результате проведенных исследований через 14 дней после родов в

контрольной группе установлена заболеваемость 2 ягнят контрольной группы:

№1678 и № 1394, что составило 20% от количества животных в группе. У

молодняка отмечалось отсутствие аппетита, депрессия, атаксия, диарея.

Фекалии жидкой консистенции, желто-серого цвета. Температура 39,50С и

39,90С, пульс 155 и 157, дыхание 47 и 54, соответственно. В дальнейшем,

ягненок №1678 пал, а ягненок № 1394 в результате проводимого лечения

выздоровел.

Считаем, что адаптоген широкого действия Лигфол сможет оказать

помощь ветеринарным специалистам в борьбе с симптоматическим бесплодием

овцематок, в повышении их воспроизводительной способности и

продуктивности. А в связи с этим и в решении отдельных задач по

дальнейшему развитию важной отрасли агропромышленного комплекса –

овцеводства.

В неблагополучных хозяйствах по инфекционным болезням овец с

поражением репродуктивных органов нами проводился комплекс

общепрофилактических и специальных ветеринарных мероприятий.

Специфическая и общая профилактика абортогенных инфекционных

болезней овец должна учитывать систему содержания животных,

111

эпизоотическую ситуацию, сезонность проявления заболеваний, результаты

акушерско-гинекологической диспансеризации маток, составы выявленных

возбудителей инфекции. Система проведения профилактических мероприятий

органически должна вписываться в технологические циклы при пастбищном и

стойловом содержании овцематок. Необходимо проводить:

1. Карантинирование вновь поступивших животных.

2. Акушерско-гинекологическую диспансеризацию овцематок.

3. Контроль на станциях искусственного осеменения овец.

4. Санитарно-гигиеническую оценку состояния овцеводческих помещений.

5. Бактериологический, микологический, санитарный анализ качества

кормов и воды, контроль за состоянием пастбищ.

6. Технологическую дезинфекцию помещений, выгульных площадок,

инвентаря.

7. Дератизацию на территории ферм и прилегающих участках.

8. Противоклещевые мероприятия.

9. Профилактическую комплексную или ассоциированную вакцинацию

овец.

10. Применение биологически активных веществ для повышения

естественной резистентности организма животных

11. Лечение заболевших овцематок

С целью профилактики инфекционных болезней овец с синдромом

поражения репродуктивных органов рекомендуем осуществлять комплекс

мероприятий, включающий проведение вакцинации овец и дезинфекции

помещений.

В период осеменения овцематок в опытном хозяйстве проводилась

профилактическая иммунизация животных с использованием вакцины против

листериоза овец.

Для проведения опыта были сформированы 2 опытные и 1 контрольная

группы по 10 животных в каждой. Животных иммунизировали перед

осеменением. Перед вакцинацией сыворотки крови всех овец исследовали на

112

наличие антител против возбудителя листериоза в РА (для определения фона

антител).

Первая группа – вводили внутримышечно 1,5 мл вакцины сухой живой

ассоциированной против листериоза овец из штамма «АУФ» в область

внутренней поверхности бедра. Через 10 дней животных ревакцинировали той

же вакциной в дозе 3,0 мл.

Вторая группа – вакцинировали аналогично и одновременно делали

инъекцию Лигфола в дозе 1,0 мл на животное.

Третья группа – вводили физраствор внутримышечно в дозе 1 мл на

животное.

Анализируя полученные данные мы пришли к выводу, что при

иммунизации овец с использованием вакцины сухой живой ассоциированной

против листериоза овец из штамма «АУФ» в сочетании с адаптогеном стресс-

корректором Лигфолом имеет место наибольшее накопление титров антител в

сыворотке крови овец против возбудителей листериоза. Уже на 14 день после

вакцинации, на 30 день отмечалось их максимальной повышение, на 90 день

титры антител начинали снижаться.

Результатами исследований по изучению динамики гематологических

показателей установлено, что при иммунизации животных количество

эритроцитов и гемоглобина находилось в пределах физиологической нормы.

Опыты показали, что в течение поствакцинального периода отклонений в

общем состоянии организма овец второй опытной группы не наблюдалось, за

исключением незначительного снижения аппетита у отдельных животных на

первый день после вакцинации.

У животных 1 группы в течение 3-4 дней после вакцинации отмечалась

припухлость на месте введения вакцины против листериоза в области

внутренней поверхности бедра и незначительная хромота, которая усиливалась

после ревакцинации животных. Температура тела повышалась в течение 1-2

дней на 0,5-1,0 0С после иммунизации и на 0,4-1,2 0С после ревакцинации.

113

Через 3 дня после иммунизации и ревакцинации у всех животных температура

тела снижалась до нормы.

В результате наблюдения за животными во время осеменения, суягности,

родов и послеродового периода установлено следующее:

Во всех группах животные проявили стадию возбуждения полового цикла

и были осеменены, оплодотворяемость овцематок в опытных группах составила

100%; плодовитость: 110% (1 группа), 120% (2 группа). В контрольной группе

объягнились 90% животных. Абортов, патологии родов и послеродового

периода у овцематок не наблюдалось.

Анализ проведенных нами исследований позволяет рекомендовать для

повышения специфических титров антител применение вакцины в сочетании с

препаратом Лигфол.

Необходимость профилактики инфекционных болезней овец с поражением

репродуктивных органов обусловлена зооантропонозным характером

некоторых из них (листериоз, хламидиоз, сальмонеллез, кампилобактериоз) и

определенной опасностью, которую они представляют для людей.

В связи с этим обязательным элементом по разрыву эпизоотической цепи

является проведение дезинфекции овцеводческих помещений.

С этой целью в опытном хозяйстве использовали средство Дезконтэн

(организация-производитель ООО «ДЕЗКОН» г.Москва, Россия).

Дезконтэн - дезинфицирующее средство, содержащее в качестве

действующего вещества тетраметилендиэтилентетрамин (35%), а также

поверхностно-активные вещества (алкилдиметилбензиламмоний хлорид 8%,

дидецилдиметиламмоний хлорид 7%), краситель (0,02%), отдушку (1%) и воду

(до 100%).

Проанализировав результаты сравнительных испытаний ряда дезсредств,

проведенных организацией – производителем ООО «ДЕЗКОН» г.Москва,

Россия совместно с ГНУ ВНИИВСГЭ (РАСХН), ФГУЗ Волгоградским НИПЧИ

(Роспотребнадзор) и учитывая результаты собственных исследований мы

пришли к выводу, что дезинфицирущее средство Дезконтен обладает высокой

114

антимикробной активностью, способен обеспечить инактивацию

микроорганизмов в короткие сроки при малых концентрациях действующих

веществ. Хорошо растворим в воде при температуре от 20С. Обладает низкой

коррозионной активностью в отношении различных материалов и

оборудования, низкой токсичностью для человека, животных. Стоимость одной

обработки 1м2 при расходе 0,5л рабочего раствора на 1м2 невысокая, составляет

0,85-1,43 руб. Средство Дезконтен отвечает требованиям, предъявляемым к

современным средствам дезинфекции для ветеринарии и может использоваться

для профилактики инфекционных болезней овец.

При заболевании овец послеродовыми эндометритами необходимо

применять комплексные методы лечения. Схема проведения терапевтических

мероприятий должна учитывать: результаты диспансеризации, клинические

проявления, степень тяжести заболевания и уровень резистентности организма

животных. Основными средствами этиотропной терапии являются

антибактериальные препараты, используемые в комбинации со средствами

симптоматического и патогенетического лечения и иммуностимуляторами.

Применяются антибиотики пролонгированного и широкого спектра действия с

учетом чувствительности возбудителей инфекции.

Для лечения овцематок с различными формами послеродовых

эндометритов нами были разработаны и испытаны на животных,

принадлежавших «ИП Манохин», Раменского района Московской области три

схемы лечения.

В первой группе животных (применяли байтрил-5% р-р, катозал-10% р-р

для инъекций, синэстрол-1% р-р, йодинол-1% р-р) длительность лечения

составляла 9,0 ± 0,05 дней, во второй группе овцематок (применяли тетразол-

20% р-р для инъекций, пресакральную новокаиновую блокаду, адаптоген

стресс-корректор Лигфол, АСД - фракцию 2) – 6,0 ± 0,07, в третьей группе

животных (метод применяемый в хозяйстве для лечения овец) – 14,0 ± 0,25 дня.

Анализируя полученные данные мы пришли к выводу, что лучшие

результаты отмечаются при лечении овцематок с гнойно-катаральным

115

эндометритом путем применения пресакральной новокаиновой блокады в

сочетании с внутримышечным введением 20% р-ра тетразола,

внутримышечным введением адаптогена стресс-корректора Лигфол и

внутриматочным введением АСД - фракции 2. Длительность лечения животных

этим методом наименьшая – 5,0 ± 0,05 дней, выздоровление наибольшее – 95%

маток, оплодотворяемость овцематок выше по сравнению с животными других

групп и составляет 89%.

Анализ показателей крови при лечении овцематок всех групп

свидетельствовал о том, что в результате применения пресакральной

новокаиновой блокады в сочетании с внутримышечным введением 20%-го р-ра

тетразола, внутримышечным введением адаптогена стресс-корректора Лигфол

и внутриматочным введением масляного р-ра АСД - фракция 2 происходит

лучшая стабилизация гематологических параметров.

Положительные результаты при лечении этим методом проявились

несколько ускоренным снижением температуры тела, нормализацией общего

состояния, показателей пульса и дыхания, повышением аппетита у больных

животных по сравнению с овцематками других групп. Со стороны крови

отмечался нейтрофильный лейкоцитоз, эозинофилия, повышение общего белка,

количества эритроцитов и гемоглобина.

С экономической точки зрения, наиболее эффективным также является

лечение больных овцематок по схеме № 2: применение 20%-го раствора

тетразола, пресакральной новокаиновой блокады (1% р-р новокаина),

адаптогена стресс-корректора Лигфол, АСД (фракция 3). При указанном методе

проведения ветеринарных мероприятий предотвращенный экономический

ущерб составил 7380 рублей, затраты на лечение 1398 рублей, общая

экономическая эффективность 5982 рубля, экономическая эффективность на

рубль затрат 4,3 руб. Наилучшая экономическая эффективность указанного

метода лечения больных овцематок обусловлена сокращением срока их

переболевания и небольшими (по сравнению с другими методами) затратами на

лечение. Не эффективными оказались схемы проведения лечебных

116

мероприятий №1 и №3 (применяемая в хозяйстве) из-за высокой стоимости

ветеринарных препаратов и длительности лечения животных.

5.Выводы

1.Основными причинами симптоматического бесплодия овец является

патология родов, суягности и послеродового периода, возникающая, чаще

всего, в связи со снижением резистентности организма животных по причине

нарушения режима кормления и содержания, а также в результате воздействия

некоторых возбудителей инфекционных болезней (листерии, сальмонеллы,

кампилобактеры).

2. С целью проведения эффективного мониторинга состояния воспроизводства

овец необходимо осуществлять систему ветеринарного надзора на основании

комплекса современных методов диагностики с обязательным проведением

акушерско-гинекологической диспансеризации. Это позволило снизить процент

заболеваемости овец с 40 до 10%, повысить плодовитость овцематок до 110%, а

сохранность молодняка – до 96%.

3. Применение овцематкам перед родами адаптогена стресс-корректора

лигфола (двукратно в дозе 1мл) увеличивает общую резистентность организма

беременных животных, повышает неспецифические иммунные факторы

местной защиты, профилактирует патологии родов и послеродового периода,

способствует рождению здорового жизнеспособного потомства.

4. С целью профилактики инфекционных болезней овец с синдромом

поражения репродуктивных органов эффективно осуществлять комплекс

мероприятий, включающий проведение вакцинации овец с использованием

лигфола и дезинфекции помещений с применением дезосредства дезконтен.

5. При лечении овцематок с гнойно-катаральным эндометритом эффективным

оказалось одновременное проведение этиотропного и симптоматического

лечения, в частности: применение пресакральной новокаиновой блокады в

сочетании с внутримышечным введением 20% р-ра тетразола,

внутримышечным введением адаптогена стресс-корректора Лигфол и

117

внутриматочным введением АСД - фракции 2. Длительность лечения животных

этим методом наименьшая – 5,0 ± 0,05 дней, выздоровление наибольшее – 95%

маток, оплодотворяемость овцематок выше по сравнению с животными других

групп и составляет 89%.

118

6. Практические предложения

1. Для проведения эффективного мониторинга состояния воспроизводства

овец ветеринарным специалистам предложена система мероприятий с

применением акушерско-гинекологической диспансеризации.

2. Для повышения общей резистентности организма беременных

животных, повышения неспецифических иммунных факторов местной защиты,

профилактики патологии родов и послеродового периода, с целью рождения

здорового жизнеспособного потомства рекомендовано применение овцематкам

перед родами адаптогена стресс-корректора лигфол (двукратно в дозе 1мл).

3. Предложено проведение специфической профилактики инфекционных

болезней овец с поражением репродуктивных органов путем использования

вакцины в сочетании с препаратом лигфол. А также проведение дезинфекции

овцеводческих помещений с применением нового дезинфицирующего средства

дезконтен.

4. Практическим ветеринарным специалистам рекомендованы

эффективные схемы лечения овец с послеродовым эндометритом.

119

7. Список использованной литературы

1. Акатов В.А., Ветеринарное акушерство и гинекология / В.А.Акатов, Г.А.

Кононов.- М.:Колос, 1977.-656 с.

2. Актаев, А. Эпизоотологическая структура абортов у овец в хозяйствах

Чикментской области / А. Актаев // Тр./ Алма-Атин. Зовет. Ин-ь. – 1969.-

Т.16.- с.62-67.

3. Актуальные проблемы инфекционной патологии сельскохозяйственных

животных. - М., ВИЭВ, - 1985 - 167с.

4. Алиев, Н.Я. Послеродовые болезни репродуктивных органов овец /Н.Я.

Алиев //Болезни с/х животных: Сб. тр. / Уз. НИВИ. - Ташкент,1976. - Т.25. -

С.18 - 21.

5. Аль - Зоуд Хуссейн. Характеристика клинического проявления

ассоциированного течения бруцеллеза и сальмонеллеза овец в Иордании /Аль -

Зоуд Хуссейн //Материалы 4 съезда паразитоценологов Украины. - Харьков,

1995. - С.10 - 11.

6. Аманулаев, К. Удаление последа при абортах / К.Аманулаев. //

Овцеводство. – 1969. - №12. – с. 32.

7. Андриишин, Ю.Т. Патоморфологические изменения у овец при

экспериментальном энзоотическом аборте /Ю.Т. Андриишин //Ветеринария. -

1975. - №8. - С.72 - 76.

8. Афанасьев, Е.Н. Листериоз – некоторые аспекты распространения и

диагностики /Е.Н. Афанасьев, И.С.Тюменцева, Е.В. Алиева и др. //Вестник

ветеринарии. - 2003. - №3. - С.4 - 6.

9. Бакулов, И.А. Международный симпозиум по проблемам листериоза

/И.А. Бакулов //Вестник РАСХН. - 1992. - № 5. - С.60 - 62.

10. Беляев В.И. Новый антиоксидант селекор и эффективность его

применения в ветеринарии / В.И. Беляев, Д.В. Дягтерев, Т.Е. Мельникова//Мат.

межд. науч.-практ. конф. «Свободные радикалы, антиоксиданты и здоровье

животных».-Воронеж,2004.-С.166-171

120

11. Беркович, А.М. Лигфол адаптоген стресс-корректор нового поколения.

Повышение продуктивного здоровья животных / А.М.Беркович, В.С. Бузлама,

Н.П. Мещеряков Н.П.- М.-Воронеж: «Кварта»,2003.-148с.

12. Беркович, А.М. Лигфол – новый отечественный ветеринарный

препарат широкого спектра действия / Беркович А.М., Бузлама В.С., Бузлама

С.В. Лобашова О.В. - "Ветеринарная Практика", 2003.- №3(22).- с.23-27.

13. Беркович, А.М. Лигфол адаптоген стресс-корректор нового поколения /

А.М.Беркович, В.С. Бузлама, Н.П. Мещеряков Н.П.// Сб. докл. конференции

"Итоги и перспективы применения гуминовых препаратов в продуктивном

животноводстве, коневодстве и птицеводстве"- М.- 2006.-с.14-17с.

14. Бияшев, К. Б. Апробация живых вакцин против сальмонеллезного

аборта овец /К.Б. Бияшев, Н.И. Ахмедсадыков //Вестн. с/х наук Казахстана. -

1994. - № 2. - С.88 - 91.

15. Болезни овец в Ставропольском крае /Сб. науч. тр. под. ред.

Г.Башкатова //НИВС. - Ставрополь,1993. - 176с.

16. Бонадонна, Т. Генетическое изучение плодовитости и бесплодия

сельскохозяйственных животных. /Т.Г. Бонадонна. - М.:ВНИИТЭИСХ, 1970. -

41с.

17. Бочаров, И.А. Бесплодие с/х животных /И.А.Бородулин.-

Л.:Сельгозиздат, 1956.- с.145- 157.

18. Брехман, И.И. Человек и биологически активные вещества /И.И.

Брехман. – М.1980 – 141с.

19. Бузлама, С.В. Стресс-корректорное действие и разработка показаний к

применению лигфола для повышения резистентности свиней: Автореф.

дис.канд.вет.н. /С.В. Бузлама.-Воронеж.-2003.-22с.

20. Бузлама, В.С. Активные формы кислорода, антиоксиданты адаптогены

/В.С.Бузлама // Свободные радикалы, антиоксиданты и здоровье животных.

Матер. Междунар. науч.-практ.-конф. Воронеж.2004.- С. 183-186.

121

21. Бурлуцкий, И. Колибактериоз и сальмонеллез каракульских овец

/И.Бурлуцкий, Г.Сарымсаков //Сельское хозяйство Узбекистана. - 1989. - № 4. -

С. - 17 - 18.

22. Васильева, Е.А. Клиническая биохимия сельскохозяйственных

животных /Е.А. Васильева. - М.: Россельхозиздат,1982. - 254с.

12. Власов, С.А. Фетоплацентарная недостаточность у коров /С.А.Власов.

– Воронеж:2000. – 221с.

23. Волков, Г.К. Гигиена в промышленном овцеводстве /Г.К. Волков. - М.:

Россельхозиздат,1980. - 190 с.

24. Ганчев, Т. Аборты у овец /Т.Ганчев // Болгарский институт биологии и

патологии размножения с/х животных.- София, 1960.- Т.№2.-199с.

25. Голубцов, А.М. Применение тканевого препарата из плаценты коров в

воспроизводстве /А.М. Голубцов, Е.А. Олексиевич //Актуальные проблемы

биологии воспроизводства: Мат. межд. науч.-практ. конф.-Дубровицы-Быково.-

2007.-С.251-253.

26. Гордон, А. Контроль воспроизводства сельскохозяйственных животных

/А. Гордон.-М.: Агропромиздат.-1988.-415с.

27. Губаревич, Я.Г. Акушерство мелких животных /Я.Г. Губаревич. -

М.,1952. - 152с.

28. Дорош, М. Болезни овец и коз /Серия «Домашний ветеринар».М.-2007-

85с.

29. Еремеев, Г.В. Профилактика болезней овец /Г.В. Еремеев, И.В.Петров,

С.Е. Скворцов. - Чебоксары,1984. - 63 с.

29. Зверева, Г.В. Справочник по ветеринарному акушерству /Г.В.Зверева,

В.Н. Олесков, С.П. Хомин. - Киев.: Урожай,1985. - 280 с.

30. Зиновьева, Н.Т. Данные патоморфологических исследований при

вирусном аборте овец /Н.Т. Зиновьева //Сб. науч. тр. /Сев. - Кав. зон НИВИ. -

1972. - Вып.15. - С.106 - 108.

122

31. Ивахненко, В.К. Вибриозный аборт овец в Ставропольском крае и

меры борьбы с ним /В.К.Ивахненко, П.С. Калашников //Тр./Ставропольская

краевая НИ станция. - 1980. - вып.4. - С.133 - 139.

32. Кадымов, Р.А. Инфекционные болезни овец /Р.А. Кадымов, А.А.

Кунаков, В.А. Седов. - М.: Агропромиздат,1987. - 230с.

31. Карпов, В.А. Акушерство мелких животных /В.А. Карпов. - М.,1984. -

240с.

33. Казановский, С.А. Методические рекомендации по определению

естественной резистентности организма овец /С.А. Казановский //ВНИИОК. -

Ставрополь,1987. - С.45.

34. Казарян, С.Г. Сроки ягнения и заболеваемость маток и ягнят /С.Н.

Казарян // Ветеринария.- 1967. - №7.- с.96-97.

35. Караваев, Ю.Д. Состояние изучения и перспективы исследования по

болезням овец /Ю.Д. Караваев //Состояние, проблемы и перспективы развития

вет. науки России. - М.,1999. - С.45 - 48.

36. Ковалев, В.Л. Боритесь с энзоотическим абортом овец /В.Л.Ковалев,

Ю.Д. Караваев // Сельское хозяйство Таджикистана. - 1975. - № 2. - С.36 – 39

37. Лабораторные исследования в ветеринарии: биохимические и

микологические /Справочник. - М.: Агропромиздат, 1991. - 291с.

38. Лободин, К.А. Применение препарата «Лигфол» для профилактики

субинволюции матки у коров /К.А. Лободин //Актуальные вопросы технологии

животноводства, товароведения и ветеринарной медицины: Матер. науч.-практ.

конф.-г. Воронеж.-2005.-вып.2.-с.101-103.

39. Лободин, К.А. Лигфол для коррекции воспроизводительной функции

коров /К.А. Лободин, А.Г. Нежданов, В.С. Бузлама //Ветеринария.-2006.-№3.-

с.39-40

40. Лободин, К.А. Новые подходы к применению гонадотропных

препаратов для нормализации репродуктивной функции животных /К.А.

Лободин, Н.Е. Богданова, А.Г. Нежданов //Российский ветеринарный журнал.-

2007.-спец. вып.-с.26.

123

41. Лопырин, А.И. Яловость овец и борьба с ней /А.И. Лопырин, Н.В.

Логинова. - Ставрополь,1956. - 68с.

42. Мамедов, Т.А. Вибриозный аборт овец в Азербайджане /Т.А. Мамедов,

Н.Махмудов //Ветеринария. - 1964. - № 1. - С.54 - 56.

43. Марзанов, Н.С. Иммунология и иммуногенетика овец и коз /Н.С.

Марзанов. - Кишинев: ШТИИНЦА. - 1991. - 120с.

44. Маринов, П. Изучение абортов овец /П.Маринов, Д.Чилев // Болгарский

ЦНИИ биологического и патологического разведения с/х животных. – София:

Известия,- 1962. – Т.2.- 149с.

45. Мачульский, С.Н. Основные болезни овец и их профилактика /С.Н.

Мачульский. - Улан - Удэ. - 1970. - 60с.

46. Мещеряков, Н.П. Сравнительная эксперементальная фармакология и

клиническое применение адаптогенов в ветеринарии: Автореф. Дис. д-ра вет.

наук /Н.П. Мещеряков.-Воронеж.-2004.-41с.

47. Михайленко, В.В. Клинико - морфологические особенности

проявления хламидиоза овец в его ассоциации с микоплазмозом /В.В.

Михайленко //Диагностика, лечение и профилактика заболеваний с/х

животных: Сб. науч. тр. - Ставрополь. - 2000. - С.62 - 66.

48. Михайлов, Н.Н. Профилактика бесплодия инфекционного

происхождения у животных /Н.Н. Михайлов, И.Я. Чистяков, А.А. Сунайкин и

др. //Новое в лечении и профилактике инфекционных болезней животных. - М.:

Колос, - 1972. - С.125 - 146.

49. Мухамедов, Н.Д. Профилактика и лечение задержания последа у

каракульских овец /Н.Д. Мухамедов //Тр. /Тадж. СХИ. - 1989. - Т.30. - С.96 -

100.

50. Нарымбетова, У.М. Гематологические исследования при

ассоциированной иммунизации против абортогенных инфекций /У.М.

Нарымбетова, Б.Т. Толысбаев //Актуальные вопросы зоотехнической науки и

практики, как основа улучшения продуктивных качеств и здоровья с/х

животных: Матер. Междунар. науч. конф. - Ставрополь,2001. - С.430 - 431.

124

51. Небогатиков, Г.В. Диагностика и терапия животных с бесплодием /Г.В.

Небогатиков. – Волгоград, 1993. - С.3 - 6.

52. Нежданов, А.Г. Физиология и патология родов и послеродового

периода у сельскохозяйственных животных /А.Г. Нежданов-Воронеж.-1991.-

60с.

53. Нежданов, А.Г. Биологическая и экономическая сущность бесплодия

сельскохозяйственных животных /А.Г. Нежданов //Диагностика, лечение и

профилактика болезней животных.: Сб. науч.трудов фак-та ветеринарной

медицины.-Воронеж.-т.3.-2004.-с.40-50.

54. Никитченко, И.Н. Адаптация, стрессы и продуктивность /И.Н.

Никитченко, С.И. Плященко, А.С. Зеньков. - Минск: Урожай,1988. - 198с.

55. Огурцов, Р.А. Из опыта профилактики бесплодия

сельскохозяйственных животных /Р.А. Огурцов, А.З.Трофимов, И.А. Алексеев

//Ветеринарное обслуживание животноводства в условиях интенсификации. -

Чебоксары. - 1980. - С.48 - 50.

56. Павлов, В.А. Физиологические основы борьбы с бесплодием

сельскохозяйственных животных /В.А. Павлов. - М.: Россельхозиздат,1969. -

111с.

57. Панасенко, Ф.Т. Диагностика, лечение и профилактика послеродовых

заболеваний овец и коз /Ф.Т. Панасенко //Сб. докл. Всесоюзной конференции

по незаразным болезням животных. - Ереван,1957. - С.273 - 281.

58. Панасенко, Ф.Т. К этиологии симптоматического бесплодия.

//Ветеринария /Ф.Т. Панасенко. - 1964. - №6. - С.89 - 91.

59. Петров, К. Эргономика, этология и гигиена в промышленном

животноводстве /К. Петров. - Минск,1988. - 143с.

60. Плященко, С.И. Естественная резистентность организма животных

/С.И. Плященко. - Л.: Колос,1979. - 184с.

61. Плященко, С.И. Предупреждение стрессов у сельскохозяйственных

животных /С.И. Плященко, В.Т.Сидоров. – Минск: Урожай,1988. - 198с.

125

62. Равинова, М.Н. Применение простагландинов для повышения

оплодотворяемости /М.Н. Равинова, В.А. Аидоров, А.М. Гомаев //Диагностика,

терапия и профилактика акушерско-гинекологической патологии у животных:

Сб. науч. тр. /МГАВМиБ. - М.,1994. - С.76 - 79.

63. Радзинский, В.Е. Биохимия плацентарной недостаточности /В.Е.

Радзинский, П.Е.Смалько- Киев: Наук.Думка, 1987.- 120с.

64. Рекомендации по борьбе с болезнями овец /Сост.: Р.Н. Самигуллин,

И.И. Насырова, А.К. Кудашев. - Уфа,1980. - 62с.

65. Рзаев, Ч.А. Некоторые причины бесплодия коров и каракульских овец /

Ч.А. Рзаев //Болезни с/х животных : Сб. науч. Тр./Уз. НИВИ. – Ташкент, 1976.-

Т.15. – с.88-90.

66. Рзаев, Ч.А. Профилактика бесплодия овец /Сост.: Р.Н. Самигуллин,

И.И.Насырова, А.К.Кудашев. – Уфа, 1980.- 62 с.

67. Савельева, Г.М. Гемореология в акушерстве /Г.М. Савельева, Г.Д.

Дживегелова, Р.И.Шалина и др.- М.:Медицина, 1991.-224с.

68. Семенченко, Н.А. Факторы, повышающие оплодотворяемость /Н.А.

Семенченко //Ветеринария. - 1983. - №9. - С.48 - 49.

69. Силаев, А.М. Ветеринарные правила при воспроизводстве

сельскохозяйственных животных /А.М. Силаев, В.И. Дульнев, Н.Г. Болашев. -

М.: Колос,1971. - 18с.

70. Симонян, А.И. Из практики акушерства /А.И. Симонян, Е.С. Мамунец

//Ветеринария. - 1980. - №10. - С.44 - 45.

71. Соколовская, И.И. Проблема оплодотворения с/х животных / И.И.

Соколовская. – М.- 1988.- 127с.

72. Старков, В.Е. Некоторые особенности гистологического строения

матки каракульских овец при задержании последа /В.Е. Старков, Ю.А. Баратов

//Тр. /Самаркандский СХИ. - 1972. - Т.26. - С.147 - 148.

73. Степанов, А.Н. Борьба с яловостью и повышение продуктивности

животных /А.Н. Степанов //Профилактика бесплодия с/х животных на

Северном Кавказе: Матер. Науч.конф. – Новочеркасск, 1974. – с. 153-158.

126

74. Студенцов, А.П. Ветеринарное акушерство и гинекология / А.П.

Студенцов, В.С. Шипилов, В.Я. Никитин и др.- М.: Колос, 1999. – 490с.

75. Токаревич, К.Н. Важнейшие инфекционные болезни, общие для

человека и животных. Инфекционные и паразитарные болезни /К.Н.Токаревич -

Л.: Медицина,1979. - 221с.

76. Урбан, В.П. Энзоотический аборт овец /В.П. Урбан, И.И.Найманов

//Болезни молодняка в промышленном животноводстве. - М.: Колос,1984 -

С.170 - 171.

77. Устарханов, П.Д. Патоморфологические изменения в половых органах

овцематок при бесплодии /П.Д.Устарханов, М.Г. Халипаев //Актуальные

проблемы зоотехнической науки и практики, как основа улучшения

продуктивных качеств и здоровья сельскохозяйственных животных: Матер.

Междунар. науч - практич. конф. - Ставрополь,2001. - С.535 - 538.

78. Федорова, М.В. Плацента и ее роль при беременности /М.В. Федорова,

Е.П.Калашникова. – М.:Медицина, 1986.- 256с.

79. Фурдуй, Ф.И. Состояние и перспективы исследований проблемы стресса и

адаптации в промышленном животноводстве /Ф.И. Фурдуй //Сельскохозяйственная

биология. - 1990. - №2. - С.11 - 21.

80.Фурдуй, Ф.И. Проблемы стресса в животноводстве /Ф.И. Фурдуй, С.Х.

Хардармиз, Е.И. Штирбу //Известия АН МССР. Серия биологии и химических

наук. - 1982. - Вып.34. - С.7 - 11.

81. Халипаев, М.Г. Симптоматическое бесплодие овец .- Вет. консультант.-

2003.-№23 с.10-13

82. Хомин, С.П. Роль прогестерона в регуляции процесса размножения и

его применение при бесплодии коров и телок: Автореферат дис. д. вет.

наук./С.П. Хоман. - Львов,1985. - 32с.

83. Чернышева, М.П. Гормоны животных. Введение в физиологическую

эндокринологию /М.П. Чернышева. - Санкт - Петербург,1998, - 245с.

84. Чистяков, И.Я. Профилактика яловости овец /И.Я. Чистяков. - М.:

Колос,1973. - 45с.

127

85.Чистяков, И.Я. Профилактика бесплодия и лечение гинекологических

заболеваний у каракульских овец /И.Я. Чистяков, П.Е. Ким //Технология

производства продукции каракулеводства: Сб. науч. тр. ВАСХНИЛ. - М. - 1974.

- С.92 - 98.

86. Шахмарданов, З.С. Яловость овец и меры борьбы с ней в Дагестане

/З.А. Шахмарданов, А.Ф. Рахматуллин //Сб. науч. тр. /Дагестанский НИВИ. -

Махачкала,1968. - Т.2. - С.362 - 365.

87. Шахов, А.Г. Об энзоотическом аборте овец /А.Г. Шахов, П.К.

Трубников //Ветеринария. - 1975. - №3. - С.52 - 53.

88. Шахов, А.Г. Экологические проблемы патологии

сельскохозяйственных животных /А.Г. Шахов //Экологические проблемы

патологии и терапии животных. - Воронеж, 1997. - С.17 - 20.

89. Шеховцов, В.С. Система ветеринарно-санитарных мероприятий в

промышленном овцеводстве /В.С. Шеховцов. - Киев: Урожай,1980. - 190с.

90. Шиманов, В.Г. Гинекологические заболевания, как одна из причин

яловости овец /В.Г. Шиманов //Каракулеводство и звероводство. - 1954. - №2. -

С.50 - 52.

91. Шиманов, В.Г. Лечение гинекологических заболеваний каракульских

овец /В.Г. Шиманов //Каракулеводство и звероводство. - 1957. - №3. - С.53 - 55.

92. Шиманов, В.Г. Пути повышения плодовитости каракульских овец /В.Г.

Шиманов, Х.Ш. Ризаев, С.А. Асамов. - Ташкент. - 1982. - 56с.

93. Шманов, К.С. Эпизоотология, диагностика и специфическая

профилактика абортогенных инфекций овец /К.С. Шманов, Л.Б. Кутумбетов,

Х.Б. Абеуов //Вестник науки Казахского ГАУ. - Астана. - 2002. - Т.3. - №5. -

С.132 - 139.

94. Штефан, М.К. Серологические исследования при энзоотическом аборте

овец и коз /М.К. Штефан //Ветеринария. - 1984. - №10. - С.38 - 39.

95. Шабунин, С.В. Современные принципы и подходы к созданию

лечебно-профилактических средств, используемых в ветеринарной акушерско-

гинекологичекой практике. /С.В. Шабунин, Г.А. Востроилова //Современные

128

проблемы ветеринарного обеспечения репродуктивного здоровья животных:

Мат. межд. науч.-практ. конф. посвящ. 100-летию со дня рождения профессора

В.А. Акатова 27-29 мая.- Воронеж.-2009.-с.13-17.

96. Юдович, С.С. Гистологические исследования полового аппарата

яловых овец /С.С. Юдович //Тр. /ВНИИОК. - 1939. - Вып.10. - С.16 - 18.

97.Addo P.B., Schnurenberger P.R. Q fever antibodies in food animals of

Nigeria (a serological survey of cattle, sheep, end goats. - Rev. Elevage Med. Veter,

1977. - t.30. - № 4. - s. 359 - 362.

98. Anngard E., Samuelsson B. Biosyntesis of prostaglandins from arachiodonic

acid in guinea - pig lung //J.Biol. Chem. - 1965. - v.240. - p.3518 - 3522.

99. Bager F., Helmuth R. Epidemiology of resistance to guinolones in

Salmonella //Veter. Res. - 2001. - Vol.32. №3, p.285 - 290.

100. Bager F., Emborg H. et al. Use of antimicrobial agents and occurrence of

antimicrobial resistance in bacteria from food animals, foods and humans in

Denmark. - V.2002. - Copenhagen:Statens Institut; 2001.

101. Barrow P.A., Smith H.W., Tucker J.F. The effect of feeding diets

containing avoparcin on the excretion of Salmonella by chickens experimentally

infected with natural sources of Salmonella organism //J. Hyg (Lond). - 1984; 93:439

- 444.

102. Barshi C.S., Singh V.P., Malik M. et al. Polymerase shain reaction

amplification of 16S - 23S spacer region for rapid idenrification of salmonella

serovar //Acta veter. Hang. - 2002. - vol.50, №2. - p.161 - 166.

103. Baser F.W., First N.L. Pregnancy and partirution //J. An.Scl., - 1983. -

v.57. - p.425 - 460.

104. Berri M., Sourian A., Crosby M., Rodolakis A. Shedding of coxiella

burnetii in ewes in two pregnancies following an episode of coxiella abortion in a

seep fcok //Veter. Microbiol. - 2002. - V.85, №1. - p.55 - 60.

105. Bhaik N.L., Kohli J.B. Reproductive performance of Chonla end Magra

ewes in the subtropival area of north - western arid zone of Rajasthan. //Parturitho

and involution of uterus //Indian vet.J. - 1980. - v. - 57. - №4. - p.327 - 333.

129

106. Boland M.P., Grosby T.F., Gordon T. Induction of lambing comparison of

the effect of prostaglandin, oestradiol benzoate and dexamethasone //J. Agr. Sc. -

1982. - v.98. - p.391 - 394.

107. Bolder N.M., Wagenaar J.A., Purirulan F.F. The effect of

flavophospholipol and salinomycin sodium on the excretion of Salmonella enteritidis

and Campylobacter jejuni in broiler after experimental infection //Poult Sci 1999;

78:1681 - 9.

108. Braun V. Clinical findings and treatment of listeriosis in 67 sheep and goat

//Veter. Rec. - 2002. - V.150, №2. - p.38 - 42.

109. Cahill L.P., Kenee B.W., Lawson B.A. Induction of parturicion en ewes

with 1976 a single injection of oestradiol benzoate //Theriogenology. - 1976. - v.5. -

№6. - p. - 289 - 294.

110. Cal C.L. Induction delparto en bovinos y ovinos mediante la administracion

de dexametasona //Gac. Veter. - 1978. - t.40. - №331. - p.374 - 382.

111. Call J.W. et. Al. Poapartum uterins and ovarion changes and astrons

behavior from lacation effect in normal and hormone treated ewes //Theriogenology.

- 1976. - v.6. - № 5. - p.495 - 501.

112. Carbalho C.F.B., Lima V.H.C., Pereisa G.T. Campylobacter em granja

avicola //Rev. Vet. –2001. - V.96, №540. - p.191 - 195.

113. Carnevale R., Molbac K. et al. Fluoroquinolone resistance in Salmonella: a

Web discussion //Clin Infect Dis. - 2000; 31:128 - 30.

114. Caton D., Wilcox C.I., Korla P.S. Correlation of rate of uterine blood flow

and plasma steriod concentracions at parturition on sheep //J. Reprod. Fertil. - 1980. -

v.58. - №2. - p.329 - 337.

115. Crump J.A., Murdoch D.R., Baker M.G. Emerging infectious diseases in an

island ecosystem: the New Zealand perspective //Emerg Infect Dis. - 2001;7:767 - 72.

116. Cunn R.G. A note on diffucult birth in scottosh hill flocke //Anim. Prod.. -

1969, - v.10, - p.213 - 215.

130

117. Dawood M., Yosoof, Khan - Dawood F., Ayromlooi I., Tobias M. Maternal

and fetal plasma oxirocin levels during pregnancy end parturition in the sheep

//Amer.J. Obstet. and Ginecol. - 1983. - v.147. - №5. - p.584 - 588.

118. Di Rosa M., Girond J.P., Willonghby D.A. Studies on the mediators of the

acute inflammatory response induced in rats in differens sites by carrageenin and

terpentine //J. Pathol. - 1971. - V.104. - p.15 - 22.

119. Delpy, Rafyi, Chamsy. Recherches sur immunisation anticlaveleuse. -

Arch. Inst. de Hessarek, 1951, № 7, p.27 - 29. - France.

120. Emady M., Noakes D.E., Hadley J.C., Arthur G.H. Corticosteroid induced

lambing in the ewe //Veter. Rec. - 1974. - v.95. - p.281 - 285.

121. Emborg H., Heuer O. Effekten af ophor med brug af antibiotiske

vaekstfremmere pa produktiviteten I den danske slagtekyllihgeproduktion //Dansk

Veterinaeridsskrift 2001; 84:6 - 10.

122. Embrey M.P. The prostaglandins in human reproduction clinjcal

applications //Ch. Livingston ed. Edinburg, London and New York. - 1975. - p.101.

123. Endtz H.P., Mouton R.P. et al. Fluoroquinolone resistance in

Campylobacter spp isolated from guman stools and poultry products //Lancet. - 1990;

335:787.

124. George I.M. The incidence of distocia in Dorset Horn ewes. //Austral.

Veter. I. - 1976. V.52. - p.519 - 523.

125. Glenn E.M., Wilks J., Bourman B. Platelets, prostaglandins, red cells,

sedimentation rates, serum and tissue proteins and non - steroidal anti - inflammatory

drugs // Proc.Soc.exp.Biol.Med. - 1972. - v.141. - p.879 - 884.

126. Grunn R.G. A note on difficult in scottish hill flocks //Anim. Prod., 1968. -

v.10. - №2. - p.213 - 215.

127. Grommers F.J., Elving L., Eldik P. Parturiton difficulties in sheep //Anim.

Reprod.Sc. - 1985. - v.9. - p.365 - 374.

128. Harman E.L., Slyter A.L. Induction of parturition in the ewe //J. Anim. Sc.

- 1980. - v.50. - p.351.

131

129. Henning K., Sting R. Serologische und bakteriologishe Diagnostik der

Chlamidien – und Coxielleninfektionen bei Schaf und Ziege //Tierarztl. Umsch. -

2001. - Jg.56. - №3. - S. 476 - 480.

130. Hils Jean - Louis. Contribution a el etude des dystocies chez la brebis a

travers une race du Sud - Quest de la France. //Ecole nationale veterinaire de

Toulouse. - 1980. - №48.

131. Holmberg T., Wierup M., Engstrom B. The effect of feeding diets

containing avoparcin and monensin on the occurrence of Salmonella in caecum and

liver in expetimentally infected chickens //Poult Sci 1984; 63:1144 - 8.

132. Jain G. et al. Plasma progesterone levels during late pregnancy in goats

//Lbl. Veter. - Med. Reihe A. - 1980. - v.27. - p.513 - 516.

133. Jones D., Knifton A. Uterine activity end plasma progesterone levels in

pregnant goats //Res. Veter. Sci. - 1977. - v.22. - p.5 - 10.

134. Jeleff W., Djuroff Al., Tomoff Tr. Monatch Veterinarmed, - 1964, - 88, -

p.418 - 424.

135. Kaneko T., Lor U. et al. Thyroid - stimulating hormone and prostaglandin

E1 stimulation of cyclis 3, 5 - adenosin monophosphate in thyroid stices //Science. -

1969. - v.163. - p.1062.

136. Katitch R., Voukitchevitch Z., Jovanovitch… Possibility de la protection

simultanec des moutons controls affections, anaerobes et helminthiques. - Bull. Acad.

Vet. France. - 1970. - v.38. - № 9. - p.405 - 410.

137. Kennedy H.E., Mc Cullough S.J., Graham D, Cassidy J., Ellis W.A.

Detection of chlamydial antibody by fetal serology - an aid to the diagnosis of ovine

abortion //J. Veter. Diagnostic Investig. - 2001. - Vol.13, №1. - P.30 - 35.

138. Levy R.H. Time –dependent pharmacokinetics //Pharmacology and

Therapy. - 1982. - v.17. - p.383 - 397.

139. Liutkeviciene V., Stankeviciene M., Citvaras V. Kai kuriu uzkreciamuju

ligu paplitimas Lietuvos, kiaulinkistes imonese //Zemes urio mokslai. - 2001. - №3. -

S.57 - 63.

132

140. Liggins G.C., Crives S. Possinle role for prostaglandin F2 and in

parturition in sheep //Nature. - 1971. - v.232. - p.629 - 631.

141. Liggins G.C. Initiation of spontaneous labour //Clin. Obstet. Ginec. - 1983.

- v.26. - p.47 - 55.

142. Low J.C., Renton C.P. Septicaemia encephalitis and abortions in a houset

flock of sheep caused by Listeria monocytogenes type ½. - Veter. Rec., - 1985, vol

116, №6, p.146 - 150. Изучение вспышки листериоза с явлениями септицемии,

энцефалита и аборта в стаде овец, получавших силос, загрязненный

листериями.

143. Maxwell J. Field observations on four outbreaks of maternal dystocia in the

merino ewe. //Austral. Veter. J. - 1970. - p. - 46.

144. Mc Dermott P.F., Bodeis S.M. et al. Ciprofloxacin resistance in

Campylobacter jejuni evolves rapidly in chickens treated with fluoroquinolones //J.

Infect Dis. - 2002; 185:837 - 40.

145. Mc Natty K.P., Allison A.J., Turley D.C. Progesterone levels in peripharal

plasma of Romney ewes during pregnancy //N.L.J. Agr. Res. - 1972. - v.15. - p.831 -

837.

146. Mc. Sporran R.D., Buchanan R., Fielden E.D. Observation on dystocia in a

romney flock. //N.L. Veter.J. - 1977. - v.25. - p. - 247 - 251.

147. Mitchell M.D. et. al. Pulsatile release of oxytocin during the estrons cycle,

pregnancy and paerturition in seep //Biol. Reprod. - 1982. - v.27. - p.1169 - 1173.

148. Mitchell M.D. et. al. Oxytocin in the fetal and metarnal circulation dyring

induced and spontaneous parturition in sheep //Eur.J. Pbstat Gynecol. and Reprod.

Biol. - 1982. - v.14. - p.115 - 120.

149. Moeller R.B. Causes of caprine abortion: diagnostic assessment of 211

cases //J. veter diagnostic Investig. - 2001. - Vol.13., №3. - p.265 - 270.

150. Moxhon E., Lecompte P. Mechanismes endocrines du declenchement du

travail //Concept. Fertil. Sep. - 1983. - v.11.

133

151. Peng T.C., Six K.M., Muncon P.L. Effect of prostaglandin on the

hypothalamo - hypophyseal - adrenal cortical axos of rats //Fed. Proc. Fedn. Am. Soc.

Exp. Biol. - 1969. - v.28. - p.437.

152. Pharris B.B., Wingarden L.J. The effect on prostaglandin F2 on the

progesterrone content of ovaries from prendopregnants rats //Proc. Soc. Exp. Biol. -

1969. - v.130. - p.92 - 94.

153. Rawlings N., Ward W. Fetal and maternal endocrine changes associated

with parturition in the goat //Theriogenecology. - 1978. - v.9. - p.109 - 120.

154. Rafiy et al. Les vaccinations associees en medecine humaine et en

medecine veterinaire. - Rev.immunol., - 1968, - v.7, - p.295 - 323.

155. Remer K.A., Pfister H., Fatzer R., Leib S.L. Zur Rolle Stickoxyd bei der

Listerienenzephalitis der Wiederkauer und bei interazister nal infizierten Raffen

//Berf. U. munch. Tierartl. Wschr. - 2002. - Jg.115, H7. - S.259 - 266.

156. Robimson J. The sheep fetus at parturution //Anim. Reprod. Sci. - 1979. -

v.2. - p.167 - 178.

157. Sharafeldin M. A. et al. Behaviour of ewes during parturition //J.Agr. sci. -

1971. - v.76. - p.419 - 422.

158. Sandbu H. Nord. Veterinermed. - 1956. - v.8. - p.585.

159. Silver M.J., Smit I.B. Human blood prostaglandins //Formation during

clotting. Prostaglandins. - 1972. - v.1. - p.429 - 439.

160. Smith I.B., Ingerman C. et. al. Formation of prostaglandins during the

aggregation of humanblood platelets //J. Clin. Imvest. - 1974. - v.53. - p.1468 - 1474.

161. Smith H.W., Tucker J.F. The effect of antimictobial feed additives on the

colonization of the alimentary tract of chickens by Salmonella Typhimurium //Hyg

(Lond) 1978;80:217 - 31.

162. Sokkar S.M. et al. Studies on natural and experimental endometritis in

ewes. // Vet. Pathol. - 1980. - v.17. - p.693 - 698.

163. Speedy A.W. Sheep production science intro practice //Sheep specialist.

East of Scotland College of Agriculture. - London and New - York. - 1980. - p.81 -

84.

134

164. Steele P.A., Flint A.T.F., Turabull A.C. Increaset uteroovarian

androstenedione production before parturition in sheep //J. Reprod. And. Ferd. -

1976. - v.443 - 445.

165. Thorburn G.P., Harding R., Jenkin C. et. al. Control of uterine activity in

the seep //J. Dev., Physiol. - 1984. - v.6. - p.31 - 43.

166. Trkov M., August G. Priprava kvantitativne molekularno bioloske metode

za ugotovjauje stevila celic vrste salmonella enterica //Zb. Biotehn. Far. Univ.

Kmetijstvo. Zootehnica. - 2002. - Letn.80, stev.2 - S.147 - 155.

167. Umo J. Fitzpatrick R. J., Ward W.R. Parturition in the goat: plasma

concentrations of prostaglandin F and steroid hormones and uterins activity during

late pregnancy and parturition //J. Endoctinol. - 1976. - v.68. - p.383 - 389.

168. Vane J.B. Inhibition of prostaglandin synthesis as a mechanism //Nature,

New. Biol. - 1971. - v.231. - p.232 - 234.

169. Vilhardt H., Hedgrist P.A. A possible role of prostaglandin in the

repilation of vasopression secretion in rats //Life Sci. - 1970. - v.9. - p.825 - 830.

170. Volitir V. Probl.zootehn. si Veterin. - 1967. - v.7.

171. Warnecke B. Zbl. Bakteriol., Parasitenkunde, Infektionskrankh. und Hyg. -

1963.

172. Wied D., Witter A. et. al. Release of ACTH by substances of central

nervous system orogin //Endocrinology. - 1969. - v.85. - p.561 - 569.

173. Wilking M.L.N. The role of prostaglandins in the stimulary actions

catecholamines on myometral activity in term pregnant womwn //Eur. J. Obsted.

Gynecol. And Reprod. Biol. - 1983. - v.16. - p.193 - 203.

174. Willis A.L., Weis J.N. A congenital defect in platelet prostaglandin

production accotiated with impaired hemostasis in storage pooldisease

//Prostaglandins. - 1973. - v.4. - p.783 - 792.

175. Wyk L.C. van et al. Further observations on the involution of the post

partum uterus of the ewe //J.S. Afr. Vet. Ned. Assoc. - 1972. - v.43. - p.29 - 33.