Blok 15

5/26/2018 Blok 15

1/47

ANATOMI

SISTEM URINARI

1. Struktur Ginjal, Kelenjar Suprarenal & RetroperitoneTujuan:

Setelah menyelesaikan topik ini, siswa akan dapat:

1)Menunjukkan hubungan dari ginjal dan kelenjar suprarenal untuk menutup adiposa danfasia), tulang rusuk yang lebih rendah dan organ abdomen lainnya

2)Menjelaskan anatomi besar ginjal3)Tentukan suplai darah dan pembersihan pada ginjal4)Jelaskan pengaturan umum dari sistem kemih5)Menggambarkan posisi dan tingkat vertebra untuk cabang ginjal dari aorta abdomen dan

vena cava inferior

6)Jelaskan persarafan otonom dari ginjal dan saluran kemih

Prosedur:

1)Mengidentifikasi pararenal lemak, fascia ginjal dan perirenal lemakDari superfisial sampai dalam, ginjal ini dikelilingi oleh lemak pararenal, yang

superfisial ke fasia tipis yang disebut fasia ginjal, lebih mendalam untuk yang ditemukan

lemak perirenal. Lemak pararenal sangat berlimpah di belakang tungkai bawah ginjal,

tetapi mungkin ada beberapa di depan juga. Lapisan anterior dan posterior fascia ginjal

sekering bersama di atas kelenjar suprarenal, membentuk investasi umum untuk itu dan

ginjal. Caudal ke ginjal, dua lapisan tetap terpisah. Medial, lapisan anterior dari fasia

ginjal menjadi terus-menerus dengan jaringan ikat di sekitar vena kava inferior dan aorta,

sedangkan sumbu lapisan posterior dengan fasia sekitar vertebra.

2)Mengidentifikasi ginjal dan memeriksa bagian-bagian dan suplai darahJelaskan hubungan visceral anterior ginjal.

Pembuluh ginjal, struktur panggul dan ginjal yang masuk dan meninggalkan ginjal

sepanjang perbatasan medial (hilus ginjal). Periksa hubungan dinding tubuh posterior

ginjal.

Menelusuri pembuluh darah ginjal ke hilus ginjal. Jelaskan hubungan vena ginjal kiri ke

aorta, arteri mesenterika superior, arteri ginjal kiri. Jelaskan tributaries dari vena ginjal

5/26/2018 Blok 15

2/47

kiri dan kanan. Periksa arteri ginjal, mencatat asal mereka dari aorta dan divisi karena

mereka dekat ginjal.

Jelaskan pleksus saraf yang berjalan di sepanjang arteri ginjal

Periksa ureter dan melacaknya ke pinggir panggul. Perhatikan hubungannya dengan

pembuluh gonad.

Cobalah untuk menemukan arteri kecil untuk ureter abdomen dari aorta, ginjal, gonad,

dan arteri iliaka common.

3)Periksa struktur internal ginjalPada bidang frontal ginjal periksa hubungan antara arteri renalis, vena ginjal dan pelvis

renalis di hilus. Tentukan sinus ginjal.

Menelusuri arteri ginjal dan divisi anterior dan posterior (yang mengarah ke cabang

segmental). Amati korteks ginjal dan kolom tersebut; medula dan piramida ginjal dan

papila ginjal. Melacak ureter ke pelvis ginjal dan kemudian ke calyx major dan calyx

minor. Berapa banyak calyx kecil di masing-masing ginjal?

4)Periksa pleksus saraf otonom preaortic abdomenTentukan ganglion aorticorenal. Menelusuri saraf splanknikus toraks lebih rendah dan

lebih besar dengan diputus.

Mendefinisikan dan menelusuri Pleksus hipogastrikus superior.

Menelusuri batang simpatik lumbal sampai menghilang di balik arteri iliaka common.

Mencari dan mengidentifikasi ganglia lumbal dan saraf splanknikus lumbal.

5)Mengidentifikasi kelenjar suprarenal dan memeriksa bagian dan suplai darahMenguji perbedaan antara kelenjar suprarenal kanan dan kiri dari segi bentuk dan

hubungan dengan ginjal.

Periksa cabang dari saraf splanknikus thoracic besar memasuki kelenjar suprarenal.

Ini memberikan persarafan simpatik preganglionik ke kelenjar medula. Di mana neuron

postganglionik berada?

2. Pelvis Dan Organ InternalTujuan:


5/26/2018 Blok 15

3/47

1)Jelaskan saraf pleksus lumbalis dalam hal mereka: hubungan spasial untuk otot-ototdinding posterior abdomen; distribusi ke dinding perut, daerah genital, dan ekstremitas

bawah, dan kategorisasi murni ke dalam saraf kutaneus dan mereka yang juga inervasi

otot.

2)Lokasi lumbal simpatik.3)Asal batasan skeletal dan ligamen dari perineum, dan menentukan segitiga anal dan

urogenital di dalamnya.

4)Sebutkan komponen otot diafragma panggul dan menggambarkan tambahannya kedinding panggul.

5)Identifikasi fitur superfisial dari alat kelamin eksternal.6)Sebutkan perbedaan utama antara panggul dari pria dan wanita.

Prosedur

1)Baca saraf pleksus lumbalis dan rami putih dan abu-abu dari simpatik lumbal.Dimana anda dapat menemukan mereka? Berapa banyak rami putih yang ada? Mengapa?

Mengidentifikasi dan mencatat hubungan dari subkostal, iliohypogastric, ilioinguinal,

genitofemoral, femoral lateral cutaneus, saraf femoral dan obturatorius. Melacak hanya

sejauh ligamentum inguinalis.

2)Pada skeleton menentukan batas-batas perineum dan memeriksa alat kelamin eksternalpada cadaver.

Pada skeleton menentukan petunjuk tulang perineum: symphisis pubis, arkus pubis,

ramus inferior pubis dan ramus iskium (bersama-sama dikenal sebagai ramus

ishiopubic), tuberositas iskia, dan tulang ekor. Tentukan segitiga urogenital dan segitiga

anal. Perhatikan bahwa dua segitiga tidak terletak pada bidang yang sama. Perhatikan

perbedaan antara pria dan wanita di sudut subpubic, sudut yang dibentuk oleh arkus

pubis. Seks berbeda menunjukkan perbedaan dalam skeleton pelvic?

Memahami bahwa visera pelvis didukung oleh otot yang terdiri dari diafragma pelvic.

Mengidentifikasi alat kelamin eksternal dari kedua jenis kelamin:

Alat kelamin eksternal wanita: vulva, mons pubis, labia majora dan commissures anterior

dan posterior; terkait labio minora dan frenulum; klitoris dan penis, preputium, dan

frenulum; vestibulum dan lubang vagina dan meatus uretra eksterna.

Alat kelamin eksternal pria: penis, preputium, frenulum, glans, korona, meatus uretra

eksterna, tubuh dan dorsum penis, skrotum, dan raphe skrotum.

5/26/2018 Blok 15

4/47

3)Diperiksa bagian midsagittal dari cadaver tersebut

3. Dinding dan Dasar PanggulTujuan:


1)Tunjukkan bagaimana ligamen sacrotuberal dan sacrospinal membuat dua foramensiatik. Daftar otot, saraf, dan pembuluh yang melewati masing-masing.

2)Menunjukkan asal-usul piriformis dan otot internus obturator dan menggambarkan duaspesialisasi pada fascia yang kedua.

3)Identifikasi diaphragma pelvis dari atas dan membedakan komponen-komponennya.4)Melacak pola percabangan pembuluh iliaca internal di kedua jenis kelamin,

mengidentifikasi cabang dengan hubungan mereka ke organ pelvic atau struktur dinding.

5)Menunjukkan pembentukan pleksus sakralis, hubungannya dengan otot piriformis danpembuluh gluteal, dan cabang saraf pelvis yang splanknikus dan pudenda.

6)Identifikasi pleksus hipogastrikus inferior (panggul) dan koneksi untuk pleksushipogastrikus superior (melalui saraf hipogastrikus), plexus sacrum (melalui saraf

splanknikus panggul), dan batang-batang simpatik sakrum (melalui saraf simpatis

sakral).

7)Menelusuri suplai saraf simpatik dan parasimpatik pada organ pelvic, daftar lokasi seltubuh preganglionik, perjalanan serat preganglionik, lokasi sel tubuh postganglionik, dan

tentu saja serat postganglionik.

Prosedur:

1)Periksa tulang pelvicPeriksa tulang pelvic dan mengidentifikasi foramen obturator dan alur, skiatik sedikit

lebih besar, vertebra dari iskium, skiatik sedikit lebih rendah, tuberositas iskia. Cari

artikulasi sacroiliac. Jelaskan batas-batas foramen iskiadika mayor dan minor.

2)Mengidentifikasi cabang-cabang dari arteri dan vena iliaka internaCari arteri dan vena iliaka common, perhatikan saja dan hubungan dan titik bifurkasi.

Menelusuri arteri dan vena iliaka eksternal di sepanjang pinggir pelvic dan perhatikan

hubungan mereka sejauh ligamentum inguinalis. Mengidentifikasi cabang-cabang arteri

iliaca eksternal.

5/26/2018 Blok 15

5/47

Mengidentifikasi vena iliaka internal. Melacak tributaries utama. Identifikasi arteri iliaka

internal dan cabang-cabangnya baik visceral dan parietal.

Menelusuri cabang ke visera pelvis: arteri umbilikalis (atau sisanya) dan cabang superior

vesikalis. Identifikasi arteri uterus, arteri rectal medial, dan arteri obturatorius. Jelaskan

suplai darah ke dasar kandung kemih, prostat, vesikula seminalis.

3)Mengidentifikasi saraf sakrum dan batang simpatik sakrum. Mengidentifikasi sarafsplanknikus pelvic dan sakrum dan perhatikan bagaimana mereka berhubungan dengan

plexus hipogastrikus dan saraf.

Mengidentifikasi nervus splanknikus pelvic dan sakrum dan perhatikan bagaimana

mereka berhubungan dengan plexus hipogastrikus dan nervus.

Lokasi empat saraf sakrum pertama yang muncul di foramen (pelvic) anterior sakrum.

Lokasi batang lumbosakral. Periksa pembentukan pleksus sakrum.

Angkat pleksus hipogastrikus superior pada bifurkasi aorta dan melacaknya ke pelvic.

Perhatikan pembagian ke dalam saraf hipogastrikus dan kontinuitas mereka ke dalam

pleksus hipogastrikus inferior. Cari batang simpatik memasuki pelvic sepanjang

perbatasan medial foramen sakrum pelvic. Catatan ganglia, rami abu-abu

communicantes, splanchnics sakrum. Mengidentifikasi saraf splanknikus pelvic.

Melacak mereka ke pleksus hipogastrikus inferior dan mencari cabang melewati ke

mesokolon sigmoid dan kolon desendens, dan sigmoid. Pertimbangkan distribusi

selanjutnya ke rektum, vagina, kandung kemih, uterus, prostat.

Jelaskan pasokan saraf otonom ke visera pelvis.

4)Identifikasi obturator internus dan otot piriformis dan diafragma pelvicCari otot obturator internus dan menentukan fasia. Cari levator ani arcus tendineus.

Tentukan bagian diafragma pelvis dan menelusuri setiap bagiannya. Membedakan antara

levator ani dan otot-otot M. koksigeus. Mengidentifikasi otot puborectalis.

Periksa otot piriformis dan perhatikan keterikatannya dengan sakrum, serta hubungannya

dengan saraf sakrum, untuk pleksus sakrum dan ke arteri glutealis superior dan inferior.

4. Viscera PelvisTujuan:


5/26/2018 Blok 15

6/47

1)Mengetahui kandung kemih baik dalam posisinya secara umum atau khusus, danmenentukan cakupan tingkat peritonealnya.

2)Identifikasi lubang internal dari kandung kemih dan membedakan daerah trigonum darisisi lapisan kandung kemih.

3)Jelaskan hubungan dari kandung kemih ke organ pelvis lainnya pada kedua jeniskelamin.

4)Melacak seluruh bagian dari ductus deferens dan mengidentifikasi ampulanya,perhatikan hubungannya dengan ureter.

5)Identifikasi vesikula seminalis dan menunjukkan pembentukan dan perjalanan saluranejakulasi.

6)Mengidentifikasi kelenjar prostat dan menjelaskan fitur khusus dari dinding uretraprostat.

Prosedur

1)Periksa kandung kemih dan cakupan peritonealAmati cakupan peritoneum pada kandung kemih. Amati pantulan yang berbeda pada pria

dan wanita. Melepaskan peritoneum dan mengidentifikasi ligamentum umbilikalis

medial. Periksalah otot-otot dinding kandung kemih dan mengidentifikasi lubang ureter,

puncak interuretric, lubang uretra, dan trigonum vesikalis. Jelaskan pasokan darah,

persarafan dan limfatik kandung kemih.

Pada spesimen bagian sagital, jejak peritoneum dari dinding abdomen bagian depan;

memeriksa kantong vesicouterine dan ragamnya refleksi dari kandung kemih ke rahim.

Jejak peritoneum di rahim dan menentukan kantong rectouterine. Amati peritoneum pada

dinding posterior vagina.

2)Periksa saluran dan kelenjar kelamin laki-lakiIdentifikasi ductus deferens, strukturnya, bagiannya dan hubungan ke testis. Tentukan

korda spermatika. Menjelaskan dan mengidentifikasi kanalis inguinalis. Amati bagian

dari korda spermatika setelah melewati cincin inguinal deep, di bawah peritoneum.

Perhatikan hubungan untuk arteri epigastrika inferior, pembuluh iliaka eksternal,

ligamentum umbilikalis medial, ureter dan vesikula seminalis. Tentukan ampula dari

ductus deferens.

Mengidentifikasi kantong rectovesical.

5/26/2018 Blok 15

7/47

Identifikasi vesikula seminalis pada permukaan posterior kandung kemih. Perhatikan

hubungannya dengan ductus deferens, ampula. Perhatikan ureter dan titik pintu masuk ke

kandung kemih. Melacak ureter melalui panggul dan perhatikan hubungannya dengan

peritoneum dan lokasi karena memasuki panggul. Periksa persimpangan ampula dan

saluran dari vesikula seminalis karena mereka bersatu untuk membentuk saluran

ejakulasi. Buka vesikula seminalis dan memeriksa strukturnya.

Memeriksa kelenjar prostat dan lampirannya ke pubis melalui ligamentum puboprostatic.

Perhatikan hubungan prostat ke kandung kemih, dan rektum hiatus urogenital (ampula).

Melacak perjalanan saluran ejakulasi. Dalam uretra prostat, memeriksa puncak uretra,

sinus prostat, colliculus seminalis dan perhatikan khususnya bukaan dari saluran

ejakulasi.

Periksa otot uretra sphincther sekitar bagian bawah bagian prostat dan proksimal

uretra. Otot mungkin sulit untuk dibedakan.

Jelaskan uretra dan mengidentifikasi bagian-bagiannya prostat, membran, dan penis.

5. Perineum Dan Genitalia EksternalTujuan:


1)Jelaskan karakteristik, isi, dan perjalanan kanal pudenda. Melacak pola percabanganpembuluh pudenda internal dan saraf pudenda.

2)Bedakan atau memberikan perbedaan antara uretra pria dan wanita.3)Menggambarkan hubungan spasial antara diafragma panggul dan membran perineum

dan membandingkan komposisi dari dua struktur.

4)Mengidentifikasi komponen organ genital eksternal dan memberikan homolog dimasing-masing kedua jenis kelamin.

5)Jelaskan lampiran dan struktur tubuh erectile dan menjelaskan fungsi mereka.6)Mengidentifikasi otot-otot yang menutupi tubuh erectile dan menjelaskan fungsi mereka.7)Menelusuri saraf dan suplai darah ke organ kelamin eksternal.

Prosedur

1)Cari fosa iskiorektalis dan mengidentifikasi batas-batasnya

2)Mengidentifikasi ligamen sacrotuberal dan sacrospinal. Mengidentifikasi saraf rektuminferior dan kapal.

5/26/2018 Blok 15

8/47

3)Identifikasi kanal pudenda dan bundel neurovaskular pudenda.Mengidentifikasi bundel neurovaskular pudenda yang lewat di sekitar ligamentum

sacrospinal. Buka kanal pudenda dan mengidentifikasi saraf pudenda, arteri dan vena

pudenda interna.

4)a. WANITA:Identifikasi otot ischiocavernosus dan bulbospongiosus. Perhatikan hubungan dari

otot ini pada tubuh cavernosus.

Mengidentifikasi bulbus vestibular. Mengidentifikasi lubang klitoris.

Mengidentifikasi kelenjar vestibular lebih besar di pinggiran belakang bulbus

vestibular, yang dalam ke otot bulbospongiosus.

Mengidentifikasi crus klitoris. Periksa crus dan melacak clitoridis corpus cavernosum

depan sampai bersatu dengan corpus cavernosum dari sisi yang berlawanan untuk

membentuk lubang klitoris. Pada dorsum lubang klitoris, cari vena dorsalis yang

dalam, dan saraf dorsal dan arteri dorsal klitoris. Periksa kelenjar clitoridis.

Identifikasi arteri dalam dan saraf klitoris dan arteri untuk bulbus. Identifikasi

membran perineum dan vena dorsalis yang dalam klitoris.

Bagian corpus cavernosum clitoridis dan bulbus vestibular, memeriksa jaringan ereksi

dan tunika albuginea.

b. PRIA:

Mengidentifikasi cabang neurovaskular pudenda.

Periksa bahwa jaringan subkutan dari penis dan skrotum yang mengandung

lemak. Pada skrotum lapisan ini, yang tunika dartos scroti, berisi otot polos.

Cari saraf skrotum posterior, arteri, dan vena (cabang dari saraf pudenda perineum

dan arteri dan vena pudenda interna, masing-masing).

Identifikasi ischiocavernosus dan otot bulbospongiosus meliputi krura dan bulbus

penis dan perhatikan bagaimana fasia deep otot-otot ini benar-benar berinvestasi

batang penis (fasia penis dalam).

Mengidentifikasi akar dari penis: crus dari corpus cavernosum penis dan bulbus dari

corpus spongiosum.

Identifikasi batang dan glans penis.

5/26/2018 Blok 15

9/47

Mengetahui penis corpora cavernosa, mencatat bagaimana kanan dan kiri bersatu

untuk membentuk batang penis. Pada dorsum penis mencari dan mengidentifikasi

vena dorsalis yang dalam, dan arteri dorsalis dan saraf.

Pada penis dipotong mengidentifikasi struktur dan hubungan body erectile dan tunika

albuginea. Bandingkan antara corpus spongiosum dan cavernosum.

Identifikasi arteri dalam penis.

Pada bagian midsagittal, memeriksa uretra penis, bulbus dan fosa navicular.

Memotong antara ligamentum arkuata pubis dan perbatasan anterior membran

perineum adalah vena dorsalis yang dalam dari penis, sedangkan arteri dan vena

dorsalis dari penis melalui bagian anterosuperior dari membran perineum.

5)Identifikasi membran perineum dan uretra sfingter.Mengidentifikasi bagian-bagian dari uretra pria dan wanita.

Periksa membran perineum, luas dan bagian-bagiannya. Pertimbangkan

fungsinya. Periksa vagina melewati membran, mencatat hubungannya dengan uretra

bermembran dan otot sphincter uretra. Apa kelenjar tertanam dalam otot ini (pada pria)?

Apa kelenjar bulbourethral?

Tinjau bagian dari uretra pria (prostat, membran, dan spons atau penis).

5/26/2018 Blok 15

10/47

HISTOLOGI

SISTEM UROPOETICA

1. PenisKode slide : SG-6

Pewarnaan : HE (Hematoksilin Eosin)

Perhatian :

a)Corpora cavernous; konstruksi ini terdiri dariTunica albuginea: memiliki cabang trabekula, terdiri dari jaringan ikat padat

Trabekula: perbatasan cavernosa tersebut, terdiri dari otot polos dan jaringan

ikat

Cavernosus: rongga penuh vena-vena

b)Corpus spongiosum terdiri dari:Tunica albuginea, sangat tipis

Uretra di tengah, dibatasi oleh epitel kolumnar stratificatum

c)Cutisd)Sub Cutis

2. EpididimisKode slide : SG-1

Pewarnaan : HE (Hematoksilin Eosin)

Perhatian :

Ductus epididimis adalah tabung yang sangat berliku-liku yang terdiri dari kepala, tubuh

dan ekor epididimis. Ductus dilapisi oleh epitel kolumnar pseudostratifikatum.

Struktur epitel kolumnar pseudostratifikatum terdiri dari:

Sel kolumnar / sel tinggi memiliki panjang, stereocilia non motil apikal

Short cells rest pada membran basal

3. Kulit kepalaKode slide : IN-2

Pewarnaan : HE (Hematoksillin Eosin)

Perhatian :

5/26/2018 Blok 15

11/47

Kulit kepala adalah berbulu, sehingga folikel rambut dapat sering ditemukan dalamspesimen. Kelenjar sebaceous juga dapat dilihat membuka ke dalam folikel rambut.

Sekresi kelenjar sebasea oleh sekresi holocrine di mana seluruh sel dilepaskan. Kulit

kepala ini juga berisi kelenjar keringat yang banyak.

Folikel rambut adalah struktur tubular yang terdiri lima lapisan konsentris dari sel

epitel. Tiga bagian dalam lapisan epitel (medulla, korteks dan lapisan kutikula)

mengalami keratinisasi untuk membentuk batang rambut, sedangkan dua lapisan luar

membentuk selubung epitel (selubung akar internal dan eksternal). Pada dasarnya

ada ekspansi bulbus pada papilla dermal, bulbus rambut, di mana semua lapisan

bergabung untuk menjadi tidak bisa dibedakan satu sama lain. Bulbus rambut dapat

ditemukan di hipodermis tersebut.

Pada bagian melintang dari folikel, folikel yang unsheathed oleh selubung akar

kolagen dalam terluar diikuti dengan selubung akar eksternal dan selubung akar

internal. Selubung terdalam akar internal adalah lapisan kutikula, yang mengelilingi

korteks. Medula ini kadang-kadang tidak dapat diamati.

4. GinjalKode slide : SU-1

Pewarnaan : HE

Perbesaran rendah & tinggi:

a)Kapsula fibrosab)Korteks dan medulac)Nephronum

Nefron adalah subunit fungsional dasar dari ginjal. Setiap nefron terdiri dari:

Corpuscle ginjal (Corpusculum renale):

Glomerulus

Kapsul Bowman (kapsula glomeruli):

lapisan parietal (paries eksterna)

lapisan visceral (paries interna)

ruang Bowman (lumen capsulae)

Tubulus renal

Tubulus proksimal yang berbelit-belit

5/26/2018 Blok 15

12/47

Bagian dari nefron kontinu dengan leher dan dibagi menjadi:

1)Tubulus proksimal yang berbelit-belit2)Lurus, tungkai bercabang decending ke lengkung Henle

Tabung epitel dimulai di pole urinai dari corpus darah, lapisan yang rendah

epitel simpel kolumnar ke kuboid. Sel-sel lapisan memiliki banyak microviili

yang disebut brush border (iimbus peniciiiatus) yang meningkatkan luas

permukaan yang tersedia untuk penyerapan.

Bagian berbelit mengosongkan tubulus proksimal ke bagian lurus (juga disebut

anggota tubuh desending lengkung Henle).

Ansa Henle (Ansa nephroni)

Tabung berbentuk U epitel terdiri dari:

Bagian descending: epitel kolumnar ke epitel kuboid untuk epitel skuamosa

Bagian ascending: epitel kuboid

Tubulus distal berbelit-belit

Lapisan epitel kuboid adalah rendah, tanpa brush border, sehingga lumen yang

muncul lebih luas. Epitel tubulus distal membentuk disk sel kolumnar padat

disebut makula densa pada titik di dekat pole pembuluh darah dimana corpus

ginjal bertemu dengan arteriola aferen.

Aparatur Juxtaglomerular (JG):

Aparatur JG terletak dekat pole pembuluh darah dari corpus ginjal pada titik

kontak antara tubulus distal berbelit-belit dan arteriola aferen, terdiri dari sel JG,

makula densa, dan polkissen (extraglomerular mesangial) sel.

Sel-sel JG adalah modifikasi dari sel otot polos di dinding arteriola aferen.

Mengumpulkan tubulus dan saluran:

Sel blocklike memiliki batas antar lapisan yang berbeda, mereka adalah kuboid

dalam tubulus kecil dan kolumnar dalam saluran yang lebih besar dari medula.

Ada sitoplasma dengan warna yang buruk, sehingga sel-sel tampaknya jelas.

5/26/2018 Blok 15

13/47

Papilla ginjal

Papilla ginjal membentuk puncak piramida medullar di mana proyek ke dalam

ruang pelvicalyceal. Saluran Bellini, yang terbesar dari saluran pengumpul

berkumpul untuk mengalirkan urin melalui sejumlah lubang (cribriform area)

aditif papilla. Ruang Pelvicalyceal itu dilapisi epitel transisional.

Calyces ginjal dan pelvis ginjal

Dinding setiap calyx ginjal dan pelvis terdiri dari mukosa, muskularis, dan

adventitia, tidak ada sub mukosa. Mukosa, terdiri urinary khas (epitel

transisional), terhubung ke meshwork heliks mendasari otot polos dengan

jaringan ikat dari lamina propria kepadatan variabel.

Adventitia memadukan ke dalam jaringan adiposa yang terdapat dalam sinus

ginjal.

5. UreterKode slide : SU-2

Pewarnaan : HE

Pelvis ginjal berbentuk corong, ujung atas diperluas ureter, yang menyampaikan urin ke

kandung kemih.

Dinding terdiri dari tiga lapis:

a)Mukosa, melapisi lumen. Ini terdiri dari epitel transisional di lamina propria darijaringan ikat longgar yang mengandung jaringan kolagen dan serat elastis.

b)Muskularis, perifer ke muskularis. Ini adalah lapisan luar dari jaringan ikat longgar,yang menyatu dengan jaringan ikat dari struktur yang berdekatan.

Lumen: penampang kosong, berbentuk stellata

6. Kandung kemih (vesica urinaria)Kode slide : SU-3

Pewarnaan : H E

Dinding terdiri dari atas:

a)Mukosa, epitel transisional. Ketika relax, kondisi nondistended permukaan sel epitelyang ovoid dan ketebalan epitel bervariasi sesuai dengan organ tertentu, sekitar tujuh

atau lebih lapisan dalam kandung kemih. Inti kadang 2 buah. Ketika organ tertarik

5/26/2018 Blok 15

14/47

atau buncit, epitel ini cukup tipis dan sel-sel permukaan rata dan berbentuk kubus di

basal.

Lamina propria: jaringan ikat longgar.

b)Adventitia (serosa)

5/26/2018 Blok 15

15/47

MIKROBIOLOGI

ISOLASI, IDENTIFIKASI DAN KERENTANAN ANTIBIOTIKA PADA BAKTERI

PENYEBAB

INFEKSI SALURAN KEMIH

TUJUAN:

Untuk menegakkan diagnosis penyebab infeksi saluran kemih (ISK) dan menentukan

pilihan antibiotik yang akan digunakan untuk pengobatan.

LATAR BELAKANG:

Kebanyakan ISK disebabkan oleh bakteri aerobik, bakteri gram (-) yang biasanya

terdapat pada saluran usus. Meskipun jumlah bakteri anaerob ditemukan dalam usus jauh

lebih tinggi daripada aerobik, kelompok bakteri ini jarang terlibat dalam ISK.

Mikroorganisme yang paling sering bertanggung jawab untuk ISK adalah family

Enterobacteriaceae. Diperkirakan hingga 80 persen kasus dari ISK disebabkan oleh

Escherichia coli. Penyakit lain biasanya berhubungan dengan bakteri ini Klebsiella sp.,

Proteus sp., Enterobacter sp., Pseudomonas sp., dan Staphylococcus sp.

Pasien dengan diabetes mellitus atau mereka yang menjalani prosedur invasif

(kateterisasi kandung kemih), dan pengobatan dengan obat imunosupresif beresiko

mengalami ISK. Pemeriksaan bakteriologis urin dianjurkan untuk kasus-kasus infeksi bakteri

yang dicurigai pada kandung kemih dan ginjal.

Penampilan kasar urin (kekeruhan, bau, berat jenis, pH) tidak selalu berkorelasi

dengan ISK sehingga diagnosis ISK harus didasarkan pada pemeriksaan bakteriologis.

Kerentanan bakteri terhadap berbagai antibiotik sangat bervariasi dan tidak ada

antibiotik tunggal yang ampuh melawan semua bakteri patogen.

Resistensi bakteri terhadap antibiotik semakin meningkat dari waktu ke

waktu. Bahkan penemuan dan penggunaan antibiotik baru biasanya diikuti dengan

munculnya bakteri resisten terhadap antibiotik. Oleh karena itu, sangat penting untuk

melakukan tes kerentanan antibiotik untuk bakteri penyebab infeksi sehingga pilihan

antibiotik untuk pengobatan infeksi bakteri dapat ditentukan.

5/26/2018 Blok 15

16/47

ALAT DAN BAHAN

Cawan Petri Agar Mc.Conkey

Pipet Agar darah

Inkubator Agar Mueller-Hinton

Gelas pipa Broth Brain Heart Infusion (BHI)

Loop Agar base

Cotton bud steril Garam fisiologis

Pinset Antibiotik disk

PROSEDUR:

1)Mengumpulkan urine untuk cultur bakteriologiMetode: Bersihkan bagian tengah dari kumpulan urin

Waktu: spesimen pagi hari lebih disukai

Transportasi Spesimen:

1)Spesimen urine harus dikirim ke laboratorium sesegera mungkin setelah didapatkan.2)Jika cultur langsung tidak memungkinkan, spesimen harus didinginkan

(Penyimpanan maksimum dinginkan adalah 24 jam)

3)Spesimen lebih dari 2 jam dari pendinginan tidak harus diuji

Koleksi Spesimen:

Wanita

1)Lepaskan pakaian dalam2)Cuci tangan, bilas, dan keringkan dengan handuk bersih3)Membuka labia dengan satu tangan, dan menjaga tetap terbuka selama mencuci, dan

melewati spesimen urin

4)Cuci vulva dengan sabun5)Bilas secara menyeluruh dengan air bersih (steril jika tersedia)6)Buang 20-25 ml urin pertama7)Kemudian, mengumpulkan urin langsung dalam wadah8)Ganti penutup wadah, dan memberikan spesimen urin pada petugas medis

Pria

1)Cuci tangan2)Cuci penis dan bilas dengan air steril atau bersih

5/26/2018 Blok 15

17/47

3)Membuang bagian pertama dari urin ke dalam toilet4)Bagian kedua langsung di simpan ke dalam wadah sampel5)Hati-hati, ganti penutup pada wadah6)Memberikan spesimen urin pada petugas medis

2)Isolasi dan penghitungan jumlah bakteri dalam urin:a)Metode pour plate

Encerkan urin dengan garam fisiologis 1/10, 1/100, 1/1000 dan 1/10.000

Tuang 1 ml urin murni dan urin yang tercampur air pada cawan petri berisi agar

darah [untuk bakteri Gram (+)] dan agar Mac Conkey [untuk bakteri Gram (-)]

Kocok dishes sampai permukaan agar dipenuhi cairan. Diperkirakan hanya 0,1

ml urin akan tampak ke permukaan

Buang urin yang tersisa

Inkubasi dishes pada 37C di malam hari (18-24 jam)

Hitung jumlah pertumbuhan koloni pada permukaan agar

Jumlah bakteri per mililiter urin dihitung dengan rumus berikut:

A x B = ............... koloni membentuk unit / ml

dimana A = jumlah pertumbuhan koloni pada permukaan agar

B = faktor pengenceran (timbal balik)

Prosedur lebih lanjut untuk identifikasi bakteri terisolasi dijelaskan di tempat lain

(lihat Blok 11 dan 12)

b)Metode streak plateAmbil sampel urin murni dengan loop standar (0,002 ml)

Simpan ke agar darah dengan cara mengarahkan ke bawah

Mensterilkan loop dengan pemanasan pada kompor

Setelah dingin, celupkan loop dalam sampel urin dan simpan ke agar Conkey

Mac dengan cara yang sama seperti agar darah

Inkubasi agar pada 37C semalam (18-24 jam)

Hitung jumlah koloni

Jumlah bakteri dalam 1 ml sampel urin ditentukan berdasarkan tabel 1 berikut

3)Tes kerentanan antibiotika)Metode Kirby Bauer

5/26/2018 Blok 15

18/47

Mentransfer beberapa koloni dari pertumbuhan bakteri malam hari pada mediaagar ke dalam 0,5 ml broth BHI

Inkubasi pada 37C selama 2 - 5 jam

Tambahkan garam steril sehingga diperoleh suspensi bakteri pada konsentrasi

108CFU/ml

Masukkan cotton bud steril ke dalam suspensi, tekan cotton berlawanan dengan

dinding tabung

Mengoleskan cotton ke seluruh permukaan agar Mueller Hinton

Menempatkan antibiotik disk standar pada permukaan agar


Memeriksa adanya inhibisi pertumbuhan sekitar disk dan mengukur diameter

zona inhibisi

Menentukan apakah bakteri sensitif atau resisten terhadap antibiotik dengan

menggunakan tabel interpretatif standar yang tersedia (Tabel 3)

b)Metode pour plate (metode melapisi agar)Transfer 3 - 5 koloni dari media agar ke 0,5 ml BHI broth


Mengambil loopful (0,002 ml) pertumbuhan bakteri, transfer ke dalam 5 ml agar

base cair (50C)

Mencampur cepat dan menyebar secara merata di atas permukaan agar Mueller

Hinton

Diamkan agar base selama 5 menit

Tambahkan disk antibiotik, inkubasi pada 37C semalam

Menentukan kerentanan bakteri terhadap antibiotik

5/26/2018 Blok 15

19/47

BIOKIMIA

KREATININ

Kreatinin, yang creatine anhidrida terbentuk sebagian besar di otot dengan ireversibel

nonenzimatik dehidrasi creatinefosfat. Kreatine terdapat dalam otot, otak dan darah, baik

sebagai creatinefosfat dan dalam bentuk bebas. Kreatine juga biasanya terdapat dalam

urin. Pada manusia untuk memperoleh energi, kreatinefosfat dalam otot sebagai "senyawa

fosfat energi tinggi" akan dimetabolisme untuk dikonversi menjadi kreatinin dan ATP.

Konsentrasi kreatinin dalam darah atau serum manusia bervariasi antara 0,7 dan 1,5

mg / dl. Ekskresi kreatinin dalam urin dari subyek, sangat konstan dari hari ke hari dan

proporsional dengan massa otot. Dalam kondisi normal sekitar 1,0 sampai 1,25 g kreatinin

diekskresikan oleh orang dewasa dalam waktu 24 jam. "koefisien kreatinin" adalah ekskresi

harian kreatinin dalam mg / 24 jam / kg berat badan dalam urin. Per kg berat badan, adalah

suatu indeks konstan eliminasi kreatinin. Biasanya itu adalah 20-26 mg / kg berat badan

untuk pria dan 14-22 mg / kg berat badan untuk wanita. Volume kreatinin dalam urin

meningkat pada demam tifoid, tetanus, pneumonia, kehamilan, menyusui, kelaparan,

gangguan metabolisme karbohidrat, hipertiroidisme, kerusakan otot dan penyakit infeksi, dan

penurunan pada anemia, atrofi otot, hipotiroid dan degenerasi lanjut ginjal.

Prinsip Percobaan pada Kreatinin Menggunakan Colorimeter

Untuk memahami proses colorimeter dalam percobaan ini, perlu untuk mengetahui

hukum Lambert-Beer. Fotometer itu sering digunakan untuk mengukur penyerapan cahaya

dalam daerah ultraviolet yang terlihat dan dekat. Panjang gelombang cahaya antara sekitar

200 nm dan 750 nm yang terlihat. Sinar memasuki kolom spektrum akan terlihat dari solusi

fotometer, ketika diserap oleh molekul, menghasilkan menurun dari intensitas cahaya

(warna). Mengubah intensitas cahaya (warna) sebanding dengan konsentrasi zat terlarut

dalam larutan.

Intensitas warna dapat di tingkatkan kadarnya pada penyerapan cahaya pada wilayah

tertentu atau panjang gelombang dalam spektrum terlihat. Derajat penyerapan cahaya pada

panjang gelombang tertentu harus digunakan sebagai ukuran langsung dari intensitas.

Prosedur analitik berdasarkan pengukuran langsung dari intensitas warna dalam penyerapan

cahaya akan dibandingkan antara solusi yang tidak dikenal dan larutan standar. Untuk

menghindari kebingungan itu muncul diinginkan untuk menentukan prosedur colorimeter

5/26/2018 Blok 15

20/47

sebagai salah satu solusi berwarna yang mewakili substansi dalam pertandingan konsentrasi

yang tidak diketahui dengan warna standar mewakili zat dalam konsentrasi diketahui. Dari

pembacaan yang diketahui dan standar, dan konsentrasi yang diketahui dari standar, jumlah

bahan dalam "tidak diketahui" dihitung sebagai berikut:

Pembacaan standar

------------------------------------------- X konsentrasi standar = konsentrasi tidak

diketahui

Pembacaan tidak diketahui

HUKUM LAMBERT: Perubahan intensitas cahaya langsung proporsional dengan kerapatan

larutan (jarak atau diameter kolom)

HUKUM BEER: Perubahan intensitas cahaya langsung proporsional terhadap perubahan

konsentrasi zat terlarut dalam larutan

Larutan

1. Larutan standar: potasium bikromat 0,5 NIntensitas warna dari larutan ini adalah sama dengan konsentrasi kreatinin 2.025 mg%

2. Asam picric terkonsentrasi3. Larutan NaOH 10%

Prosedur

1. Pipet 1 ml urin ke dalam gelas 100 ml dari tambahkan 2 ml asam picric terkonsentrasidan 1,5 ml larutan NaOH 1,0%, campurkan dan diamkan selama 10 menit, setelah itu

tambahkan aquades sampai 100 ml.

2. Pipet larutan standar ke dalam cuvet dan larutan No.1 untuk cuvet lainnya. Kedua cuvetmengandung larutan hanya dalam volume setengah.

3. Masukan cuvet larutan standar di sebelah kiri dan cuvet urin di sebelah kanan daricolorimeter.

4.Nyalakan lampu colormeter.5. Mengatur cuvet larutan standar agar tersimpan pada posisi 8 mm.

5/26/2018 Blok 15

21/47

6. Mengatur cuvet urin pada posisi sehingga memberikan warna yang sama dengan larutanstandar. Perhatikan jarak cuvet larutan urin yang dimasuki oleh cahaya. Jarak yang baik

adalah antara 8 sampai 12 mm.

PENENTUAN ALBUMIN URINE

DENGAN METODE BIURET

PRINSIP

Urine normal mengandung jejak bahan protein, namun jumlah yang ada umumnya

kurang dari 250 mg per jam dan sangat sedikit untuk menghindari deteksi oleh salah satu tes

sederhana dalam penggunaan umum.

Globulin bukan unsur pokok dari urin normal dan sering ditemukan dalam kondisi

patologis. Protease telah ditemukan di urin pada kasus pneumonia, difteri, intestinal ulcer,

karsinoma, dermatitis, osteomalacia, atrofi ginjal, dan dalam kondisi adanya pus pada saluran

cerna.

Manifestasi penyakit ginjal diabetes adalah adanya sejumlah kecil albumin dalam

urin, yang disebut mikroalbuminuria. Ekskresi protein dalam urin biasanya tidak melebihi

100 sampai 200 mg setiap 24 jam. Sebagian besar protein ini berasal dari tubulus, tetapi

sebagian besar disaring melalui glomeruli. Mikroalbuminuria adalah adanya albumin di

tingkat melebihi 300 mg setiap 24 jam, kondisi ini disebut proteinuria. Beberapa penyebab

peningkatan sementara dalam albuminuria termasuk olahraga, asupan makanan, kehamilan,

obat, dan faktor lainnya yang dapat mengubah kedua pengiriman protein dan hemodinamik

glomerulus.

Larutan

1. Reagen Biuret (berisi CuSO4, Na-K Tartrat, NaOH dan KJ)2. Albumin standar (0,5 g/100 ml) yang masih fres3. Larutan sampel4. Aquadest

PROSEDUR

1. Prosedur:Pemisahan fraksi albumin dan globulin:

5/26/2018 Blok 15

22/47

1)Tambahkan 4500 l aquades ke dalam 500 l larutan sampel yang mengandungprotein. Aduk rata; globulin akan mengendap sedangkan albumin masih larut dalam

suspensi.

2)Centrifuge suspensi pada 3000g selama 10 menit.3)Pindahkan supernatan yang berisi albumin ke dalam tabung baru.

2. Prosedur:1)Membagi reagen Biuret menjadi 2 tabung (tabung I dan II), 3 ml pada setiap tabung.2)Ke dalam tabung I tambahkan 2 ml larutan protein standar dan ke dalam tabung II

tambahkan 2 ml larutan sampel.

3)Inkubasi pada 37C selama 10 menit4)Setelah dingin, dibaca dengan spektrofotometer pada panjang gelombang 540 nm

Perhitungan:

A sp - A bl

Konsentrasi albumin = ----------------------- X konsentrasi standar X pengenceran

A st - A bl

Percobaan albumin urin

1. Campurkan 50 l sampel (urin) + 4500 l aquades2. Sentrifuge 300 g selama 10 menit3. Ambil supernatan sebagai larutan coba yang mengandung albumin

Larutan standard albumin 0,5 g / 100 ml

Blanko Standard Sampel

Reagen Biuret 3 ml 3 ml 3 ml

Aquadest 2 ml - -

Sampel urin - - 2 ml

Standard - 2 ml -

Vortex, inkubasi pasa suhu 370C selama 10 menit kemudian baca pada 540 nm

5/26/2018 Blok 15

23/47

PATOLOGI KLINIK

URINALISIS RUTIN

Urinalisis rutin dilakukan pada pasien di rumah sakit atau klinik medis, dan untuk

setiap pemeriksaan fisik. Pengujian ini biasanya diulang setiap tahun atau sesering dokter

yang dianggap perlu. Ini adalah salah satu prosedur yang paling berguna yang tersedia untuk

dokter sebagai indikator kesehatan atau penyakit, terutama di bidang gangguan metabolisme

dan ginjal.

Urinalisis sering dilakukan pada urin pasien pada saat masuk rumah sakit dan sering

diulang untuk mengevaluasi status kesehatan saat pasien dirawat di rumah sakit.

Pengamatan Dan Penentuan Pada Urinalisis Rutin:

1. Pemeriksaan visualPenampilan

Warna

Volume

2. Pemeriksaan kimiapH

Spesifik gravity

Protein

3. Pemeriksaan mikroskopisEritrosit

Leukosit

Sel epitel

Kristal

Cast

Ragi

Bakteri

Organisme lain

5/26/2018 Blok 15

24/47

Jenis spesimen:

Konsentrasi urin bervariasi sepanjang periode 24 jam tergantung pada sebagian

asupan air pasien dan sebagian pada aktivitasnya.

Pengumpulan urin:

Spesimen pagi pertama;

Sebagian besar terkonsentrasi, kandung kemih diinkubasi.

Terbaik untuk; nitrit, protein, pemeriksaan mikroskopis.

Spesimen acak:

Paling nyaman, paling umum.

Baik untuk; screen kimia, pemeriksaan mikroskopis.

Spesimen kedua:

Spesimen pagi pertama dibuang; spesimen kedua dikumpulkan dan diuji.

Refleksi glukosa darah, membentuk elemen utuh.

1. Pemeriksaan VisualPenampilan

Pengamatan pertama biasanya dilakukan pada spesimen urin adalah penampilannya.

Awalnya, hal ini dilakukan hampir tanpa berpikir hanya menangani spesimen. Namun,

perhatian ke rincian dan korelasi dengan pengalaman masa lalu dapat memberikan petunjuk

berguna pada adanya berbagai zat dalam spesimen urin. Misalnya, warna gelap menunjukkan

banyak urin pekat, warna yang pucat, urin encer, warna coklat kemerahan, darah, warna

kehijauan, jaundice. Spesimen keruh mungkin menyarankan urin alkali. Pengamat terlatih

mampu mendapatkan petunjuk penting tentang urin hanya dengan penampilannya.

Warna

Warna urin dipengaruhi oleh banyak unsur, termasuk konsentrasi darah, makanan,

pigmen, pewarna; urin normal biasanya berwarna kuning pucat dan terlihat bening. Intensitas

warna urin normal adalah tergantung pada konsentrasinya. Lemak atau warna kuning urin

normal adalah karena adanya pigmen kuning yang disebut urochrome.

Perubahan warna urin dalam keadaan penyakit banyak karena adanya pigmen yang

biasanya tidak muncul. Pigmen empedu dapat menghasilkan warna kuning ke kuning-coklat

atau kehijauan, sedangkan porfirin prodece warna coklat-merah gelap; hemoglobin

memberikan warna raddish-coklat. Melanin menyebabkan urin untuk berubah warna menjadi

5/26/2018 Blok 15

25/47

coklat-hitam. Alcaptonuria diidentifikasi pada urin yang berubah menjadi coklat tua atau

hitam. Urin kemungkinan berubah warna setelah mengkonsumsi berbagai pewarna, makanan,

dan obat.

Volume

Volume normal urin oleh orang dewasa dalam 24 jam rentang periode dari 750 hingga

2.000 ml. Volume rata-rata sekitar 1.500 ml. Jumlah selama periode manapun secara

langsung berhubungan dengan asupan cairan individu, suhu dan iklim dan jumlah keringat

yang terjadi. Jumlah pada anak lebih kecil daripada orang dewasa, tetapi total volume lebih

besar secara proporsional dengan ukuran tubuh mereka.

2. Pemeriksaan KimiapH

Ginjal dan paru-paru adalah dua organ utama yang mengatur keseimbangan asam-

basa tubuh. Paru-paru mengeluarkan karbon dioksida sedangkan ginjal mengatur ekskresi

asam nonvolatile yang dihasilkan oleh proses metabolisme normal dari jaringan. Keasaman

urin terutama disebabkan asam fosfat, dengan hanya sebagian kecil disumbangkan oleh asam

organik seperti piruvat, laktat, dan asam sitrat. Asam ini akan dikeluarkan melalui urin

sebagai garam, terutama natrium, kalium, kalsium, dan garam amonium. Ginjal mengatur

ekskresi selektif dari berbagai kation untuk memelihara keseimbangan asam-basa

normal. Hal ini dicapai terutama melalui reabsorpsi sejumlah variabel ion natrium oleh

tubulus dan sekresi tubular ion hidrogen dan amonium dalam pertukaran. Urin menjadi

semakin asam karena jumlah natrium dipertahankan oleh tubuh agar tidak meningkat.

Lakmus kertas, kertas nitrazine, atau kertas pH indikator lainnya dapat digunakan.

Merah = asam; Orange = netral; Kuning = basa.

Berat jenis

Berat jenis urin menunjukkan proporsi relatif total volume componen padat terlarut

pada spesimen. Ini mencerminkan tingkat relatif dari konsentrasi atau pengenceran

spesimen. Pengetahuan tentang berat jenis diperlukan dalam menafsirkan hasil tes yang

paling dilakukan di urinalisis rutin. Dalam kondisi yang tepat dan standar restriksi cairan

pada peningkatan asupan cairan pada gravitasi spesifik untuk mengukur kemampuan

terkonsentrasi dan pengenceran dari ginjal.

5/26/2018 Blok 15

26/47

Filter busa dari urin. Jangan biarkan menyentuh sisi wadah urinometer. Baca

graduations pada uap pada bagian bawah meniskus. Encerkan urin, jika perlu, untuk

mendapatkan cukup untuk mengapungkan urinometer, dan kalikan dua angka terakhir dari

pembacaan berat jenis dengan faktor pengenceran. Jangan gunakan urin yang diencerkan

untuk tes kimia.

Koreksi faktor zat terlarut dan padatan lain: berat jenis 0,001 dinaikkan jika yang

ditambahkan dalam jumlah yang dinyatakan per 1000 ml.

1)Urea, 3.6 Gm2)Glukosa, 2.7 Gm3)NaCl, 1.5 Gm4)Protein, 3.9 Gm

Koreksi faktor suhu: Untuk mengoreksi suhu kamar, tambahkan 0,001 sampai berat

jenis untuk setiap 3C. Meningkat, kurangi 0,001 untuk setiap 3C di bawah suhu standarisasi

urinometer.

Nilai yang diharapkan: gravitasi spesifik urin bisa berkisar 1,003-1,030, tetapi

biasanya tetap antara 1,010 dan 1,025. Berat jenis tertinggi pada spesimen pagi pertama, yang

biasanya lebih besar dari 1,020. Berat jenis 1,025 atau meningkat dalam spesimen urin yang

di acak menunjukkan kemampuan terkonsentrasi normal.

Protein

Sekitar sepertiga dari protein urin normal adalah albumin. Albumin tampaknya

identik dengan albumin serum. Sebagian besar protein normal dalam urin adalah

globulin. Hal ini terutama terdiri dari alfa-1 globulin dan alfa-2 globulin, dengan jumlah yang

lebih kecil globulin beta dan gamma. Globulin urine memiliki berat molekul lebih rendah

daripada menjadi globulin serum yang sesuai, tetapi terkait erat dengan antigen. Jejak jumlah

protein lain juga dapat ditemukan dalam urin. Mucoprotein dengan berat molekul yang tinggi,

protein Tamm-Horsfall, terjadi pada urin normal dalam jumlah sampai dengan 2,5 mg /

dl. Dalam nephrosis mungkin terjadi pada konsentrasi yang lebih tinggi. Hal ini tidak

ditemukan dalam plasma dan diperkirakan berasal dari ginjal.

Tes kepanasan dan asam asetat.

Dapatkan tabung reaksi tiga perempat yang penuh dengan urin dan bagian atas

tertutup selama dua menit. Kekeruhan biasanya disebabkan fosfat atau karbonat, atau

5/26/2018 Blok 15

27/47

protein. Jika kekeruhan memudar pada pengasaman urin dengan 3 sampai 5 tetes asam asetat

10%, kekeruhan ini disebabkan fosfat atau karbonat, yang mungkin muncul dalam urin

normal. Jejak samar protein dapat diindikasikan hanya setelah penambahan asam.

Baca tindak lanjut:

- Tidak ada kekeruhan

Nyaris tak terlihat keruh

+ Keadaan mulai keruh, namun tidak ada rincian dan tidak flokulasi

+ +Kekeruhan Granular, tapi tidak flokulasi. Terlihat di atas, berkeruh namun

tidak opaque. Protein 0,1%

+ + + Kekeruhan semakin padat, jelas flokulasi. Protein 0,2 hingga 0,3%

+ + + + Presipitasi sangat tebal, hampir solid. Protein 0.5% atau lebih

3. Pemeriksaan MikroskopisProsedur pemeriksaan mikroskopis pada sedimen

1)Ukur volume urin tercampur yang akan disentrifugasi.2)Standarisasi sentrifugasi (Waktu dan Kecepatan)3)Ukur volume sedimen yang tersisa di tabung4)Mengukur jumlah sedimen yang ditempatkan pada slide5)Gunakan coverslip standar6)Melihat mikroskop perbesaran kuat7)Menghitung dan mencatat elemen / ml urin

Pewarnaan sedimen

1)Tambahkan 2 tetes campuran pewarna untuk 1 tetes sedimen urin.2)Campur secara menyeluruh dengan menjentikkan tabung dengan jari.3)Tempatkan 1 tetes sedimen yang diwarna pada slide yang bersih, coverslip.

RBC

Sel darah merah biasanya terlihat pucat, bias cahaya, cakram cekung ganda bila

dilihat di bawah perbesaran kuat. Mereka tidak memiliki inti. Sel darah merah terlihat di

segar, sedimen tak bercacat yang berwarna pucat. Dalam urin yang tidak segar, hanya terlihat"sel bayangan". Dalam urin pekat, sel-sel darah merah mungkin kecil dan crenated. Dan

5/26/2018 Blok 15

28/47

dalam urin encer, tampak terlihat besar dan bengkak, dan kadang-kadang pecah untuk

menghasilkan sel "hantu". Sel darah merah harus dibedakan dari sel ragi, kristal urate, dan

tetesan minyak. Sel ragi biasanya bulat telur dan sering menunjukkan masih tahap

awal. Amonium kristal biurate terjadi dalam jumlah besar, dan ukurannya besar-

besar. Mineral tetesan minyak juga sangat bervariasi dalam ukuran dan lebih refractile dan

bulat.

WBC

Jenis dominan muncul leukosit dalam urin adalah leukosit polimorfonuklear. Leukosit

ini memiliki inti tersegmentasi, biasanya granular, dan sekitar 1 1/2kali lebih besar sel darah

merah. Neutrofil tertentu yang besar dari leukosit biasa, dan baik butiran sitoplasma

menunjukkan gerakan Brown. Sel-sel ini disebut motilitas granular atau sel

"glitter". Awalnya mereka dianggap pathognomic pielonefritis namun sekarang dianggap

sebagai hasil dari urin hipotonik. Dengan sel darah putih dalam sedimen, urin harus

menunjukkan tes kimia positif untuk esterase leukosit.

Sel epitel

Dengan adany sel epitel tubulus dari kandung kemih, dan uretra dapat diidentifikasi

dengan pencahayaan yang sesuai di bawah mikroskop dengan perbesaran lemah dan kuat.

Sel epitel tubular ginjal berbentuk bulat dan leukosit kemudian sedikit lebih

besar. Masing-masing berisi inti satu yang besar.

Sel epitel kandung kemih lebih besar daripada sel epitel tubular ginjal. Terdapat

berbagai bentuk dari datar, untuk kuboid, atau kolumnar.

Sel epitel skuamosa adalah sel datar besar dengan satu inti dan sitoplasma kecil yang

besar. Mayoritas sel ini kontaminan dari vagina atau vulva, tapi berasal dari uretra.

Kristal

Jenis dan kuantitas endapan kristal bervariasi dengan pH urin. Bahan amorf tidak

terlalu penting. Kristal dalam urin normal terbentuk sebagai spesimen yang membeku. Kristal

urin yang abnormal termasuk sistin, dan tirosin leusin, dan cholesterin. tabel X

mencantumkan beberapa kristal yang ditemukan dalam sedimen urin dan karakteristik fisik

yang terkait dengan mereka.

Casts

5/26/2018 Blok 15

29/47

Ini terbentuk di tubulus ginjal dan biasanya signifikan dari penyakit ginjal. Beberapa

varietas dapat diidentifikasi dan signifikansi mereka dinilai berdasarkan sumber

kemungkinan mereka. Hasil inflamasi glomerulus meningkatkan pembentukan sel darah

merah di nefron; tubulus terkait inflamasi atau penyakit degeneratif dapat menyebabkan

produksi casts lemak, waxy casts, dan dari hialin kurang signifikan dan casts granular ketika

aliran urin berkurang. Leukosit atau urin alkali. Mereka terlihat terbaik cahaya

tereduksi. Jumlah casts per bidang daya rendah.

Yeast

Sel yeast (Candida albicans) mungkin menunjukkan moniliasis urinari, terutama pada

pasien dengan diabetes mellitus. Sering, yeast muncul sebagai kontaminan dalam urin pasien

wanita dengan moniliasis vagina.

Bakteri

Urin normal tidak mengandung bakteri. Jika teknik yang tepat dan hati-hati digunakan

untuk memperoleh sampel, dan jika spesimen dilindungi dari kontaminan sebelum

pemeriksaan, adanya bakteri dalam jumlah yang signifikan dapat menunjukkan infeksi

saluran kemih. Adanya leukosit membantu untuk membedakan antara kontaminasi dan

infeksi.

Organisme lain

Bentuk motil dari Trichomonas vaginalis secara morfologis mirip dengan T.hominis

atau telur dari Schistosoma haematobium dapat dilihat.

Catatan: Buka gambar di bawah (halaman terakhir bagian ini)

5/26/2018 Blok 15

30/47

TEKNOLOGI DIPSTICK

Pendahuluan

Meskipun metode manual mudah beradaptasi dan tersedia untuk analisis urin, tidak

semua perantara tingkat laboratorium memiliki fasilitas untuk mempersiapkan reagen mereka

sendiri. Gula, albumin, urobilinogen dan bilirubin adalah empat zat biokimia yang diuji

dalam sampel urin acak. Meskipun uji kepanasan dan asam asetat mendeteksi adanya protein

seperti albumin, hanya uji semikuantitatif dapat benar-benar berguna. Dengan cara yang

sama, uji Benedict, yang umum digunakan, hanya mendeteksi substansi mengurangi total dan

tidak memprediksi jumlah glukosa yang ada. Teknologi state-of-the-art adalah penggunaan

dipstick untuk mendeteksi zat biokimia dalam cara yang nyaman. Banyak perusahaan

manufaktur sekarang menggunakan strip tes berdasarkan reaksi dasar kimia basah zat

biokimia.

Penyimpanan strip yang benar

Lindungi strip dari kelembaban dan bagian yang berlebihan dan ringan tapi tidak

mendinginkan. Ganti bagian atas pada wadah penyimpanan segera setelah melepaskan strip.

GLUKOSA

Dibandingkan dengan uji Benedict, yang mendeteksi adanya gula total dalam urin, uji

strip mendeteksi semi-kuantitatif jumlah yang glukosa yang ada dalam urin. Ini adalah cara

cepat dan nyaman pengujian untuk menentukan jumlah glukosa yang terdapat dalam

urin. Dua jenis dipstrips yang tersedia, yaitu. Clinistix dan diastix. Ini adalah cara cepat dan

nyaman pengujian urin untuk menentukan jumlah glukosa diekskresikan dalam urin.

PRINSIP

Strip diresapi dengan enzim glukosa oksidase dan peroksida, dan zat indikator 0-

toluidin. O-toluidin dioksidasi menjadi zat hijau-biru (base Schiff) dengan berbagai nuansa

warna, yang kemudian dibandingkan dengan grafik standar yang disediakan dalam kit untuk

melaporkan tingkat perkiraan glukosa yang terdapat dalam urin.

PROTEIN

5/26/2018 Blok 15

31/47

Beberapa tes penyaringan cepat sedang rutin digunakan. Sebagian besar strip tes telah

dikembangkan untuk mendeteksi albumin dan kemungkinan negatif terhadap adanya protein

lainnya, seperti Protein Bence Jones.

Prinsip

Hal ini didasarkan pada kesalahan indikator pH protein. Pada pH konstan perubahan

warna yang terjadi pada indikator ini disebabkan protein. Daerah uji strip reagen diresapi

dengan indikator tetrabromophenol biru, buffer dengan pH 3.0. Pada pH ini hasilnya adalah

berwarna kuning yang menunjukkan tidak adanya protein. Protein membentuk kompleks

dengan pewarna sehingga mengubah warna menjadi hijau atau hijau kebiruan.

Hasil

Warna ini dibandingkan dengan grafik warna yang disediakan, yang menunjukkan

perkiraan konsentrasi protein.

Hasil positif palsu dapat terjadi jika:

spesimen terkontaminasi dengan cairan vagina atau uretra

urin sangat basa saat digunakan

wadah urin terkontaminasi dengan desinfektan seperti chlorohexidine

Hasil negatif palsu akan diamati jika zat asam telah ditambahkan ke urin sebagai pengawet

(misalnya dalam estimasi kalsium urin)

REAGEN STRIP GANDA

Test untuk glukosa, bilirubin, keton, berat jenis, darah, pH, protein dan urobilinogen

menggunakan strip tunggal tes semi-kuantitatif yang tercantum di atas bisa dilakukan.

Prinsip

Plastik strip ini digunakan untuk ditempel pada beberapa daerah reagen yang

terpisah. Tergantung pada reagen yang digunakan, strip ini yang digunakan untuk tes

ditunjukkan di atas.

Glukosa: menggunakan prinsip yang sama seperti dijelaskan untuk Diastix, warna akhir

mulai dari hijau ke coklat.

Bilirubin: didasarkan pada gabungan bilirubin dengan dichloronaniline diazotized

dalam media asam kuat. Rentang warna variasi coklat.

5/26/2018 Blok 15

32/47

Keton: didasarkan pada prinsip reaksi Rothera dan pada pengembangan warna, mulaidari pink kekuningan untuk pembacaan negatif menjadi ungu saat asetoasetat bereaksi

dengan nitropruside. Ini juga mendeteksi aseton tetapi tidak betahydroxybutyrate.

Gravitasi spesifik: dengan adanya indikator polielektrolit yang terdapat dalam urin

memberikan warna hijau biru pada konsentrasi ionik urin rendah, dari hijau menjadi

hijau kuning dalam konsentrasi ionik urin meningkat.

PH: Tes ini didasarkan pada prinsip indikator ganda yang memberikan berbagai warna

mencakup rentang pH urin secara keseluruhan. Warna berkisar dari orange ke kuning

dan hijau ke biru.

Protein: didasarkan pada kesalahan indikator pH protein. Pada pH konstan, kehadiran

protein mengarah ke pengembangan dari setiap warna hijau. Warna berkisar dari

kuning untuk "negatif" melalui hijau kuning ke hijau biru untuk reaksi "positif".

Urobilinogen: Tes ini didasarkan pada reaksi Ehrlich yang dimodifikasi, di mana p-

dimetil amino benzaldehida dalam hubungannya dengan penambah warna bereaksi

dengan urobilinogen dalam medium asam kuat untuk menghasilkan warna pink-merah.

Prosedur

Jangan gunakan strip berubah warna. Jangan sentuh area uji. Celupkan daerah tes dari

strip dalam urin complete, tetapi secara singkat, untuk menghindari reagen terlarut

keluar. Baca hasil tes hati-hati pada waktu yang ditentukan dalam cahaya yang baik dan

dengan daerah uji ditempatkan di dekat grafik spesimen warna yang sesuai pada label

botol. Jangan membaca strip di bawah sinar matahari langsung.

Gangguan

Glukosa: Askorbat dan keton dapat menyebabkan hasil negatif palsu

Biilirubin: indican (ureloxyl sufate) akan menyebabkan hasil positif palsu, sementara

askorbat akan menyebabkan hasil negatif palsu.

Keton: urin berpigmen atau urin yang mengandung metabolit obat levodopa / sulph-

hidroksil dapat menyebabkan hasil positif palsu.

Protein: lihat halaman 105 di bawah Dipstick - Protein, (b) hasil

Quality Control: Dipstix untuk glukosa dan protein umumnya direkomendasikan untuk

laboratorium menengah serta perifer untuk skrining urin rutin. Namun, itu baik untuk

cross-Chech sesekali kinerja strip dengan membandingkan dengan metode

5/26/2018 Blok 15

33/47

konvensional yang dijelaskan dalam Bagian 5.3. Urinalisis - tes semikuantitatif. Ini

juga baik untuk memeriksa hasil strip dengan hasil lain pasien biokimia yang relevan.

UREA - METODE MONOXIME DIACETYL

Pendahuluan

Urea memberikan kontribusi paling besar dari protein nitrogen tubuh, terhitung

sekitar 45% dari total. Ini adalah akhir produk utama dari katabolisme protein pada manusia.

Hal ini disintesis dalam hati, dilepaskan ke dalam sirkulasi darah dan diekskresikan oleh

ginjal. Pengukuran urea dalam darah adalah sangat bermanfaat sebagai indikator integritas

ginjal dan hati.

Prinsip dari metode ini

Urea bereaksi secara langsung dengan monoxime diacetyl dalam kondisi asam yang

kuat untuk memberikan produk kondensasi kuning. Reaksi diintensifkan dengan adanya ion

besi dan thiosemicarbazide. Warna merah intens terbentuk dan diukur pada 540nm /

penyaring kuning hijau.

Jenis spesimen, pengumpulan dan penyimpanan

Serum adalah spesimen pilihan. Banyak sampel bertahan tidak lebih dari 8 jam pada

suhu kamar (25-35C) dan 7 hari pada 2-8C. Untuk durasi yang lebih lama, simpan dalam

lemari pendingin. Jika sampel menunjukkan bukti kontaminasi bakteri, jangan gunakan ini

untuk estimasi urea. Plasma juga dapat digunakan untuk estimasi urea.

Reagen:

Semua bahan kimia harus kelas Analar.

(a)Persediaan reagen asamLarutkan 1,0 g hidrat heksa klorida dalam 30 ml air suling. Tambahkan 20 ml

orthophosporic dan campuran. Simpan dalam botol coklat pada suhu kamar (25-35C).

Stabil selama 6 bulan.

5/26/2018 Blok 15

34/47

(b)Campuran reagen asamTambahkan perlahan 100 ml konsentrat H2SO4untuk 400 ml air suling diambil dalam 1

liter labu datar dengan bagian bawah kerucut kemudian disimpan dalam waterbath

icecold. Aduk rata dan tambahkan 0,3 ml reagen asam. Campurkan dan simpan dalam

botol coklat pada suhu kamar (25-35C). Stabil selama 6 bulan.

(c)Persediaan reagen warnaALarutkan 2 g monoxime diacetyl dalam air suling dan membuat volume sampai 100 ml

dalam labu ukur. Simpan dalam botol coklat pada suhu kamar (25-35C). Stabil selama

6 bulan.

(d)Persediaan reagen warnaBLarutkan 0,5 g thiosemicarbazide dalam air suling dan membuat hingga 100 mkl dalam

labu ukur. Simpan dalam botol coklat pada suhu kamar (25-35C). Stabil selama 6

bulan.

(e)Campuran reagen warnaCampur 35 ml persediaan reagen warna A dengan 35 ml persediaan warna reagen B

dan membuat hingga 500 ml dengan air suling. Simpan dalam botol coklat pada suhu

kamar (25-35C) Stabil selama 6 bulan.

(f) Persediaan urea standarTimbang 1.0g dari analisis kelas urea dan larutkan dalam 100 ml asam benzoat (1 g/dl).

Gunakan labu ukur 100 ml untuk mempersiapkan ini. Simpan pada suhu kamar (25-

35C). Stabil selama 6 bulan.

(g)Membuat standar 50 mg/dlEncerkan 5.0 ml persediaan standar urea sampai 100 ml dengan asam benzoat. Simpan

pada suhu kamar (25-35C). Stabil selama 6 bulan.

Peralatan, gelas dan aksesoris lainnya

Prosedur

(a)Pengenceran standar (S1-S3), Uji & QCPipet berikut ke tabung 1 berlabel 3x 100 nm

5/26/2018 Blok 15

35/47

S1 S2 S3 Uji QC

Air suling (ml) 1,9 1,8 1,7 1,9 1,9

Urea 50 mg/dl (ml) 0,1 0,2 0,3 - -

Uji sampel / QC (ml) - - - 0,1 0,1

campurkan

(b)Pengembangan warnaReagen warna disiapkan segar pada saat analisis dengan mencampurkan air suling,

campuran reagen asam dan campuran reagen warna dengan perbandingan 1:1:1.

Pipet berikut ke dalam satu set tabung berlabel.

Blanko S1 S2 S3 Uji QC

Reagen berwarna (ml) 3,1 3,0 3,0 3,0 3,0 3,0

Standar yang masing-

masing diencerkan (ml)- 0,1 0,1 0,1 - -

Diluted tes / QC (ml) - - - 0,1 0,1

Campur semua tabung juga. Simpan di waterbath mendidih selama 15 menit. Angkat dari

waterbath dan mendinginkan selama 5 menit. Mengatur spektrofotometer / fotometer filter

untuk nol dengan blanko pada 540 nm / filter hijau kuning dan mengukur absorbansi dari

tabung lainnya.

Perhitungan dan grafik kalibrasi

Konsentrasi standar:

S1 = 50 mg / dl

S2 = 100 mg / dl

S3 = 150 mg / dl

Tetapkan nilai absorbansi standar terhadap konsentrasi masing-masing. Kisaran terukur

dengan grafik 10 sampai 150 mg / dl. Sebuah grafik kalibrasi harus dibuat setiap kali satu set

baru reagen telah siap. Menetapkan nilai absorbansi uji / QC pada grafik kalibrasi dan

membaca konsentrasi.

5/26/2018 Blok 15

36/47

Setelah linieritas terbukti, maka akan cukup jika S3 sudah diatur setiap kali sampel pasien

dianalisis dan hasilnya dihitung dengan menggunakan rumus:

Absorbansi yang diuji

Urea pada uji sampel = ---------------------------------------- x 150 mg / dl

Absorbansi Standars

Referensi dan berbagai interpretasi klinis

Serum / Plasma Urea ............ 15 - 40 mg / dl

Peningkatan kadar urea serum dapat terjadi karena etiologi pre-ginjal, ginjal atau pasca-

ginjal. Penyebab prerenal bisa menjadi jantung yang berhubungan atau karena katabolisme

protein meningkat, dan dehidrasi. Penyebab ginjal termasuk glomerulonefritis, nefritis kronis,

sindrom nefritik dan penyakit ginjal lainnya. Pasca ginjal penyebabnya antara lain obstruksi

pada saluran urnari.

Penurunan kadar urea serum dapat terjadi karena kehamilan, infus intravena, asupan hormon

antidiuretik rendah, sekresi protein rendah, penyakit hati yang berat, kesalahan bawaan siklus

urea dan SIADH (Sindrom sekresi ADH tidak tepat).

Keterbatasan

Spesimen dengan ikterus kotor tidak dapat diuji karena akan menyebabkan nilai urea palsu

yang tinggi. Jangan melaporkan hasil jika dicurigai adanya campur tangan spesimen.

Menginformasikan dokter mengenai masalah tersebut.

5/26/2018 Blok 15

37/47

KREATININ - METODE JAFFE'S

Pendahuluan

Kreatinin adalah produk limbah yang terbentuk di otot dari senyawa penyimpanan

energi tinggi, kreatin fosfat. Kreatin fosfat dapat disimpan dalam otot di sekitar empat kali

konsentrasi adenosin trifosfat. Konsentrasi kreatinin dalam darah dan ekskresi dalam urin

sangat konstan dalam individu normal. Oleh karena tingkat kreatinin serum digunakan

sebagai indikator untuk menilai fungsi ginjal.

Prinsip dari metode ini

Kreatinin terdapat dalam serum atau plasma langsung bereaksi dengan alkali picrate

mengakibatkan pembentukan warna merah, intensitas yang diukur pada 505 nm / filter

hijau. Protein interference dihilangkan menggunakan sodium laurilsulfat. Membaca

absorbansi kedua setelah pengasaman dengan asam asetat 30% mengoreksi non-spesifik

chromogens dalam sampel.

Jenis spesimen, pengumpulan dan penyimpanan

Serum atau dapat digunakan. Hindari menggunakan sampel haemolysed atau

lipaemic. Stabil selama 12 jam pada suhu kamar (25-35C), satu minggu pada 2-8C dan

selama 3 bulan -20C.

Reagen

Semua bahan kimia harus kelas analar.

(a)Reagen A400 ml air suling dipindahkan ke gelas kimia 500 ml, menambahkan 4,4 g NaOH.

Campur untuk melarutkan, kemudian tambahkan 9,5 g trisodium fosfat

[Na3PO412H20), larutkan dan kemudian tambahkan 9,5 g sodium tetraborate

[Na2B4O710H20). Setelah dilarutkan, cek pH di atas 10, sesuaikan jika perlu dengan

menambahkan tetes demi tetes 1 m NaOH. Pindahkan ke labu ukur dengan volume 500

ml dan membuat hingga 500 ml dengan air suling. Aduk rata. Stabil selama 3 bulan

pada 2-8C

5/26/2018 Blok 15

38/47

(b)Reagen BLarutkan 20 g sodium lauril sulfat dalam volume akhir 500 ml air suling. Stabil selama

6 bulan pada suhu kamar (25-35C).

(c)Reagen CAsam picric disediakan secara komersial mengandung 50% berat air untuk menjamin

keselamatan dalam perjalanan. Oleh karena itu jumlah asam picric ditimbang harus

proporsional lebih dari jumlah asam picric yang diperlukan anhidrat.

Untuk reagen C, diperlukan 4.6 g asam anhidrat picric. Oleh karena itu beratnya sekitar

7.0 g tetapi kurang dari 6.0 g asam picric lembab dan menambah 500 ml air suling

diambil dalam labu volumetrik, campurkan dan biarkan semalaman pada suhu 37C.

Lalu saring dan simpan dalam botol kaca coklat pada suhu kamar (25-35C). Stabil

selama 1 tahun.

(d)Working reagenPada saat volume analisis freshlymix sama dari reagen tiga di atas. Setelah digunakan

membuang working reagen sisa.

(e)Persediaan kreatinin standar 100 mg/dlLarutkan 100 mg kreatinin murni dalam 0,1 M HCI dan membuat hingga 100 ml

dengan 0,1 M HCL dalam labu volumetrik. Stabil selama 6 bulan pada 2-8C.

(f) Kreatinin standarMengencerkan 2,4,6 dan 8 ml persediaan kreatinin standar masing-masing untuk 100

ml dengan 0,1 M HCL untuk mendapatkan konsentrasi kreatinin 2,4, 6 dan 8 mg/dl,

masing-masing. Stabil selama 6 bulan pada 2-80C.

(g)30% (V / V) Asam asetatEncerkan 30 ml asam asetat glasial sampai 100 ml dengan air suling. Stabil selama 3

bulan pada suhu kamar (25-35C)

Peralatan, gelas dan asesoris lainnya.

Prosedur

Protokol dari prosedur ini dijelaskan di bawah.

5/26/2018 Blok 15

39/47

Pipet berikut tabung berlabel 18 x 150 mm.

Blanko S1 S2 S3 Uji QC

Working reagen (ml) 3,0 3,0 3,0 3,0 3,0 3,0

Air suling (ml) 0,2 - - - - -

Standar (ml) - 0,2 0,2 0,2 - -

Uji sampel / QC (ml) - - - - 0,2 0,2

campurkan

Simpan pada suhu kamar (25-35C) selama 30 menit. Mengatur spektrofotometer / filter

photometer ke nol dengan blanko pada 505 nm / filter hijau dan mengukur absorbansi dari

tabung lainnya. Setelah mengukur absorbansi tuangkan larutan kembali ke dalam tabung

masing-masing. Kemudian tambahkan 0,2 ml asam asetat 30% ke tabung reaksi dan QC,

aduk rata dan biarkan pada suhu kamar (25-350C) selama 5 menit. Sekali lagi mengatur

spektrofotometer / fotometer filter untuk nol dengan blanko pada 505 nm / filter hijau dan

mengukur absorbansi tabung uji dan QC.

Perhitungan dan grafik kalibrasi

Substrat nilai absorbansi kedua tabung uji dan Qc dari nilai set pertama. Menggambar

grafik kalibrasi dengan membuat nilai absorbansi standar terhadap konsentrasi masing-

masing. Kisaran terukur dengan grafik ini adalah 0,2-8,0 mg/dl. Membuat koreksi absorbansi

pada tabung uji dan QC dan membaca nilai ceratinine.

Setelah linearitas dibuktikan, cukuplah jika standar tunggal seperti S6 diambil setiap kali

ketika sampel pasien dianalisis dan hasilnya dihitung dengan menggunakan rumus berikut.

Absorbansi yang di uji

Urea dalam uji sampel = ------------------------------------ x 150 mg / dl

Absorbansi Standars

Referensi jangkauan dan interpretasi klinis

Kreatinin serum / plasma: Pria 0,7-1,4 mg%Wanita 0,4-1,2 mg%

5/26/2018 Blok 15

40/47

Konsentrasi kreatinin serum berhubungan dengan massa otot dan nilai-nilai lebih rendah pada

anak. Kreatinin serum meningkat dikaitkan dengan penurunan laju filtrasi glomerulus (GFR),

apakah penyebabnya adalah pra-ginjal, ginjal atau pasca-ginjal. Faktor pra-ginjal termasuk

kondisi seperti gagal jantung kongestif, syok, diare, diabetes mellitus yang tidak terkontrol,

penggunaan diuretik, dll. Faktor ginjal melibatkan terutama kerusakan pada glomeruli. Faktor

pasca ginjal mungkin hipertrofi prostat, kalkuli menghalangi ureter atau neoplasma menekan

ureter. Konsentrasi kreatinin serum dipantau ketat setelah transplantasi ginjal karena

konsentrasi meningkat, bahkan jika meningkat sedikit saja, mungkin merupakan indikasi dari

penolakan.

5/26/2018 Blok 15

41/47

ASAM URAT FS *

Metode

Enzimatik tes TSHBS menggunakan fotometrik (asam 2,4,6-tribromo-3-

hidroksibenzoat)

Prinsip

Asam urat dioksidasi menjadi allantoin oleh uricase. Hidrogen peroksida yang

dihasilkan bereaksi dengan 4-aminoantipyrine dan asam 2,4,6-tribomo-hidroksibenzoat

(TBHBA) untuk quinoneimine

Reagen

Komponen dan Konsentrasi

NB: Konsentrasi adalah mereka dalam campuran tes akhir.

R1 : buffer fosfat pH 7,0 100 mmol / l

TBHBA (asam 2,4,6-Tribromo-3-hidroksibenzoat) 1 mmol / l

R2 : buffer fosfat pH 7.0 100 mmol / l

4-Aminoantipyrine 0,3 mmol / l

K4 [Fe(CN)6] 10 mmol / l

Peroksidase (POD) 2 kU / l

Uricase 30 U / l

Standar 6 mg / dl (357

mmol / l)

Instruksi Penyimpanan dan Stabilitas Reagen

Reagen dan standar yang stabil sampai dengan akhir bulan tercantum ezpiry, jika

disimpan pada 2-8C, terlindung dari cahaya dan menghindari kontaminasi. Jangan

membekukan reagen!

Catatan: Ini harus disebutkan, bahwa pengukuran tidak dipengaruhi oleh kadang-kadang

terjadi perubahan warna, selama absorbansi monoreagent adalah

5/26/2018 Blok 15

42/47

Persiapan reagen

Standar tersebut siap digunakan

Substrat awal

Reagen siap digunakan

Sampel awal

Campurkan 4 bagian R1 dengan 1 bagian R2

Bahan yang diperlukan tapi tidak disediakan

Larutan NaCl 9 g/l

Peralatan umum laboratorium

Spesimen

Serum, plasma heparin atau plasma EDTA, urin. Stabilitas dalam serum / plasma

Prosedur

Aplikasi lembar untuk sistem otomatis yang tersedia berdasarkan permintaan.

Pengukuran terhadap reagen blanko

Panjang gelombang 520

Substrat awal

Blanko Sampel / Standard

Sampel / standard - 20 l

Air suling 20 l -

Reagen 1 1000 l 1000 l

Campurkan, inkubasi 30 menit pada 20-25C atau 10 menit pada 37C

Reagen 2 250 l 250 l

Campurkan, inkubasi 30 menit.

Baca absorbansi terhadap reagen blanko dalam waktu 60 min.

Sampel awal

5/26/2018 Blok 15

43/47

Blanko Sampel / Standard

Sampel / standard - 20 l

Air suling 20 l -

Monoreagent 1000 l 1000 l

Campurkan, inkubasi 30 menit.

Baca absorbansi terhadap reagen blanko dalam waktu 60 min.

PERHITUNGAN

Dengan standar atau kalibrator

sampel

Asam Urat [mg / dl] = --------------------------- x conc. Std / Cal [mg / dl]

std / Cal

Faktor conversation

Asam urat [mg / dl] x 59,48 = asam urat [mmol / l]

Rentang Referensi

Serum plasma

5/26/2018 Blok 15

44/47

PATOLOGI ANATOMI

NEFROLOGI DAN UROLOGI

1. KARSINOMA SEL GINJAL (HYPERNEPHROMA)Informasi klinis:

Seorang pria berusia 64 tahun, menderita hematuria, demam, nyeri panggul, pucat,

kelelahan, dan anoreksia, dirawat ke rumah sakit. Uji laboratorium menunjukkan

polisitemia dengan erythrocytosis. Arteriogram selektif dari ginjal kiri menunjukkan

massa dengan pembuluh meningkat dan percabangan tidak teratur. Operasi bedah ginjal

kiri dilakukan.

Makroskopik:

Jaringan ginjal, berukuran 20x15x8cm. Pada bagian yang potong, nampak solid,

berwarna putih-kekuningan, ditemukan massa, menonjol dari korteks ginjal, dengan

beberapa perdarahan dan daerah nekrosis. Pada pinggiran tumor, parenkim normal

dikompresi, membentuk sebuah pseudocapsule.

Gambaran mikroskopis:

Spesimen terdiri dari tumor epitel membentuk pola tubular, solid, dan papiler,

menginvasi ke jaringan sekitarnya. Tumor terdiri dari sel atipikal dan jelas polimorfik atau

sel sarat lemak, dengan membran sitoplasma yang berbeda, sitoplasma berlimpah dan inti

eksentrik. Terdapat banyak sel mitosis yang abnormal. Terdapat stroma vascularized

antara sel-sel, dengan beberapa kelompok histiosit dan sel inflamasi.

2. TUMOR WILMS (NEPHROBLASTOMA)Informasi klinis:

Seorang anak berusia 3 tahun dirawat di rumah sakit ditandai dengan massa

abdomen. Dia juga menderita mual, muntah, hematuria dan edema dari kaki bagian

bawah. Pemeriksaan Arteriographic memperlihatkan vascularized tumor yang buruk di

ginjal kanan. Operasi bedah ginjal kanan dilakukan.

5/26/2018 Blok 15

45/47

Makroskopik:

Jaringan, berukuran 20x15x15cm, juga cirkum scribed. Pada bagian yang di potong,

tampak berwarna putih keabuan pada massa cokelat, dengan daerah perubahan

perdarahan, nekrosis dan fibrosis. Pertemuan antara massa dan ginjal yang tajam. Pelvis

ginjal dikompresi oleh massa.


Spesimen terdiri dari tumor dengan kombinasi trifasik jenis sel blastemic atau embrio,

stroma, dan epitel. Komponen epitelial terutama dari tubulus abortif dan glomeruli belum

menghasilkan. Sel stroma biasanya fibrokistik atau myxoid, dengan berbentuk sel

gelendong. Sel-sel di daerah blastemic dikemas sel biru. Banyak terdapat sel mitosis yang

abnormal.

3. PIELONEFRITIS KRONISInformasi klinis:

Seorang pria berusia 45 tahun menderita hipertensi sejak 5 tahun yang lalu. Ia dibawa

ke rumah sakit dengan demam, nyeri punggung, sering piuria, bakteriuria. Dan kemudian

gagal ginjal mulai terjadi. Tes pyelogram menunjukkan ginjal kanan asimetris, dengan

bekas luka kasar, penumpulan dan kelainan bentuk dari sistem caliceal. Operasi bedah

ginjal kanan dilakukan.

Makroskopik:

Jaringan ginjal berukuran 8x8x5 cm, tampak bekas luka tidak teratur, dan memiliki

permukaan granular tidak teratur, terutama di bagian atas dan bawah. Parenkim atrofi dan

diganti oleh jaringan lemak


Perubahan mikroskopis melibatkan sebagian besar tubulus dan interstitium. Tubulus

menunjukkan atrofi di beberapa daerah dan hipertrofi pada daerah lain, dengan atrofi

lapisan epitel. Banyak dari tubulus yang melebar mengandung pink ke biru, tampak seperti

kaca biasa disebut sebagai koloid yang menunjukkan penampilan jaringan tiroid, maka

diberikan istilah deskriptif 'Thyroidization'.

Ada berbagai tingkat peradangan kronis interstisial (limfosit, sel plasma dan

netrophil) dan fibrosis di korteks dan medula. Glomeruli tampak normal kecuali fibrosis

5/26/2018 Blok 15

46/47

periglomerular. Perubahan vaskular mirip dengan arteriosklerosis hialin atau proliferasi

yang sering dikaitkan dengan hipertensi mungkin ditemukan disekitar glomerulus.

4. SEL TRANSISIONAL KARSINOMA KANDUNG KEMIHInformasi klinis:

Seorang pria berusia 55 tahun menderita hematuria tanpa rasa sakit sejak 2 minggu

lalu. Dia tampak pucat dan anemia. Pada pemeriksaan sitoskopis, terdapat tumor di

trigonum kandung kemih, tampak sebagai papiler dan plak seperti maag. Sistektomi total

dilakukan.

Makroskopik:

Jaringan berukuran 15x10x7 cm. Pada bagian yang dipotong, terdapat massa yang

solid dan papiler, massa berwarna putih kecoklatan, dengan area nekrosis, perdarahan dan

invasi pada daerah yang di potong.


Spesimen terdiri dari tumor epitel transisional, yang menunjukkan berbagai tingkat

atipikal nuklear dan pleomorfisme, dan menyerang lapisan sub-mukosa atau muscular.

Tumor dicirikan oleh persistence dari konfigurasi papiler. Lapisan tebal sel epitel 15

sampai 20 atau lebih. Jumlah mitosis bervariasi.

5. BENIGN PROSTATIC HYPERTROPHY / BPHInformasi klinis:

Seorang pria berusia 57 tahun telah menderita kesulitan dalam buang air kecil

(keraguan) dan gangguan intermiten saat berkemih, sejak 6 bulan yang lalu. Prostatektomi

terbuka dilakukan.

Makroskopik:

Jaringan prostat berukuran 8x6x4 cm, berwarna putih kecoklatan, massa yang

berbatas tegas dan konsistensi yang elastis. Pada bagian yang dipotong, prostat

mengandung banyak nodul yang berbatas tegas, memancarkan sejumlah kecil cairan

susu. Nodul padat memiliki tampilan yang solid dan fibrosis.


5/26/2018 Blok 15

47/47

Nodul hiperplastik terdiri dari berbagai proporsi proliferasi unsur glandular dan

stroma fibromuskular.

Kelenjar hiperplastik dilapisi oleh tall, sel-sel epitel kolumnar dan lapisan perifer sel

basal. Hasil epitel berkerumun yang berproliferasi dalam pembentukan proyeksi papiler di

beberapa kelenjar.

Kelenjar lumina sering mengandung inspissated, bahan sekresi protein, disebut

corpora amylacea. Kelenjar dikelilingi oleh proliferasi elemen stroma.

6. PROSTATIC ADENOCARCINOMAInformasi klinis:

Seorang pria berusia 70 tahun menderita disuria, hesitancy, polakisuria, dan sakit

perut lokal di bagian bawah. Pemeriksaan rectal menemukan area indurasi dalam kelenjar.

Temuan laboratorium menunjukkan peningkatan kadar serum dari antigen spesifik prostat

dan peningkatan kadar asam fosfatase serum (khususnya yang berasal dari

prostat). Prostatektomi terbuka dilakukan.

Makroskopik:

Jaringan prostat berukuran 10x8x6 cm. Pada bagian yang di potong, terdapat nodular,

daerah tidak jelas dari konsistensi padat dengan beberapa fokus perdarahan, dari abu-abu-

putih ke kuning.


Spesimen terdiri dari jaringan prostat dengan tumor epitel membentuk struktur

kelenjar; infiltrasi stroma berdekatan dengan cara, tidak teratur serampangan. Kelenjar

tidak dikelilingi kolagen atau sel stroma melainkan seperti saling membelakangi dan

muncul untuk membedah tajam melalui stroma yang asli. Kelenjar neoplastik dilapisi

dengan satu lapisan sel kuboid dengan nukleolus yang mencolok. Derajat anaplasia yang

berbeda dapat menunjukkan. Grading dari karsinoma prostat didasarkan pada derajat

diferensiasi kelenjar dan pola pertumbuhan dalam hubungannya dengan stroma (klasifikasi

Gleason).

Documents

Blok 15