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REVISTA DE CALIDAD AMBIENTAL INTERIOR EN HOSPITALES Y SALAS DE AMBIENTE CONTROLADO
International Standard Serial Number (ISSN) 2013-746X
Núm. 5, ABRIL 2011
www.biotecnologiahospitalaria.com Página 2
Sumario
3. VIGILANCIA ACTIVA DE CONTAMINANTES
AMBIENTALES EN QUIRÓFANOS PARA LA MINIMIZACIÓN DE INFECCIONES NOSOCOMIALES.
E.E. MORENO CAMPOY. Farmacéutica, Responsable de Seguridad del Paciente, Área Sanitaria Serranía, Málaga.
Mª J. PEREZ SANTOS. Facultativo esp. de Área de Microbiología, Laboratorio Clínico y Medicina Preventiva Área Sanitaria Serranía. Málaga.
F. J. MÉRIDA DE LA TORRE. Director de Área de gestión clínica, Laboratorio Clínico y Medicina Preventiva Área Sanitaria Serranía. Málaga.
19. CUANTIFICACIÓN DE STAPHYLOCOCCUS
EN EL AIRE DEL HOSPITAL.
C. NEVES PIMENTA DE FRANCA. Bióloga, Máster en Bioquímica aplicada. Universidad de Madeira, Portugal.
31. CALIDAD DE AIRE EN LAS CENTRALES DE
ESTERILIZACIÓN.
E. ISIDORO VELASCO. Facultativo esp. de Área, Microbiología Área de Gestión clínica Laboratorio Clínico y Medicina Preventiva Area Sanitaria Serranía. SERMED.
J.J. CRIADO ALVAREZ. Facultativo esp. de Área, Microbiología Área de Gestión clínica Laboratorio Clínico y Medicina Preventiva Area Sanitaria Serranía. SERMED.
37. BIOSEGURIDAD DE AIRE EN
QUIRÓFANOS.
M.A. TORRES CAÑADILLAS Enfermera de Medicina Preventiva del Hospital General de Ciudad Real.
41. PROPUESTA DE ACTUACIONES EN CASO
DE PÉRDIDA DE LA BIOSEGURIDAD AMBIENTAL EN AMBIENTES CONTROLADOS DE UN CENTRO SANITARIO. FCO. J. DE LA VEGA OLÍAS. Médico especialista en Medicina Preventiva y Salud Pública, Hospital Mancha Centro de Alcázar de San Juan.
EDITORIAL
Dra. Gloria Cruceta
Clústers de Biotecnología y las ciudades del Siglo XXI
Cómo recuperar la competitividad utilizando el potencial de la economía del conocimiento? ¿Crear valor a partir capital intelectual?
Es aquí donde el sector de las ciencias de la vida: empresas farmacéuticas y de biotecnología y sector médico, y sus clústers, serán prioridad para las ciudades del Siglo XXI.
Es así como las organizaciones que mantengan su interés en la innovación, serán las líderes en un mercado global, hablo de canalizar e impulsar la cultura de la innovación no como un fin, sino como un medio de captación de ideas.
Directora de la Publicación: Dra. Gloria Cruceta
ISSN 2013-746X. Realización: SEGLA s.l. c/ Córcega, 534, entlo. 1ª Barcelona. 08025 Tel. 93 436 40 61 Fax 93 450 14 88.
Cualquier forma de reproducción, distribución, o transformación de esta obra sólo puede ser realizada con la autorización de los titulares de la publicación.
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VIGILANCIA ACTIVA DE CONTAMINANTES AMBIENTALES EN QUIRÓFANO PARA LA MINIMIZACIÓN DE INFECCIONES NOSOCOMIALES COMO ESTRATEGIA PARA LA SEGURIDAD DEL PACIENTE.
EE Moreno Campoy
Farmacéutica, Responsable de Seguridad del Paciente, Área Sanitaria SerranÍa, Málaga.
Mª Jesús Pérez Santos.
Facultativo especialista de Área, Microbiología Área de Gestión Clínica Laboratorio Clínico y Medicina Preventiva Área Sanitaria Serranía, Málaga.
Francisco Javier Mérida de la Torre
Director Área de Gestión Clínica Laboratorio Clínico y Medicina Preventiva Área Sanitaria Serranía, Málaga.
INTRODUCCIÓN:
La mejora continua de la calidad en la atención
sanitaria, además de dar una respuesta
satisfactoria a los ciudadanos respondiendo a
sus necesidades y expectativas, concibe como
uno de sus objetivos fundamentales la
Seguridad del Paciente.
El sistema actual de atención sanitaria engloba
conocimiento, experiencia, procesos,
tecnología y relaciones humanas. Todo ello
aporta grandes beneficios pero también
comporta riesgos inevitables y potenciales
eventos adversos en la actividad clínica diaria.
La seguridad del Paciente es una preocupación
debido a que es un problema presente en todos
los países, en todos los niveles de la atención
en salud y en los diferentes aspectos de la
atención sanitaria.
Los últimos estudios e investigaciones en este
ámbito evidencian el impacto que los efectos
adversos tienen sobre la morbi-mortalidad,
apareciendo un amplio arsenal de problemas
relacionados con la seguridad.
Muchas situaciones detectadas son susceptibles
de mejora en base a cambios en los sistemas de
trabajo y de instauración de sistemas de
prevención. Así, cualquier mejora significativa
de la seguridad, pasa por actuar a nivel de toda
la organización, creando una cultura basada en
la comunicación, el análisis de las causas y la
implantación de acciones preventivas y
correctoras para la seguridad del paciente.
El Laboratorio Clínico juega un importante
papel en el proceso diagnóstico y terapéutico.
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Son muchas las actividades del hospital
relacionadas con los pacientes en las que la
implicación del Laboratorio Clínico es
fundamental por ser preciso un control
analítico para su correcto funcionamiento,
garantizando así la adecuada asistencia
sanitaria incluso en situaciones de emergencia.
Entre otras, cabe destacar su papel en la
vigilancia activa y prevención de infecciones en
el medio hospitalario, que principalmente
afectan a los pacientes más vulnerables.
Por tanto, la vigilancia para la prevención de
infecciones en la Atención Sanitaria es un
indicador de seguridad y por consiguiente de
calidad.
La revisión sistemática de bibliografía en los
últimos años evidencia que la probabilidad de
infecciones quirúrgicas por hongos de origen
ambiental es, en general, bajo.
…llegando a porcentajes de 0,5 – 5 casos por
mil intervenciones y presentándose incidencias
de infección en prótesis articulares cifras en
torno al 1,5% en las prótesis de cadera y el 2,5%
en las de rodilla.
Esto se debería a la posible existencia de casos
de micosis invasoras de origen ambiental
ligados a contaminación, por defectos en el
mantenimiento de los equipos, obras, mal
funcionamiento de las instalaciones de
climatización y/o a una ruptura de las normas
de buena práctica en el control de la infección
que daría lugar a cambios de los parámetros
críticos. Esta puede llegar a tener
consecuencias graves, incluyendo la muerte de
los pacientes, por lo que hay que estar
expectante a las nuevas exigencias y
oportunidades que se plantean.
“Sin embargo, en las salas de alto
riesgo, y en especial en los
quirófanos, la aspergilosis
nosocomial constituye una grave
amenaza para los pacientes...”
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OBJETIVO:
Implementación del Programa de Medición
Sistemática y Activa de Colonias de Hongos
Oportunistas y Bacterias
Analizar la evolución del PMHB en los
quirófanos del Hospital Serranía (HS) y su
impacto en la práctica clínica como mejora de
la Seguridad del Paciente.
MATERIAL Y MÉTODO:
Ámbito de actuación: Hospital Comarcal
Serranía. Es un hospital de 140 camas que da
cobertura a una población de unos 120.000
habitantes. Se trata de un hospital de tipo IV,
con una cartera de servicios adaptada a las
necesidades de una población de ámbito rural y
urbano.
Durante 2010 se realizaron 876 sesiones
quirúrgicas, siendo el total de 3002
intervenciones programadas.
Para conseguir el primer objetivo se crea un
grupo de trabajo específico para el desarrollo
del Programa de vigilancia activa y se
comienza con una búsqueda bibliográfica a fin
de contrastar información para establecer un
procedimiento adecuado a nuestra área.
En base a la evidencia científica disponible se
diseña y desarrolla un procedimiento de
actuación teniendo en cuenta los siguientes
aspectos: tipo de muestreo (diagnóstico,
preventivo, rutinario, correctivo), dispositivo
de muestreo, estado de las instalaciones,
fuentes de biocontaminación (aire y
superficies), tipo de actividad desarrollada,
frecuencia de la toma de muestreo,
condiciones de muestreo, tipo de flora a
investigar, medios y condiciones de cultivo.
“ Por todo lo anteriormente expuesto,
en el Hospital del Área de Gestión
Sanitaria Serranía, se implantó un
Programa de Medición Sistemática y
Activa de Colonias de Hongos
Oportunistas y Bacterias (PMHB) en
el que se establece el funcionamiento
y procedimiento a seguir, según los
conocimientos actuales y las mejores
evidencias científicas dispo-
niblesxxi,xxii,xxiii,xxiv, en cuanto a
efectividad y eficiencia para lograr la
mejor vigilancia, prevención y control
(VPC) de las infecciones
nosocomiales en los quirófanos del
hospital”
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El Programa de Medición Sistemática y Activa
de Colonias de Hongos Oportunistas y Bacterias
desarrollado en nuestra Área incluye:
1. Tipo de muestreo: Muestreo periódico con
captación activa, preventivo y dinámico.
2. Dispositivo de muestreo: Se selecciona el
muestreador microbiológico del aire MAS-
100 NT, sistema Profesional de Monitoreo
Microbiológico del Aire dado que presenta
ventajas en cuanto a características de
seguridad y facilidad de uso. Igualmente
cumple con el Estándar Internacional ISO
14698-1.
3. Además es un instrumento de alto
rendimiento basado en el principio del
muestreador de aire de Andersen.
El muestreo está basado en el principio de
impacto. El flujo de aire resultante es
dirigido a una placa Petri estándar de agar
de 90 mm. Su tapa perforada tiene 400
orificios por 0.7mm y la velocidad de
Impacto es <11m/s. El analizador cuenta
con un caudal de 100l/minuto.
4. Estado de las instalaciones: Los controles
se realizan con actividad quirúrgica,
aunque en determinadas ocasiones, según
requerimiento de la Dirección-Gerencia y
el servicio de mantenimiento, se
establecen controles con la sala en reposo
(obras, limpiezas del sistemas de
ventilación, tras cambio de filtros, tras
resultados microbiológicos por encima del
nivel admisible y tras aparición de
infecciones nosocomiales).
5. En cualquier caso se verifica que el
sistema de ventilación esté siempre en
funcionamiento.
6. Tipo de actividad desarrollada: Se
identifican dos quirófanos tipo A (cirugía
con prótesis) y cuatro quirófanos tipo B
(resto de cirugía y Urgencias).
Quirófano clase A
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7. Fuentes de biocontaminación consideradas
o zonas de muestreo: Se realiza muestreo
efectivo del aire en todas aquellas zonas
del quirófano donde los microorganismos
aerotransportados puedan producir
contaminación, principalmente en los
quirófanos donde se implantan prótesis.
8. Se establece en cada una de las salas los
siguientes puntos de muestreo:
• En la parte alta del quirófano donde se
encuentran la salida de los dispositivos
de impulsión de aire: permite evaluar la
calidad del aire que entra en la sala.
• Próximo al campo operatorio: que nos
permitirá evaluar la remoción de
esporas y bacterias de las superficies
horizontales
• En la puerta de entrada a un metro de
altura desde el suelo: permite evaluar
la entrada de éstas y promover la
adquisición de buenas prácticas (cierre
de puertas).
9. Frecuencia de muestreo: Periodicidad
bimestral, atendiendo a la disponibilidad y
la documentación revisada.
10. Condiciones de muestreo: En cada punto de
muestreo se pasan 1000 L de aire. Dado que
el analizador no tiene capacidad de
selección de caudales bajos, se ha
combinado el volumen y la seriación que,
resuelven en cierta medida esta
circunstancia. La selección de caudales más
bajos aseguraría la recuperación de mayor
número de microorganismos, disminuyendo
los "falsos negativos" al minimizar los
efectos “rebote" y "paso de largo".
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11. Aunque en un principio se decidió pasar 250
L por placa (un total de 4 placas), para
evitar el efecto desecación, tras comprobar
que no existía dicha incidencia se disminuyó
el número de placas a 2, haciendo pasar
500 L por cada placa.
La toma del flujo del aire se realiza
situando el cabezal del analizador siempre
en perpendicular u oblicuo a la impulsión.
El cabezal del analizador se desinfecta
entre toma de muestras y se respeta el
tiempo de secado.
Las placas se rotulan e identificadas
previamente.
El transporte de las muestras al Laboratorio
Clínico es inmediato.
12. Tipo de flora a investigar: microorganismos
del ambiente, tanto de origen humano
como del medio: hongos filamentosos tipo
Aspergillus para la zona de impulsión del
aire y flora mesófila, además de hongos
para el campo operatorio y la puerta de
entrada de los quirófanos.
13. Dentro de la flora a investigar se prestó
especial precaución a microorganismos
patógenos como Pseudomonas aeruginosa,
Enterobactrias, Acinetobacter,
Streptococcus, Staphylococcus aureus entre
las bacterias y Aspergillus, Mucor,
Scedosporium y Rhizopus entre los hogos
filamentosos.
14. Medios y condiciones de cultivo utilizar:
• Medios de Cultivo: Placas Petri de uso
habitual (9cm de diámetro): Se utiliza TSA
para bacterias y Saboureaud con
cloramfenicol para hongos.
• Tiempo de incubación: Para bacterias: tras
48 horas. Inicialmente la incubación se
duplicó, manteniendo un grupo de placas a
22ºC y otro a 37ºC otras. Posteriormente,
tras comprobar que no existían diferencias
en la recuperación, se mantuvo la
incubación de bacterias a 37ºC. Para
hongos: tras 7 días a 22ºC.
“El profesional que realiza el
muestreo, está entrenado en
buenas prácticas para la toma de
muestra y manejo del analizador y
usa equipo de quirófano
convencional”.
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• Recuento de colonias: En nuestro entorno
se admitió para un nivel de funcionamiento
mínimo una calidad del aire calificada como
aceptable, entre 100-200 ufc/m3 de
aerobios mesófilos totales y en el caso de
hongos 0 ufc/m3
La implantación del Programa de Medición
Sistemática y Activa de Colonias de Hongos
Oportunistas y Bacterias se realizó en julio de
2008. Durante los últimos 5 meses de ese año
se pilotó el programa en dos quirófanos y se
puso definitivamente en marcha en diciembre
de 2008.
Para alcanzar el segundo objetivo se ha
estudiado un periodo de análisis desde
diciembre de 2008 hasta diciembre de 2010.
La fuente de datos son los informes y actas de
seguimiento de muestras seriadas por cada
actuación.
Se ha evaluado, de cada acta e informe de
seguimiento, el número de unidades
formadoras de colonias, los diferentes criterios
establecidos en el protocolo y descrito en la
metodología del objetivo 1, así como la
identificación de prácticas inseguras.
RESULTADOS:
En el análisis de los controles correspondientes
a la salida de los dispositivos de impulsión,
cabe destacar que en cuatro de los quirófanos
las muestras fueron negativas en todos los
controles realizados (tres salas tipo B y una A).
La otra sala tipo A dio un resultado positivo al
hacer el control tras la realización de una obra
de reforma, a pesar de haber realizado la
limpieza según protocolo para estos casos.
“Se tomaron muestras en 6
quirófanos realizando un total de 38
controles. Cada control incluía la
toma de muestras en tres puntos: la
salida de los dispositivos de
impulsión de aire, próximo al campo
operatorio y la puerta de entrada,
siguiendo el procedimiento
establecido”.
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Esto, llevó a la suspensión de la actividad
quirúrgica mientras se realizaban las medidas
correctoras (revisión del sistema de
climatización, limpieza exhaustiva,
comprobación del cumplimiento de los
protocolos existentes y nuevo control
preventivo). Sin embargo, un problema mayor
apareció en la otra sala tipo B, específica para
maternidad, donde controles repetidos daban
positivo, llegando a crecer hasta un total de
41ufc/m3 de Aspergillus sp y Penicillium sp, a
pesar de aplicar las medidas básicas descritas
anteriormente, por lo que se decide recurrir a
una empresa externa para la revisión de los
conductos del ventilación.
Tras dos limpiezas exhaustivas de los conductos
y cambios de filtro, así como de otras medidas
específicas de regulación del aire y sellado de
posibles puntos problemáticos, los controles se
negativizaron. Esto ha dado lugar a que, en el
análisis realizado, el porcentaje de repetición
global de los controles de los quirófanos se
eleve a un 18,42%, aunque en un 60% de las
tomas, correspondientes a los 4 quirófanos
iniciales, no fue necesaria ninguna repetición.
En el resto de las zonas de muestreo, los
resultados fueron similares por quirófanos,
apareciendo también un número elevado de
bacterias, especialmente en los dos últimos
quirófanos reseñados.
En cuanto al análisis realizado sobre la flora
mesófila aerófila, del global de las tomas en los
puntos de entrada al quirófano y campo
operatorio (76 controles), en el 76,31% de los
casos y en base a la bibliografía consultada,
podemos afirmar que nos encontramos con un
ambiente limpio o muy limpio, llegando hasta
el 90,78% si contabilizamos los controles entre
100-200 ufc/m3, considerado como ambiente
aceptable.
Si diferenciamos entre las dos zonas, campo
operatorio y entrada del quirófano, dentro de
la clasificación de ambiente limpio y muy
limpio, se obtiene un 81,57% y un 71,05%
respectivamente. Si incluimos en el recuento
los controles admitidos como aceptables los
datos incrementan hasta un 92,1% y un 89,5%
respectivamente.
“Tras la experiencia del primer año se
protocolizó la revisión de las medidas
ambientales: En cuanto a hongos se
incidió en el funcionamiento
ininterrumpido de la ventilación,
limpieza de filtros, limpieza terminal y
sistematización en el control de
obras”.
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Se realizaron actividades formativas con los
profesionales, incluyendo aspectos de prácticas
seguras en el quirófano dentro de la estrategia
de Seguridad del Paciente. Se formó al 80% de
los profesionales del bloque quirúrgico.
DISCUSIÓN Y CONCLUSIONES:
Tras nuevas revisiones bibliográficas y
formación específica sobre “Controles
Microbiológicos en Hospitales: Quirófanos y
Áreas Críticas”, se han detectado diferentes
áreas de mejora en el Programa de Medición
Sistemática y Activa de Colonias de Hongos
Oportunistas y Bacterias implantado en el Área.
Entre las oportunidades de mejora
consideradas se encuentra la utilización de un
cabezal con menor número de orificios para
mejorar la sensibilidad, al disminuir el efecto
rebote y el efecto paso de largo. Mientras
tanto, sería necesario utilizar el factor de
corrección Número Más Probable (NMP),
utilizando la cifra deducida del número total
de gérmenes y ajustándola con ayuda de la
tabla de corrección estadística de Feller.
“Tras la adopción de las medidas
correspondientes, en todos los casos,
el resultado de las nuevas muestras
se mostró por debajo del límite de
detección del método empleado.
Según el informe de vigilancia
epidemiológica del Área, las tasas
globales de infección quirúrgica
especialmente en traumatología, han
disminuido al 50%”.
“Tras la revisión de la PRE-Norma Une 171330-4 de Aenor, sería
aconsejable el cambio de la frecuencia de muestreo, estableciendo
diferencias entre los quirófanos tipo A (control mensual) y los de tipo B
(control trimestral) y asumir el muestreo de otras zonas, que hasta el
momento no se habían considerado en la vigilancia activa establecida,
como las cabinas de farmacia (sala de citostáticos y nutrición
parenteral), salas de partos y sala de cuidados intensivos”.
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Para garantizar la seguridad en las salas de
riesgo a nivel ambiental es necesario tener
presente la calidad del aire de impulsión así
como el seguimiento de prácticas seguras por lo
profesionales que minimicen la contaminación
ambiental de las salas controladas. Por tanto,
según la bibliografía consultada y la mejora de
hábitos relacionados como el cierre de puertas,
no sería necesario el control en la puerta de
entrada.
En cuanto a los medios de cultivo cabe destacar
que, aunque hay opiniones a favor de la
utilización del Rosa Bengala, por su mayor
capacidad de recuperación y la facilidad de
recuento, hay otros autores que no consideran
que haya tantas diferencias con los medios
clásicas como el Saboureaud más antibióticos,
por lo que no parece necesario el cambio de
medio. El mismo razonamiento se podría
aplicar a las Placas Rhodac frente a las Petri
convencionales.
Queda pendiente un análisis más exhaustivo de
los resultados en cuanto a tipo de
microorganismos por quirófano o si varía el
recuento según la época del año como refieren
algunos autores.
Tras este periodo de dos años de aplicación del
Programa, tanto el equipo directivo como los
profesionales han visto los beneficios en cuanto
a la prevención y disminución de infecciones.
La implantación de este programa ha
fomentado la implicación de diferentes
categorías profesionales (personal celador y de
mantenimiento) además de los sanitarios.
Esta medida se enmarca dentro de la estrategia
sobre seguridad del paciente de la Consejería
de Salud de la Junta de Andalucía y está
promovida a nivel internacional por la
Organización Mundial de la Salud, la
Organización Panamericana de Salud y el
Comité Europeo de Sanidad del Consejo de
Europa, entre otros, y a nivel nacional por el
Ministerio de Sanidad y Política Social.
Igualmente aparece reflejado en diferentes
estándares de acreditación.
“Se ha promovido la concienciación
del personal, detectándose un mayor
cumplimiento de prácticas seguras”.
“La detección precoz de
microorganismos puede prevenir
infecciones relacionadas con la
atención sanitaria mejorando la
Seguridad del paciente”.
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biocontaminación en zonas con riesgos.
27.- Norme Internationale ISO 14698-1:2003
Salles propes et environnments maîtrisés
apparentés- Maîtrse de la biocontamination.
Partie 1: Principes generaux et méthodes.
BIOSEGURIDAD EN EL LABORATORIO DE MICOBACTERIAS VIGILANCIA ACTIVA DE CONTAMINANTES AMBIENTALES EN QUIRÓFANO PARA LA MINIMIZACIÓN DE IN FECCIONES NOSOCOMIALES.
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la Secretaría General de Sanidad, por la que se
publica el Acuerdo de encomienda de gestión
entre el Ministerio de Sanidad y Consumo y el
Instituto Nacional de Gestión Sanitaria para el
impulso de prácticas seguras en los centros
sanitarios.
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XI CURSO
CALIDAD AMBIENTAL EN HOSPITALES: QUIRÓFANOS Y SALAS DE AMBIENTE CONTROLADO
Barcelona, 16 de Junio de 2011
Sala de Actos, Consejo Superior de Investigaciones Científicas (CSIC).
c/Hospital, 64 - 08001 Barcelona
ACCESO WEB PROGRAMA Conferencia
10.00 - 10.45 h. PRE-NORMA 171330-4 AENOR: VALIDACIÓN Y CUALIFICACIÓN DE SALAS DE AMBIENTE CONTROLADO EN HOSPITALES. Dra. GLORIA CRUCETA, Doctora en Medicina, Directora de SEGLA, Presidenta del Comité 171 de AENOR. Máster en Prevención de Riesgos Laborales. Experto técnico de ENAC (Entidad Nacional de Acreditación) para Calidad Ambiental en Interiores, Técnico Superior en Calidad Ambiental Interior, fundadora y ex presidenta de la Federación de Empresas especialistas en Calidad Ambiental Interior (FEDECAI). Contenido temático: El comité CTN 171 de Calidad de ambientes interiores de AENOR, ha elaborado la Norma “Validación y Cualificación de salas de ambiente
controlado en hospitales” donde se clasifican zonas y definen parámetros, métodos de ensayo, tipos de validación, periodicidad y criterios. 10.45 a 11.15 h. Coffe-break . Conferencia
11.15-12.00 h. INOVACIÓN EN PREVENCIÓN DE LEGIONELLA EN HOSPITALES: FOTOCATÁLISIS OXIDATIVA FRENTE A OTRAS TECNOLOGÍAS. D. VICENTE PICÓ. Licenciado en C. Químicas, especialidad Bioquímica. Máster en Tecnología de los Alimentos por el CSIC. Técnico Superior en Calidad Ambiental Interior. Socio fundador y Director General de AMBIENTCARE. Socio fundador y asesor técnico de Aplicaciones y Proyectados Levante. Contenido temático: La utilización del TiO2 en la generación de radicales -OH ha abierto
nuevas y potentes posibilidades en el tratamiento desinfectante de aguas de consumo humano. Opciones tales como la adición directa de productos químicos, o su generación in situ, la pasteurización o el conocido como cobre plata tienen ventajas e inconvenientes. Con la fotocatálisis oxidativa avanzada se abre una nueva y sostenible forma de desinfección del agua, totalmente efectiva para la prevención de Legionella.
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Conferencia
12.00 a 12.45 h. DISEÑO Y CONSTRUCCIÓN DEL LABORATORIO DE BIOSEGURIDAD.
D. JAUME CERA, Ingeniero Técnico Industrial, Director del Departamento de Climatización de JG Ingenieros. JG Ingenieros es miembro fundador de ASINCE (Asociación Española de Consultores en Ingeniería) y de First Q Consulting Engineers y ha llevado a cabo numerosos proyectos y direcciones de Obra civil e instalaciones de varios Laboratorios de Bioseguridad, destacando el Laboratorio de Retrovirología Nivel 3 de la Fundación IRSICaixa, del Hospital Universitario Germans Trias i Pujol. Contenido temático: La formación frente a la preocupación global por las enfermedades infecciosas emergentes y re-
emergentes, y las infecciones producidas en laboratorio, tanto de agentes conocidos como previamente desconocidos es un factor imprescindible en entornos de Bioseguridad. Desde esta perspectiva JG INGENIEROS aporta su experiencia en el diseño y construcción de Laboratorios de Bioseguridad.
Conferencia
-12.45 a 13.30 h. CERTIFICACIÓN DEL LABORATORIO DE BIOSEGURIDAD NIVEL 3.
Dr. JAVIER GARAIZAR, Doctor en Medicina, Profesor titular de Microbiología, Departamento de Inmunología, Microbiología y Parasitología, Facultad de Farmacia, Vitoria-Gasteiz, Universidad del País Vasco / Euskal Herriko Unibertsitatea. Contenido temático: Posteriormente al diseño y construcción de un laboratorio tipo 3 y antes de su puesta en marcha, es necesaria su validación y certificación. Para ello se debe hacer un seguimiento del procedimiento documental para obtener, registrar e interpretar los datos necesarios para demostrar que un proceso, equipamiento o actividad cumplirá permanentemente con las especificaciones predeterminadas.
13.30 - 15.00 h. Almuerzo en la Sede del Curso (CSIC) Conferencia
15.00 - 15.45 h. DISEÑO Y CONSTRUCCIÓN: BLOQUE QUIRÚRGICO DE FLUJO LAMINAR. D. DAVID BARRACHINA, Ingeniero Superior en Organización Industrial E.T.S.E.I.T. (UPC). Ingeniero Técnico Industrial Química Industrial, Máster en Prevención de Riesgos Laborales. Director de Servicios Generales en Fundació Sanitaria Hospital de Mollet. Miembro del Consejo Técnico Asesor de Infraestructuras y Equipamientos de la UNIÓ CATALANA D’HOSPITALS. Miembro del IFHE Europe Working group sobre la Prevención de Riesgos de Infección en Hospitales. Contenido temático: El pasado 31 de julio se inauguró el Nuevo Hospital de Mollet, se realizará una breve explicación
normativa, la descripción técnica del Bloque quirúrgico, distribución arquitectónica y de las instalaciones existentes.
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Conferencia
15.45 - 16.30 h. DISEÑO DE UNA UNIDAD DE GRANDES QUEMADOS.
DR. JOAN PERE BARRET, Doctor en Medicina y Cirugía por la Universidad de Groningen y especialista en Cirugía Plástica y Reparadora. Actualmente dirige la Unidad de Quemados y Cirugía Reparadora del Hospital Universitario Vall d’Hebron (Barcelona), después de trabajar como jefe clínico en el Broomfield Hospital (Reino Unido), como médico adjunto en el Hospital Universitario de Groningen y como especialista en Cirugía Plástica y Quemados en la Universidad de Texas. Contenido temático: La Unidad de Quemados del Hospital Vall d´Hebron es una Unidad de referencia y goza de gran prestigio tanto
en el ámbito estatal, como a nivel europeo. Sus nuevas instalaciones ocupan una superficie de 1.403 m2 e incluyen 6 habitaciones individuales para grandes quemados, 10 de curas progresivas, Área de Quirófanos, Área de atención urgente, sala de tratamientos y sala de curas.
Conferencia 16.30 - 17.15 h. AGENTES QUÍMICOS EN EL ÁMBITO SANITARIO. D. JORGE PASCUAL DEL RIO, Técnico del Servicio de Prevención de Riesgos Laborales Servicio Navarro de Salud – Osasunbidea. Coordinador de la “Guía de agentes químicos en el ámbito sanitario”, editada por la asociación ANMTAS y la Escuela Nacional de Medicina del Trabajo del Instituto de Salud Carlos III (Ministerio de Ciencia e Innovación). Contenido temático: A través de esta Guía se ofrece una visión profunda de los principales agentes químicos presentes en el ámbito sanitario, recopilando la información obtenida de diferentes fuentes de reconocido prestigio, así como las medidas preventivas que se muestran más eficaces en la actualidad para evitar los riesgos asociados a esta exposición.
Dirigido a: Especialmente dirigido a: Comités de control de infección hospitalaria, Servicios de
Prevención, Medicina Preventiva, Laboratorios, Arquitecturas e Ingenierías Hospitalarias, Jefes y
técnicos de mantenimiento, Supervisión de Quirófanos, Médicos y D.U.E, etc.
Inscripciones www.segla.net (Tel información 934 364 061)
CUANTIFICACIÓN DE STAPHYLOCOCCUS EN EL AIRE INTERIO R DEL HOSPITAL
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CUANTIFICACIÓN DE STAPHYLOCOCCUS EN EL AIRE DEL HOSPITAL
Cristina Neves Pimenta de Franca
Bióloga, Máster en Bioquímica aplicada, Universidad de Madeira, Portugal.
RESUMEN
Los bioaerosoles bacterianos que se encuentran
- a menudo - en el aire interior, son
potencialmente aliados a un aumento de la
probabilidad de desarrollo y transmisión de
enfermedades infecciosas, cuyas
complicaciones pueden llevar, en casos más
extremos, al aumento de la morbilidad y la
mortalidad.
Para ello hemos utilizado las técnicas
bioquímicas para la cuantificación,
identificación y caracterización de los
bioaerosoles recogidos por impacto en medio
semi-sólido selectivo.
INTRODUCCIÓN
En la actualidad, están disponibles varias
publicaciones científicas sobre los efectos
prejudiciales de ciertos parámetros
ambientales, a saber, la temperatura,
humedad relativa, la radiación/brillo y la
contaminación química en la calidad del aire
interior (CAI) de los edificios y la salud (Tang,
2009).
Además de los contaminantes químicos, el aire
interior contiene (como el aire exterior), una
miscelánea compleja de microorganismos,
fragmentos de los microorganismos,
endotoxinas, micotoxinas y compuestos
orgánicos volátiles, potencialmente
perjudiciales para la salud pública, que exigen
la necesidad de desarrollo de estudios, en el
área y sensibilización de la sociedad,
relativamente a su impacto en el nivel de salud
y ecología (Aydogdu et al., 2009; Peccia y
Hernandez, 2006).
“Este trabajo tuvo como objetivo la
cuantificación de S. aureus en dos
hospitales públicos portugueses,
desde una perspectiva preventiva,
para evitar el desarrollo y la
transmisión de infecciones
nosocomiales por Staphylococcus”.
CUANTIFICACIÓN DE STAPHYLOCOCCUS EN EL AIRE INTERIO R DEL HOSPITAL
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Los primeros estudios basados en CA se han
centrado en los contaminantes químicos
(Zorman y Jeršek, 2008). Pero, los
contaminantes biológicos representan en la
actualidad un importante objeto de estudio
siendo considerados herramientas importantes
en la definición de CAI (Chan et al., 2009,
Rintala et al., 2008; Saadoun et al., 2008).
En la actualidad, el estudio de la ecología
microbiana hospitalaria se centra
principalmente en la detección de
microorganismos en las superficies inanimadas,
a pesar de ser fuertemente recomendada la
vigilancia da calidad microbiológica del aire
interior a partir de la determinación y
cuantificación de bioaerosoles bacterianos
cultivables (Klánová y Lajčiková, 2006).
Este trabajo tiene como objetivo fortalecer el
conocimiento, la comprensión y el interés sobre
la monitorización de CAI en hospitales,
incluyendo la caracterización de agentes
nosocomiales (staphylcoocci) y el
estabelecimiento de la prevención y el control
de IN.
DESAROLLO
El ambiente hospitalario, sobretodo el dedicado
a la prestación de la atención médica a la
comunidad, constituye un ambiente particular
(Curtis, 2008; Sobotová et al., 2006).
La alta concentración de microorganismos es un
componente asociado a la contaminación
biológica del aire interior resultando,
posteriormente, en la complicación de la
situación clínica (Sudharsanam et al., 2008;
Saadoun et al., 2008; Fang et al., 2007;
Piteira, 2007; Obbard y Fang, 2003).
“Por supuesto, la indeseable CAI en
hospitales representa una realidad
alarmante que fue considerada por la
Organización Mundial de la Salud
(OMS) como el 8º factor de riesgo de
mayor releváncia en los edificios y
responsable de 2,7% de las
enfermedades en el Mundo (Quadros,
2008).
CUANTIFICACIÓN DE STAPHYLOCOCCUS EN EL AIRE INTERIO R DEL HOSPITAL
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Por lo tanto, el ambiente hospitalario establece
una íntima relación con IN y puede
proporcionar focos de contacto y transmisión
de bioaerosoles bacterianos (Andrade et al.,
2000(b)) a través de la flora permanente o
transitoria del paciente, de la flora del entorno
institucional y de la flora de los demás
ocupantes (DGS, 2002).
Las IN constituyen un problema de salud
pública en todo el Mundo, principalmente en
los Países desarrollados donde están menos
estudiadas y por lo tanto, con menos énfasis
(Habibi et al., 2008; Metintas et al., 2004).
Se estima que 2% a 12% de los pacientes
hospitalizados en los Países desarrollados
manifiestan IN (Ding et al., 2009), valores que
pueden alcanzar los 30% en los Países en
desarrollo (Távora et al., 2008). En la Europa,
la tasa de IN se encuentra entre 5 y 10%
(Kalliokoski, 2003).
Sin embargo, varios estudios tienen en cuenta,
que aproximadamente 1/3 de las IN son sin
duda evitables en el curso de la prestación
médica (PNCI, 2007). Dados obtenidos en una
investigación de prevalencia desenvuelto por la
OMS indican que alrededor de 8,7% de los
pacientes hospitalizados adquieren IN y que a
cada momento, 1,4 millones de personas en el
Mundo sufren complicaciones infecciosas
adquiridas en el hospital (OMS, 2002).
Para Portugal, los datos presentados por la
Encuesta Nacional sobre la Prevalencia (2003)
indican una prevalencia de 8,4% pacientes con
IN, valor que se encuentra dentro del rango de
prevalencia (5 a 10%) en la mayoría de los
Países de Europa (DGS, 2003).
“Varios autores consideran que la
transmisión aérea (a partir de una
fuente ambiental o humana) es la
principal causa de la propagación de
las infecciones en el entorno clínico,
contribuyendo al 10 a 20% de las IN
endémicas (Gupta et al., 2010;
Escombe et al, 2009; Qudiesat et al.,
2009; Curtis, 2008; Morawska, 2008;
Tambekar et al., 2007; Esen et al.,
2004; Obbard y Fang, 2003)”.
“La OMS lista Clostridium sp.,
Staphylococcus aureus, las
Enterobacteriaceae (E. coli, Proteus
spp., Klebsiella spp., Enterobacter
spp., Serratia marcescens) y
Pseudomonas spp., como las
bacterias patógenas frecuentemente
implicadas en las IN”.
CUANTIFICACIÓN DE STAPHYLOCOCCUS EN EL AIRE INTERIO R DEL HOSPITAL
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S. aureus es un microorganismo problemático
en los hospitales Portugeses, especialmente en
la forma de Staphylococcus aureus resistentes a
meticilina (MRSA) y Staphylococcus aureus
sensibles à meticilina (MSSA).
Los estafilococos (especialmente S. aureus, S.
epidermidis, S. haemolyticus y S.
saprophyticus) establecen una relación benigna
o simbiótica con el hombre, pero, hacia una
mayor susceptibilidad del huésped pueden
comportar-se como patógenos invasores
(Heikens et al., 2005). Por lo tanto, los
estafilococos son considerados patógenos
oportunistas responsables de un amplio
espectro de enfermedades sistémicas,
incluyendo las infecciones de la piel y tejidos
blandos, así como infecciones del sistema
urinario (Murray et al., 2009).
El plan de muestreo consistió en la
identificación de peligros, inventario de
objetivos y la realización de encuesta
higiénica. Con respecto a la adopción de
estrategia de muestreo, toda la metodología
utilizada para evaluar a contaminación del aire
ha cumplido con las directrices definidas en la
nota técnica NT-SCE-02.
Hay que destacar el hecho de que no se han
realizado ajustes para la verificación de los
requisitos de la CAI previstos en el RSECE en el
contexto específico de los hospitales ya que el
reglamento actual no se pronuncia con
respecto a los ambientes especiales.
“La presente investigación y
cuantificación de Staphylococcus en
dos hospitales portugueses, implicó
la elaboración de un plan de muestreo
de bioaerosoles en servicios y áreas
hospitalarias afectados por IN y que
se incluyen en el sistema de
vigilancia epidemiológica de PNCI
(Circular Normativa 27/DSQC/DSC de
03/01/08)”
“Nota Técnica NT-SCE-02:
Metodología para las Auditorías
Periódicas de IAQ em Edificios de
Servicios existentes no ámbito do
RSECE”.
CUANTIFICACIÓN DE STAPHYLOCOCCUS EN EL AIRE INTERIO R DEL HOSPITAL
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En cada una de las tres fases de muestreo
realizadas, también se llevó a cabo una toma
de muestras control exterior y la determinación
de los niveles de temperatura (ºC), humedad
relativa (%) y dióxido de carbono (ppm) (Q-
TRACKTM Plus IAQ Monitor, Modelo 8554).
El tiempo de muestreo se ha optimizado en
función de la norma europea EN 13098:2000. El
tiempo de muestreo (t) se estimo por la
igualdad t (min) = V/Q, donde Q es el flujo del
equipo de muestreo (20L/min) y V es el
volumen deseado en litros/min, lo cual de
acuerdo con la legislación portuguesa debe
estar entre los 250 y 300 litros de aire (NT-SCE-
02). Por lo tanto, el tiempo de muestreo se fijó
en 8 min, lo que corresponde a la toma de
muestras de 160 L del aire/min o 0,16 m3 de
aire.
Esta metodología es adecuada para entornos
con concentraciones relativamente bajas de
microorganismos. Es interesante observar que
el límite superior de referencia aplicable en
Portugal es 500UFC/m3 de aire; actualmente no
están definidos otros valores de referencia para
ambientes hospitalarios, incluso, no hay límites
para un determinado microorganismo.
Ya que los hospitales no están equipados con
sistemas de aire acondicionado, el equipo
Burkard fue puesto a la altura de las vías
respiratorias, cerca de la zona de alojamiento
de los pacientes. El equipo Burkard realiza un
muestreo activa en placas de medio semi-solido
de 90 mm. Para la investigación de
estafilococos el medio de cultivo utilizado fue o
Agar Manitol Sal-Vermelho (TSA).
CUANTIFICACIÓN DE STAPHYLOCOCCUS EN EL AIRE INTERIO R DEL HOSPITAL
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La caracterización microbiana requerida por el
analista es crucial, no sólo en la elección del
método de muestreo, sino también en la
selección de la metodología para cuantificación
y determinación microbiana, que pueden variar
desde las técnicas de cultura tradicionales
hasta las análisis moleculares (Lignell, 2008).
Los métodos de cultivo para la identificación
de microorganismos utilizados en trabajo,
permite la detección de alrededor de 0,001% a
15% de bacterias ambientales cultivables
(Dugan y Leytem, 2009; Lignell, 2008). Las
ventajas del cultivo de microorganismos
contemplan la posibilidad de identificar
especies o géneros bacterianos y el aislamiento
de cepas para posterior caracterización
fenotípica y genotípica.
El método experimental utilizado para la
identificación bioquímica se presenta
brevemente en el diagrama de flujo 1.
Por razones de confidencialidad, se hará
referencia a los valores obtenidos para S.
aureus e SCoN; los datos obtenidos deben ser
considerados únicamente a título indicativo, sin
la representación correspondiente del universo
de los microorganismos en el ambiente
hospitalario.
Hasta la fecha no se ha fijado los límites de
concentración máxima aceptable para las
especies bacterianas en el aire interior para
garantizar una satisfactoria CAI y, en
consecuencia, la salud de sus ocupantes.
“El método de muestro activo permite
la recolección del volumen de aire
pre-determinado y la medición de la
contaminación microbiana en UFC por
metro cúbico de aire (UFC/m3),
parámetro considerado por
Pasquarella et al. (2000) como el más
importante y eficaz en la
cuantificación de microorganismos
viables en el aire”.
“Las pruebas bioquímicas utilizadas
para la identificación de nuestros
microorganismos se basan en la
evaluación de características
genéticamente codificados (Yuan et
al., 2007; Xu et al., 2004). Estos
incluyen la morfología, las
características de crecimiento, la
capacidad de metabolizar substratos
y otros (Zadoks et al., 2009)”.
CUANTIFICACIÓN DE STAPHYLOCOCCUS EN EL AIRE INTERIO R DEL HOSPITAL
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Por lo tanto, el análisis sólo indica los dados de concentración máximos, mínimos y promedios y está
libre de los valores de referencia. Los Staphylococcus se detectaron en todos los sitios de muestreo,
con la concentración máxima registrada en el Servicio de emergencia (1445 UFC/m3 de aire). La
concentración promedio de Staphylococcus en el hospital analizado fué de 356 UFC/m3 de aire. La
concentración promedio de S. aureus fue superior a SCoN, com 197 UFC/m3 de aire contra 160 UFC/m3
de aire. El Servicio de urgencia es golpeado con más microorganismos en comparación con otras áreas
hospitalarias analizadas (770 UFC/m3 de S. aureus y 675 UFC/m3 de SCoN).
Pruebas Confirmatorias
Identificación Bacteriana Catalasa Coagulasa
Tipo respiratorio
Aerobiosis Anaerobiosis
+ + + + S. aureus
+ + + - Micrococcus luteus
+ - + + Staphylococcus coagulasa negativos
Diagrama de flujo 1. Protocolo para la detección de Staphylococcus
Colonias rosa con o sin
punto blanco
Colonias de color
amarillo, con/sin halo
Muestreo en
Agar Manitol-Sal Rojo Fenol
Tincción de Gram
Tipo respiratorio
M.E.V.A.G. (37ºC±1ºC
/ 24±4h) Test Catalasa
Teste Coagulasa
Caldo Cerebro-Corazon
0,5 ml plasma de Conejo +
0,5 ml de Caldo
(37ºC±1ºC / 4 a 24h)
Pruebas confirmatorias
Interpretación
DIAGRAMA DE FLUJO
INVESTIGACIÓN Y CUANTIFICACIÓN DE STAPHYLOCOCCUS SPP.
Repicaje para Agar Triptona Soja (TSA)
CUANTIFICACIÓN DE STAPHYLOCOCCUS EN EL AIRE INTERIO R DEL HOSPITAL
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CONCLUSIONES
La presencia de estos microorganismos - uno de
los más temidos por los médicos y reconocidos
como agentes nosocomiales en Portugal - en el
aire interior se debe en parte, a la naturaleza
de las actividades realizadas en el entorno
hospitalario y de las patologías presentadas por
sus ocupantes, situaciones que hacen que sea
inevitable, salvo excesiva lucha y control, la
contaminación microbiana del medio ambiente
e infección de los individuos más susceptibles
(Pimenta de França, 2010).
Esto refuerza la observancia estricta de las
medidas de control y prevención propuesto por
la CCI, con el agravante del empeoramiento de
la contaminación microbiológica del ambiente
hospitalario y frecuencias cada vez mayores de
IN (Pimenta de França, 2010).
“Cerca de 1/3 de las IN, según registros bibliográficos, podrían
prevenirse a través de los programas de vigilancia y del control de
infecciones, con grandes beneficios para el nivel de salud pública
y la sostenibilidad de los sistemas de salud (Pimenta de França,
2010)”.
CUANTIFICACIÓN DE STAPHYLOCOCCUS EN EL AIRE INTERIO R DEL HOSPITAL
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bioaerosol concentrations in different
indoor environments. Indoor Built
Environ. 2008;17(Suppl 2):155-163.
www.biotecnologiahospitalaria.com Página 30
La Asociación Chilena de Seguridad (ACHS) anuncia la realización del Noveno Congreso Internacional de Prevención de Riesgos Laborales (ORP'2011), a realizarse los días 9, 10 y 11 de Noviembre de 2011 en Santiago de Chile. http://www.orpconference.org
Chile nuevamente acoge este importante evento co-organizado con la Escuela Técnica Superior de Ingeniería Industrial de Barcelona (ETSEIB) de la Universidad Politécnica de Cataluña (España), la Universidad de Tecnología de Tampere (Finlandia), la Universidad de Tecnología de Delft (Holanda), la Università degli Studi di Milano (Italia) y el Centro de Ingeniería Industrial y Sistemas de Gestión de la Universidad de Florida Central, ofreciendo a empresarios, ejecutivos, profesionales, investigadores y académicos, un único punto de encuentro para el intercambio de experiencias con los más
connotados especialistas internacionales en seguridad y salud ocupacional.
Este evento se vincula con los Congresos Internacionales de Prevención de Riesgos Laborales ORP, que se han desarrollado en diferentes ciudades españolas y cuya octava versión en Mayo de 2010 tuvo por sede a Valencia, convocando a 1.605 personas provenientes de 40 países.
En nombre de los organizadores, y atendiendo a la alta importancia de los temas de este Noveno Congreso Internacional para crear ambientes laborales sanos y seguros, invitamos a ustedes a contribuir técnicamente concursando trabajos, como también a participar activamente en tan trascendental evento.
Atentamente, JORGE MATETIC RIESTRA
Presidente ASOCIACIÓN CHILENA DE SEGURIDAD
CALIDAD DE AIRE EN CENTRALES DE ESTERILIZACIÓN
www.biotecnologiahospitalaria.com Página 31
CALIDAD DEL AIRE EN LAS CENTRALES DE ESTERILIZACIÓN
Enrique Isidoro Velasco.
Facultativo especialista de Área, Microbiología
Área de Gestión Clínica Laboratorio Clínico y
Medicina Preventiva Área Sanitaria Serranía.
Servicios Clínicos y Médicos Integrales, SA.
SERMED
Juan José Criado Álvarez.
Facultativo especialista de Área, Microbiología
Área de Gestión Clínica Laboratorio Clínico y
Servicios Clínicos y Médicos Integrales, SA.
SERMED
RESUMEN:
Partiendo de las pautas higiénicas establecidas
en el manual de procedimientos de la empresa
SERMED S.A., en cumplimiento de la normativa
actual. Se establece una serie de
procedimientos correctivos, basados en los
resultados obtenidos en los análisis
ambientales, realizados en las diferentes
centrales de esterilización que gestiona dicha
empresa. Y se establecen objetivos para el
desarrollo y mantenimiento del sistema de
calidad de la misma.
INTRODUCCIÓN:
Evaluar de forma periódica la calidad del aire
ambiente, en cuanto a sus características
microbiológicas de las centrales de
esterilización, así como las condiciones de
calidad higiénica del aire de inmisión de las
zonas de trabajo.
Con ello se pretende tener controladas las
condiciones de higiene ambiental de las
diferentes centrales de esterilización que
gestiona la empresa SERMED S.A.
Se realiza como parte del sistema de calidad.
Busca, no sólo llevar el control de estos
parámetros, sino en función de ellos,
establecer metodologías y acciones, que nos
ayuden a mejorar de manera continua como
objetivo final.
DESARROLLO:
“Estudio descriptivo transversal de
evaluación de la calidad del aire
medioambiental a lo largo del año
2010, de una muestra de las centrales
de esterilización gestionadas por la
empresa SERMED S.A.”:
CALIDAD DE AIRE EN CENTRALES DE ESTERILIZACIÓN
www.biotecnologiahospitalaria.com Página 32
- HIS: Hospital Infanta Sofía (San
Sebastián de los Reyes, Madrid)
- HUPHM: Hospital Universitario Puerta
de Hierro-Majadahonda (Majadahonda,
Madrid)
- HHC: Hospital del Henares-Coslada
(Coslada, Madrid)
- HIC: Hospital Infanta Cristina (Parla,
Madrid)
- HCCR: Hospital Central de la Cruz Roja
(Madrid)
- HCI: Hospital Comarcal de Inca (Inca,
Baleares)
- HURS: Hospital Universitario Reina
Sofía (Murcia)
- HOA: Hospital del Oriente de Asturias
(Arriendas, Asturias)
Las mediciones fueron realizadas por el Grupo
Bio-Accali. Los equipos de medida y materiales
utilizados fueron:
• SAS “Microflow” de bajo caudal con
capacidad de selección tanto de
volúmenes de aire como de velocidades
de paso y captación de aire
• Placas Rodac con Agar Envirocount TSA-
Neutralizing
• Placas Rodac con Agar Rosa bengala
Se ha muestreado en las 3 zonas principales de
la central (lavado, empaquetado y almacén de
productos estériles) los parámetros
microbiológicos relativos a la flora aerobia
mesófila total y flora total fúngica (mohos y
levaduras), con la climatización en
funcionamiento, de forma que sirviera para un
diagnóstico de la situación de calidad de aire
interior derivada de la utilización, tipo de
actividad y condiciones actuales del sistema de
climatización.
“Se consideran las salas como de
“Ambiente limpio” y el almacén
estéril como “Ambiente muy limpio”
(UNE EN ISO 100.713)”:
CALIDAD DE AIRE EN CENTRALES DE ESTERILIZACIÓN
www.biotecnologiahospitalaria.com Página 33
El muestreo se ha realizado en la impulsión
(conductos), superficie de rejillas de impulsión
y el centro de la sala. La totalidad de las
muestras se tomaron de forma rutinaria
protocolizada.
Los datos obtenidos (vease tabla 1) se
comparan con el estándar microbiológico
propuesto en la Guía del INSALUD de 1996 y la
Guía de la SEMPSPH-INSALUD de 1999. Se
considera la calidad del aire como muy limpio
(<10ufc/m3), limpio (10-100 ufc/m3) y
aceptable (>200 ufc/m3).
Tras los primeros resultados se decide
establecer las siguientes acciones correctivas
para la central de esterilización en general y
las diferentes zonas analizadas:
CENTRAL DE ESTERILIZACIÓN EN GENERAL:
- Controlar que la limpieza de suelos y
superficies se haga siempre con mopas y
gamuzas adecuadas, húmedas y bien
escurridas, para evitar que se levanten
partículas y agregados.
- Limpiar bien las rejillas de aire donde
suelen quedar restos del material textil
usado para la confección de los equipos
quirúrgicos.
ZONA DE LAVADO:
- Minimizar el tiempo de apertura de
puertas a la recepción del instrumental
o entrada y salida del personal.
ZONA DE EMPAQUETADO:
- Mantener las puertas de la esclusa o
zona de paso sucio-limpio cerradas y
usarlas correctamente.
- Evitar introducir carros para el
transporte de instrumental sucio en
dicha zona.
- Minimizar el movimiento de textil
utilizado para la confección de equipos
quirúrgicos: sábanas, paños, batas, etc.
Que proboca la suspensión de agregados
y párticulas en el aire.
ALMACÉN DE PRODUCTOS ESTÉRILES:
- Aumentar la periodicidad de la limpieza
de estanterías, incorporando en la
medida de lo posible estantes de rejilla,
para evitar acumulación de polvo y
partículas que son suspendidas al
colocar y retirar el instrumental.
Tabla 1
CALIDAD DE AIRE EN CENTRALES DE ESTERILIZACIÓN
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Tabla 1
Continuación Tabla 1
HIS HUPHM HHC HIC HCCR
Lavado Aerobios 0/10/30/
20/0/30/20/50
140/40/
0/400
60/330/10/10 290/120/70/220 60/20/190
/40
Mohos/Levad. 0/0/20/0/0/10/0
/30
280/0/10/1
10
0/10/0/0 110/20/10/40 10/10/30/
60
Empaquet. Aerobios 0/20/60/20/0/50
/10/40
0/80/30/10 130/80/0/0 80/0/10/230 20/60/90/
80
Mohos/Levad. 0/0/0/0/0/0/20/
10
10/0/20/0 30/10/0/0 40/3/0/20 10/0/30/0
Almacén Aerobios 0/0/10/0/0/0/30
/0
30/10/50/0 70/30/10/0 210/70/3/10 0/0/10/0
Mohos/Levad. 0/0/0/0/0/0 10/0/0/0 0/0/0/0 90/0/0/30 0/0/20/0
HCI HURS HOA Media Mediana 10-100
ufc
>100
ufc
total Nº
Lavado 320/170/
20/0
100/30/150/
30
10/40/60
/10
86,1 40 17
47,2%
10
27,8%
27
75,0%
36
0/0/0/0 10/40/50/50 0/50/60/
0
28,3 10 11
0,6%
3
8,3%
14
38,9%
36
Empaquet. 0/150/50
/0
150/30/180/
10
10/10/0/
20
47,5 20 16
4,4%
5
13,9%
21
58,3%
36
180/0/0/
0
120/10/20/7
0
0/40/40/
2
19,0 2,5 10
7,8%
2
5,6%
12
33,3%
36
Almacén 60/80/30
/0
220/130/80/
30
0/40/10/
10
34,3 10 12
3,3%
3
8,3%
15
41,7%
36
0/0/0/0 280/0/0/30 0/80/0/1 15,6 0 6
16,7%
1
2,8%
7
19,4%
36
CALIDAD DE AIRE EN CENTRALES DE ESTERILIZACIÓN
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CONCLUSIONES:
Se tomaron 216 muestras de aire ambiente, 108
de bacterias y 108 de hongos, en 96 (44,4%)
hubo crecimientos. De esos crecimiento, vemos
que dos tercios corresponden a crecimientos de
aerobios mesófilos (n=63) frente a los hongos
en (n=30) (Tabla 1)
La zona más contaminada, como es lógico es la
zona de lavado.
La calidad microbiológica del aire de la central
de esterilización fue adecuada en la mayoría de
las tomas estudiadas. No se detectaron hongos
especialmente peligrosos en el aire de la
central. Los controles rutinarios
microbiológicos permiten estudiar la calidad
del aire y garantizar un ambiente adecuado
para el personal y para el material.
De los resultados obtenidos, dentro siempre de
los márgenes aceptables establecidos, en los
que se observan variaciones sin una tendencia
clara. Y las acciones correctivas llevadas a
cabo, que requieren de la colaboración del
personal de esterilización, de la limpieza y el
resto de personal sanitario del hospital. A lo
que se añaden las diferentes condiciones de la
central en función de la actividad y carga de
trabajo.
BIBLIOGRAFÍA:
- Criado-Álvarez JJ. Capítulo 11: Garantía
de la efectividad de un proceso de
esterilización. Sistemas de registro de
los controles de rutina. En:
Esterilización en centros sanitarios.
Edita: FISCAM. Madrid: Grupo Aula
Médica, 2006
- Muro Ceballos I, Criado-Álvarez JJ.
Capítulo 10: Gestión de la central de
esterilización. En: Ayuso Murillo D,
Grande Sellera R. La gestión de
enfermería y los servicios generales en
las organizaciones sanitarias. Madrid:
Editorial Díaz de Santos, 2006.
“Se interpreta que las condiciones
ambientales de la central tenderán
siempre a variar y se establece como
objetivo, la continuación en la
práctica de las medidas correctivas
llevadas a cabo para asegurar unos
mínimos adecuados para cada zona
de las centrales de esterilización
objeto del estudio.
”:
CALIDAD DE AIRE EN CENTRALES DE ESTERILIZACIÓN
www.biotecnologiahospitalaria.com Página 36
- Criado-Álvarez JJ, Muro I. Errores en la
Central de Esterilización: Seguridad de
los dispositivos sanitarios. Medicina
Preventiva 2007; 13: 9-13
- Criado-Álvarez JJ, Muro I. Normativa y
calidad en la central de esterilización.
Rev Calidad Asistencial; 2006; 21: 110-
6.
- Criado-Álvarez JJ, Muro I. Normativas y
legislación aplicables en las Centrales
de Esterilización. Todo Hospital; 2005;
217: 337-344
- Criado-Álvarez JJ, Muro I. Logística y
trazabilidad en la Central de
Esterilización. Todo Hospital; 2004; 210:
545-552.
- Criado-Álvarez JJ, Muro Ceballos I.
Validación y puesta en funcionamiento
de una central de esterilización
externalizada. Medicina Preventiva
2001, 7: 24-28
- Criado-Álvarez JJ. Diseño y
equipamiento actual de las centrales de
esterilización. Medicina Preventiva
2009; 15: 5-12
- Guía práctica para el diseño y
mantenimiento de la climatización en
quirófanos. Edita: INSALUD, Secretaría
General. Madrid, 1995
- García J, Hernández S. Bioseguridad
ambiental en instituciones sanitarias.
Medicina Preventiva; 2001; 7: 23-34
- CLIVEGESA. Directriz para la
climatización y ventilación de bloques
quirúrgicos. SACyL, 2007
CONTRATE SU PUBLICIDAD PARA EL PRÓXIMO NÚMERO DE BIOTECNOLOGÍA HOSPITALARIA
biotecnologí[email protected] tel. 934 364 061
BIOSEGURIDAD DE AIRE EN QUIRÓFANOS
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BIOSEGURIDAD DE AIRE EN
QUIRÓFANOS
Mª Angeles Torres Cañadillas
Enfermera de Medicina Preventiva del Hospital
General de Ciudad Real.
RESUMEN :
Con el objetivo principal de proteger la
bioseguridad ambiental del aire de nuestro
Hospital, se lleva a cabo por parte de Medicina
Preventiva, una estricta vigilancia
fundamentalmente en quirófanos, habitaciones
de flujo variable, y campanas de preparación
de citostáticos y nutrición parenteral. Por eso a
continuación se expone la manera de llevarlo a
cabo.
INTRODUCCIÓN:
La literatura médica sobre las epidemias de
infección nosocomial por Aspergillus, ponen de
manifiesto la importancia de mantener el
medio ambiente hospitalario tan libre de
esporas de hongos como sea posible,
especialmente en aquellas áreas donde se
atiende a pacientes con un alto riesgo de
contraer ésa infección.
Definimos como nivel adecuado de seguridad
ambiental como aquella situación con niveles
aceptables de contaminación de esporas
fúngicas, que hace improbable que enfermos
susceptibles adquieran un proceso infeccioso
DESARROLLO DEL PROCESO:
1- Control microbiológico.
2- Verificación de parámetros de
climatización (temperatura, humedad
relativa, verificación de la renovación
del aire, así como estado de filtros
absolutos).
BIOSEGURIDAD DE AIRE EN QUIRÓFANOS
www.biotecnologiahospitalaria.com Página 38
MATERIAL NECESARIO PARA LA OBTENCIÓN DE
MUESTRAS:
Captador MAS 100 de Merck.
Soporte del captador.
Placas de Petri con medio de Saboureaud-
gentamicina.
Cinta selladora.
Guantes, mascarilla quirúrgica, calzas, bata
y gorro.
Rotulador, volante para laboratorio.
Registro en Medicina Preventiva.
PASOS DEL PROCESO:
La enfermera se traslada al bloque
quirúrgico con todo el material. En el
antequirófano se colocará bata, gorro,
calzas y mascarilla. Antes de colocarse los
guantes se lavará las manos
A continuación abre el filtro del captador
para depositar con cuidado la placa de
Petri, destapada, colocando la tapa boca
abajo sobre una mesa auxiliar. Después
vuelve a tapar con el filtro y ya puede
programar el captador para que comience a
funcionar.
Finalizado el proceso, vuelve a tapar la
placa de Petri con su tapa y la sella para
evitar contaminaciones durante el traslado
al laboratorio
BIOSEGURIDAD DE AIRE EN QUIRÓFANOS
www.biotecnologiahospitalaria.com Página 39
De cada quirófano se toman dos muestras, una de la rejilla de impulsión que se elija, y otra en el
centro del quirófano.
Secuencialmente:
BIOSEGURIDAD DE AIRE EN QUIRÓFANOS
www.biotecnologiahospitalaria.com Página 40
CONCLUSIONES:
BIBLIOGRAFÍA:
.CDC. Guidelines for environmental control in
health-care facilities.
.Cruceta Arbolés, G. Verificación de la
bioseguridad en áreas
quirúrgicas.www.segla.net.
.Orden 29-6-07 de la Consejería de Sanidad de
Castilla la Mancha sobre autorización
administrativa de Centros y Servicios de
Cirugía.
.Pelaez Ros Beatriz et al. Prevención y control
de la infecciones de origen ambiental. Salud.
Madrid.
“La vigilancia de la bioseguridad
ambiental del aire de quirófanos y
salas especiales, se realizará de
manera rutinaria cada mes en el caso
de quirófanos de alto riesgo, y cada
tres meses en los de bajo riesgo . Si
ocurre alguna circunstancia
excepcional, donde fuera necesaria
una comprobación adicional, por
supuesto se hará a criterio de
Medicina Preventiva, cuando sea
necesario.
PROPUESTA DE ACTUACIONES EN CASO DE PÉRDIDA DE BIOSEGURIDADN EN UN CENTRO SANITARIO
www.biotecnologiahospitalaria.com Página 41
PROPUESTA DE
ACTUACIONES EN CASO DE
PÉRDIDA DE LA
BIOSEGURIDAD EN UN
CENTRO SANITARIO
Fco Javier de la Vega Olías
Médico especialista en Medicina Preventiva y
Salud Pública, Hospital Mancha Centro de
Alcázar de San Juan.
0.- RESUMEN:
Los dos principales problemas de las alertas
generadas por bioseguridad se encuentran, en
primer lugar, en la multidisciplinariedad de su
resolución, la cual implica una necesidad de
coordinación que no siempre se produce. El
segundo problema está en que se trata de una
ruptura de la dinámica de trabajo de la Unidad,
con el desajuste que esto implica y conduce a
la pérdida de tiempo de actividad, problemas
de ubicación de pacientes, desabastecimiento
de preparaciones estériles, etc.
La propuesta presentada convierte al Servicio
de Medicina Preventiva en el eje integrador de
la actividad, de manera que coordina, junto
con la Supervisión de la Unidad implicada toda
la actividad necesaria, evitando así los tiempos
muertos y las actividades ineficientes.
Asimismo, Medicina Preventiva se
responsabiliza de mantener un flujo de
información adecuado tanto hacia la Dirección
como a las Unidades.
1.- INTRODUCCIÓN:
“El presente trabajo es una propuesta
de protocolo basado en los
conocimientos adquiridos en el curso
de Controles Microbiológicos en
Hospitales: Quirófanos y Áreas
críticas, aplicados de manera
práctica a una situación de pérdida
de la bioseguridad”.
“El objetivo principal de este trabajo
es, por tanto, la sistematización de
las actividades en caso de alerta por
pérdida de Bioseguridad para
aumentar la eficiencia de los
procesos de resolución de la misma”.
PROPUESTA DE ACTUACIONES EN CASO DE PÉRDIDA DE BIOSEGURIDADN EN UN CENTRO SANITARIO
www.biotecnologiahospitalaria.com Página 42
Las Áreas Ambiente Controlado de un Centro
Sanitario son aquellas que se caracterizan por
disponer de instalaciones para el control de los
parámetros ambientales mediante sistemas de
mantenimiento y estabilización de la
temperatura y humedad relativa, la ventilación
y el filtrado del aire y el mantenimiento de un
diferencial de flujos y presiones con respecto a
las áreas adyacentes.
En concreto en esta propuesta de Protocolo se
someterán a Vigilancia y Control de
Bioseguridad las siguientes áreas:
• Quirófanos. Ver clasificación según ISO.
• Habitaciones de Flujo Variable. Se
considerarán según las características
del paciente que alberguen y su
patología concreta.
• Campanas,y/o cabinas de Preparaciones
Estériles, Nutrición Parenteral o
Citostáticos. Se considerarán zona de
Ambiente Muy Limpio.
• Almacenes de productos estériles de la
central de Esterilización. Se
considerarán zona de Ambiente Limpio.
• Salas de UCIy UCI Pediatrica, en función
de la presencia de pacientes de riesgo:
Inmunodeprimidos e inmunosuprimidos,
grandes quemados, trasplantes,
prematuros. Se considerarán zonas de
Ambiente Aceptable.
“La Bioseguridad en un Centro
Sanitario puede definirse como la
aplicación de conocimientos,
técnicas y equipamientos para
prevenir la exposición del personal y
pacientes a agentes potencialmente
infecciosos o considerados de riesgo
biológico en las Áreas de Ambiente
Controlado.
PROPUESTA DE ACTUACIONES EN CASO DE PÉRDIDA DE BIOSEGURIDADN EN UN CENTRO SANITARIO
www.biotecnologiahospitalaria.com Página 43
Se entiende por Pérdida de la Bioseguridad Ambiental de un Área de Ambiente Controlado la aparición
de:
TIPO DE AMBIENTE (ISO)
AEROBIOS MESÓFILOS
TOTALES
HONGOS
ISO 5-6 - Ambiente
muy limpio
≥ 10ufc/m3
≥ 0 ufc/m3
ISO 7 - Ambiente
limpio
> 10-100 ufc/m3
≥ 0 ufc/m3
ISO 7-8 - Ambiente
Aceptable
> 100-200ufc/m3
≥ 0 ufc/m3
• ISO 5-6 Ambiente muy limpio. Quirófanos de Muy Alto Riesgo: Transplantes, Cirugía cardiaca,
Cirugía ortopédica, con prótesis.
• ISO 7 - Ambiente limpio. Quirófanos de Alto Riesgo: Cirugía Convencional y de Urgencia (resto
de operaciones quirúrgicas).
• ISO 7-8 - Ambiente aceptable. Quirófanos de Cirugía Ambulatoria y Salas de Partos.
(Hongos: se contabilizarán las siguientes especies Aspergillus, Rhizopus, Mucor y Scedosporium).
En el caso de que en las inspecciones apareciera una variación de algún parámetro ambiental, se
registrará el valor anómalo y la fecha en que tuvo y se considerará una anomalía, pero no pérdida de
bioseguridad ambiental.
PROPUESTA DE ACTUACIONES EN CASO DE PÉRDIDA DE BIOSEGURIDADN EN UN CENTRO SANITARIO
www.biotecnologiahospitalaria.com Página 44
2.- PÉRDIDA DE BIOSEGURIDAD EN AIRE DE
QUIRÓFANOS: ACTUACIONES
1.- El Facultativo de Medicina Preventiva
comunica la situación a la Dirección Médica, a
la vez que facilita un plan de actuación
preliminar.
2.-Se comunica al Supervisor /a de Quirófanos
la situación, con objeto de revisar
conjuntamente el parte de quirófano, y
proponer los cambios necesarios para que en
el/los quirófano(s) afecto(s) no se lleven a
cabo:
• Intervenciones con material implantable
o protésico.
• Intervenciones de cualquier tipo sobre
pacientes inmunodeprimidos, esto es:
• Neutropénicos:
o < 500/mm3 más de dos
semanas.
o < 100/mm3 independientemente
de la duración.
• Pacientes con corticoterapia : >1mg/Kg
durante tres semanas.
• Trasplantados celulares alogénicos.
• Grandes Quemados.
Asimismo, se le comunicará la necesidad de
que quede(n) libre(s) lo antes posible para
las actuaciones pertinentes. Se le informará
asimismo de la necesidad de coordinar a los
Servicios de Limpieza y/o Mantenimiento y
de mantener informada a Medicina
Preventiva sobre su actividad.
3.-Se informa de la situación a la Dirección
de Gestión para que ésta tome las medidas
pertinentes sobre los Servicios de Limpieza
y/o Mantenimiento:
a) Si la muestra positiva no ha sido tomada
en la impulsión del Sistema de Ventilación,
sino a nivel del área de trabajo/centro del
quirófano, se trata de un problema
contingente, no de funcionamiento, por lo
que se puede resolver realizando una
limpieza exhaustiva del quirófano (en
especial de las superficies horizontales),
comprobando el cierre de puertas y
guillotinas, mejorando la disciplina
intraquirófano y tomando muestras
nuevamente para comprobar su resolución.
b) Si la muestra positiva ha sido de la
rejilla de la impulsión, se ha de comprobar
el estado de la misma y de los filtros, por lo
que también deben intervenir los Servicios
de Mantenimiento y Limpieza, actuando en
el siguiente orden :
PROPUESTA DE ACTUACIONES EN CASO DE PÉRDIDA DE BIOSEGURIDADN EN UN CENTRO SANITARIO
www.biotecnologiahospitalaria.com Página 45
a) Servicio de Mantenimiento:
- Comprobación del estado de
los filtros mediante revisión de
registros del último cambio y
comprobación de la colmatación
según flujos y capacidad de
impulsión.
- Desmontaje de la rejilla.
b) Servicio de Limpieza:
- Limpieza de la rejilla por
inmersión en desinfectante y
cepillado. Inspección y limpieza
del hueco de la rejilla hasta
donde sea posible sin dañar los
filtros.
c) Servicio de Mantenimiento:
- Colocación de la rejilla.
4.-Se informa a la Dirección de los cambios
recomendados respecto a las intervenciones
quirúrgicas programadas así como del
cronograma de actuaciones.
5.- El Servicio de Medicina Preventiva
contacta con la gobernanta de limpieza y
con el encargado de Mantenimiento,
manteniendo los canales de comunicación
abiertos con cada uno mientras dure la
alerta.
6.-El/La Supervisor/a de quirófano coordina
las labores de Mantenimiento y Limpieza e
informa a Medicina Preventiva de su
progreso y sobre todo de su término.
7.- Se procede a tomar muestras de nuevo
por parte de la enfermera de Medicina
Preventiva y se entregan en el laboratorio
de Microbiología.
Hasta el punto nº 7 inclusive, el proceso
debería llevarse a cabo en un intervalo
aproximado de 2-3 horas.
8.-Procesamiento de las muestras, y lectura
de resultados por parte del Servicio de
Microbiología en dos pasos:
- Lectura provisional a las 48h
con resultados de mesófilos y
primera aproximación a flora
fúngica.
- Lectura definitiva a las 120h
con resultados de flora fúngica.
9.- Información de resultados al Facultativo
de Medicina Preventiva.
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10.-Si el resultado del control microbiológico
es negativo, el Facultativo de Medicina
Preventiva informa a la Dirección Médica,
anota en un registro dicho episodio y
garantiza mediante firma del mismo que
existe bioseguridad.
11.-En caso de que no se subsane el
problema, el ciclo se repite. Si persiste más
allá de las actuaciones ya expuestas, el
Facultativo de Medicina Preventiva
coordinará un Grupo de Trabajo que integre
a los Servicios implicados, incluidos
Dirección, Mantenimiento y Limpieza para
buscar y corregir las deficiencias en los
procesos que pudieran conducir a la pérdida
de la Bioseguridad.
3.- PÉRDIDA DE BIOSEGURIDAD EN AIRE DE
LAS HABITACIONES DE FLUJO
VARIABLE/SALAS DE UCI: ACTUACIONES.
1.-El Médico de Medicina Preventiva
informará a la Dirección Médica y facilitará
un plan de actuación preliminar.
2.-Se informará asimismo a la Dirección de
Gestión de la situación.
3.-Se contactará con el Servicio de
Mantenimiento para comprobar los
parámetros ambientales de la habitación
(registro de dichas condiciones).
a) Si la muestra positiva no ha sido
tomada en la impulsión del Sistema de
Ventilación, sino a nivel de la cama del
paciente, se tratará de un problema
contingente, no de funcionamiento del
Sistema de Ventilación, por lo que se
puede resolver realizando una limpieza
exhaustiva de las superficies
horizontales), comprobando el cierre de
puertas y ventanas, así como el tráfico
mantenido en la habitación/sala en las
horas anteriores. Se tomarán muestras
nuevamente para comprobar su
resolución.
b) Si la muestra positiva ha sido de la
rejilla de la impulsión, se ha de
comprobar el estado de la misma y de
los filtros, por lo que también deben
intervenir los Servicios de
Mantenimiento y Limpieza, actuando en
el siguiente orden :
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a. Servicio de Mantenimiento:
- Comprobación del estado de
los filtros mediante revisión de
registros del último cambio y
comprobación de la colmatación
según la capacidad de impulsión.
- Desmontaje de la rejilla.
b. Servicio de Limpieza:
- Limpieza de la rejilla por
inmersión en desinfectante y
cepillado. Inspección y limpieza
del hueco de la rejilla hasta
donde sea posible sin dañar los
filtros.
c. Servicio de Mantenimiento:
- Colocación de la rejilla.
4.-Se contactará con el Servicio de
Limpieza, el cual deberá llevar a cabo una
limpieza exhaustiva de la habitación, en
especial de las superficies horizontales.
5.-Tras la misma, se procede a una nueva
toma de muestras, según el procedimiento
ordinario.
6.-Si tras conocer los resultados de las
nuevas muestras el resultado es de nuevo
positivo, existe un problema recurrente y se
debe buscar su origen en el seno de un grupo
de trabajo en colaboración con el Servicio
de Mantenimiento y de la Supervisión de la
Planta, investigando posibles focos de
colonización de las infraestructuras,
material, no conformidades en la dinámica
de trabajo del personal, etc.
7.-Durante la investigación, si la habitación
está ocupada por un paciente necesitado de
aislamiento inverso, se valorará junto al
clínico responsable de su tratamiento la
posibilidad de reubicación en otra
habitación de estas características.
4.- PÉRDIDA DE BIOSEGURIDAD EN AIRE EN
LAS CAMPANAS,Y/O CABINAS DE
PREPARACIONES ESTÉRILES, NUTRICIÓN
PARENTERAL O CITOSTÁTICOS: ACTUACIONES.
a) Ante pérdida de bioseguridad de las
campanas por fallo en la validación del
flujo:
1.- El personal responsable de la Unidad de
Mezclas Intravenosas-Preparaciones
Estériles interrumpirá la actividad
mientras se toman medidas correctoras, y
pondrá en conocimiento de la Unidad de
Electromedicina, Medicina Preventiva y
Prevención de Riesgos Laborales la
situación.
2.-Medicina Preventiva revisará junto al
personal responsable de la Unidad los
Registros de mantenimiento de las cabinas.
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3.- Medicina Preventiva mantendrá
contacto con los Servicios de Farmacia y
Electromedicina hasta la resolución del
incidente.
b) Ante pérdida de bioseguridad ambiental
del aire de la cabina:
1.- Se pondrá en conocimiento del personal
responsable de la Unidad de Mezclas
Intravenosas-Preparaciones Estériles y se
establecerá de manera conjunta un plan de
actuaciones en función de la actividad para
la programación de medidas correctoras.
2.- Se avisará al Servicio de Limpieza para
realizar una limpieza concurrente a la
notificación de las superficies de la cabina
a fondo, utilizando la solución
desinfectante habitual para superficies.
3.- Se revisará junto al personal
responsable de la Unidad el Protocolo de
Limpieza del área de preparaciones de
mezclas intravenosas estériles y su grado de
cumplimiento.
4.- Se revisarán los registros de la
instalación de ventilación de la cabina para
comprobar su estado y mantenimiento.
Si es necesario, se llevará a cabo una
revisión del estado de los filtros.
5.- En caso de contaminación por hongos:
a) Se realizará una revisión
retrospectiva de los listados de
pacientes que en el curso del último
trimestre han recibido nutrición
parenteral/citostáticos en busca de
algún episodio infeccioso que pudiera
tener relación con las preparaciones
estériles, es decir, con compatibilidad
para el microorganismo aislado en las
muestras ambientales.
b) Se realizará un seguimiento
prospectivo de infecciones en el
episodio actual o en reingresos en los
pacientes atendidos de al menos 15
días.
6.- En el caso de crecimiento positivo en las
placas para bacterias:
a) Se realizará una revisión
retrospectiva revisando el listado de
pacientes que en el curso del último
trimestre han recibido nutrición
parenteral/citostáticos para
seguimiento de los mismos en busca de
algún episodio infeccioso que pudiera
tener relación con las preparaciones
estériles.
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b) Se mantendrá un seguimiento
prospectivo de los pacientes atendidos
por la Unidad en esa jornada durante 72
horas de las infecciones con
compatibilidad para el microorganismo
aislado en las muestras ambientales.
Para ello es necesario incluir
antibiograma en dichas muestras al
objeto de poder comparar los perfiles
de los microorganismos aislados en el
medio y en el paciente.
7.- Se realizarán dos nuevas tomas de
muestras, una de manera inmediata a las
medidas correctoras y otra dentro de un
periodo de dos semanas respecto al
incidente.
8.- Se emitirá informe a la Dirección del
Servicio de Farmacia sobre el incidente,
medidas tomadas y resolución del mismo.
9.- Si los resultados positivos se repiten,
existe un problema recurrente y se debe
buscar su origen en el seno de un grupo de
trabajo tal como se ha comentado en los
anteriores entornos de Bioseguridad,
investigando posibles focos de colonización
de las infraestructuras, material, no
conformidades en la dinámica de trabajo
del personal, etc.
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VALIDACIÓN DE LABORATORIOS
DE BIOSEGURIDAD NIVEL 3 (BL3).
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5.- RESPONSABILIDADES Y REGISTROS:
PÉRDIDA DE BIOSEGURIDAD EN AIRE DE QUIRÓFANOS
ACTIVIDADES
RESPONSABLE
REGISTROS
GENERADOS
INFORMACIÓN A DIRECCIÓN DE LA SITUACIÓN Y PROPORCIÓN DE
PLAN DE ACTUACIÓN PRELIMINAR
FACULTATIVO DE MEDICINA PREVENTIVA
INFORMACIÓN A SUPERVISOR/A DE QUIRÓFANO
FACULTATIVO DE MEDICINA PREVENTIVA
REVISIÓN DE INTERVENCIONES QUIRÚRGICAS A SUSPENDER EN EL
QUIRÓFANO AFECTO.
FACULTATIVO DE MEDICINA PREVENTIVA Y
SUPERVISOR/A DE QUIRÓFANO.
RECOMENDACIÓN A DIRECCIÓN MÉDICA DE LAS INTERVENCIONES
QUIRÚRGICAS A SUSPENDER.
FACULTATIVO DE MEDICINA PREVENTIVA
TOMA DE DECISIONES
DIRECCIÓN
INFORMACIÓN A DIRECCIÓN DE GESTIÓN responsable de LOS
SERVICIOS DE LIMPIEZA Y MANTENIMIENTO DE LAS ACTUACIONES A
SEGUIR.
FACULTATIVO MEDICINA PREVENTIVA.
COORDINACIÓN DE LAS LABORES DE LOS SERVICIOS DE LIMPIEZA Y
MANTENIMIENTO.
SUPERVISOR/A DE QUIRÓFANO.
COMUNICACIÓN AL SERVICIO DE MEDICINA PREVENTIVA DEL
TÉRMINO DE LAS LABORES.
SUPERVISOR/A DE QUIRÓFANO
OBTENCIÓN DE MUESTRAS
ENFERMERA DE MEDICINA PREVENTIVA
REGISTRO DE
OBTENCIÓN DE
MUESTRAS DE AIRE
DE QUIRÓFANO
PROCESAMIENTO DE LAS MUESTRAS, LECTURA DE LOS
RESULTADOS Y COMUNICACIÓN.
UNIDAD DE MICROBIOLOGÍA
INFORMACIÓN DE LOS RESULTADOS.
ENFERMERA DE MEDICINA PREVENTIVA.
VERIFICACIÓN DEL RESTABLECIMIENTO DE LA BIOSEGURIDAD
FACULTATIVO DE MEDICINA PREVENTIVA.
INFORME CON
FECHA Y FIRMA
ENVÍO DEL INFORME A DIRECCIÓN Y A LOS DISTINTOS SERVICIOS
IMPLICADOS Y ARCHIVADO.
SECRETARIA DE MEDICINA PREVENTIVA
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PÉRDIDA DE BIOSEGURIDAD EN AIRE DE LAS HABITACIONES DE FLUJO VARIABLE.
ACTIVIDADES RESPONSABLE REGISTROS GENERADOS
INFORMACIÓN A DIRECCIÓN DE LA
SITUACIÓN Y PROPORCIÓN DE PLAN DE
ACTUACIÓN PRELIMINAR
FACULTATIVO DE MEDICINA
PREVENTIVA
INFORMACIÓN A DIRECCIÓN DE GESTIÓN
FACULTATIVO DE MEDICINA
PREVENTIVA
INFORMACIÓN AL SERVICIO DE
MANTENIMIENTO Y COMPROBACIÓN DE
PARÁMETROS REGISTRADOS.
FACULTATIVO DE MEDICINA
PREVENTIVA
COMUNICACIÓN A SERVICIO DE
LIMPIEZA
FACULTATIVO DE MEDICINA
PREVENTIVA
LIMPIEZA PROFUNDA DE SUPERFICIES
HORIZONTALES.
SERVICIO DE LIMPIEZA
OBTENCIÓN DE MUESTRAS.
ENFERMERA DE MEDICINA PREVENTIVA
REGISTRO DE OBTENCIÓN
DE MUESTRAS AIRE
HABITACIONES FLUJO
VARIABLE
PROCESAMIENTO DE LAS MUESTRAS,
LECTURA Y COMUNICACIÓN.
UNIDAD DE MICROBIOLOGÍA
INFORMACIÓN DE RESULTADOS
ENFERMERA DE MEDICINA PREVENTIVA
VERIFICACIÓN DEL RESTABLECIMIENTO
DE LA BIOSEGURIDAD.
FACULTATIVO DE MEDICINA
PREVENTIVA
INFORME CON FECHA Y
FIRMA
ENVIÓ DEL INFORME A DIRECCIÓN Y A
LOS DISTINTOS SERVICIOS IMPLICADOS Y
FINALIZACIÓN DE LA ALERTA.
SECRETARIA DE MEDICINA PREVENTIVA.
FACULTATIVO DE MEDICINA
PREVENTIVA.
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PÉRDIDA DE BIOSEGURIDAD EN AIRE EN LAS CAMPANAS,Y/O CABINAS DE PREPARACIONES ESTÉRILES,
ACTIVIDADES RESPONSABLE REGISTRO GENERADO
COMUNICACIÓN A LA UNIDAD DE FARMACIA PARA LA
INTERRUPCIÓN DE LA ACTIVIDAD EN LAS CABINAS.
FACULTATIVO MEDICINA PREVENTIVA.
REVISIÓN DEL PROTOCOLO DE LIMPIEZA DE LAS CABINAS
FACULTATIVOS MEDICINA
PREVENTIVA/UNIDAD DE FARMACIA.
REVISIÓN DE LOS REGISTROS DE LOS FILTROS DE LA
INSTALACIÓN PARA COMPROBAR SU ESTADO Y
MANTENIMIENTO.
SERVICIO DE ELECTROMEDICINA/UNIDAD DE
FARMACIA.
AVISO AL SERVICIO DE LIMPIEZA PARA LA REALIZACIÓN DE
UNA LIMPIEZA A FONDO DE LAS SUPERFICIES DE LA
CABINA.
FACULTATIVO MEDICINA PREVENTIVA.
TOMA DE MUESTRAS AMBIENTAL
FACULTATIVO MEDICINA PREVENTIVA.
REGISTRO DE OBTENCIÓN DE
MUESTRAS AIRE EN
CAMPANAS CT/NP
REVISIÓN DEL LISTADO DE PACIENTES QUE EN EL ÚLTIMO
TRIMESTRE HAN RECIBIDO NUTRICIÓN PARENTERAL PARA
EL SEGUIMIENTO DE LOS MISMOS.
FACULTATIVO MEDICINA PREVENTIVA.
PROCESAMIENTO DE LAS MUESTRAS, LECTURA Y
COMUNICACIÓN.
UNIDAD DE MICROBIOLOGÍA
INFORMACIÓN DE RESULTADOS
ENFERMERA DE MEDICINA PREVENTIVA
VERIFICACIÓN DEL RESTABLECIMIENTO DE LA
BIOSEGURIDAD.
FACULTATIVO DE MEDICINA PREVENTIVA
INFORME CON FECHA Y
FIRMA
ENVIÓ DEL INFORME A DIRECCIÓN Y A LOS DISTINTOS
SERVICIOS IMPLICADOS Y FINALIZACIÓN DE LA ALERTA.
SECRETARIA DE MEDICINA PREVENTIVA.
FACULTATIVO DE MEDICINA PREVENTIVA.
PROPUESTA DE ACTUACIONES EN CASO DE PÉRDIDA DE BIOSEGURIDADN EN UN CENTRO SANITARIO
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En relación a las responsabilidades en las
campanas de citostáticos y nutrición
parenteral, los controles de validación de las
cabinas y de las Preparaciones Estériles serán
coordinados por los facultativos responsables
de dicho área de trabajo del Servicio de
Farmacia. Los relacionados con el entorno de
preparación y del Personal serán coordinados
por un facultativo de Medicina Preventiva.
Los registros de todos estos controles serán
revisados anualmente o cuando se estime
necesario por la Unidad de Medicina Preventiva
y/o la de Prevención de Riesgos Laborales. Por
parte de Medicina Preventiva, se remitirá a
Farmacia el resultado de los controles
realizados de manera rutinaria. Será en este
Servicio donde se conserven los registros para
su posterior revisión.
PROPUESTA DE ACTUACIONES EN CASO DE PÉRDIDA DE BIOSEGURIDADN EN UN CENTRO SANITARIO
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ESQUEMA DE FUNCIONES Y FLUJOS DE INFORMACIÓN EN UNA SITUACIÓN DE PÉRDIDA DE
BIOSEGURIDAD.
PROPUESTA DE ACTUACIONES EN CASO DE PÉRDIDA DE BIOSEGURIDADN EN UN CENTRO SANITARIO
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6.- CONCLUSIONES:
Poco podemos concluir de manera general en
algo tan relacionado con la dinámica y la
cultura interna de cada Centro Hospitalario
como es la gestión de una crisis. Sin embargo,
sí podemos inferir de nuestra experiencia que
una adecuada coordinación de los procesos
implicados en la resolución de una alerta
facilita dicha resolución, disminuye costes por
retrasos y a la vez mejora la confianza del
personal sanitario y los pacientes en la
eficiencia del control de la Bioseguridad
Ambiental.
7.- BIBLIOGRAFÍA:
1. Cruceta Arbolés Gloria, Dominguez rojas
Vicente, Vidal Lucena Julio et al. Curso de
especialización: Controles Microbiológicos
en Hospitales: Quirófanos y Áreas críticas.
Disponible en: URL: http:// www. segla.net
2. Cruceta Arbolés Gloria. Verificación de
la bioseguridad en áreas quirúrgicas.
Disponible en: URL: http:// www. segla.net
3. Cruceta Arbolés Gloria. Verificación y
validación de la calidad ambiental en áreas
quirúricas. Disponible en: URL: http://
www. segla. net.
4. CDC. Guidelines for environmental
control in health-care facilities.
Recommendations of CDC and the
Healthcare Infection Control Practices
Advisory Committee (HICPAC). U.S.
Department of Health and Human Services
Centers for Disease Control and Prevention
(CDC). Atlanta, 2003.
5. Borges Sá Márcio, Liebana Fiederling
Ana. Presentaciones clínicas de la
aspergilosis nosocomial. Rev Iberoam Micol;
17: S85-S89. 2000.
6. Generalitat de Catalunya. Departament
de Salut. Prevenció de la infecció
nosocomial relacionada amb el
desenvolupament d”obres als centres
sanitaris. Direcció General de Salut Pública.
Barcelona, setembre de 2007.
“Esta propuesta de protocolo
pretende ser un documento práctico
que sirva de guía, tras una lógica
adaptación, al Servicio de Medicina
Preventiva en el desempeño de sus
funciones ante una crisis de pérdida
de bioseguridad”.
PROPUESTA DE ACTUACIONES EN CASO DE PÉRDIDA DE BIOSEGURIDADN EN UN CENTRO SANITARIO
www.biotecnologiahospitalaria.com Página 56
7. Gost J et al. Vigilancia y control de las
infecciones originadas por gérmenes
oportunistas: aspergilosis. ANALES. Sis San
Navarra 2000, 23 (Supl. 2): 185-192.
8. Orden de 29-06-2007, de la Consejería
de Sanidad de Castilla la Mancha, sobre
Autorizaciones Administrativas de Centros y
Servicios de Cirugía. Diario Oficial de
Castilla La Mancha. Nº 146 (18518-18527)
9. Peláez Ros Beatriz, Andrade Lobato
Raquel, Rodríguez Caravaca Gil y González
Solana Ildefonso. Prevención y control de
las infecciones de origen ambiental. Salud
Madrid.
10. Consejería de Salud (Junta de
Andalucía). Protocolo de actuación en
brotes de infección nosocomial causados
por Aspegillus. En: Protocolos de Alerta
Epidemiológica. Protocolos de vigilancia
epidemiológica del SVEA. Sevilla; 2003.
p.XXIX.1-XXIX.9
11. Recomendaciones para la Verificación
de la Bioseguridad Ambiental (BSA) respecto
a Hongos Oportunistas. Grupo de trabajo de
la Sociedad Española de Medicina
Preventiva, Salud Pública e Higiene y el
INSALUD. Madrid, 20 de marzo del 2000.
12. Recomendaciones para la Vigilancia,
Prevención y Control de Infecciones en
Hospitales en Obras. Grupo de trabajo de
la Sociedad Española de Medicina
Preventiva, Salud Pública e Higiene y el
INSALUD. Madrid, 21 de marzo del 2000.
13. Robles García M et al. Prevención de la
infección nosocomial de origen fúngico:
verificación de la bioseguridad ambiental
en quirófanos. Rev Clin Esp 2005; 205: 601-
606.
14. Sánchez Payá, José. Prevención de la
aspergilosis nosocomial. Rev Iberoam Micol
2000; 17:S100-S102
15. Torrens García Llum. Muestras
Ambientales: ¿Cuándo, Cómo y Por qué?
Mesa Redonda I: “Condiciones ambientales
en el área quirúrgica.”II Jornada Nacional
IV Jornada Catalana ACICI. Infecció de
localització quirurgica: nuevos aspectos.
2007 Oct 26; Barcelona.
www.biotecnologiahospitalaria.com Página 57
• Validación de Filtros absolutos –HEPA-. Test de integridad y fugas. • Test de velocidad de aire. Cálculo de caudales y renovaciones. • Clasificación según ISO 14644-1. • Test de recuperación de la Sala. • Medición de presiones diferenciales. • Grado de Temperatura y Humedad relativa. • Control microbiológico ambiental por aspiración e impactación. • Nivel de Ruido / Nivel de iluminación.
www.segla.net 0034 93 436 40 61
VALIDACIÓN
Quirófanos, Áreas críticas, Laboratorios
EMISIÓN DEL CERTIFICADO DE VALIDACIÓN