ESTUDIO DE MATERIA FECAL

Examen Coproparasitoscópico

Realiza un examen Coproparasitoscópico (cps), a una muestra de heces con el fin de

buscar e identificar formas parasitarias.

Clasificación

Indicacion y solicitud

PROCEDIMIENTO PARA OBTENER LA MUESTRA preparacion del paciente

obtener muestra fecal para el examen

EXAMEN COPROLOGICO DIRECTO examen macroscopico directo

(heces liquidas ,blandas o oscuras )

examen microscopico

(leucocitos,eritrocitos,restos de alimentos

origen vegetal o animal ,levaduras )

CONSERVACION Y ENVIO DE MUESTRAS FECALES refrigeracion

preparacion sellada en porta -objetos

reactivo de MIF (merthiolate,iodo,formol)

reactivo de PVA (alcohol polivinilico)

Explicar los procedimientos de obtención y

manejo de materia fecal

Conservación y envió de las muestras fecales

A) REFRIGERACION ; -el frasco debe colocarse en el refrigerador a 4ºC -Cuando la conservación debe hacerse unas horas o un día -método mas sencillo y practico

B) PREPARACIÓN SELLADA EN PORTA OBJETOS -vaselina o barniz de uñas (aplicar en el borde del cubre objetos -Método de doble laminilla ( cubrir la muestra con una laminilla pequeña la cual se aplico bálsamo)

C )FORMOL -aplicar en 3g de materia fecal 10 ml de formol diluido 5 a 10 %(utilidad; evita la descomposición , disminuye el olor y fija los parásitos )

D)REACTIVO DE MIF (merthiolate, iodo,formol,)-doble utilidad (fija parásitos y los colorea)-conservación en frasco o en porta objetos (se coloca 1g de heces frescas en un frasco y 10ml de MIF ,se mezcla con un aplicador .este puede preservarse por un año .

E) REACTIVO DE PVA( ALCOHOL POLIVINILICO) -nombres comerciales ELVANOL o GELVATOL -bueno para preservar trofozoítos y quistes (conservan su morfología por mucho tiempo)

EXAMEN MACROSCOPICO 1)CANTIDAD 80 a 200g

2) FORMA puroide (cilindrica )escíbalos(aglomeraciones esfericas)deposición caprina (pequeñas y numerosas)laminada o de cinta

3)CONSISTENCIA duras pastosasfluidasintermedias

4)VISCOSIDAD viscosas (pastosas)poco viscosasgrasas

5)OLOR inodoro (meconio)

aumentado (comidas ricas en carne y pescado)debil (dieta vegetariana y lactea)

ligeramente agria (niño en pecho)putrido (olor amoniaco, HECES ALCALINAS Y GASESagrio penetrante rancio (heces acidas y gases)

Nauseabundo (descomposición de tejido, cáncer ulcerado del recto)

6) RESTOS ALIMENTICIOS restos vegetalesproteicos grasas

7) REACCION acida (dispepsia de fermentacion, y esprue. Transito rapido cecal)alcalina (insuficiencia gástrica y pancreática y gástrica)

8 )COLOR marron (NORMAL)verde (ingesta de alimentos verduras y medicamentos)rojo ( hemorragias proximal al ano)negro (morcilla,sangre,medicamentos ;carbon ,hierro , bismuto)blanco (acolia o hipocolia,seudocolia)amarillo (diarreas de fermentacion hidrocarbonada )

EXAMEN MICROSCOPICO SHIGELOSIS

1:LEUCOCITOS POLIMORFONUCLEARES SALMONELOSISFIEBRE TIFOIDEA ESCHERICHIA COLI

MONONUACLERES FIEBRE TIFOIDEA

2.-ERITROCITOS HEMORRAGIA DE COLON HEMORROIDES

SINDROME DISENTERICO

3.-CRISTALES DE CHARCOT-LEYDEN 10 A 30 MICRAS

DESINTEGRACION DE EOSINOFILOS

ASOCIDO A PROCESOS ALERGICOS

4.-RESTOS DE ALIMENTOS ALMIDONES CELULAS Y FIBRAS VEGETALES

5.-RESTOS DE ORIGEN ANIMAL GRASASFIBRAS MUSCULARES

6.-FLORA BACTERIANA BACILOS CORTOS

7.-ELEMENTOS NO PARASITARIOS GRANULOS DE ALMIDONGOTAS DE ACEITE CELULAS ANIMALES CELULAS VEGETALES POLEN LEVADURAS

Métodos de concentración

Técnica de Ritchie o centrifugación con

formol - éter

Concentra quistes de protozoos, huevos y larvas de helmintos

Ventajas del uso de eter y formol

Técnica de Faust o de flotación con sulfato de zinc

Utiliza medio liquido mas pesado que los parásitos

Concentra quistes, huevos y larvas

Desventaja: poco eficaz para Taenia spp., F. hepatica y óvulos de A. lumricoides

Técnica de flotación por Sheather Técnica de Willis - Molloy

NaCl Para huevos de

uncinaria e Hymenolepsis

• Separa, concentra y recobra ooquistes de Isospora, Cryptosporidium y Cyclospora.

• Solución densa de azúcar

COPROPARACITOCOPICOEquipo 3

Métodos de concentración

Técnica de Ritchie o centrifugación con formol - éter

• Concentra quistes de protozoos, huevos y larvas de helmintos

• Ventajas del uso de eter y formol

Técnica de Faust o de flotación con sulfato de zinc

• Utiliza medio liquido mas pesado que los parásitos

• Concentra quistes, huevos y larvas

• Desventaja: poco eficaz para Taenia spp., F. hepatica y óvulos de A. lumricoides

Técnica de flotación por Sheather Técnica de Willis - Molloy

• NaCl• Para huevos de

uncinaria e Hymenolepsis

• Separa, concentra y recobra ooquistes de Isospora, Cryptosporidium y Cyclospora.

• Solución densa de azúcar

COPROPARASITOSCÓPICO

Garduño Pérez Isaí Salomón

CONSIDERACIONES IMPORTANTES•Técnica especifica para cada parásito. Importante proporcionar información acerca del paciente (origen geográfico, signos clínicos esenciales, resultados de otros exámenes y tratamientos recientes).

•Toma de muestra ideal en laboratorio (protozoarios).

•Realización sistemática de 3 exámenes de días no consecutivos.

EXAMEN PARASITOLÓGICOAnillos de taenias (solium y saginata)

Prurito anal y discreta

eosinofilia

Anquilostosis(Reacción alergíca con exantema,

neumonitis, síntomas gastrointestinales, anemia hipocroma microcítica)

método del papel de filtro en tubo o de harada-mori

Larvas de nemátodos y para embrionar huevos

de tremátodos y céstodos

1. Homogeneizar las heces fecales por tamizaje (colador de malla fina).

2. Efectuar siembra de heces sobre la tira de papel filtro 10 cm (2 cm libres).

3. Introducir la tira dentro del tubo, extremo libre sumergido en unos 5 ml de agua.

4. Tapar tubos, colocarlos verticalmente en gradilla e incubar a 20º C.

método de agar para strongyloidesStrongyloides, Necator americanus y

Ancylostoma duodenale

1. Preparar medio, 1.5% agar, 0.5% extracto de carne, 1.0´% peptona y 0.5% NaCl. Autoclave y pasar más de 9 ml del medio a cajas de Petri estériles

2. Dejar secar el medio a temperatura ambiente por 4-5 días.

3. Colocar 2 g de materia fecal en el centro, sellar cajas y dejarlas a temperatura ambiente por 2 días.

4. Observar a simple vista y microscopio estereoscópico con filtro verde.

Auxiliares de diagnóstico en el paciente gastroenterológico. COPROGRAMA

COPROGRAMA• Estudio de la materia fecal que incluye el estudio microscópico y un análisis bioquímico:

– pH. Normal 7.0

• Diarrea por bacterias invasivas: <6, acido.

• Diarrea de origen toxico: neutro

• Diarreas virales: acido

• Diarreas por intolerancia a la lactosa: <5, acido

– La medida del pH no es valida en pacientes que estén tomando antibióticos orales.

– Azucares reductores. Glucosa, lactosa.

• Detectados con el reactivo Benedict o Clinitest.

• Diarrea de origen bacteriano toxico: glucosa (+), lactosa (-)

• Diarreas virales: glucosa (-), lactosa (+)

• Diarreas inespecíficas: las dos pruebas negativas

– Sangre oculta

– Prueba para hemoglobina humana

METODO DE RECUENTO DE HUEVOS

• Métodos útiles para saber aproximadamente la intensidad de la infección

por ciertos helmintos.

– Ascariasis, tricocefalosis, uncinariasis, himenolepiasis y esquistosomiasis.

• Se basan en la cuantificación del numero de huevos por gramo de

materias fecales (h.p.g.)

• Permiten clasificar en leves, medianas e intensas a las helmintiasis

mencionadas.

• Recuento en placa microscópica• Técnica de Kato Katz• Técnica de Stoll- Hausheer

Strongyloides

TECNICA DE CARBON O ARENA

Noemí

PASOS

• Mezclar materia fecal con el cultivo– Se agrega agua.– Temperatura: Ambiente– Días: 5-7

• A los 3 días se pueden encontrar larvas filariformes de Strongyloides.

• 6 días: uncinarias

COLORACIÓN.

• Protozoos Intestinales:– Con estos se obtienen

detalles morfológicos mas exactos.

– Para la docencia– Para archivo– Remitir para

confirmación de Dx.

TECNICA CON HEMATOXILINA FERRICA DE HEIDENHAIN

Protozoos intestinales (amibas)

• Morfología nuclear• REACCIVOS:

– Fijador de Scchaudinn– Alcohol iodado– Mordiente– FeNH4(SO4)2-12H2O

TECNICA DE COLORACION TRICOMICA.

Coloración de los protozoos

Citoplasma: Azul verdosoCuerpos cromatoidales, los

eritrocitos y las bacterias: rojo o purpura

Fondo: verde. Huevos y larvas: rojo

• REACTIVOS:– Fijador:

• Schaudinn oPVA

– Colorantes tricomico:1. Cromotropi 2 R2. Verde claro 2R3. Verde brillante FCF4. Acido fosfotungstico5. Acido acético glacial6. Agua destilada7. Acido acético

COLORACION DE ZIEHL – NEELSEN MODIFICADA

Para• Ooquistes: rojo brillante.• Fondo: verde.• Son redondeados y

ovalados de 3 -5 micras de diámetro , en algunos se logra ver los corpúsculos internos teñidos mas oscuros que corresponden a los esporozoitos.

• cryptosporidium • Cyclospora • Isospora

• Weber• Material fecal y aspirado

duodenal

COLORACION TRICROMICA MODIFICADA PARA MICROSPORIDIOS

REACTIVOS :

• Colorante de comotropo1. Cromotropo 2R2. Fast green3. Acido fosfotungstico4. Acido acético5. Alcohol acido