Experiencias Química de La Vida

8/20/2019 Experiencias Química de La Vida

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I.N.T. “Profesor Eduardo A. Fracchia”Profesorado en Química


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Glúcidos

EXPERIENCIA N° 1

Tema: Propiedades físicas de la glucosa, sacarosa y fructosa.

Objetivo:Evidenciar las propiedades físicas de algunos glúcidos a través de larealización de la experiencia.

Fundamentación:Losmonosacáridos oazúcares simples son losglúcidos mássencillos, no se hidrolizan, es decir, no se descomponen en otros compuestos mássimples. Poseen de tres a sieteátomos de carbono1 y sufórmula empírica es(CH2O)n, donden ≥ 3. Se nombran haciendo referencia al número de carbonos (3-7), y terminan con el sufijo-osa. El principal monosacáridos es laglucosa, la

principal fuente de energía de lascélulas.

Materiales:• Glucosa, Sacarosa y Fructosa.

• 3 tubos de ensayo.• Agua destilada.

• Pinza de madera.• Gradilla.

Procedimiento:1.Mostrar la glucosa y observar su color y aspecto.2.Disolver en agua,3.Colocar 3 o 4 cm3 en un tubo de ensayo y calentar hasta obtenercaramelo.

4.Observar las etapas sucesivas: funde a 85° C, pierde agua de cristalizacióna 100°, anhidra a 110°C, y por fin se hace caramelo y toma un color pardo.

5.Realizar el mismo procedimiento con la fructosa y la sacarosa.

Conclusión:Durante la realización de la experiencia se puede observar que laglucosa, sacarosa y la fructosa presentan color blanco cristalino, no tienen olordesagradable sino más bien a caramelo y que son solubles en agua.

EXPERIENCIA N°2

Tema: Poder reductor de la glucosa, maltosa, lactosa, y sacarosa.

http://es.wikipedia.org/wiki/Gl%C3%BAcidohttp://es.wikipedia.org/wiki/%C3%81tomohttp://es.wikipedia.org/wiki/Monosac%C3%A1rido#cite_note-1http://es.wikipedia.org/wiki/F%C3%B3rmula_emp%C3%ADricahttp://es.wikipedia.org/wiki/Carbonohttp://es.wikipedia.org/wiki/Hidr%C3%B3genohttp://es.wikipedia.org/wiki/Ox%C3%ADgenohttp://es.wikipedia.org/wiki/Glucosahttp://es.wikipedia.org/wiki/C%C3%A9lulahttp://es.wikipedia.org/wiki/%C3%81tomohttp://es.wikipedia.org/wiki/Monosac%C3%A1rido#cite_note-1http://es.wikipedia.org/wiki/F%C3%B3rmula_emp%C3%ADricahttp://es.wikipedia.org/wiki/Carbonohttp://es.wikipedia.org/wiki/Hidr%C3%B3genohttp://es.wikipedia.org/wiki/Ox%C3%ADgenohttp://es.wikipedia.org/wiki/Glucosahttp://es.wikipedia.org/wiki/C%C3%A9lulahttp://es.wikipedia.org/wiki/Gl%C3%BAcido


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Objetivo: Comprobar el carácter reductor de la glucosa, maltosa, lactosa ysacarosa a través de la reacción con el licor de Fehling.

Fundamentación: La oxidación es una reacción química donde un compuesto cedeelectrones, en cambio la reducción es cuando una especie química acepta electrones.

Elpoder reductor se refiere a la capacidad de ciertas biomoléculas de actuarcomo donadoras deelectrones o receptoras deprotones enreaccionesmetabólicas deóxido-reducción.

El reactivo de Fehling, también conocido como Licor de Fehling, es una disolucióndescubierta por el químico alemán Hermann von Fehling y que se utiliza comoreactivo para la determinación de azúcares reductores.

El licor de Fehling consiste en dos soluciones acuosas:

• Sulfato de cobre cristalizado, 35 g; agua destilada, hasta 1.000 ml.

• Sal de Seignette(Tartrato mixto de Potasio y Sodio), 150 g; solución de

hidróxido de sodio al 40%, 3; agua, hasta 1.000 ml.(ambiente)

Ambas se guardan separadas hasta el momento de su uso para evitar la precipitacióndel hidróxido de cobre (II).

Se utiliza como reactivo para la determinación de azúcares reductores, y es útil para

demostrar la presencia de glucosa en la orina, y también para detectar derivados dela glucosa como la sacarosa o la fructosa.

Materiales:• Tubos de ensayo.• Gradillas.

• Pinzas.• Mechero.

• Pipetas.• Solución de Fehling A y B.

• Soluciones al 5% de glucosa, maltosa, sacarosa y almidón.

Procedimientos:

1.Poner en los tubos de ensayo 3ml de la solución de glucosa, maltosa,lactosa, sacarosa o almidón (según indique el profesor o responsable).

2.Añadir 1ml de solución de Fehling A (contiene CuSO4) y 1 ml de Fehling B(Na(OH) tartrato de Na y K).


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3.Calentar los tubos a la llama del mechero hasta que hiervan.4.La reacción será positiva si la muestra se vuelve de color rojo y seránegativo si queda de color azul o azul-verdozo.

5.Observar y anotar los resultados en los diferentes grupos de práctica conlas distintas muestras de glúcidos.

Conclusión:Durante esta reacción se comprueba que la forma aldehído puededetectarse fácilmente aunque exista en muy pequeña cantidad. Si un azúcarreduce el licor de Fehling a óxido de cobre (I) de color rojo, se dice que es unazúcar reductor.

Cuando se mezclan cantidades iguales de ambas soluciones, aparece un colorazul intenso por la formación de un complejo formado entre el ion cúprico y eltartrato. Agregando un aldehído y calentando suavemente, el color azul intenso

desaparece y aparece un precipitado rojo de óxido cuproso.

Las cetonas no dan esta reacción.

EXPERIENCIA N°3

Tema: Reacción de Moore.

Objetivo: Comprobar si la glucosa y la sacarosa experimentan la reacción deMoore.

Materiales:• 2 tubos de ensayo.• Gradilla.

• Pinzas de madera.• Mechero.

• Solución de glucosa.• Solución de sacarosa.

• Hidróxido de sodio Na (OH) al 10%.• 2 vasos de precipitado.

Procedimiento:1.Colocar en un vaso de precipitado 5ml de solución de glucosa y en otro5ml de solución de sacarosa.

2.Agregar en ambas soluciones 5ml de solución de Na (OH) al 10%.3.Calentar en un tubo de ensayo un poco de la solución de sacarosa y enotro una porción igual, pero de glucosa.


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EXPERIENCIA N°5

Tema: Fermentación.

Objetivo: Comprobar si la glucosa y la sacarosa experimentan fermentación.

Fundamentación: La fermentación es realizada por diferentes bacterias y microorganismos en medios anaeróbicos, es decir, en los que falta aire, por eso

se puede considerar que es un proceso de oxidación incompleta. Las bacterias o

microorganismos, se alimentan de algún tipo de componente natural y se

multiplican, cambiando la composición del producto inicial. En el caso de las

levaduras que se utilizan para hacer fermentar el pan, las mismas requieren de la

presencia de azúcar o glucosa ya que es esta la que se convierte en su alimento y

les permite crecer en tamaño. Lo mismo sucede con la fermentación alcohólicaque da bebidas como el vino o la cerveza.

Tanto en el caso de la fermentación que tiene lugar en los alimentos como la que

tiene lugar en las bebidas, ambas suponen la conversión de los azúcares en

etanol y esta es la razón por qué muchas veces los alimentos fermentados (tales

como el pan o el yogur) poseen cierto aroma particular que proviene de la

presencia de esos gases naturales. Dependiendo del tipo de producto al que se

haga referencia, el proceso de fermentado será distinto, requiriendo una mayor o

menor cantidad de fermento, más o menos tiempo de descanso, más o menos

cantidad de azúcares. El exceso del proceso de fermentado puede fácilmente

arruinar el producto ya que la presencia de gases en demasía hace que el mismo

pierda su cualidad de consumible por el ser humano.

Materiales:• Dos vasos de precipitado.

• Soporte universal.• Mechero.

• Solución de glucosa.• Solución de sacarosa.• Levadura de cerveza fresca (saccharomyces Cerevisiae).

Procedimiento:1.Colocar en un vaso de precipitado 50ml de solución de glucosa y en otro50 ml de solución de sacarosa.

2.Agregar en ambas soluciones 2 gramos de levadura de cerveza.


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3.Rotular y dejar reposar unas horas.4.Observar ambos vasos de precipitado.

EXPERIENCIA N°6

Tema: Hidrólisis de la sacarosa.

Objetivo: Comprobar la hidrólisis de la sacarosa a partir de la realización de laexperiencia.

Fundamentación:Elazúcar invertido es la disgregación por hidrólisis de lasacarosa en glucosa yfructosa. Su nombre hace referencia a que el poderrotatorio de la solución frente a la luz polarizada es invertido por el proceso dehidrólisis que separará la sacarosa en sus dos subunidades.

Materiales:• Tubo de ensayo.• H2SO4• Mechero.• Solución alcalina Na (OH).• Solución de Fehling A y B.• Papel de tornasol

Procedimiento:

1.Tomar 5ml de solución de sacarosa y añadir 10gotas de H2SO4diluido.2.Calentar a la llama de mechero durante 5 min.3.Dejar enfriar.4.Neutralizar añadiendo la solución alcalina hasta que el papel de tornasol vire a azul.5.Realizar la prueba de Fehling, la reacción de Moore, la prueba de Toollens,la reacción de fermentación. Como se indican en las experienciasanteriores.

EXPERIENCIA N° 7

Tema: Identificación del almidón mediante la prueba de lugol.

Objetivo:Evidenciar la presencia de almidón en algunos alimentos a través de larealización de la siguiente experiencia.


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Fundamentación:El almidón es la sustancia con la que las plantas almacenansu alimento en raíces (yuca), tubérculos (patata), frutas y semillas (cereales). Esuna importante reserva para las plantas.El almidón se diferencia de los demás glúcidos presentes en la naturaleza en quese presenta como un conjunto de gránulos o partículas. Estos gránulos son

relativamente densos e insolubles en agua fría, aunque pueden dar lugar asuspensiones cuando se dispersan en el agua. Suspensiones que pueden variaren sus propiedades en función de su origen.Desde el punto de vista químico el almidón es un polisacárido, el resultado deunir moléculas de glucosa formando largas cadenas, aunque pueden aparecerotros constituyentes en cantidades mínimas.El almidón es una sustancia que se obtiene exclusivamente de los vegetales que losintetizan a partir del dióxido de carbono que toman de la atmósfera y del aguaque toman del suelo. En el proceso se absorbe la energía del sol y se almacena enforma de glucosa y uniones entre estas moléculas para formar las largas cadenas

del almidón, que pueden llegar a tener hasta 2000 o 3000 unidades de glucosa

El almidón está realmente formado por una mezcla de dos sustancias, amilasa yamilo pectina, que sólo difieren en su estructura: la forma en la que se unen lasunidades de glucosa entre sí para formar las cadenas. Pero esto es determinantepara sus propiedades. Así, la amilasa es soluble en agua y más fácilmentehidrolizable que la amilo pectina (es más fácil romper su cadena para liberar lasmoléculas de glucosa) (ver experimento galletas saladas, dulces).En realidad, la estructura del almidón es muy parecida a la de la celulosa, otropolisacárido que producen las plantas. Pero mientras el almidón es parte delalimento de muchos animales y se descompone fácilmente por acción de las

enzimas digestivas, la celulosa es parte del tejido de sostén de las plantas y muydifícil de digerir, algo que la mayoría de los animales aprenden rápidamente.En los animales, el equivalente al almidón, como sustancia de reserva energética,es otra sustancia de estructura parecida que recibe el nombre de glucógeno.El almidón se puede identificar fácilmente gracias a que la amilasa en presenciade yodo forma un compuesto azul estable a bajas temperaturas.


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Materiales:• Arroz en granos• Papas• Granos de maíz.• Harina de maíz (maicena)• Harina de trigo• Tintura de yodo (betadine o lugol)• Tubos de ensayo

• Agua• Varilla

• Mortero

Procedimiento:

1.Introducimos en cada tubo de ensayo una pequeña cantidad de los

distintos alimentos (por separado), añadimos un poco de agua y losagitamos. Después vertemos una gota de betadine y volvemos a agitar.

2.Observamos lo que sucede.

Conclusión: El tubo que contenía un pedazo de papa se vuelve azulado.El tubo con arroz y agua se vuelve azulEl tubo con granos de maíz vira a azulEl tubo que contenía la harina de maíz, harina de trigo, con agua se vuelve azul.La aparición de color azul indica la presencia de almidónEl almidón reacciona con el lugol o betdine y da un color azulado.

Se probó la experiencia con otros alimentos, de los cuales los resultados fueronlos siguientes:

MUESTRA COLORACIÓN CON LUGOL

BATATA VIOLACEO OSCURO

MANDIOCA VERDE EN UN PRINCIPIO,

RAPIDAMENTE PASA A VIOLACEO


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PAPA VIOLACEO

MORTADELA VIOLACIEO

POMELO AMARILLO

PALETA VIOLACEO BIEN OSCURO

ZANAHORIA VIOLACEO MUY POCO OBSERVABLE

ARROZ VIOLACEOREMOLACHA NO TIENE

SALCHICHA VIOLACEO OSCURO

EXPERIENCIA N°8

Tema: Actividad óptica de los glúcidos.

Objetivo:Medir la actividad óptica de algunos glúcidos.

Fundamentación: La sacarosa, fructosa y glucosa son compuestosorgánicos ópticamente activos debido a la presencia de carbonos asimétricos ensu estructura molecular. Estos carbonos le confieren a la molécula lapropiedad física de desviar el plano de la luz polarizada.

Con ayuda de un polarímetro se podrá medir el ángulo que se desvía el plano deluz polarizada a lo largo del tiempo. Hay que tener en cuenta que la actividadóptica es una propiedad aditiva, por lo tanto, si en nuestra disolución tenemostres sustancias ópticamente activas, en cada medida lo que obtendremos será lasuma de las contribuciones de estas tres sustancias

Materiales:

• Sacarosa.

• Agua destilada.

• HCl al 4 M.

• Polarímetro.

• Erlenmeyer.


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Procedimiento:1.Inicialmente se preparan dos disoluciones:

i) Disolución A: 100 cm3 disolviendo 20 gr de sacarosa en agua.ii) Disolución B: 100 cm3 de HCl 4 M (en agua).2.Antes de comenzar la práctica en sí, hay que ajustar a cero el polarímetro.

Medida de 0: no podemos realizarla una vez hecha la mezcla de reacción porquetranscurre un tiempo desde que la mezcla se introduce en el polarímetro hastaque se realiza la medida.

Vamos a tener en cuenta que el HCl no es ópticamente activo, y que sin él, lareacción no se lleva a cabo. Se prepara una disolución en la que la sacarosa seencuentre en la misma concentración que en la mezcla de reacción, pero

sustituyendo el HCl por agua destilada: en un erlenmeyer limpio yseco, seprepara una disolución con 25 cm3 de la disolución A, y 25 cm3 de aguadestilada. Se mezclan bien, y se homogeneíza el tubo del polarímetro, el cualposteriormente se llena y se introduce en el aparato para realizar la medida.

Medida de t: se prepara la mezcla de reacción con 25 cm3 de la disolución A, yotros tantos de la disolución B (cuando ha caído la mitad de la 2ª disoluciónponemos el cronómetro en marcha).La primera medida se realiza lo antes posible, y a partir de ahí, se realizanmedidas con las siguientes pautas: cada 2' hasta el minuto 12, cada 3' hasta elminuto 30, cada 5' hasta el minuto 60, y cada 10' hasta que la lectura permanececonstante durante ½ hora.

Medida de "t”: corresponde al momento en que la reacción ha terminado, portanto, su medida es aquella en la que el ángulo de rotación es constante a lo largodel tiempo (últimas medidas de t).

LípidosEXPERIENCIA N° 9

Tema: Solubilidad de los lípidos.

Objetivo: Comprobar la solubilidad de los lípidos

Fundamentación: Denominamos lípidos a un conjunto de biomoléculas cuya

característica distintiva aunque no exclusiva ni general es la insolubilidad en

agua, siendo por el contrario soluble en disolventes orgánicos como el benceno oel éter.

La baja solubilidad en agua de los lípidos se debe a que su estructura química es

fundamentalmente hidrocarbonada, con gran cantidad de enlaces C-H y C-C. La

naturaleza de estos enlaces es covalente y su momento dipolar es mínimo. El


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agua, al ser una molécula muy polar, con gran facilidad para formar puentes de

hidrógeno, no es capaz de interactuar con estas moléculas.

Materiales:

• Tubos de ensayo• Aceite• Agua

• Cloroformo• Acetona

• Benceno

Procedimiento:

• En un tubo de ensayo colocar unas gotas de aceite y 3 ml de agua.

• Agitar fuertemente.• Observar y dejar reposar• Preparar 3 tubos de ensayo con unas gotas de aceite en cada uno.• Agregar en cada tubo, los siguientes disolventes: cloroformo, acetona,

benceno.• Comparar la estabilidad de las emulsiones en ambos casos.

Conclusión:

Se puede observar que al mezclar el aceite con agua, estos no se mezclan. Si se

lo deja reposar, puede verse cómo el aceite se separa del agua, formando fases.

Cuando se agrega el aceite en los disolventes orgánicos se observa que se

disuelven, al ser estos solventes de naturaleza apolar.

EXPERIENCIA N°11

Tema: Saponificación

Objetivo: Observar la reacción de saponificación a partir de la realización de la

experiencia.

Fundamentación: La saponificación es una reacción química entre un ácido

graso (o un lípido saponificable, portador de residuos de ácidos grasos) y una

base o álcali, en la que se obtiene como principal producto la sal de dicho ácido y

de dicha base. Estos compuestos tienen la particularidad de ser anfipáticos, es


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decir tienen una parte polar y otra apolar (o no polar), con lo cual pueden

interactuar con sustancias de propiedades dispares. Por ejemplo, los jabones son

sales de ácidos grasos y metales alcalinos que se obtienen mediante este proceso.

Materiales:

• Solución de Na (OH) al 40%.• Vaso de precipitado.

• Aceite.• Agua hirviendo.

• Solución de NaCl.• Varilla de vidrio.

• Recipientes para molde.

Procedimiento:

1.Colocar en un vaso de precipitados 10 ml de aceite y 20 ml de solución de

Na (OH) al 40%2.Introducir el vaso en otro recipiente que contenga agua hirviendo durante

varios minutos.3.Revolver lentamente varios minutos.4.Agregar 20 ml de solución concentrada de NaCl.5.Dejar enfriar.6.Extraer una porción de jabón con una varilla y colocar en otro recipiente

para utilizarlo a modo de molde.

7.Dejar reposar.

Conclusión: Cuando se prepara la mezcla y se deja enfriar se puede observar que

la capa superior contiene el jabón con un exceso de aceite y la parte inferior

contiene el alcohol llamado glicerol.

EXPERIENCIA N° 12

Tema: Extracción de lípidos.

Objetivo: Extraer un fosfolípido a partir de la realización de la siguiente

experiencia.

Fundamentación: Los lípidos, junto con las proteínas y carbohidratos,

constituyen los principales componentes estructurales de los alimentos.

Lafosfatidilcolina opolienilfosfatidilcolina (también llamadalecitina) es

un fosfolípido que, junto con las sales biliares, ayuda a la solubilización de


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los ácidos biliares en la bilis. Es el componente más abundante de la fracción

fosfatídica que puede extraerse tanto de yema de huevo, como de granos

de soja mediante extracción mecánica, o química. La fosfatidilcolina es uno de los

principales constituyentes de las bicapas lipídicas de las membranas celulares.

Además es un componente de mayor relevancia en la lecitina, y en algunoscontextos, los términos se usan como sinónimos. Sin embargo, el extracto de

lecitina está constituido por una mezcla de fosfatidilcolina y otros compuestos.

Materiales:

• Vaso de precipitado.• Varilla de vidrio• Éter etílico.• Acetona.• Yema de huevo.• Papel de filtro.• Embudo.

Procedimiento:

1.Colocar en un vaso de precipitados una yema de un huevo.2.Batirla e ir agregando al mismo tiempo, sin dejar de batir, 3 ml de éter

etílico.3.Sin dejar de batir, agregar 3 ml de acetona.4.Revolver durante unos minutos.

5.Dejar reposar6.Filtrar.

Conclusión: Cuando se deja reposar antes de filtrar se puede observar cómo se

separan las dos fases, por un lado la lecitina que es un fosfolípido llamado

también fosfatidilcolina, uno de los componentes más abundantes de la fracción

fosfatídica de la yema del huevo. Y por otro lado la mezcla de lo que queda de la

yema del huevo y los compuestos orgánicos agregados. Al filtrarlo, se puede ver

con mayor claridad el color que presenta la lecitina, es un marrón naranja.

Aminocidos

EXPERIENCIA N°13

Tema: Reconocimientos de aminoácidos en algunos alimentos.


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Objetivo: Reconocer los aminoácidos presentes en la leche, huevo y harina de

trigo a partir de las experiencias correspondientes.

Fundamentación:Los aminoácidos que constituyen a las proteínas, son

substancias que tienen como característica general el hecho de poseer un

carboxilo libre y un grupo amino, situado en el carbono alfa con respecto alcarboxilo. En todos los aminoácidos alfa que forman a las proteínas, el grupo

amino alfa es un grupo primario, es decir que no tiene sustituyentes. La única

excepción ocurre con la prolina, que es un aminoácido, ya que su grupo es

secundario. Los aminoácidos difieren entre sí únicamente por las características

del resto de su molécula o cadena lateral (R), de manera que su formula general

es:

Las propiedades de cada aminoácido dependen tanto de su grupo carboxílico

como de su grupo amino alfa, y de su cadena lateral (R). En un polímero lineal de

aminoácidos o polipéptido, de todos los grupos carboxilo alfa y amino de los

aminoácidos que intervienen, solo quedan libres un grupo amino alfa, el grupo

terminal y un grupo carboxilo alfa, el grupo carboxilo terminal. Así pues, en una

proteína las cadenas laterales de los aminoácidos que la constituyen, son las que

influyen de manera directa en las propiedades de cada zona a lo largo de la

cadena polipeptídica y, en consecuencia, determinan también en gran medida su

comportamiento. Una de las propiedades más importantes de las cadenaslaterales de los aminoácidos, es su capacidad de interacción con los solventes

acuosos o con los reactivos que permiten su identificación, es decir su grado de

polaridad o no polaridad.

Ensayo con ninhidrina.

Materiales:

• seis tubos de ensayo.

•

agua destilada.• solución de alanina al 0.5%.

• leche.

• albumina de huevo diluida al 10%.

• harina de trigo.

• Ninhidrina.


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Procedimiento:

1.En seis tubos de ensayo se coloca 1 ml de agua destilada, solución de

alanina al 0.5%, leche previamente evaporada al 60%, albumina de huevo

diluida al 10%, y solución de harina de trigo al 10%.

2. se adiciona a cada uno de los tubos 1 mL de Ninhidrina, para luego

calentar en baño de maría a ebullición por 10 minutos.

3.se realiza las respectivas observaciones.

Conclusión: Al realizar este ensayo se encontró que el reactivo ninhidrina

reaccionó con el grupo alfa-amino libre (al ser sometidos a calentamiento) de los

aminoácidos presentes en la leche (++), la solución de albúmina de huevo diluida

(++), la muestra problema (++), la solución de harina de trigo (+) y la alanina (+++)

mostrados en la tabla 1, produciendo complejos coloreados violeta- azuloso

(figura 2) en diferentes intensidades la cual es proporcional a la concentración de

este aminoácido, indicando de esta forma la presencia de aminoácidos en todas

las muestras y obviamente la ausencia en el blanco.

Para la intensidad del color producido en cada una de las muestras analizadas se

denominó de la siguiente manera:

(+) Violeta tenue.(++) Violeta intenso.

(+++) Violeta muy intenso.

Coloraciones obtenidas para la reacción de ninhidrina.

Prueba de Biuret

Materiales:


• agua destilada.

• solución de alanina al 0.5%.

• leche.


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• Hidróxido de sodio (NaOH) al 10%.

• sulfato cúprico (CuSO4).

Procedimiento:

1.En seis tubos de ensayo cada uno con 1 ml de agua destilada, solución de

alanina al 0.5 %, leche previamente evaporada al 60 %, albumina de huevo

diluida al 10 %, muestra problema y solución de harina de trigo al 10%.

2. se adiciona a cada uno de los tubos 1 ml de hidróxido de sodio (NaOH) al

10% y se mezcla.

3.se adiciona gota a gota de sulfato cúprico (CuSO4) al 0.5 % hasta laaparición de una coloración violeta o amarilla.

4. se toma nota de lo observado en cada tubo.

Conclusión: De acuerdo a la tabla 1 los resultados para esta prueba fueron

positivos para la muestra de alanina (+), leche evaporada (++), albúmina (+++),

muestra problema (++), harina de trigo diluida (+), de acuerdo a las coloraciones

obtenidas en una escala violeta.

Coloraciones obtenidas en la prueba de Biuret.

Esta prueba es general para polipéptidos y proteínas (características que cumplen

las muestras analizadas) esta reconoce las uniones peptidicas y lo hace mediante

la reacción que se da cuando se forma un complejo entre los iones Cu2+

(característico de uno de los componentes del reactivo CuSO4) y los pares no


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albúmina de huevo sin diluir se confirmo debido a la coagulación total en el tubo

(color blanco) debido principalmente a la aplicación de calor ya que por encima de

60º C estas son inestables haciendo disminuir su solubilidad y generando la

precipitación

Teniendo en cuenta que en esta prueba se utilizaron 3 agentes (calor, acido ysales) capaces de desnaturalizar proteínas no se comprende porque en la muestra

de solución de harina de trigo el resultado es negativo.

Prueba del sulfato de amonio

Materiales:


• agua destilada.


• leche.



• sulfato de amonio al 50%.

Procedimiento:

1.En diferentes tubos de ensayo se adicionó 1 mL agua destilada, solución dealanina al 0.5 %, leche previamente evaporada al 60 %, albumina de huevo

sin diluir, muestra problema y solución de harina de trigo al 10%.

2. se adiciona a cada uno de los tubos 1 mL de solución de sulfato de

amonio al 50%.

3. se mezcla y se dejo reposar por 10 minutos.

4. se observo presencia o ausencia de precipitado.

5.se centrifuga a 3000 r.p.m. durante 10 minutos los tubos que contenían

leche evaporada, albumina y solución de harina de trigo.

6.Se toman las observaciones pertinentes en cuanto a la presencia o

ausencia de precipitación.


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Conclusión:En los resultados de esta prueba podemos encontrar que se

reconoció proteínas en la leche, en la albúmina de huevo sin diluir y en la

solución de harina de trigo ya que estas formaron un precipitado de color gris al

entrar en contacto con el sulfato de amonio esto se debe a que al adicionar una

sal soluble a las muestras se disminuye la interacción proteína-agua y entoncespredominara la interacción proteína-proteína y producirá precipitación, después

de haber realizado centrifugación Para la muestra problema no se observaron

precipitados indicando de esta forma que las proteínas que se encontraron en

esta eran albúminas como se indica.

Resultados obtenidos en la prueba sulfato de amonio antes de centrifugación.

Resultados obtenidos en la prueba sulfato de amonio después de centrifugación.

Ensayo de Millon

Materiales:

• 5 tubos de ensayo.

• agua destilada.

• solución de tirosina

• reactivo de Millon.

• leche.




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Procedimiento:

1.en 5 tubos de ensayo, al primero se adicionó 2 ml de agua destilada, al

segundo solución de tirosina, al tercero leche evaporada, al cuartoalbumina de huevo sin diluir y al quinto solución de harina de trigo al

10%;

2. a cada uno de los tubos se les adiciona 1 ml de reactivo de Millon.

3.Los tubos se someten a un baño de agua en ebullición durante 10

minutos.

4.Después de este tiempo se tomaron observaciones en cuanto a los

cambios de color.

Conclusión: Como se observa en la tabla 1 el ensayo fue positivo para tirosina

(color rojo ++), leche evaporada (color rojo +), albúmina de huevo (rojo claro +) y

harina de trigo (amarillo-rojo +); indicando la presencia de tirosina en dichas

muestras, ya que la prueba es específica para este aminoácido, el cual contiene

un anillo de benceno al que se une un grupo hidroxilo. En esta prueba los

compuestos mercúricos en medio fuertemente ácido (ácido nítrico del reactivo) se

condensan con el grupo fenólico formando un compuesto de color rojo ladrillo o

rojizo.

Estructura tirosina.

Ensayo Xantoprotéico

Materiales:


• agua destilada.


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• leche.



• acido nítrico concentrado.

•

solución de tirosina

Procedimiento:

1.Se usaron de igual forma 5 tubos con las mismas muestras que el ensayo

anterior a diferencia que se uso albumina de huevo diluida.

2.se agrega 2 ml de acido nítrico concentrado.

3.Después se sometieron a un baño de agua en ebullición hasta observar un

cambio de coloración.

Conclusión: Se evidenció que inicialmente la coloración fue la esperada para

dicha prueba y de igual forma para la confirmación con el NaOH, este cambio se

debe a que se produce la nitración del anillo bencénico presente en los

aminoácidos aromáticos como lo son tirosina, fenilalanina y triptófano,

obteniéndose nitrocompuestos de color amarillo, que se vuelven anaranjado en

medio fuertemente alcalino (formación de ácido picrámico o trinitrofenol)

Coloraciones obtenidas en el ensayo Xantoproteico.

Al generarse estos cambios de coloración se confirma la presencia de alguno de

los aminoácidos aromáticos dentro de las proteínas de las muestras evaluadas.


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Fenilalanina triptófano

Aminocidos aromticos

Reacción de Sakaguchi

Materiales:


• agua destilada.


• leche.



NaOH 40%

Procedimiento:

1.En cinco tubos de ensayo cada uno con 5 mL de agua destilada, solución

de arginina al 0.5%, leche previamente evaporada al 60%, albúmina de

huevo diluida al 10% y solución de harina de trigo al 10%.

2. se enfrian en un baño de hielo por 10 minutos.

3.se adiciona 1 mL de NaOH 40% y nuevamente se pusieron 10 minutos a

enfriar en el baño de hielo.

4. Se adiciona 5 mL de α – naftol y 3 gotas de reactivo Sakaguchi.

5.Se observaron los cambios de color en cada tubo.

Conclusión:Puesto que la reacción positiva de esta prueba se generó debido a la

presencia de un grupo guanidinio el cual reaccionó con la solución de α – naftol


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en la presencia de bromo (componente del reactivo de sakaguchi) en medio

alcalino, la muestra de arginina obviamente arrojo un resultado positivo por

hacer parte de ella dicho grupo, sin embargo para el resto de muestras los

resultados en cuanto al cambio de la coloración no fueron muy claros,

particularmente en el caso de la leche se vio un tono casi violeta, quizás lacoloración fue enmascarando por el color característico de la leche. E igual forma

se asumió este resultado como positivo por ser la arginina un aminoácido de fácil

presencia en los lácteos.

Estructura Arginina.

Coloraciones obtenidas en la reacción de !a"aguchi.

Reacción de Ehlrich

Materiales:


• agua destilada.

• leche.



acido sulfanílico 0.5 %

triptófano

nitrito de sodio 0.5 %

NH4OH 10 %


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Procedimiento:

1.Se rotularon 5 tubos de ensayo de la siguiente manera, tubo 1 blanco

(agua destilada), tubo 2 (triptófano), tubo 3 (albumina de huevo diluida) y

tubo 4 harina de trigo diluida 10 %.

2. a cada uno de los tubos se adicionó 1 ml de acido sulfanílico 0.5 % y 1 mL

de nitrito de sodio 0.5 %

3.se mezcla y se deja en reposo durante 15 minutos.

4. Se adiciona 1 ml de las muestras correspondientes según el rotulo para

cada tubo

5. se mezcla y se termina adicionando 0.5 ml NH4OH 10 %.

6. se toma las observaciones correspondientes.

Conclusión: Las muestras sometidas a esta prueba a excepción del blanco

presentaron resultados positivos de acuerdo las coloración obtenida lo que indico

la presencia de tirosina e histidina, los cuales contienen una anillo aromático y

un anillo nitrogenado respectivamente como radical, estos al reaccionar con el

acido sulfanilico adicionado y el nitrito de sodio forman sales diazonio.

Coloraciones obtenidas en la reacción de Erhlich.

Las sales de diazonio aromáticas son muy estables, se pueden manejar en el

laboratorio y en la industria y dan reacciones que han permitido desarrollar

importantes aplicaciones. Estas son importantes intermedios en síntesis

orgánicas y encuentran amplio uso en la preparación de una clase de compuestosconocida con el nombre de colorantes azoicos.


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Estructura de histidina.

Reacción de Hopkins Cole

Materiales:


• agua destilada.

•

solución de alanina al 0.5%.• leche.



ácido sulfúrico concentrado (H2SO4)

Procedimiento:

1.En cinco tubos diferentes se adicionó en su orden 2 ml de agua destilada,

2 ml de triptófano 0.5 %, 2 ml albúmina de huevo diluida y 2 ml harina de

trigo diluida 10 %.

2.a cada uno de estos se les agrega 2 ml del reactivo de Hopkins Cole

3.se mezcla.

4. se añade 1 ml de ácido sulfúrico concentrado (H2SO4) cuidadosamente por

las paredes del tubo.

5.se observa la aparición de un anillo.

Conclusiones: Los resultados para esta prueba nos indican que el reactivo de

Hopkins Cole se encontró en malas condiciones ya que no reconoció el anillo

indólico del aminoácido triptófano presente en las muestras analizadas, pues se

muestra la ausencia del anillo coloreado. Sin embargo este resultado no indica


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que estas no contienen tal aminoácido esencial el cual podría manifestarse

positivo para la leche ya que esta contiene caseína.

Nota: esta prueba se realizo 2 veces para verificar este resultado.

Es!ruc!ura aminocido !rip!"fano

La reacción que debía de ocurrir para determinar la positividad en esta prueba

como la formación de un anillo de color violeta-rojizo en un medio ácido se puede

observar.

#eacci"n del !rip!"fano en presencia del reac!i$o %op&ins 'ole

#esul!ados o(!enidos en la reacci"n de %op&ins 'ole.


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Reacción con acetato de plomo alcalino

Materiales:


• agua destilada.


• leche.



• acetato de plomo al 10

Procedimiento:

1.En cinco tubos de ensayo cada uno con 1 ml de agua destilada, solución de

metionina al 0.5%, leche previamente evaporada al 60%, albúmina dehuevo sin diluir y solución de harina de trigo al 10%.

2.Se adiciona a cada uno de los tubos 2 ml NaOH 10 %.

3.Se calientan levemente.

4.Seguidamente se les adiciona de 0.5 ml de acetato de plomo al 10 %.

5.Se calienta en baño a ebullición por 5 minutos.

6.Se observa los cambios ocurridos en cada tubo.

Conclusión:En cuanto a los resultados obtenidos para esta prueba la metionina

siendo un aminoácido azufrado no presentó precipitación de sulfuro de plomo,quiere decir que este último no reaccionó con el acetato de plomo en medio

alcalino al cual se expuso, esto pudo ser ocasionado por las condiciones del

reactivo o quizás un error durante la realización de la práctica.

)e!ionina 'is!eína

Aminocidos a*ufrados.

Mientras que para el caso de la albúmina de huevo y la harina de trigo se

confirmó la presencia de metionina y/o cisteína en sus proteínas con la aparición


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del precipitado color gris. En este caso si se presento la reacción esperada del

sulfuro de plomo con el acetato.

'oloraciones o(!enidas en la reacci"n de ace!a!o de plomo alcalino.

En los resultados obtenidos durante el desarrollo de la marcha analítica

identificamos que la muestra problema contenía polipéptidos y proteínas estas

últimas a través de pruebas más especificas se manifestaron como albúminas, de

acuerdo a estos resultados y a las características físicas de la muestra

posiblemente podría tratarse de un agar ya que esta debía estar sometida a

calentamiento constante para evitar su solidificación.

Pro!eínas

EXPERIENCIA N° 14

Tema: Desnaturalización de las proteínas del huevo.

Objetivo:Observar el proceso de desnaturalización de las proteínas del huevo.

Fundamentación: Ladesnaturalización es un cambio estructural de

lasproteínas oácidos nucleicos, donde pierden suestructura nativa, y de esta

forma su óptimo funcionamiento y a veces también cambian sus propiedades

físico-químicas.

Las proteínas se desnaturalizan cuando pierden su estructura tridimensional

(conformación espacial) y así el característicoplegamiento de su estructura.

Materiales:

• La clara de un huevo

• Un vaso de precipitado.


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• Alcohol.

Procedimiento:

1.Echar la clara del huevo en el interior del vaso con el alcohol.

2. Tapa el vaso y espera al menos media hora

3. A medida que pasa el tiempo observa lo que sucede en el vaso

4. Tapa el vaso y vuelve a observarlo al día siguiente

Conclusión: Las cadenas de proteínas que hay en la clara de huevo se

encuentran enrolladas adoptando una forma esférica. Se denominanproteínas

globulares. Al freír o cocer un huevo, el calor hace que las cadenas de proteína se

desenrollen y se formen enlaces que unen unas cadenas con otras. Este cambio

de estructura da a la clara de huevo la consistencia y color que se observa en un

huevo cocinado. Este proceso que se conoce con el nombre dedesnaturalización

se puede producir de muy diversas manerascalentando: cocer o freír, batiendo

las claras (mayonesa), por medio de agentes químicos como alcohol, sal,

acetona, etc.


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En*imas

EXPERIENCIA N°16

Tema: Detergente Enzimático

Fundamentación: Lasenzimas son moléculas de naturalezaproteica yestructural que catalizanreacciones químicas, siempre que sean

termodinámicamente posibles. Una enzima hace que una reacción química

transcurra a una velocidad mayor, que sin la presencia de la misma. En estas

reacciones, las enzimas actúan sobre unasmoléculas denominadassustratos, las

cuales se convierten en moléculas diferentes denominadas productos. Casi todos

los procesos en lascélulas necesitan enzimas para que ocurran a unas tasas

significativas. A las reacciones mediadas por enzimas se las

denominareacciones enzimáticas.

Materiales:

• Detergente de ropa en polvo (en lo posible, dos marcas comercialesdiferentes. Fíjate en el contenido, si incluyen enzimas o no)

• Una cebolla cabezona• Dos frascos de vidrio transparentes (como de mermelada)• Una cucharita

Procedimiento:

1. En cada frasco disolver en agua cada uno de los jabones y revuelve con ayudade la cuchara, hasta que se disuelva el jabón.

2. Agregar a cada frasco trozos de la piel de la cebolla

3. Déjalo toda la noche en un lugar seguro

http://es.wikipedia.org/wiki/Prote%C3%ADnahttp://es.wikipedia.org/wiki/Reacci%C3%B3n_qu%C3%ADmicahttp://es.wikipedia.org/wiki/Velocidadhttp://es.wikipedia.org/wiki/Mol%C3%A9culahttp://es.wikipedia.org/wiki/Sustrato_(bioqu%C3%ADmica)http://es.wikipedia.org/wiki/C%C3%A9lulahttp://es.wikipedia.org/wiki/Reacci%C3%B3n_bioqu%C3%ADmicahttp://es.wikipedia.org/wiki/Prote%C3%ADnahttp://es.wikipedia.org/wiki/Reacci%C3%B3n_qu%C3%ADmicahttp://es.wikipedia.org/wiki/Velocidadhttp://es.wikipedia.org/wiki/Mol%C3%A9culahttp://es.wikipedia.org/wiki/Sustrato_(bioqu%C3%ADmica)http://es.wikipedia.org/wiki/C%C3%A9lulahttp://es.wikipedia.org/wiki/Reacci%C3%B3n_bioqu%C3%ADmica


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4. Retira con la cuchara todos los trozos de la piel de cebolla

5. Observa el color del agua en cada frasco y la consistencia de los trozos decebolla que has retirado de cada uno de ellos.

Conclusión: Si el jabón tiene celulosa, verás que el agua se ha tornado caféoscuro y los trozos de piel de cebolla están más suaves y oscuros. Si el jabón notiene celulasa ni peróxidos, el agua queda color amarillo claro y los trozos de pielde cebolla mantienen su color y consistencia original.

EXPERIENCIA N° 17

Tema: Actividad enzimática de los peroxisomas

Objetivo: Demostrar la actividad enzimática de los Peroxisomas en diferentescélulas.

Fundamentación: Los perixosomas se denominan así porque generalmente

contienen una o más enzimas que utilizan oxígeno molecular para eliminar

átomos de hidrógeno a partir de sustratos orgánicos específicos a través de una

reacción oxidativa que produce peróxido de hidrógeno.

Materiales:

De laboratorio Por el alumno12 tubos de ensayo Hígado de pollo

1 gradilla Corazón de pollo

1 estuche de disección Riñón de pollo

2 cajas de petri Rama de apio

5 vasos precipitados de 100ml Papa

1 vaso precipitado de 400ml

1 pipeta de 10 ml

1 Mechero

1 Mortero con pistilo


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HCl

Alcohol

Hidróxido de sodio

Peróxido de hidrógeno

Procedimiento:

1.Corta 6 cubos de aproximadamente 1 cm3 de apio, colócalo en hielo.2.Corta 6 cubos de aproximadamente 1 cm3 de papa, colócalo en hielo.3.Corta 6 cubos de aproximadamente 1 cm3 de carne (hígado, riñón ycorazón), colócalo en hielo.

4.Enumera los tubos del 1 al 6 y adiciona 2 ml de peróxido de hidrógeno

(PRECAUCIÓN)5.A cada tubo adiciona el tejido tal como se anota en la tabla6.En cada uno de los tubos se debe determinar la presencia o ausencia de02, inmediatamente después de adicionar el tejido tapa el tubo con el dedopulgar y coloca en la boca del mismo tubo, un palillo en punto de ignición(no acerques los tubos a tu cara o a la de tus compañeros)

7.Repite los pasos 4 a 6 para los otros tejidos.

Acción del peróxido de hidrógeno en el hígado de pollo.

EXPERIENCIA N° 19

Tema: Actividad enzimática de la amilasa

Objetivo:Comprobar la actividad enzimática de la amilasa.

Fundamentación:La α-amilasa es una enzima proteica que se encuentraen la saliva humana y cataliza la degradación del almidón, que es un


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polisacárido de reserva vegetal . El almidón está formado por dos tipos demoléculas: la amilasa y la amilopectina, ambos polisacáridos de glucosa.La amilasa se conforma por cadenas lineales de glucosas unidas porenlaces α- C1-C4, mientras que la amilopectina tiene, además de estosúltimos enlaces, uniones C1 con C6, formando cadenas ramificadas. La α-

amilasa rompe uniones C1-C4, tanto en la amilasa como en laamilopectina, dejando dextrinas lineales y ramificadas (oligosacáridos) comoproductos. Para medir la actividad enzimática de la α-amilasa, se utilizará untest colorimétrico que detecta el almidón.

Materiales:• Vaso de precipitado.

• Solución de yoduro de potasio (KI)• Saliva de un integrante del grupo.

• Papel tornasol.•

Procedimiento:

1.Para ello se contará con una solución de yoduro de potasio.2.Colocar una muestra de saliva de un integrante del grupo en un vasode precipitado.

3.Medir el pH que posee la saliva.4. Tomar 1 ml de saliva de la muestra del vaso de precipitados y diluircon 9 ml de agua destilada en un tubo de ensayo.

5.Mezclar.

6.Preparar una gradilla con 15 tubos, con la solución amarilla de KI.7.Se agregaron 6 gotas de solución de almidón en un tubo de ensayo.

8.Colocar en el tubo con almidón 1 ml de la disolución de saliva (quecontiene a amilasa).

9.Cronometrar el tiempo.

10. Observar lo que ocurre.


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+i!aminas

EXPERIENCIA N° 20

Tema: Determinación de la vitamina C

Objetivo: Determinar la presencia de vitamina C en el zumo de los cítricos a

partir de la realización de la siguiente experiencia.

Fundamentación: Las vitaminas son un grupo de sustancias que son esenciales

para el funcionamiento celular, el crecimiento y el desarrollo normales. Existen

13 vitaminas esenciales, lo cual significa nuestro cuerpo no puede sintetizarlas

por lo que se deben suministrar en las dietas. Son las siguientes: Vitamina A -

Vitamina C - Vitamina D - Vitamina E - Vitamina K - Vitamina B1 (tiamina) - Vitamina B2 (rivoflavina) - Vitamina B3 (niacina) - Ácido pantoténico – Biotina -

Vitamina B6 - Vitamina B12 - Folato (ácido fólico).

La vitamina C, en particular, también llamada ácido ascórbico, es un

antioxidante que favorece los dientes y encías sanos. Esta vitamina ayuda al

cuerpo a absorber el hierro y a mantener el tejido saludable e igualmente favorece

la cicatrización de heridas. Podemos encontrar esta vitamina en:

• Brócoli.

• Coles de Bruselas.

• Repollo.

• Coliflor.

• Cítricos.

• Patatas.

• Espinaca.

• Fresas.

• Tomates.


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Materiales:

• Almidón de maíz (maicena)

• Agua• Tintura de yodo

• Jugo de naranja.• Mechero de bunsen• Vaso de precipitados• Tubos de ensayo

Procedimiento:

1.Mezclar una cucharadita de almidón de maíz con agua en un vaso de

precipitados.2.Colocar a fuego lento hasta que hierva.

3.Colocar 10 gotas aproximadamente de esta y mezcla y una de tintura de yodo en medio vaso de agua.4.Añadir el jugo de naranja, gota a gota.5.Observar lo que suceda.

Conclusión: Parte del almidón de maíz se disuelve cuando se lo mezcla con agua.

Al agregarle el yodo, la mezcla se torna de color azulado. El yodo y el almidón

libre forman una sustancia de composición desconocida. El suave color azulado

desaparece al agregar una buena cantidad de jugo de naranja a la mezcla. El

yodo al reaccionar con la vitamina C la destruye, la oxida, al igual que el aire.

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Experiencias Química de La Vida