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II-BvZ Metodos en Biol Celular 2016
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Capitulo 5 + 6 Capitulo 8
www.whfreeman.com/lodish http://www.ncbi.nlm.nih.gov/bookshelf/br.fcgi?book=mboc4
Dra. van Zundert
Métodos en Biol. Celular: - Separación de células en cultivo;
- Fraccionamiento celular;
- Aislamiento y caracterización de macromoléculas celulares.
“In vivo” (“en el organismo viviente”): Experimentos que se llevan a cabo en organismos
completos.
Tipos Experimentos
Figure 8-4 Molecular Biology of the Cell (© Garland Science 2008)
“In vitro” (“en vidrio”): Experimentos que se realizan sobre cultivos celulares,
Células primarias
Líneas célulares
Hibridomas
Células madres
¿Como estudiar un tipo célula?
- Neuronas
- Glia
- Fibroblastos
excitatorio
inhibitorio
glutamato
dopamina
acetilcolina
Neurotransmisión:
Disección
1. Mecánico
1. Las células deben ser “extraídas”
Manual
Láser
microdisección de captura por láser
Disección
1. Mecánico
2. Enzimático
- Tripsina
- Colagenasa
Enzimas
proteolícas
Degradan de matriz extracelular
Figure 8-3 Molecular Biology of the Cell (© Garland Science 2008)
1. Las células deben ser “extraídas” y separados
Se pueden utilizar varios métodos para separar los diferentes tipos celulares de la
suspensión celular, según sus propiedades:
1. La diferencia de tamaño de las células permite separarlas por centrifugación.
2. La capacidad que tienen algunos tipos celulares de adherirse al vidrio o al
plástico, permite separarlos de otras células que se adhieren débilmente.
3. Algunos anticuerpos se unen específicamente a sustancias presentes en
determinadas células. Luego, se emplea diferentes matrices (como colágeno, bolitas
de polisacáridos, plástico) a la cuales sólo las células reconocidas por los anticuerpos
podrán adherirse.
4. Se emplean anticuerpos acoplados a colorantes fluorescentes para marcar
células específicas adheridas a ellos. Las células marcadas por interacción con el
anticuerpo pueden ser separadas de las no marcadas en un separador de células
activado por fluorescencia o cell sorter ( ver figura).
2. Separación de los distintos tipos de células
Figure 8-2 Molecular Biology of the Cell (© Garland Science 2008)
Equipo para la separación de células activado por fluorescencia. Las células individuales viajan a través de un conducto muy delgado y son iluminadas por un láser. El equipo puede detectar qué células emiten fluorescencia (por el anticuerpo adherido). Cada célula es incorporada en una gota que es “cargada” eléctricamente como negativa o positiva en función de la presencia o ausencia del colorante fluorescente. Luego, las gotas son separadas por un campo eléctrico hacia los recipientes colectores según su carga
Citofluorímetros de flujo: “Sorter” de Células
no-fluorescente
“In vivo” (“en el organismo viviente”): Experimentos que se llevan a cabo en organismos
completos.
“In vitro” (“en vidrio”): Experimentos que se realizan sobre cultivos celulares,
Tipos Experimentos
Células primarias
Líneas célulares
Hibridomas
Células madres
Las células HeLa constituyen una línea de células epiteliares humanas procedentes de un carcinoma
cervical, y las primeras células humanas de las cuales se estableció una línea celular permanente. En
1951 se practicó una operación quirúrgica a la paciente Henrietta Lacks (de ahí el nombre), una mujer
afroamericana de 31 años, en la cual se extrajeron células de un carcinoma en el útero con la intención
de evaluar su malignidad. La paciente falleció 8 meses después a causa de su tumor.
Las células extraídas estaban invadidas por el virus del papiloma humano 18 (HPV18),
transformándose en células tumorales.
Líneas célulares: HeLA
Hoescht
- Replicación indefinidamente: immortal
- Hasta hoy >60.000 publicaciones con HeLa
-10-20% otras líneas célulares estan contaminados con HeLA
“In vivo” (“en el organismo viviente”): Experimentos que se llevan a cabo en organismos
completos.
“In vitro” (“en vidrio”): Experimentos que se realizan sobre cultivos celulares,
Tipos Experimentos
Células primarias
Líneas célulares
Hibridomas
Células madres
Figure 8-8 Molecular Biology of the Cell (© Garland Science 2008)
Hibridomas
Preparación de hibridomas que
secretan anticuerpos monoclonales
contra un antígeno en particular. Aquí el
antígeno de interés es designado como
“antígeno X”. El medio de crecimiento
selectivo utilizado luego del paso de fusión
celular, contiene un inhibidor
(aminopterina) que bloquea las rutas
biosintéticas normales por las cuales se
sintetizan los nucleótidos. Como
consecuencia, las células deben utilizar
una vía alternativa para fabricar sus
ácidos nucleicos. Esta vía es defectiva en
la línea celular mutante derivada del tumor
de linfocitos B, pero está intacta en las
células obtenidas del ratón inmunizado.
Debido a que ninguna de las células
utilizadas para la fusión inicial puede
crecer por sí sola, solo las células híbridas
sobreviven.
“In vivo” (“en el organismo viviente”): Experimentos que se llevan a cabo en organismos
completos.
“In vitro” (“en vidrio”): Experimentos que se realizan sobre cultivos celulares,
Tipos Experimentos
Células primarios
Líneas célulares
Hibridomas
Células madres
Tipos de células madre
Existen cuatro tipos de células madre:
Las células madre totipotentes pueden crecer y formar un organismo completo, tanto los
componentes embrionarios (como por ejemplo, las tres capas embrionarias, el linaje germinal y
los tejidos que darán lugar al saco vitelino), como los extraembrionarios (como la placenta). Es
decir, pueden formar todo los tipos celulares. (cigota; esporas)
Las células madre pluripotentes no pueden formar un organismo completo, pero sí cualquier
otro tipo de célula correspondiente a los tres linajes embrionarios (endodermo, ectodermo y
mesodermo), así como el germinal y el saco vitelino. Pueden, por tanto, formar linajes
celulares.
Las células madre multipotentes son aquellas que sólo pueden generar células de su misma
capa o linaje embrionario de origen (por ejemplo: una célula madre mesenquimal de médula
ósea, al tener naturaleza mesodérmica, dará origen a células de esa capa como miocitos,
adipocitos u osteocitos, entre otras).
Las células madre unipotentes pueden formar únicamente un tipo de célula particular.
Tipos de células madre
Existen cuatro tipos de células madre:
Las células madre totipotentes pueden crecer y formar un organismo completo, tanto los
componentes embrionarios (como por ejemplo, las tres capas embrionarias, el linaje germinal y
los tejidos que darán lugar al saco vitelino), como los extraembrionarios (como la placenta). Es
decir, pueden formar todo los tipos celulares (cigota; esporas) .
Las células madre pluripotentes no pueden formar un organismo completo, pero sí cualquier
otro tipo de célula correspondiente a los tres linajes embrionarios (endodermo, ectodermo y
mesodermo), así como el germinal y el saco vitelino. Pueden, por tanto, formar linajes
celulares. (células embrionarias)
Las células madre multipotentes son aquellas que sólo pueden generar células de su misma
capa o linaje embrionario de origen (por ejemplo: una célula madre mesenquimal de médula
ósea, al tener naturaleza mesodérmica, dará origen a células de esa capa como miocitos,
adipocitos u osteocitos, entre otras).
Las células madre unipotentes pueden formar únicamente un tipo de célula particular.
Tipos de células madre
Existen cuatro tipos de células madre:
Las células madre totipotentes pueden crecer y formar un organismo completo, tanto los
componentes embrionarios (como por ejemplo, las tres capas embrionarias, el linaje germinal y
los tejidos que darán lugar al saco vitelino), como los extraembrionarios (como la placenta). Es
decir, pueden formar todo los tipos celulares (cigota; esporas) .
Las células madre pluripotentes no pueden formar un organismo completo, pero sí cualquier
otro tipo de célula correspondiente a los tres linajes embrionarios (endodermo, ectodermo y
mesodermo), así como el germinal y el saco vitelino. Pueden, por tanto, formar linajes
celulares. (células embrionarias)
Las células madre multipotentes son aquellas que sólo pueden generar células de su misma
capa o linaje embrionario de origen (por ejemplo: una célula madre mesenquimal de médula
ósea, al tener naturaleza mesodérmica, dará origen a células de esa capa como miocitos,
adipocitos u osteocitos, entre otras).
Las células madre unipotentes pueden formar únicamente un tipo de célula particular.
Fuentes de células madre
Básicamente, en biología se trabaja sobre dos tipos de células madre:
Célula madre embrionaria (pluripotentes): En la actualidad se utilizan como modelo para
estudiar el desarrollo embrionario y para entender cuáles son los mecanismos y las señales
que permiten a una célula pluripotente llegar a formar cualquier célula plenamente
diferenciada del organismo.
Célula madre adulta (multipotentes): En un individuo adulto se conocen hasta ahora
alrededor de 20 tipos distintos de células madre, que son las encargadas de regenerar tejidos
en continuo desgaste (como la piel o la sangre) o dañados (como el hígado). Su capacidad es
más limitada para generar células especializadas. Las células madre hematopoyéticas de
médula ósea (encargadas de la formación de la sangre) son las más conocidas y empleadas
en la clínica desde hace tiempo. En la misma médula, aunque también en sangre del cordón
umbilical, en sangre periférica y en la grasa corporal se ha encontrado otro tipo de célula
madre, denominada mesenquimal que puede diferenciarse en numerosos tipos de células de
los tres derivados embrionarios (musculares, vasculares, nerviosas, hematopoyéticas, óseas,
etc). Aunque aún no se ha podido determinar su relevancia fisiológica se están realizando
abundantes ensayos clínicos para sustituir tejidos dañados (corazón) por derivados de estas
células.
Transplante de paciente humano con tejido neuronal de embriones humanos
(se requiere 10-15 embriones humanos de 5-8 semanas de edad!!)
area tegmental ventral
Substancia
nigra
Corteza
frontal
Ganglio
basal
Tipos de células madre
Existen cuatro tipos de células madre:
Las células madre totipotentes pueden crecer y formar un organismo completo, tanto los
componentes embrionarios (como por ejemplo, las tres capas embrionarias, el linaje germinal y
los tejidos que darán lugar al saco vitelino), como los extraembrionarios (como la placenta). Es
decir, pueden formar todo los tipos celulares. (cigota; esporas)
Las células madre pluripotentes no pueden formar un organismo completo, pero sí cualquier
otro tipo de célula correspondiente a los tres linajes embrionarios (endodermo, ectodermo y
mesodermo), así como el germinal y el saco vitelino. Pueden, por tanto, formar linajes
celulares. (células embrionarias)
Las células madre multipotentes son aquellas que sólo pueden generar células de su misma
capa o linaje embrionario de origen (por ejemplo: una célula madre mesenquimal de médula
ósea, al tener naturaleza mesodérmica, dará origen a células de esa capa como miocitos,
adipocitos u osteocitos, entre otras).
Las células madre unipotentes pueden formar únicamente un tipo de célula particular.
Dr. Yamanaka: inducible pluripotent stem cells (oct4, sox2, c-myc and klf4)
Los medios de crecimiento pueden variar en pH, concentración de glucosa, factores de crecimiento y
la presencia de otros componentes nutritivos. Los factores de crecimiento usados para suplementar a
los medios derivan a menudo de sangre animal, como el suero bovino.
Composición de medios de cultivo para células eucariotas animales
5% CO2 -95% O2
95% Humedad
37°C
Incubadora con condiciones controladas:
Célula eucariote
Cultivar células
Ventajas de los cultivos celulares
- Permiten un control preciso y fino del medio ambiente. En un cultivo se pueden controlar todos
los factores dle medio: Físico-químicos (pH, temperatura, presión osmótica, niveles de O2, CO2,
tensión superficial...), y fisiológicos (hormonas, factores de crecimiento, densidad celular,...)
- Caracterización y homogeneidad de la muestra. Las células en cultivo de una línea celular, o de
una línea continua son homogéneas, con morfología y composición uniformes. Se pueden obtener
con facilidad un número elevado de réplicas idénticas, con lo que se supera el grave problema de
heterogeneidad de las muestras inherente asociado al uso de animales de experimentación.
- Economía. Suponen una economía en el uso de reactivos o drogas a estudiar pues al realizarse en
volúmenes reducidos, y con un acceso directo de las células a la droga las concentraciones
requeridas son mucho más bajas que en el animal completo.
- Motivaciones éticas. La investigación biomédica supone el sacrificio cada año de muchos miles
de animales de experimentación. El cultivo celular no puede reemplazar siempre el ensayo "in vivo"
pero es una alternativa válida en muchas situaciones.
Desventajas de los cultivos celulares
- No reproduce la situación en vivo (3-D) con múltiples interacciones entre distintos tipos de células
- Técnica sensible. El crecimiento de las células animales es mucho más lento que el de los
contaminantes más habituales (hongos, levaduras, bacterias, micoplasmas...) y además dado que
proceden de organismos pluricelulares son incapaces de crecer en ausencia de una compleja mezcla de
nutrientes que simula el plasma o el fluido intersticial. Esto supone la necesidad de mantener las
condiciones de asepsia en todo momento, lo cual es limitante a nivel tanto del instrumental requerido
como del personal cualificado para su manipulación.
- Cantidad y costo. El costo de producción de 1 gramo de tejido en cultivo es más de 10 veces superior
al obtenido en el animal. Asimismo existe una limitación de producción, que es del orden de 10 g de
células en un laboratorio normal, y que para ser superior a 100 g requiere instalaciones de tipo industrial.
- Inestabilidad. Muchas de las líneas celulares continuas son inestables, como consecuencia de la
dotación cromosómica aneuploide. La población celular puede variar su composición si alguna de las
subpoblaciones celulares es capaz de crecer con una tasa ligeramente superior, es decir podemos
encontrar diferencias significativas en la línea celular de una generación a la siguiente. La única manera
de evitarlo es emplear líneas estables que se resiembran a partir de un stock congelado cada determinado
tiempo, o después de un determinado número de generaciones.
Centrífuga
Las centrífugas son instrumentos que permiten someter a las muestras a intensas fuerzas que
producen la sedimentación en poco tiempo de las partículas que tienen una densida mayor que
la del medio que las rodea. En general se diferencian en función de los márgenes de
aceleración a que someten a las muestras en : centrífugas (de pocas g a aprox. 3000 xg),
super-centrífugas (o centrífugas de alta velocidad, rango de 2000 xg a 20000 xg) y
ultracentrífugas (de 15000 xg a 600000xg). En las centrífugas se suele controlar la
temperatura de la cámara para evitar sobrecalentamiento de las muestras debido a la fricción.
En las ultracentrífugas, la velocidad extrema (más de 100000 rpm), hace que sea neceario
hacer un intenso vacio en la cámara de la centrífuga para evitar el calentamiento de rotor y
muestra.
Figure 8-9 Molecular Biology of the Cell (© Garland Science 2008)
Figure 8-10 Molecular Biology of the Cell (© Garland Science 2008)
La centrifugación diferencial se basa en la existencia de diferentes partículas en la
suspensión que difieren en su densidad de la del medio. Si se centrifuga en condiciones
suaves (poco tiempo, poco fuerza de aceleración) sedimentarán las partículas mayores y/o más
densas. Cuando el sobrenadante de la primera centrifugación es centrifugado de nuevo en
condiciones de mas tiempo y más fuerza de aceleración sedimentan de nuevo las partículas
más densas presentes,.. y así sucesivamente. Se pueden aplicar condiciones crecientes de
severidad en la centrifugación y obtener una colección de sedimentos que corresponden
sucesivamente a fracciones de partículas de diferente tamaño y/o densidad
Alternativamente es posible aprovechar esa diferencia en la velocidad necesaria para
sedimentar las partículas para realizar una centrifugación en un medio en el que exista un
gradiente de densidad, siendo menor en la parte superior y mayor en la inferior. Después de un
tiempo las diferentes poblaciones de partículas se sitúan en diferentes profundidades del tubo.
Haciendo un pequeño orificio en el fondo del mismo se pueden recoger diferentes fracciones que
contengan a las distintas poblaciones separadas
Escala de las células y átomos
Figure 9-1 and 9-2 Molecular Biology of the Cell (© Garland Science 2008)
Cristalografía de rayos X
las proteínas se pueden separar de acuerdo a su carga, su hidrofobicidad, su tamañó o su
capacidad de unirse a grupos químicos particulares..
Figure 8-12 Molecular Biology of the Cell (© Garland Science 2008)
La cromatografía es una técnica que se emplea en el fraccionamiento de proteínas. Consiste en
la aplicación de una muestra compleja de proteínas a una columna de cristal en la que se ha
situado una matriz sólida porosa que está inmersa en el solvente. A continuación se bombea una
gran cantidad de solvente a través de la columna. Las diferentes proteínas se van retrasando de
manera distinta según sus interacciones con la matriz, por lo que pueden ser recogidas separadas
a medida que son eluidas por el fondo de la columna. Según la matriz escogida, las proteínas se
pueden separar de acuerdo a su carga, su hidrofobicidad, su tamañó o su capacidad de
unirse a grupos químicos particulares..
Cromatografía en columna
Figure 8-13 and 18b Molecular Biology of the Cell (© Garland Science 2008)
Electroforesis en Gel de Poliacrilamida
dete
rgente
anió
nic
o d
odecil-
sulfato
de N
a
Los enlaces S-S de las proteínas se reducen,
y las proteínas se desnaturalizan totalmente
Figure 8-14d and 18 Molecular Biology of the Cell (© Garland Science 2008)
Electroforesis en Gel de Poliacrilamida
fraccionamento
actina?
Una proteína específica puede ser identificada y visualizada en un 'Western blot' empleando
técnicas de inmunodetección. Estas técnicas emplean la capacidad de reconocimiento de los
anticuerpos a sus antígenos. En 'Western blot' se emplea comunmente el sistema de
inmunodetección indirecta que se representa en la figura. En este método se emplea un
anticuerpo primario para localizar la proteína de interés. Un segundo anticuerpo, marcado
con un enzima, y contra la especie en la que se ha producido el primero, se emplea para
localizar donde se formaron los complejos antígeno-anticuerpo. Este anticuerpo secundario
se puede marcar de formas muy diversas con el fin de producir una señal detectable (por
ejemplo una señal sobre una película radiográfica o una mancha de color en el filtro).