TEMA 19

Infecciones del tractorespiratorio superior

Tema 19. Infecciones del tracto respiratorio superior

1. Anatomía del tracto respiratorio2. Mecanismos inespecíficos de defensa del tracto respiratorio3. Microbiota normal del tracto respiratorio superior4. Agentes etiológicos de infecciones nasofaríngeas y orofaríngeas5. Recolección y transporte de muestras

5.1. Hisopado faríngeo5.2. Hisopado nasofaríngeo

6. Examen directo de las muestras6.1. Métodos que no incluyen cultivo para la detección de Streptococcus

pyogenes7. Cultivo de las muestras

1. Anatomía del tracto respiratorio

2. Mecanismos inespecíficos de defensa del tracto respiratorio

Mecanismos que impiden que microorganismos u objetos extraños entren enlos bronquios y lleguen a pulmones

• Pelos

• Pasaje contorneado

• Mucus (tapiza los cornetes nasales)

• IgA secretora

• Compuestos antibacterianos presentes en secreciones (lisozima)

• Cilios y mucosa que recubren la tráquea

• Reflejos (tos, estornudo, deglución)

Macrófagos alveolares (fagocitan partículas que escapan)

Microbiota normal orofaríngea y nasofaríngea (previene colonización patógenos)

3. Microbiota normal del tracto respiratorio superior

Algunos de los siguientes microorganismos pueden, en circunstancias especiales,provocar infecciones del tracto respiratorio

Nariz

Staphylococcus aureus Streptococcus pneumoniae

S. epidermidis Haemophilus influenzae

Corynebacterium

Amígdalas y adenoides

Staphylococcus aureus Streptococcus

Lactobacillus Propionibacterium

Corynebacterium Branhamella

Haemophilus Eikenella

Peptostreptococcus Fusobacterium

Bacteroides

3. Microbiota normal del tracto respiratorio

Faringe

Staphylococcus aureus Streptococcus mitis

Staphylococcus epidermidis Streptococcus pneumoniae

Streptococcus salivarius Haemophilus influenzae

H. parainfluenzae Neisseria

Mycoplasma Candida albicans

Corynebacterium Branhamella

Bacteroides Eikenella

Peptostreptococcus Fusobacterium

Veilonella

4. Agentes etiológicos de infecciones nasofaríngeas y orofaríngeas

Los microorganismos que causan infecciones del TRS deben:

• entrar en contacto con el epitelio de la mucosa

- la mayoría transportados por aerosoles

- generalmente, por condiciones de hacinamiento o falta de higiene

- algunos pertenecen a microbiota normal

• adherirse

• multiplicarse

Posible aislar gran número de especies de bacterias y hongos a partir de muestrasde tracto respiratorio superior

Muy pocos microorganismos pueden provocan verdadera patología

4. Agentes etiológicos de infecciones nasofaríngeas y orofaríngeas

Streptococcus pyogenes

• bacteria más aislada

• estreptococo β-hemolítico del grupo A

• responsable de la faringitis estreptocócica

• con frecuencia causa infecciones supurativas (piogénicas) de senos y oídomedio

Otros estreptococos (poco frecuente) pueden producir también faringitisestreptocócica

El laboratorio debe investigar sólo S. pyogenes

Otros patógenos causantes de infecciones del TRS

Faringitis

Faringoamigdalitis

5. Recolección y transporte de muestras

5.1. Hisopado faríngeo

Hisopos de algodón, Dacrón o alginatocálcico (adecuados para recuperar lamayoría de microorganismos)

Obtener la muestra con ayuda de un depresor

Se rota el hisopo sobre la superficie elegida

Si el hisopo permanece húmedo

• no necesario medio de transporte si se cultiva en 4 horas (para detectarS. pyogenes puede permanecer seco 48 a 72 horas)

• después de 4 horas utilizar medio de transporte (Stuart, Amies, Cary-Blair)

Muestra para detectar Bordetella pertussis

• toser sobre placa de medio de cultivo

• mejor muestra: aspirado de secreciones nasofaríngeas con catéter contetina de goma o plástico

• idealmente sembrar al lado de la cama del paciente

• si no es posible sembrar, transportar en medio adecuado (máximo 2 horas)

• para PCR utilizar hisopo de Dacrón (colocarlo en tubo con 0,5 mL desolución fisiológica)

5.1. Hisopado faríngeo

Se utiliza hisopo flexible

Más recomendable que hisopado faríngeopara recuperar especies de Neisseria,virus respiratorio sincitial y virusparainfluenza entre otros

5.2. Hisopado nasofaríngeo

6. Examen directo de las muestras

Tinción de Gram no válida para el diagnóstico excepto para detección de:

• levaduras

• formas características fusiformes de Angina de Vincent

Identificación de Bordetella pertussis más recomendable por PCR que porinmunofluorescencia directa (poco específica)

Identificación de hongos (incluidas levaduras): KOH al 10%, calcoflúor

Disponibles diversos métodos mediante inmunofluorescencia y ELISA paradetección de muchos virus implicados en infecciones del TRS

6.1. Métodos que no incluyen cultivo para la detección de Streptococcus pyogenes

Más de 40 productos disponibles (Stretex, Directogen, Detect-A-Strep) paradetectar antígenos de los estreptococos del grupo A en apenas 10 minutos

Utilizan

• aglutinación de partículas de látex

• enzimoinmunoensayo

• sondas genéticas

Los hisopos de Dacrón parecen ser los más eficientes

Se recomienda cultivar las muestras negativas de las pruebas directas paraestreptococos del grupo A (no existe fiabilidad del 100%)

7. Cultivo de las muestras

Agar sangre (la mayoría de los estreptococos del grupo Ason β-hemolíticos, < 1% no lo son)

• adicionando disco con 0,04 unidades de bacitracinasobre agar sangre se puede hacer identificaciónpresuntiva de S. pyogenes (todos los estreptococosdel grupo A son sensibles)

Agar selectivo para estreptococos (identificación deS. pyogenes)

Agar inclinado de Loeffler y agar sangre con telurito(identificación de Corynebacterium diphtheriae)

Agar inclinado de Loeffler Agar sangre con telurito

Estreptococo β-hemolítico

Agar sangre con discode bacitracina

7. Cultivo de las muestras

Agar Regan-Lowe o agar sangre de caballo-carbónpara identificación de Bordetella pertussis

Agar Thayer-Martin, agar Martin-Lewis o agar NYCpara identificación de Neisseria

Agar chocolate para identificación de Haemophilus

Agar NYC

Agar Martin-Lewis

Agar Thayer-Martin

Agar chocolate

Agar sangre de caballo-carbón

Agar Regan-Lowe