Aspidiotus excisus (Green 1896) (Hemiptera: Diaspididae) · 2019. 6. 28. · El Servicio Nacional de Sanidad, Inocuidad y Calidad Agroalimentaria (SENASICA) a través de la Dirección

DIRECCIÓN GENERAL DE SANIDAD VEGETAL CENTRO NACIONAL DE REFERENCIA FITOSANITARIA

FICHA TÉCNICA

Aspidiotus excisus (Green 1896) (Hemiptera: Diaspididae)

Escama del aglaonema

Créditos: Miller y Davidson, 2005.


CONTENIDO

IDENTIDAD DE LA PLAGA ................................................................................................................................................................... 1

Nombre científico ..................................................................................................................................................................................... 1

Sinonimia ........................................................................................................................................................................................................ 1

Clasificación taxonómica ...................................................................................................................................................................... 1

Nombre común .......................................................................................................................................................................................... 1

ESTATUS FITOSANITARIO EN MÉXICO ............................................................................................................................................. 1

IMPORTANCIA ECONÓMICA DE LA PLAGA .................................................................................................................................. 1

DISTRIBUCIÓN MUNDIAL ......................................................................................................................................................................... 1

HOSPEDANTES ............................................................................................................................................................................................... 2

Superficie de hospedantes ................................................................................................................................................................ 2

ASPECTOS ECOLÓGICOS Y MORFOLÓGICOS ........................................................................................................................... 2

Biología y hábitos ..................................................................................................................................................................................... 2

Ciclo biológico ............................................................................................................................................................................................ 3

Descripción morfológica ..................................................................................................................................................................... 3

DAÑOS ..................................................................................................................................................................................................................6

MONITOREO Y MUESTREO ..................................................................................................................................................................... 7

MEDIDAS DE MANEJO Y CONTROL ................................................................................................................................................ 8

Control cultural ......................................................................................................................................................................................... 8

Control químico ........................................................................................................................................................................................ 8

Control biológico ......................................................................................................................................................................................9

LITERATURA CITADA ...................................................................................................................................................................................9

1


IDENTIDAD DE LA PLAGA

Nombre científico

Aspidiotus excisus Green

Sinonimia

Evaspidiotus excisus (Green)

Temnaspidiotus excisus (Green)

Clasificación taxonómica

Phyllum: Arthropoda

Clase: Insecta

Orden: Hemiptera

Familia: Diaspididae

Género: Aspidiotus

Especie: Aspidiotus excisus

(EPPO, 2019).

Nombre común

Idioma Nombre común

Español Escama del aglaonema

Inglés Aglaonema scale

ESTATUS FITOSANITARIO EN MÉXICO

No existen reportes que indiquen la presencia

de esta escama en México, por lo que de

acuerdo a la NIMF 8, Determinación de la

situación de una plaga en un área (IPPC,

2006), este insecto se encuentra Ausente: no

hay registros de la plaga.

El Servicio Nacional de Sanidad, Inocuidad y

Calidad Agroalimentaria (SENASICA) a través

de la Dirección General de Sanidad Vegetal

instrumenta programas y campañas

fitosanitarias para prevenir la introducción o

dispersión de plagas que puedan afectar a los

vegetales, sus productos y subproductos; así

como, para mejorar o conservar los estatus

fitosanitarios en la producción agrícola.

Además, tiene el objetivo de determinar la

presencia o ausencia de plagas en un área

específica. Por lo anterior, mediante la

colaboración con productores de plátano, se

han establecido programas de monitoreo

para la detección de Aspidiotus excisus, con la

finalidad de responder rápidamente ante una

detección positiva mediante la aplicación de

medidas fitosanitarias para su control.

IMPORTANCIA ECONÓMICA DE LA PLAGA

Esta escama se considera una de las plagas

de mayor importancia en Aglaonema y Hoya

carnosa en los Estados Unidos de América; en

Fiji representa grandes daños en el cultivo de

banano; en India, China y Pakistán es de

importancia económica en el cultivo de

cítricos (Miller y Davidson, 2005).

DISTRIBUCIÓN MUNDIAL

Esta escama se encuentra presente en:

Antigua, Colombia, Costa Rica, República

Dominicana, Ecuador, El Salvador, Granada,

Guatemala, Guyana, Honduras, Jamaica,

Martinica, Panamá, Puerto Rico, Saint Croix,

Surinam, Trinidad, Venezuela, Estados Unidos

(Florida); Asia: China, India, Indonesia, Japón,

Pakistán, Filipinas, Singapur, Sri Lanka,

Taiwán, Tailandia; otros: Fiyi, Nueva Guinea,

2


Palaos, Saipán, Tinián, Yap (Miller y Davidson,

2005).

HOSPEDANTES

Presenta un gran número de hospedantes,

principalmente en los géneros: Adenium,

Aechmea, Aglaonema, Alocasia, Carica,

Caryota, Chlorophytum, Citrus, Cocos, Coffea,

Cyanotis, Cycas, Euphorbia, Gardenia,

Ipomoea, Jacobinia, Lonicera, Mangifera,

Melicoccus, Murraya, Musa, Pentas,

Pritchardia, Psidium y Thespesia (Miller y

Davidson, 2005).

Superficie de hospedantes

Aspidiotus excisus presenta un rango amplio

de hospedantes, varios de ellos de gran

importancia económica por su valor de

producción en México y el riesgo de ser

afectado por esta plaga es alto. En el Cuadro 1,

se presentan algunos de los cultivos de mayor

importancia (SIAP, 2019).

Cuadro 1. Producción de algunos cultivos hospedantes de Aspidiotus excisus (SIAP, 2019).

Cultivo Superficie sembrada

(ha) Rendimiento

(ton/ha) Valor de producción (miles

de pesos) Plátano 80,283.16 28.87 6,965,812.51

Papaya 18,771.99 57.72 4,948,235.92

Naranja 335,425.69 14.43 8,621,734.70

Café (cereza) 722,444.32 1.31 4,905,641.63

Mango 201,464.38 10.38 7,434,213.28

Coco (fruta) 15,221.23 13.52 453,818.72

Cítricos 589,682.57 13.9 23,924,536.49

ASPECTOS ECOLÓGICOS Y MORFOLÓGICOS

Biología y hábitos

Las escamas de la familia Diaspididae son

insectos que tienen formas circulares,

alargadas y aplanadas, que se presentan

adheridas sobre las hojas, tallos y frutos,

según la especie. En algunos casos las

escamas de los machos se diferencian de las

hembras por la presencia de una formación

cerosa blanca. Los caminantes son móviles

hasta que se fijan en el lugar donde

transcurre el resto de su vida sin volver a

desplazarse. Los machos adultos son

minúsculos y alados (Arias-Toala, 2006).

En el caso de A. excisus, se encuentra

comúnmente sobre las hojas de sus

hospedantes, en donde puede desarrollar

grandes poblaciones. Pude causar la

aparición de pliegues similares a agallas en

las hojas de Clerodendron inerme (Miller y

Davidson, 2005).

3


Ciclo biológico

Los huevos de los aspidiotinos tienden a

eclosionar inmediatamente o muy poco

después de que han sido puestos. Los

machos se desarrollan a través de un tipo de

metamorfosis holometábolo con estados

prepupales y pupales no alimentarios para

emerger después de 4 mudas como

pequeños insectos alados o, en algunas

especies, como machos adultos ápteros. La

principal etapa de dispersión es la de

caminante, cuando los machos y las hembras

generalmente no se distinguen.

Figura 1. Ejemplo con caminantes de

Poliaspis media, inicio de su asentamiento y

desarrollo de su primera armadura. Créditos:

Henderson, 2011.

Los caminantes pueden permanecer cerca de

su sitio natal, caminar una distancia corta por

un corto tiempo, o ser trasladados a otro sitio

si prevalecen las condiciones de viento

(donde el azar determina si llegan a una

planta hospedante adecuada). Un caminante

adhiere insertando su estilete en la planta e

inmediatamente comienza movimientos

circulares alrededor del punto de inserción

mientras hace girar la cubierta de su primera

armadura (Figura 1) [Henderson, 2011].

Las ninfas de primer estadio son sésiles, con

esto las hembras permanecen en esta

posición por el resto de sus vidas y los machos

hasta la emergencia como adultos. A medida

que continúa la alimentación, se agrega

material céreo a la cubierta de la escama. En

la primera muda desde el primer estadio

hasta el segundo, las ninfas pierden sus patas

y las antenas se convierten en tubérculos no

segmentados con una o más setas. Los

estiletes no se retiran del tejido de la planta y

se forman nuevos y más grandes, que pueden

seguir la misma dirección dentro de la planta

que los estiletes de la primera etapa o

cambiar de dirección. El dimorfismo sexual es

evidente en las ninfas del segundo estadio, el

macho presenta una armadura generalmente

más pequeña y de forma más alargada que la

de la hembra. La armadura de los aspidiotinos

generalmente es de forma redonda, con una

exuvia central, subcentral o lateral

(Henderson, 2011) [Figura 2].

Descripción morfológica

Armadura (Miller y Davidson, 2005)

Macho. Alargada a oval, de textura y color

similar a la de la hembra.

Hembra. Translúcida, blanca, ligeramente

convexa, circular o irregular. Exuvias de color

4


amarillo, centrales a subcentrales. El cuerpo

de la hembra adulta es visible a través de la

armadura, de color amarillo; huevos del

mismo color (Figura 3). Presentes

principalmente en hojas y tallos.

Figura 2. Ciclo de vida de los aspidiotinos y

desarrollo de la armadura. Hembra: A) Huevo;

B) Caminante; C) Establecimiento del

caminante; D) Segundo estadio de la hembra

y armadura parcialmente formada; E) Tercer

estadio (adulto) y armadura parcialmente

formada. Macho: A) Huevo; F) Caminante; G)

Establecimiento del caminante; H) Segundo

estadio; I) Tercer estadio (prepupa) y

armadura; J) Cuarto estadio (pupa) y

armadura; K) quinto estadio (adulto).

Créditos: Henderson, 2011.

Figura 3. Armadura de Aspidiotus excisus

Green, presenta sus huevos distribuidos solo

a lo largo de la mitad posterior del cuerpo de

la hembra madura, formando visiblemente

una media luna en forma de U o C debido a

la mitad de exposición de los huevos debajo

del cuerpo de la hembra (Josue, 2018).

Cuerpo de la hembra adulta. Presenta tres

pares de lóbulos bien desarrollados, paráfisis

ausentes. Lóbulos medios separados por un

espacio de 0.3-0.5 veces el ancho del lóbulo

medio, con una notable área esclerotizada

anterior al lóbulo, usualmente con márgenes

medios y laterales paralelos o divergentes

apicalmente, con una muesca lateral y una

media; segundos lóbulos simples,

frecuentemente más largos y amplios que los

lóbulos medios, algunas veces del mismo

tamaño o raramente más cortos, con 1 a 2

muescas laterales y de 1 a 2 muescas medias;

terceros lóbulos simples, usualmente más

pequeños que los segundos lóbulos, algunas

ocasiones del mismo tamaño, con 0 a 1

muescas laterales y con 0 a 1 muescas

medias. Macroductos ligeramente más

pequeños en la parte anterior, un macroducto

5


entre los lóbulos medios, extendiéndose de

0.4-0.7 veces la distancia entre al ápice

posterior de la abertura anal y la base de los

lóbulos medios, de 26-33 µ de largo; el

macroducto más largo presente en el primer

Figura 4. Aspidiotus excisus Green,

Aglaonema scale, Republica Dominicana,

interceptada en San Juan, Puerto Rico, en

Aglaonema sp., (Miller y Davidson, 2005).

espacio, de 27-36 µ de largo, con 13-20 en

cada lado del pigidio en los segmentos 5 a 8,

ductos en el área submarginal y marginal, el

total del número de macroductos en cada

lado del cuerpo es de 22-38; macroductos

prepigidiales de dos tamaños, presente en el

segmento 4, pero de menor tamaño en los

segmentos 2 y 3. Microductos pigidiales

usualmente en el área ventral en áreas

submarginales del segmento 5, rara vez en el

segmento 6 y 7, con 0-4 ductos el de mayor

tamaño es similar en forma y tamaño; ductos

prepigidiales de un tamaño, ductos

submarginales en cada lado de los

segmentos 1 ó 2 al 4, también en la cabeza y

tórax, ductos submedios cercanos al aparato

bucal y el espiráculo anterior, usualmente

presente cerca del espiráculo posterior,

frecuentemente presente en la cabeza al

metatórax, algunas veces en los segmentos 1

a 3, microductos pigidiales ausentes desde el

dorso, presentan dos tamaños en las áreas

prepigidiales, el más pequeño se encuentra

en las áreas submarginales desde la cabeza

hacia los segmentos 2 o 3, el más grande en

las áreas submarginales de la cabeza al

metatórax, usualmente en áreas submedias

desde la cabeza al segmento 2, rara vez en el

segmento 3. Poros perivulvares usualmente

en 4 grupos, raramente en 5, de 12 a 24 poros

en cada lado del cuerpo. Poros

periespiraculares ausentes. Abertura anal

localizada a una distancia de 2.6-4.3 veces la

longitud que existe entre la apertura anal a la

base de los lóbulos medios. Ojos

representados por un área circular

esclerotizada en el margen del cuerpo al nivel

del margen anterior de las partes bucales.

Antenas, cada una con una seta. Cuerpo de

forma oval a piriforme, ápice apical truncado.

Lóbulos medios usualmente ubicados en el

pigidio (Miller y Davidson, 2005) [Figuras 4 a

7].

6


Figura 5. Hembra adulta de Aspidiotus

excisus Green. A) margen pigidial; B) Pigidio

(Takagi et al., 1969)

Figura 6. Detalles del cuerpo adulto de la

hembra de Aspidiotus excisus (Dao et al.,

2018).

DAÑOS

Las infestaciones severas de escamas de la

familia Diaspididae provocan defoliación y

secamiento de las ramas y hojas pudiendo

causar la muerte de la planta. En banano

estos insectos se encuentran con mayor

frecuencia en las hojas basales,

especialmente en aquellas que están

próximas a la cosecha. Las plantas afectadas

presentan una clorosis marcada además de la

presencia de colonias de escamas. Se ha

observado que estas escamas prefieren

alimentarse en frutos que, de hojas,

concentrando su ataque en estas últimas

cuando no hay frutos. Este daño puede

causar una defoliación severa, lo que trae

como consecuencia la muerte. Las escamas

causan manchas de color amarillo en los sitios

de alimentación, en frutos esto genera una

apariencia poco atractiva y una reducción en

la calidad (Arias-Toala, 2006).

Figura 7. Detalles del pigidio de la hembra

adulta de Aspidiotus excisus, mostrando los

lóbulos medios (Dao et al., 2018).

A B

7


MONITOREO Y MUESTREO

Las infestaciones por escamas pueden ser

monitoreadas por medio de una exploración

visual de la planta. Para la detección de A.

excisus en plantaciones de plátano se utilizará

la siguiente metodología:

1. Dentro del área a muestrear se

realizará un recorrido en forma de

guarda griega, iniciando por la orilla

del predio (primera hilera de plantas),

en la hilera seleccionada se realizarán

puntos de muestreo a cada 30 m,

hasta llegar al final de cada hilera. El

recorrido se continuará en la cuarta

hilera y así sucesivamente hasta

completar 10 puntos (Figura 8). Los

puntos deben ser diferentes en cada

fecha de monitoreo.

Figura 8. Esquema en guardia griega en una

superficie de 1 ha, para la detección de

Aspidiotus excisus.

2. En cada punto de muestreo elegir al

azar una planta y revisar dando

preferencia a hojas cloróticas y frutos

debido a que ahí es donde la escama

se encuentra con mayor facilidad. En

total se revisarán 10 plantas por

hectárea. En caso de observar plantas

en proceso de defoliación o

amarillentas en más del 10% de las

hojas, se deberán revisar, para

corroborar que no hay presencia de

esta plaga y que los daños son por

otras causas.

3. En caso de encontrar escamas

sospechosas a A. excisus se

recolectarán junto con la parte vegetal

donde fue encontrada (hojas o frutos),

la cual se depositará en un frasco con

alcohol al 70 % para su envió al

laboratorio de diagnóstico.

4. Cada frasco deberá ser etiquetado con

datos de colecta: fecha de muestreo,

coordenadas geográficas, nombre

del(los) propietario(s), estado,

municipio, nombre del colector,

cultivo, variedad, etapa de desarrollo,

entre otras.

Los monitoreos deberán realizarse cada 15

días con la finalidad de detectar

oportunamente al insecto.

8


Otra forma de monitorear la emergencia de

los primeros estadios (caminantes), es

utilizando alguna cinta adhesiva (por ejemplo,

cinta canela o negra aislante), ésta se colocará

alrededor de tallos y hojas, dejando un poco

de holgura, se pegarán los especímenes al

emerger. Se puede adherir un par de capas

de la cinta adhesiva, una pegada a la parte

vegetal y otra al revés con el pegamento

hacia afuera. Al terminar, la punta de la cinta

se puede doblar para formar un agarrador

que permite despegar la cinta y ver los

insectos atrapados.

Por otra parte, el golpear el follaje con la

mano hacia una superficie de color hará que

los insectos del primer instar caigan y sea fácil

detectarlos (Smith et al., 2016). Colectarlos en

alcohol 70%.

MEDIDAS DE MANEJO Y CONTROL

Control cultural

La capacitación para la correcta poda de las

plantas y la eliminación adecuada de las

hojas, ramas y brotes infestados ayudarán a

controlar los insectos en las plantas de vivero

y campo. El uso excesivo de fertilizantes

contribuye a un aumento en la población de

las escamas (Din y Arthur, 2018).

Control químico

Varios insecticidas son utilizados para el

control de escamas armadas en cultivos

ornamentales y frutales. Los caminantes son

generalmente los más susceptibles a los

insecticidas; sin embargo, los insecticidas de

contacto, incluidos los aceites hortícolas, se

vuelven progresivamente menos efectivos

una vez que las escamas desarrollan su

cubierta cerosa. Los reguladores del

crecimiento de insectos pueden ser efectivos,

siempre que se apliquen cuando las etapas

inmaduras estén presentes.

La ubicación del insecto en la planta, la etapa

de crecimiento de esta última y la solubilidad

del insecticida influyen en la efectividad de

los productos sistémicos aplicados para el

control de escamas armadas. Pueden ser

necesarias varias aplicaciones mediante

aspersión, en intervalos de 15 a 20 días para el

manejo de una alta infestación. Se debe

considerar la toxicidad de los insecticidas

hacia los parasitoides y otros insectos

benéficos antes de iniciar un programa de

control contra las escamas (Follet, 2006).

En México, para el control de la escama es

necesario utilizar insecticidas en el cultivo del

banano, autorizados por la COFEPRIS. La

etapa óptima de aplicación es cuando se

presenta el desarrollo de caminantes, éstos

son las ninfas móviles del primer instar que

dejan la protección de la madre la cual ha

muerto. Por otra parte, las hormigas que se

alimentan de las secreciones azucaradas que

producen las escamas, deben ser controladas

con el objetivo de permitir que los enemigos

naturales del insecto plaga, ayuden en su

control, así como evitar que estas hormigas se

conviertan en dispersores (Mani, 2001).

9


Por otra parte, la aplicación de detergente al

pseudotallo y la corona ha resultado ser

efectiva, esto a razón de 25 g/L, utilizando una

bomba aspersora, este producto lava la cera

que recubre al insecto y lo expone a

condiciones desfavorables (Guillén et al.,

2019).

Control biológico

No se han reportado enemigos naturales para

A. excisus; sin embargo, para A. destructor

(escama del coco), una especie cercana,

presenta más de 40 especies de parasitoides

y depredadores, y varios patógenos fúngicos.

Aphytis melinus DeBach y Aphytis

lingnanensis Compere (Hymenoptera:

Aphelinidae) son las especies de parasitoides

más comunes que controlan las poblaciones

de A. destructor en Fiji y Filipinas (DeBach,

1974, Watson et al. 2015). Aphytis melinus y/u

otro parasitoide, Comperiella bifasciata

Howard (Hymenoptera: Encyrtidae), se

introdujeron en Hawaii, California, Argentina y

otras regiones para el control de la escama

del coco. En Pakistán, Pakencyyrtus

pakistanensis Ahmad (Hymenoptera:

Encyrtidae) fue reportado como un

importante parasitoide en el mango (Ahamad

y Ghani, 1972). Entre los depredadores se

encuentran: Chilocorus spp., Telsimia nitida

Chapin, Pseudoscymnus anomalus Chapin y

Cryptognatha spp. Estudios posteriores

pueden determinar su efecto en el control de

A. excisus.

LITERATURA CITADA

Ahmad R, Ghani MA. 1972. Studies on

Aspidiotus destructor Sign. (Hemiptera:

Diaspididae) and its parasites, Aphytus

melinus Debach (Hymenoptera: Aphelinidae)

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Forma recomendada de citar:

DGSV-CNRF. 2019. Escama del aglaonema.

(Aspidiotus excisus Green 1896) (Hemiptera:

11


Diaspididae). SADER-SENASICA. Dirección

General de Sanidad Vegetal-Centro Nacional

de Referencia Fitosanitaria. Ficha Técnica.

Tecámac, México. 11 p.

Nota: Las imágenes contenidas son utilizadas

únicamente con fines ilustrativos e

informativos, las cuales han sido tomadas de

diferentes fuentes otorgando los créditos

correspondientes.

12


DIRECTORIO

Secretario de Agricultura y Desarrollo Rural

Dr. Víctor Manuel Villalobos Arámbula

Director en Jefe del Servicio Nacional de Sanidad, Inocuidad y

Calidad Agroalimentaria

Dr. Francisco Javier Trujillo Arriaga

Director General de Sanidad Vegetal

Ing. Francisco Ramírez y Ramírez

Director del Centro Nacional de Referencia Fitosanitaria.

Dr. José Abel López Buenfil

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