FIKOSIANIN_Melita Mulyani_12.70.0080_A1_Unika Soegijapranata

5/19/2018 FIKOSIANIN_Melita Mulyani_12.70.0080_A1_Unika Soegijapranata

1

1. HASIL PENGAMATAN

Hasil pengamatan fikosianin dapat dilihat pada Tabel 1.

Tabel 1. Fikosianin

KelBerat

biomassa

kering (g)

Jumlah aquadesyangditambahkan (ml)

Total filtrat yangdiperoleh (ml)

OD615 OD652KF

(mg/ml)Yield

(mg/g)

Keterangan WarnaSebelum

Dioven

Sesudah

DiovenA1 8 100 50 0,0894 0,0366 0,013 0,081 +++ ++++A2 8 100 50 0,0890 0,0367 0,013 0,081 +++ ++++A3 8 100 50 0,0894 0,0366 0,013 0,081 +++ ++++A4 8 100 50 0,0886 0,0366 0,013 0,081 +++ ++++A5 8 100 50 0,0891 0,0376 0,013 0,081 +++ ++++A6 8 100 50 0,0890 0,0374 0,013 0,081 +++ ++++

Keterangan :Warna+ = biru sangat tua++ = biru tua+++ = biru muda++++ = biru sangat muda

Berdasarkan Tabel 2 diatas, pengamatan fikosianin dilakukan dengan menggunakan biomassa Spirulina kering sebanyak 8 gram pada

masing-masing kelompok. Jumlah aquadesyang ditambahkan pada semua kelompok (A1-A6) adalah sebanyak 100 ml dengan total filtrat

yang diperoleh sebesar 50 ml. Hasil yang didapat antar kelompok terlihat bahwa tidak ada perbedaan pada nilai KF dan jumlah yield, yaitu

secara berurutan adalah sebesar 0,013 mg/ml dan 0,081 mg/g. Warna yang didapatkan sebelum di oven dan setelah dioven pada semua

kelompok juga tidak menunjukkan adanya perbedaan, yaitu dari warna biru muda saat sebelum dioven menjadi biru sangat muda setelah

dioven.


2

2. PEMBAHASAN

Menurut Chandra (2011), saat ini salah satu cara yang dilakukan produsen makanan

dalam mengembangkan produk adalah melalui warna. Dengan memberikan pewarna

pada produknya, maka selera konsumen akan tergugah melalui penampakan produk

(termasuk warna) yang akan mempengaruhi penerimaan konsumen. Mohammad (2007)

menjelaskan bahwa secara umum pigmen digolongkan menjadi 2 jenis, yaitu pigmen

buatan / sintetis dan pigmen alami / biopigmen. Spolaroe, et al.(2006) mengungkapkan

bahwa salah satu spesies yang berpotensi menghasilkan warna biru adalah Spirulina,

dimana pigmen yang dihasilkan ini berpotensi digunakan sebagai pewarna alami dalam

produk makanan.

Metting & Pyne (1986) menyatakan bahwa mikroalga merupakan organisme yang

berasal dari ekosistem perairan dan dapat menghasilkan energi dan metabolit yang

sangat bermanfaat, sehingga keberadaannya sebagai organisme hidup yang berukuran

mikroskopis sudah mulai banyak diteliti. Sebelumnya, pemanfaatan mikroalga di

lingkungan adalah sebagai sumber makanan bagi biota perairan seperti ikan. Namun

pemanfaatan mikroalga pada saat ini sudah sangat berkembang, selain sebagai pakanalami dan makanan sehat, mikroalga juga memiliki potensi yang dapat menghasilkan

komponen bioaktif untuk bahan farmasi, kedokteran, industri pangan dan sebagainya.

Salah satu jenis mikroalga yang potensial untuk dikembangkan adalah Spirulina sp.

yang telah diproduksi untuk pangan sehat sebagai sumber protein, vitamin, dan mineral.

Richmond (1988) mengatakan bahwa Spirulina termasuk kelompok alga hijau-biru

(blue-green algae). Spirulina merupakan organisme multiseluler, dimana strukturtubuhnya berupa filamen berwarna hijau-biru yang berbentuk silinder dan tidak

bercabang. Tietze (2004) menambahkan pula bahwa Spirulina sp. mampu tumbuh di

perairan danau yang bersifat alkali dan suhu hangat atau kolam dangkal di wilayah

tropis. Spirulina mempunyai membran sel yang tipis dan lembut sehingga mudah

dicerna dan tidak membutuhkan proses pengolahan secara khusus untuk pemanfaatan

Spirulina (Richmond, 1988). Tri-Panji, et al. (1996) menambahkan bahwa Spirulina

merupakan mikroalga penghasil fikosianin yang relatif cepat bereproduksi, mudah


3

dalam sistem pemanenannya, hidup dalam lingkungan yang sangat basa (pH 8-11)

dengan kandungan senyawa karbonat-bikarbonat yang tinggi, dan dalam hidupnya

Spirulina memerlukan cahaya dan CO2 untuk berfotosintesis. Desmorieux & Decaen

(2006), mengungkapkan bahwa Spirulinamengandung 60% protein dengan asam-asam

amino esensial, 10 jenis vitamin, dan berkhasiat sebagai obat (therapeutic). Selain itu,

pigmen fikosianin yang berasal dari Spirulina merupakan antioksidan dan

antiinflamatori. Polisakarida dari Spirulinajuga memiliki efek antitumor dan antiviral,

serta dapat berfungsi sebagai penurun kolesterol.

Menurut Ungsethaphand, et al. (2010) dalam jurnalnya yang berjudul Effect of

Feeding Spirulina platensison Growth and Carcass Composition of Hybrid Red Tilapia

(Oreochromis mossambicus O. niloticus), Spirulina platensis dapat dimanfaatkan

sebagai pengganti pakan ikan yang tinggi akan protein, namun berbasis diet (rendah

lemak). Hasil penelitian ini menunjukkan bahwa hingga 20% bagian dari Spirulina

dapat digantikan sebagai pakan ikan berbasis diet untuk nila merah hibrida tanpa

memberikan efek samping pada pertumbuhan ikan dan komposisi proksimatnya.

Penggunaan Spirulina ini dapat mengurangi jumlah pakan ikan, dimana sebelum

digunakannya Spirulina, satu-satunya sumber protein utama bagi budaya spesies ikanhanya pakan ikan itu.

Menurut Ngakou, et al. (2012) dalam jurnalnya yang berjudul Changes in The

Physico-Chemical Properties of Spirulina platensis from Three Production Sites in

Chad, saat ini Spirulina banyak dikembangkan dan merupakan salah satu mikroalga

yang dapat dijadikan sebagai bahan makanan untuk masa depan karena seperti

mikroalga lainnya yang dapat dimakan, dalam jumlah yang cukup, Spirulina dapatberperan sebagai sel tunggal protein. Dalam komposisinya, Spirulinamengandung 70%

(b/b) protein dan juga mengandung nutrisi penting lainnya yang dibutuhkan untuk

pertumbuhan anak, seperti ion, magnesium, seng, dan vitamin A. Meskipun

mengandung banyak zat gizi, namun penggunaan Spirulina saat ini mendapatkan

beberapa kendala, salah satunya adalah dalam hal sanitasi yang sering dikaitkan dengan

produksi karena adanya sedikit zat pengotor dalam produk Spirulinadapat menghambat

kualitas produk di pasar Internasional.


4

Menurut Richmond (1988), Spirulinamemiliki tiga kelas pigmen, yaitu klorofil a (1,7%

dari berat sel); karotenoid dan xantofil (0,5% dari berat sel); dan fikobiliprotein yang

terdiri dari fikosianin dan allofikosianin. Fikosianin merupakan komponen penyimpan

nitrogen padaSpirulina, sedangkan allofikosianin mengandung 20% protein seluler. Hal

ini diperkuat oleh teori dari Adams (2005) yang menjelaskan bahwa fikosianin termasuk

golongan biliprotein. Fikosianin sebagai biliprotein diketahui mampu menghambat

pembentukan koloni kanker. Biliprotein atau biasa dikenal dengan fikobiliprotein adalah

kelompok pigmen yang ditemukan pada Rhodophyta (alga merah), Cyanophyta (alga

hijau-biru) dan Cryptophyta(alga crytomonad).

Walter, et al. (2011) mengatakan bahwa mikroalga termasuk mikroorganisme

fotoautrotof obligat yang membutuhkan sinar matahari sebagai sumber energi dan

karbondioksida sebagai sumber karbon untuk memproduksi karbohidrat dan ATP.

Kultur media dalam air laut yang optimal juga mengandung nutrisi, seperti C, N, O, H,

P, trace metal (Ca, S, Mg, dan K), serta agen pengkelat seperti Fe, Mn, Cu, Mo, dan Co.

Fase pertumbuhan Spirulina dipengaruhi oleh kondisi kultur yang berdampak pada

perubahan komposisi dan dapat meningkatkan atau menurunkan proporsiphycobiliprotein termasuk fikosianin. Sedangkan Boussiba & Richmond (1980)

berpendapat bahwa ukuran keberadaan fikosianin yang terkandung dalam biomassa sel

sangat tergantung dari banyak sedikitnya suplai nitrogen yang dikonsumsi oleh

Spirulina. Komponen fenolik pada mikroalga ini dapat ditingkatkan jumlahnya dengan

mengubah kondisi kultur sehingga dapat meningkatkan antioksidan dan biomassa dari

Spirulina platensis (Walter, et al., 2011).Hal ini didukung pula dengan teori dari Colla,

et al. (2007) yang mengatakan bahwa Spirulina platensisatau sering disebutArthospiraplatensis, selain menghasilkan protein dan pigmen, mikroalga ini juga memiliki

aktivitas antioksidan yang mampu memerangkap radikal bebas karena memiliki

komponen fenolik dan jumlah nya dapat ditingkatkan dengan mengubah kondisi.

Richmond (1988) menambahkan bahwa Spirulina merupakan alga mesofilik karena

dapat tumbuh optimal pada temperatur antara 35-40C. Hirata, et al. (1996) dan El-

Baky (2003) mengungkapkan bahwa pigmen fikosianin dapat larut pada pelarut polar,

seperti air. Duangsee, et al. (2009) menjelaskan bahwaphycocyaninakan stabil pada pH


5

5, namun pada pH 3, phycocyanin justru sangat sensitif terhadap panas dan mudah

terdegradasi. Pemanfaatan pigmen fikosianin sebagai bahan pewarna alami pada bahan

makanan ini telah lama dilakukan. Struktur fikosianin mengandung rantai tetraphyrroles

terbuka yang mungkin mempunyai kemampuan menangkap radikal oksigen (Romay, et

al.,1998).

Gambar 1. Struktur Fikosianin ( Carra & Heocha, 1976)

Dalam jurnal yang ditulis oleh Antelo, et al. (2010) dengan judul Extraction and

Purification of C-phycocyanin from Spirulina platensis in Conventional and Integrated

Aqueous Two-Phase Systems dijelaskan bahwa cyanobacteria Spirulina plantesis

merupakan jenis organisme yang menjadi fokus bagi para peneliti bioteknologi untuk

dikembangkan karena nilai ekonominya, ekologi, dan nilai nutrisi yang terkandung.Mikroalga ini memiliki potensi yang baik untuk menjadi bahan baku makanan yang

dihubungkan dengan nilai nutrisi yang ada, serta dapat digunakan sebagai pewarna,

vitamin, asam linolenat, dan enzim. Di antara semua protein yang terkandung di dalam

Sprirulina plantesis, terdapat protein yang disebut sebagai phycobiliprotein yang

merupakan keluarga dari hydrophilic dan berperan sebagai pewarna yang sangat baik.

Jenis protein ini dapat digolongkan menjadi 3 kelompok besar tergantung dari turunan

warna dan karakteristik penyerapannya, yaitu phycocyanin (C-PC), phycoerythrin (C-PE), dan allophycocyanin (C-APC). C-PC merupakan komponen terbesar dari

phycobiliprotein yang tidak hanya digunakan sebagai komposisi yang bernutrisi dan

sebagai pewarna alami dalam produk gum, susu, es krim, jeli, namun juga berperan

sebagai bahan baku kosmetik di Jepang, Thailand, dan Cina, serta digunakan sebagai

agen oksidasi dari penyakit therapeutic. Penelitian yang dibahas dalam jurnal berkaitan

dengan ekstraksi C-Phycocyanin dengan menggunakan cara yang konvensional. C-

Phycocyanin mula-mula diekstrak dengan menggunakan sistem konvensional dari


6

biomassa Spirulina platensis. Setelah itu dilakukan sentrifugasi dan disaring

menggunakan vakum, lalu supernatan diambil untuk dimurnikan. Pemurnian primer

inilah yang akan menghasilkan C-phycocyaninkasar.

Analisis pigmenphycobilinjenisphycocyaninjuga dilakukan oleh Muthulakshmi, et al.

(2012) dalam jurnalnya yang berjudul Extraction, Partial Purification, and

Antibacterial Activity of Phycocyanin from Spirulina Isolated from Fresh Water Body

Against Various Human Pathogens. Analisa menggunakan jenis crude-phycocyanin

(C-PC) dilakukan karena jenis pigmen ini telah dianggap sebagai salah satu yang paling

disukai dan diduga dapat menghambat senyawa patogen penyebab kanker pada manusia

maupun hewan. Penelitian dalam jurnal ini bertujuan untuk mengevaluasi aktivitas

antibakteri C-PC yang diisolasi dari ganggang biru-hijau Spirulina maxima melalui

metode sonikasi dan diikuti dengan sentrifugasi, serta penyaringan. Lalu, bentuk C-PC

dimurnikan dengan presipitasi ammonium sulfat, membran filtrasi, dan metode dialisis.

Hasil penelitian menunjukkan bahwa ekstrak Spirulina maximaberpotensi besar sebagai

antibakteri terhadap lima jenis bakteri dengan zona penghambatan kisaran 7-13 mm.

Kelima jenis bakteri tersebut adalah Streptococcus sp., Staphylococcus sp., E. coli,

Bacillussp., danPseudomonassp.

2.1. Cara Kerja

Pada praktikum kali ini, bahan utama yang digunakan adalah biomassa kering Spirulina

sp. Mula-mula biomassa Spirulinasebanyak 8 gram dipersiapkan dan dilarutkan dengan

aquades sebanyak 100 ml (2:25). Pelarutan dengan aquades sebanyak 100 ml

merupakan metode ekstraksi polar, dimana fikosianin merupakan pigmen yang larut air

sebagaimana yang dijelaskan oleh Walter, et al. (2011) bahwa dalam mengekstrakfikosianin dari Spirulinadigunakan pelarut polar yang memiliki pH netral, salah satunya

adalah dengan aquades. Selain aquades, pelarut polar yang dapat digunakan adalah

buffer fosfat. Kemudian dilakukan pengadukan dengan menggunakan stirrer selama 2

jam di atas hotplate. Pengadukan dengan menggunakanstirrerselama 2 jam dilakukan

dengan tujuan untuk menghomogenkan larutan dan untuk memaksimalkan ekstraksi

polar. Setelah itu disentrifugasi pada kecepatan 5000 rpm selama 10 menit untuk

memisahkan antara filtrat dan supernatan. Sentrifugasi digunakan untuk memisahkan


7

endapan dan supernatan (cairan berisi fikosianin), sehingga pada saat di ukur kadar

fikosianinnya tidak terganggu oleh padatan yang masih menyatu dengan supernatan.

Langkah yang dilakukan sesuai dengan teori dari Silveira, et al. (2007) yang

mengatakan bahwa langkah setelah ekstraksi polar adalah sentrifugasi untuk

mengendapkan debris sel dan mengambil pigmen fikosianin yang larut dalam pelarut

polar (air). Kimball (1992) menyatakan bahwa prinsip kerja dari sentrifugasi sendiri

adalah memisahkan substansi berdasarkan berat jenis molekul dengan cara memberikan

gaya sentrifugal sehingga substansi yang lebih berat akan berada di dasar, sedangkan

substansi yang lebih ringan akan terletak di atas.

Kemudian sebagian supernatan diambil untuk diukur kadar fikosianin menggunakan

spektrofotometer dengan panjang gelombang 615 nm dan 652 nm. Namun sebelum

dilakukan pengukuran harus dilakukan pengenceran pada supernatant, yaitu

pengenceran 10-1 (1 ml supernatan ditambahkan dengan 9 ml aquades). Day &

Underwood (1992) mengungkapkan bahwa metode spektrofotometri dengan

menggunakan spektrofotometer merupakan pengukuran seberapa besar penyerapan /

absorbsi energi cahaya yang dilakukan oleh suatu sistem kimia dalam suatu larutan.

Penetapan panjang gelombang ini sesuai dengan teori Sarada, et al.(1998) dan Antelo,et al. (2010) yang menyatakan bahwa kadar fikosianin dalam supernatan dapat diketahui

dengan pengukuran spektrofotometer pada panjang gelombang 615 nm dan 652 nm.

Menurut Hadi (1986), panjang gelombang yang digunakan dalam pengujian fikosianin

ini telah sesuai, karena panjang gelombang 610-710 nm digunakan untuk mengukur

warna komplementer biru-hijau.

Selanjutnya sebanyak 8 ml supernatan diambil untuk ditambahkan dengan dekstrinsebanyak 10 gram (1:1,25) dan kemudian dicampur hingga rata. Menurut Murtala

(1999), penambahan dekstrin bertujuan untuk mempercepat pengeringan danmencegah

kerusakan akibat panas,melapisi komponen flavour,meningkatkan total padatan, dan

memperbesar volume. Penambahan dekstrin ke dalam produk juga dapat mengurangi

kerusakan pigmen akibat oksidasi. Cara penuangan supernatan dan dekstrin ke dalam

loyang adalah pertama-tama dekstrin dituangkan terlebih dahulu ke dalam loyang

pengering, kemudian barulah supernatant, sehingga dapat tercampur sempurna. Lalu


8

dikeringkan dengan oven suhu 45C hingga mencapai kadar air kurang lebih 7% dalam

1 malam dan dihancurkan dengan blender.

Menurut Chandra (2011), pengeringan merupakan proses pengurangan kadar air sampai

dengan konsentrasi tertentu, dimana pada praktikum ini, tujuan utama dari pengeringan

adalah untuk mengurangi air bebas yang dapat digunakan bakteri untuk merusak

fikosianin. Pengeringan ini merupakan metode pengeringan fikosianin yang sesuai

dengan teori dari Desmorieux & Decaen (2006), yang mengatakan bahwa pengeringan

sebaiknya dilakukan dengan aliran udara dan pemanasan yang dirancang sedemikian

rupa hingga suhu berkisar antara 40-60C. Setelah dikeringkan, maka akan terlihat

seperti adonan kering yang gempal dan selanjutnya dihancurkan menggunakan blender

sehingga membentuk bubuk.

Arief (1987) menambahkan bahwa tujuan penambahan dekstrin adalah untuk

mengurangi jumlah kehilangan komponen volatileselama proses pengolahan. Menurut

Ribut & Kumalaningsih (2004), dekstrin biasanya berfungsi sebagai pembawa bahan

pangan yang aktif (bahanflavourdan pewarna yang membutuhkan sifat mudah larut air)

dan bahan pengisi (filler) karena dapat meningkatkan berat produk dalam bentuk bubuk.Reynold (1982) mengungkapkan bahwa dekstrin adalah polisakarida dari hasil hidrolisis

pati yang diatur oleh enzim-enzim tertentu atau melalui hidrolisis oleh asam dan

berwarna putih sampai kuning. Dekstrin bersifat larut air, lebih cepat terdispersi, tidak

kental, dan lebih stabil daripada pati. Fennema (1976) menyatakan bahwa dekstrin

tersusun atas unit glukosa yang dapat mengikat air, sehingga oksigen yang larut dapat

dikurangi, akibatnya proses oksidasi dapat dicegah. Hal ini didukung oleh pernyataan

dari Suparti (2000) bahwa dekstrin juga dapat digunakan dalam proses enkapsulasi,untuk melindungi senyawa volatilemaupun senyawa lain yang peka terhadap oksidasi

atau panas. Hal ini disebabkan karena molekul dari dekstrin stabil terhadap panas dan

oksidasi. Dekstrin juga dapat melindungi stabilitas flavour selama pengeringan dengan

menggunakan spray dryer. Wiyono (2011) mengatakan bahwa dekstrin mempunyai

viskositas yang relatif rendah, sehingga pemakaian dalam jumlah banyak masih

diijinkan, sedangkan pemakaian dekstrin dalam jumlah banyak berfungsi sebagai bahan


9

pengisi atau sebagai agen entrapment karena dapat meningkatkan berat produk dan

memerangkap senyawa penting untuk mempertahankan stabilitasnya.

Menurut Fox (1991), optical density (OD) atau absorbansi sangat dipengaruhi oleh

kejernihan larutan. Hal ini berarti semakin tinggi padatan terlarut atau larutan semakin

pekat dan keruh, maka hasil absorbansi juga akan semakin tinggi. Dan apabila semakin

tinggi nilai OD, maka konsentrasi dan yield fikosianin juga akan semakin tinggi (OD

berbanding lurus dengan konsentrasi danyieldfikosianin). Hal ini dapat diketahui dari

rumus :

()( ) 0, ()

(Antelo, et al., 2010)

Berdasarkan jurnal C-Phycocyanin Extraction From Spirulina platensis Wet Biomass

yang ditulis oleh Moraes, et al. (2011), C-phycocyanin (C-PC) dapat diekstraksi dari

Spirulina platensis yang termasuk golongan cyanobacteria, dimana C-PC ini telah

banyak digunakan dalam aplikasi komersial, baik di ndustri makanan maupun kosmetik

sebagai pewarna biru alami. Dalam jurnalnya, penelitian ekstraksi C-PC dilakukan daribiomassa Spirulina sp. basah melalui 6 metode. Metode yang dapat dilakukan, adalah

melalui homogenisasi sel menggunakan alu dan mortar; pembekuan dan thawing;

ekstraksi dengan pelarut asam anorganik (asam klorida); ekstraksi dengan pelarut asam

organik (asam asetat); penambahan lysozyme; serta perlakuan ultrasonik. Hasil

penelitian menunjukkan bahwa metode ekstraksi C-PC yang menghasilkanyieldpaling

banyak adalah dengan metode ultrasonik (sonikasi).

2.2. Hasil Pengamatan

Berdasarkan hasil pengamatan, hasil nilai absorbansi yang diperoleh pada panjang

gelombang yang sama tidak berbeda jauh pada masing-masing kelompok. Hal ini

menunjukkan bahwa pengukuran dengan panjang gelombang tersebut cukup efektif

dalam mengukur kadar fikosianin. Pigmen fikosianin yang termasuk golongan fikobilin

dapat menyerap cahaya dengan kisaran panjang gelombang sekitar 500 nm-730 nm

sehingga pada kisaran panjang gelombang tersebut, kadar fikosianin dapat terukur

karena pigmen fikosianin dapat menyerap cahaya yang diberikan. Jika dilbandingkan


10

antara nilai absorbansi fikosianin pada OD652 dan OD652, nilai absorbansi fikosianin

yang diukur pada OD652lebih rendah daripada nilai absorbansi pada OD615. Hal dapat

terjadi dikarenakan menurut Song, et al. (2013), panjang gelombang yang dapat diserap

secara maksimal oleh fikosianin berkisar antara 610-620 nm. Berdasarkan teori yang

diungkapkan oleh Pomeranz & Meloan (1994), perbedaan nilai absorbansi pada masing-

masing kelompok dapat terjadi dikarenakan pengukuran absorbansi dilakukan beberapa

kali, dimana pengulangan pada pengukuran bertujuan untuk memperoleh hasil yang

tepat. Pomeranz & Meloan (1994) menambahkan bahwa pengukuran absorbansi dengan

metode spektrofotometri dapat menimbulkan beberapa kesalahan yang disebabkan

karena kuvet kotor atau tergores, penempatan kuvet yang tidak tepat, adanya gelembung

udara dalam larutan, panjang gelombang yang dihasilkan tidak sesuai dengan yang

tertera pada alat, dan kurang sempurna dalam penyiapan larutan sampel. Walaupun nilai

absorbansi yang dihasilkan masing-masing kelompok berbeda, namun kadar fikosianin

dan yield yang dihasilkan berjumlah sama. Hal ini terjadi karena sampel yang

digunakan dan perlakuan yang diberikan kepada masing-masing kelompok sama.

Setelah pengukuran kadar fikosianin dan yield, dilakukan pula pengukuran secara

sensoris dengan didasarkan pada warna sebelum dan sesudah dioven (berupa serbuk).Warna yang dihasilkan dari fikosianin sebelum dan sesudah dioven adalah warna biru.

Hal ini sesuai dengan pernyataan Moraes, et al. (2011) yang menyatakan bahwa

phycocyanin berperan sebagai pewarna biru alami. Sebelum dilakukan pengeringan,

fikosianin semua kelompok menghasilkan warna biru muda, namun setelah proses

pengeringan dan penghancuran dengan blender, warna fikosianin semua kelompok

adalah biru sangat muda. Dapat dikatakan bahwa proses pengeringan pada suhu 45 oC

dalam oven akan mendegradasi warna dari fikosianin. Hal ini sesuai dengan pendapatdari Mishra, et al. (2008) yang menyatakan bahwa fikosianin dapat mengalami

pemudaran warna selama proses penyimpanan dan pemanasan, bahkan dapat

mengalami pemudaran warna hingga 30% setelah penyimpanan 5 hari dan menjadi

bening setelah 15 hari pada suhu 35oC. Wiyono (2011) menambahkan bahwa faktor lain

yang mempengaruhi warna dari fikosianin adalah penambahan dekstrin, dimana

semakin tinggi konsentrasi dekstrin yang ditambahkan, maka akan menyebabkan bubuk

fikosianin yang didapatkan menjadi pudar atau cenderung pucat karena warna dekstrin


11

adalah putih sehingga dengan adanya penambahan dekstrin yang terlalu banyak akan

membuat bubuk fikosianin memudar. Hal ini sesuai dengan hasil yang didapatkan pada

semua kelompok bahwa semua bubuk fikosianin yang dihasilkan memiliki warna yang

lebih muda sebelum dikeringkan. Hal ini juga berarti bahwa dekstrin dan supernatan

telah tercampur sempurna sehingga warna dapat memudar.


12

3. KESIMPULAN

Penambahan pewarna pada produk bertujuan untuk menggugah selera konsumen

dengan penampakan produk.

Struktur fikosianin mengandung rantai tetraphyrroles terbuka yang mungkin

mempunyai kemampuan menangkap radikal oksigen.

Mikroalga merupakan mikroorganisme fotoautrotof obligat yang membutuhkan

sinar matahari sebagai sumber energi dan karbondioksida sebagai sumber karbon.

Pigmen fikosianin yang menghasilkan warna biru dapat larut pada pelarut polar

seperti air.

Pigmen fikosianin yang berasal dari Spirulinaberfungsi sebagai antioksidan danantiinflamatori.

Phycobiliproteinyang terdapat dalam Spirulinasp. dapat digolongkan menjadi 3

kelompok besar, yaitu phycocyanin (C-PC), phycoerythrin (C-PE), dan

allophycocyanin(C-APC).

Pengadukan dengan stirrer selama 2 jam bertujuan untuk menghomogenkan

larutan dan memaksimalkan ekstraksi polar.

Sentrifugasi dilakukan untuk memisahkan endapan dan supernatan.

Penambahan dekstrin dapat mengurangi kerusakan pigmen akibat oksidasi.

Dekstrin merupakan polisakarida dari hidrolisis pati yang diatur oleh enzim-enzim

tertentu atau hidrolisis oleh asam yang berwarna putih sampai kuning

Optical Density(OD) atau absorbansi sangat dipengaruhi oleh kejernihan larutan.

Semakin tinggi OD, maka konsentrasi danyieldfikosianin akan semakin tinggi.

Adanya penambahan dekstrin dapat membuat warna dari fikosianin berubah.

Penambahan konsentrasi dekstrin yang semakin tinggi akan membuat bubukfikosianin menjadi lebih pudar.

Dekstrin bersifat larut air, lebih cepat terdispersi, tidak kental, dan lebih stabil

daripada pati.

Nilai absorbansi fikosianin yang diukur pada OD652 lebih rendah daripada nilai

absorbansi pada OD615.

Pengeringan dapat memudarkan warna fikosianin menjadi lebih muda.


13

Ekstraksi fikosianin dapat dilakukan melalui homogenisasi sel; pembekuan dan

thawing; ekstraksi dengan pelarut asam anorganik; ekstraksi dengan pelarut asam

organik; penambahan lysozyme; serta perlakuan ultrasonik / sonikasi.

Phycocyaninstabil pada pH 5, namun sensitif terhadap pH 3.

Semarang, 22 September 2014 Asisten Dosen :-Agita Mustikahandini

Melita Mulyani(12.70.0080)


14

4. DAFTAR PUSTAKA

Adams M. (2005). Superfood for Optimum Health: Chlorella and Spirulina. Truth

Publishing International, Ltd. New York.

Antelo, F. S.; Andreia A.; Jorge A. V. C. & Susana J. K. (2010). Extraction andPurification of C-phycocyanin from Spirulina platensis in Conventional andIntegrated Aqueous Two-Phase Systems.Journal Braz. Chem. Soc., Vol. 21, No.5, 921-926. Brazil.

Arief, M. (1987). Ilmu Meracik Obat Berdasar Teori dan Praktek. UniversitasGajahmada Press. Yogyakarta.

Boussiba S. & Richmond A. (1980). C-Phycocianin as a Storage Protein in The Blue-Green Algae Spirulina plantesis. Archives of Microbiology125, 143-147.

Chandra, B. A. (2011). Karakteristik Pigmen Fikosianin dari Spirulina fusiformisyangDikeringkan dan Diamobilisasi [skripsi]. Departemen Teknologi Hasil Perairan,Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, IPB. Bogor.

Colla; Luciane M.; Eliana Badiale F. & Jorge A. V. (2007). Antioxidant Properties ofSpirulina platensis Cultivated Under Different Temperatures and Nitrogen

Regimes.Z. Naturforsch 59c: 55-59.

Day, R. A. & A. L. Underwood. (1992). Analisa Kimia Kuantitatif Edisi kelima.Erlangga. Jakarta.

Desmorieux H. & Decaen N. (2006). Convective Drying of Spirulina in Thin Layer.Journal of Food Engineering,77:64-70.

Duangsee, R.; Natapas P. & Suwayd N. (2009). Phycocyanin Extraction from Spirulina

plantensis and Extract Stability Under Various pH and Temperature. AsianJournal of Food and Agro-Industry, Vol 2 (04) : 819-826. Thailand.

El-Baky H. H. A. (2003). Over Production of Phycocyanin Pigment in Blue GreenAlgae Spirulina sp. and its Inhibitory Effect on Growth of Ehrlich AschitesCarcinoma Cells.Journal Medical Science 3(4) : 314-324.

Fennema, O. R. (1976). Principles of Foods Science. Marcel Dekker, Inc. New York.

Fox, P. F. (1991). Food Enzymology Vol 1. Elsevier Applied Sciences. London.


15

Hadi, S. (1986). Analisa Kuantitatif. PT Gramedia Pustaka Utama. Jakarta.

Hirata, S.; Taya, M. & Tone, S. (1996). Characterization of Chlorella Cell Cultures inBatch and Continuos Operations Under a Photoautotrophic Condition. Journal ofChemical Engineering of JapanVol. 29(6) : 953-959.

Kimball, J. W. (1992). Biologi Jilid 1 Edisi 5. Erlangga. Jakarta.

Metting, B. & Pyne, J. W. (1986). Biologically Active Compounds from Microalgal.Journal of Enzyme Microb. Tech.Vol. 8. Butterworth and Co Publish.

Mishra, S. K.; Shrivastav, A. & Mishra, S. (2008). Effect of Preservatives for FoodGrade C-PC from Spirulina platensis.Process Biochemistry 43:339-345.

Mohammad, J. (2007). Produksi dan Karakteristik Biopigmen Fikosianin dari Spirulinafusiformis serta Aplikasinya Sebagai Pewarna Minuman. Program StudiTeknologi Hasil Perikanan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, IPB. Bogor.

Moraes, C. C.; Luisa, S.; G. P. Cerveira & S. J. Kalil. (2011), C-Phycocyanin ExtractionFrom Spirulina platensis Wet Biomass. Brazilian Journal of Chemical

Engineering, Vol. 28, No. 01, pp. 45-49. Brazil.

Murtala, S. S. (1999). Pengaruh Kombinasi Jenis dan Konsentrasi Bahan PengisiTerhadap Kualitas Bubuk Sari Buah Markisa Siul (Passiflora edulis F. Edulis)[Tesis]. Pasca Sarjana Universitas Bawijaya. Malang.

Muthulakshmi, M.; A. Saranya; M. Sudha & G. Selvakumar. (2012). Extraction, PartialPurification, and Antibacterial Activity of Phycocyanin from Spirulina Isolatedfrom Fresh Water Body Against Various Human Pathogens. Journal of AlgalBiomass Utilization, Vol. 3 (3) : 7-11. India.

Ngakou; Albert, R.; Wague, M. M. & Namba F. (2012). Changes in The Physico-

Chemical Properties of Spirulina platensisfrom Three Production Sites in Chad.Journal of Animal & Plant Sciences, Vol. 13, Issue 3: 1811-1822. Chad.

Carra P. & Heocha C. (1976). Algal Biliproteins and Phycobilins. Goodwin TW,Editor. Chemistry and Biochemistry of Plant Pigments. Academic Press, Inc.London.

Pomeranz, Y. & C. E. Meloan. (1994). Food Analysis Theory and Practice. John Wileyand Sons, Inc. New York.


16

Reynolds, J. E. F. (1982). Martindale The Extra Pharmacopolia, 28 th Edition. ThePharmacentical Press. London.

Ribut, S. & S. Kumalaningsih. (2004). Pembuatan Bubuk Sari Buah Sirsak dari BahanBaku Pasta dengan Metode Foam-Mat Drying. Kajian Suhu Pengeringan,Konsentrasi Dekstrin dan Lama Penyimpanan Bahan Baku Pasta.http://www.pustaka-deptan.go.id.Diakses pada tanggal 21 September 2014 pukul19.12 WIB.

Richmond, A. (1988). Spirulina. In: Micro-Algal Biotechnology. Cambridge UniversityPress. Cambridge.

Romay, C.; Armesto, J.; Remirez, D.; Gonzlez, R.; Ledn, N. & Garca, I. (1998).

Antioxidant and Anti-Inflammatory Properties of C-phycocyanin from Blue-Green Algae.Inflammation Research 47 : 36-41.

Sarada, R.; Manoj G. Pillai & G. A. Ravishankar. (1998). Phycocyanin from Spirulinasp.: Influence of Processing of Biomass on Phycocyanin Yield, Analysis ofEfficacy of Extraction Methods and Stability Studies on Phycocyanin. Process

Biochemistry34: 795-801.

Silveira, S. T.; Burkert, J. F. M.; Costa, J. A. V.; Burkert, C. A.V. & Kalil, S. J. (2007).Optimization of Phycocyanin Extraction from Spirulina platensisUsing Factorial

Design.Bioresour Technol., 98, 1629-1634.

Song, W; Zhao, C & Wang, S. (2013). A Large-Scale Preparation Method of HighPurity C-Phycocyanin. International Journal of Bioscience, Biochemistry and

Bioinformatics, Vol. 3, No. 4.

Spolaroe, P.; Joanis, C. C.; Duran, E. & Isambert, A. (2006). Comercial Application ofMicroalgae Review.J Biosci and Bioeng, Vol. 101 (2) : 87-96.

Suparti, W. (2000). Pembuatan Pewarna Bubuk dari Ekstrak Angkak: Pengaruh Suhu,Tekanan dan Konsentrasi Dekstrin [Tesis]. Program Pascasarjana UniversitasBrawijaya. Malang.

Tietze, H. W. (2004). Spirulina Micro Food Macro Blessing 4th Edition. Haralz W.Tietze Publishing. Australia.

Tri-Panji, S.; Achmadi & Tjahjadarmawan, E. (1996). Produksi Asam Gammalinolenatdari Ganggang Mikro Spirulina platensis Menggunakan Limbah Lateks Pekat.

Menara Perkebunan Vol. 64 (1) : 34-44.
http://www.pustaka-deptan.go.id/http://www.pustaka-deptan.go.id/http://www.pustaka-deptan.go.id/


17

Ungsethaphand, T.; Yuwadee, P.; Niwoot, W. & Uraporn, S. (2010) Effect of FeedingSpirulina platensison Growth and Carcass Composition of Hybrid Red Tilapia(Oreochromis mossambicus O. niloticus). Maejo International Journal ofScience and Technology, Vol. 4(02) : 331-336. Thailand.

Walter, A.; Julio Cesar de C.; Vanete, T. S.; Ana, B. B.; Vanessa, G. & Carlos, R. S.(2011). Study of Phycocyanin Production from Spirulina platensis Under

Different Light Spectra, Vol. 54, pp 675-682.

Wiyono, R. (2011). Studi Pembuatan Serbuk Effervescent Temulawak (Curcumaxanthorrhiza Roxb) Kajian Suhu Pengering, Konsentrasi Dekstrin, KonsentrasiAsam Sitrat dan Na-Bikarbonat. Fakultas Pertanian Universitas YudhartaPasuruan. Pasuruan.


18

5. LAMPIRAN

5.1. Perhitungan

Rumus :

()( ) ()

( ) ( )

( )

Keterangan:Berat biomassa = 8 gramVolume total filtrat = 50 ml

Kelompok A1

()( ) ()

()( )

( )

( )

Kelompok A2

()( ) ()

()( )

( )

( )

Kelompok A3

()( ) ()

()( )

( )

( )


19

Kelompok A4

()( ) ()

()( )

( )

( )

Kelompok A5

()( ) ()

()( )

( )

( )

Kelompok A6

()( ) ()

()( )

( )

( )

5.2. Foto

Gambar 2. Fikosianin Sebelum Dioven(Kelompok A1-A3)

Gambar 3. Fikosianin Sebelum Dioven(Kelompok A4-A6)


20

Gambar 4. Fikosianin Setelah Dioven (Kelompok A1-A6)

5.3. Diagram Alir

5.4. Laporan Sementara

Documents

FIKOSIANIN_Melita Mulyani_12.70.0080_A1_Unika Soegijapranata