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Université ibn zohr Faculté des sciences Agadir DEPPARTEMENT DE BIOLOGIE Filière : sciences de la vie Semestre 5 2014 RAPPORT SUR LES TRAVAUX PRATIQUES L’effet des auxines sur la croissance MODULE : CROISSANCE ET NUTRITION VEGETALE Réalisé par : AHMED ISLMIOUN GROUPE B2a

rapport les hormone vegetaux Auxine

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rapport de travaux pratique

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Page 1: rapport les hormone vegetaux Auxine

Université ibn zohr

Faculté des sciences

Agadir

DEPPARTEMENT DE BIOLOGIE

Filière : sciences de la vie

Semestre 5

2014

RAPPORT SUR LES TRAVAUX PRATIQUES

L’effet des auxines sur la croissance

MODULE : CROISSANCE ET NUTRITION VEGETALE

Réalisé par :

AHMED ISLMIOUN

GROUPE B2a

Page 2: rapport les hormone vegetaux Auxine

1

Table des matières

Table des matières .................................................................................................................................. 1

Abréviation ............................................................................................................................................. 2

I. Introduction générale ....................................................................................................................... 3

II. Définition de l’auxine ...................................................................................................................... 4

III. Effet de l’auxine sur la croissance végétale ................................................................................. 4

a. Représentation graphique ....................................................................................................... 5

b. Interprétation .......................................................................................................................... 6

IV. Effet de l’auxine sur la rhizogénèse ............................................................................................. 6

a. Définition ................................................................................................................................. 6

b. La plante étudiée ..................................................................................................................... 6

c. Méthode d’étude .................................................................................................................... 6

d. Interprétation du tableau ...................................................................................................... 10

e. Interprétation ........................................................................................................................ 11

V. La germination ............................................................................................................................... 11

a. Définition ............................................................................................................................... 11

b. Déroulement ......................................................................................................................... 11

VI. Conclusion générale .................................................................................................................. 12

Page 3: rapport les hormone vegetaux Auxine

2

Abréviation

ANA acide naphtyle acétique

AIB acide indole butyrique

Cf concentration finale

Ci concentration initial

Vf volume final

Vi volume initial

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3

I. Introduction générale

Croissance (physiologie), processus par lequel les organismes vivants grandissent, au travers de transformations morphologiques et fonctionnelles, jusqu’à atteindre leur maturité physiologique.et résulte de phénomènes complémentaires : la multiplication des cellules, l’élongation et la différenciation. Cette hyperactivité cellulaire s’accompagne d’une augmentation importante du métabolisme, Pendant sa période de croissance, un organisme doit donc bénéficier d’un apport nutritionnel approprié : la lumière, l’eau, les sels minéraux, vitamines.

Ce processus est contrôlé par des hormones synthétisées en très petites quantités à un endroit donné de la plante, ces hormones, ou facteurs de croissance végétaux, circulent ensuite dans l’ensemble du végétal. Celles-ci sont de nature différente de celles des animaux, mais ont une action similaire toutes, sans exception, sont de petites molécules qui peuvent traverser la paroi cellulaire. Une même hormone peut avoir des effets différents selon la nature du tissu sur lequel elle agit. Les deux principales hormones des végétaux sont les auxines et les gibbérellines. Mais dans cette étude on s’intéresse à l’auxine et son effet sur la croissance.

Donc qu’est-ce que une auxine ?

Quel est son effet sur la croissance végétale ?

Page 5: rapport les hormone vegetaux Auxine

4

II. Définition de l’auxine

C’est une hormone de croissance dont l’existence n’a été mise en évidence qu’en 1928. Sa formule chimique est relativement simple. Elle est fabriquée dans l’extrémité des tiges en croissance à partir d’un acide aminé, le tryptophane. L’auxine migre ensuite depuis les tiges jusqu’aux racines. Le long des tiges 1

III. Effet de l’auxine sur la croissance végétale

Pour obtenir cette effet on est menait de réaliser des tests manipulait suivantes dont on suit le protocole suivant :

On choisit des 35 coléoptiles d’environ 12-18 mm, on élimine les grains et les racines et on les met dans des boite de pétri de manière suivant ;

Tableau 1 : organisation des coléoptiles sur les boites

Les boites 1 2 3 4 5 6 7

Nombre et Type de coléoptile

5 CE 5 CD 5 CE 5 CD 5 CE 5 CD 5 CD + 20 APEX

CE : coléoptile entier ; CD : coléoptile décapité (apex enlevé) ;

Boite 1, boite 2 et la boite 7 sont des boites témoin car ne contient pas de l’auxine. Alors que les autres boites ; 3, 4, 5et6contient des auxines avec des concentrations déférentes respectivement 10-3, 10-3, 10-5, 10-5. Ces concentrations sont obtenues par la manière suivant :

Préparation de solution d’auxine 10-3

On a pour 1 mol---->186 g

10-3----X ; X=0.186g

0.186------>1000ml. Pour 20ml on aura 3.72mg/20 ml

On prépare la concentration de 10-1 on a besoin de 372 mg/20ml

On prend 372mg d’ANA et on la met dans un 20ml d’éthanol

On appliquant cette méthode pour obtenir des solutions moins concentrée de 10-3et de 10-5

mol/l pour 10-3 on fait vi= (10-3x 20)/10-1 =0.2 ml même relation pour 10-5

On prélève 0.2ml dans la solution d’ANA pour chaque concentration

1Microsoft ® Encarta ® 2009. © 1993-2008 Microsoft Corporation

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5

Tableau 2 : Tableau représentatif de la taille des coléoptiles après les mettre dans la chambre de culture pendant 2 heures sous la lumière et dans des milieux diffèrent

Les boites 1 2 3 4 5 6 7

Nombre et Type de coléoptile

5 CE 5 CD 5 CE 5 CD 5 CE 5 CD 5 CD + 20 APEX

Concentration d’auxine mol/l

0 0 10-3 10-3 10-5 10-5 0

Volume d’ANA ml

0.2 0.2 0.2 0.2

Volume de knop ml

10 10 9 9 9 9 10

boite1 boite2 boite3 boite4 boite5 boite6 boite7

2420 lux 1.14 1 1.08 1.06 1.094 1.09 1.02

1980 lux 1.1 1 1.1 1 1.1 1 1.2

2000 lux 1.16 1 1.08 1.06 1.02 1.02 1.08

2300 lux 1.1 1.02 1.12 1 1.1 1.02 1.02

1710 lux 1.1 1.15 1.09 1.03 1.04 1.04 1.02

a. Représentation graphique

0.9

0.95

1

1.05

1.1

1.15

1.2

1.25

1710 lux 1980 lux 2000 lux 2300 lux 2340 lux

taill

e e

n C

m

intensité lumineux en LUX

defferentes taille(cm) de colioptilles decapite et les axe par rapport au l'intensité lumineuse (lux)

boite1

boite2

boite3

boite4

boite5

boite6

boite7

Intensité

lumineuse

Page 7: rapport les hormone vegetaux Auxine

6

b. Interprétation

La concentration la plus efficace pour avoir une bonne croissance est 10-3g/l, et une intensité lumineuse moyenne ou le moyen élevé a aussi un effet sur l’élongation des coléoptiles, l’enlèvement de l’apex provoque une élongation non conservable dans la concentration d’ANA de 10-3g/l. la concentration endogène et la concentration exogène provoque une bonne élongation. L’ANA agit en modifiant la plasticité des parois ce qui autorise ensuite la modification de la taille de la cellule

L’auxine a une action à court terme sur la plasticité des cellules: l’auxine provoque la sortie des H+

de la cellule du cytoplasme vers la paroi; elle provoque également le gonflement de la vacuole, ce qui

augmente la pression vacuolaire. Et donc élongation de la cellule

IV. Effet de l’auxine sur la rhizogénèse

a. Définition

La rhizogénèse est le phénomène d’organogenèse le plus généralement impliqué dans la

multiplication végétative

Auprès de progrès de nos connaissances sur la rhizogénèse condition donc la maitrise de la

multiplication végétative. Les concepts sur ce phénomène tentent la gageur de présenter des

interprétations synthétique d’un ensemble très complexe de données. Ces concepts ont évolué au

même temps que la croissance sur les régulateurs de croissance. L’étude de la rhizogénèse tient de plus

en plus compte des interactions complexes de facteur, mais il reste dominer par le problème de la

régulation hormonale et en particulier par le rôle des auxines dans l’organogenèse. Sur le plan

fondamental la rhizogénèse plus accessible à l’expérimentation que la caulogenèse, demeure une

bonne voie d’approche du déterminisme de l’organogenèse, lie au mécanisme de différenciation et de

dédifférenciation cellulaire2

Comment réagit-il l’auxine sur ce phénomène ?

b. La plante étudiée

Basilic (plante), plante aromatique originaire d’Inde et cultivée dans les régions tempérées, tropicales et subtropicales3.

c. Méthode d’étude

À l’endroit d’avoir des effets d’auxines sur la rhizogénèse on réalise le protocole expérimental

suivant :

On prépare des boutures de taille identique en prenant le soin d’habiller la partie basale en enlevant les

feuilles et une partie fine d’écorce

On a AIB commerciale de concentration 0.4% (p/v), c'est-à-dire 0.4 g/100ml -- 4g/l

2BASE de la MULTIPLICATION VEGETATIVE (p78 ;p80), J.Margara

3Microsoft ® Encarta ® 2009. © 1993-2008 Microsoft Corporation

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Pour mettre en évidence les résultats obtenus en fait appel à la manière suivant

Application numérique On a la [AIB]i=4g/l ,Vf=150 ml , et la concentration en question=10-3 donc Vi=X

D’après l’équation d’équilibre CixVi=CfxVf

Vi=��∗��

��

Pour Cf=10-1 g/l, Vi= (10-1x150)/4 =3.75 ml

Pour Cf=10-3 g/l, Vi=(10-3x150)/10-1=1.5 ml --> de la solution 10-1

Pour Cf=10-5 g/l, Vi=1.5 ml de la solution 10-3

Pour Cf=10-7 g/l, Vi=1.5 ml de la solution 10-5

Pour Cf=10-8 g/l, Vi=0.15ml de la solution 10-5

Figure1 : préparation de la solution d’AIB a différentes concentration

10-1g/l 10-3g/l 10-5g/l

10-7g/l 10-8g/l

1.5 ml 1.5 ml

1.5 ml 0.15 ml

Vt=20ml, pour chaque concentration on ajoute eau distillé jusqu’au 20 ml

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8

A partir d’une solution mère de l’AIB (acide indole butyrique) de 4g/l et la solution de knop on prépare les milieux suivants (tableau 3 et les figures 1 et 2).

Figure 2 : préparation des solutions de bouturage

Tableau 3 : répartition des solutions dans les tubes

N de flacon 1 2 3 4 5 6

Solution de knop

Absent Présent Présent Présent présent présent

Volume de knop (ml)

- 150 148.5 148.5 148.5 149.85

Cf d’auxine (g/l)

- - 10-3 10-5 10-7 10-8

V d’auxine (ml)

- - 1.5 1.5 1.5 0.15

H2O (ml) 150 - - - - -

Vf (ml) 150 150 150 150 150 150

150ml 150ml 150ml 150ml 150ml 150ml

15

0m

l

10-3

10-5

10-7

10-8

AIB

Solution

de knop

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9

Date milieux Nombre moyenne des

racines Taille moyenne des racines (cm)

temps (jours)

08-déc

témoin 14.0 1.00 18

knop 9.0 1.32 18

10-3 32.0 0.61 18

10-5 4.0 1.71 18

10-7 7.0 1.66 18

10-8 11.0 0.25 18

09-déc

témoin 5.0 1.20 17

knop 10.0 1.28 17

10-3 31.3 0.34 17

10-5 13.3 0.85 17

10-7 6.3 1.16 17

10-8 17.5 1.75 17

10-déc

témoin 0.0 0.00 16

knop 8.0 0.81 16

10-3 26.0 0.93 16

10-5 12.6 1.28 16

10-7 0.0 0.00 16

10-8 14.0 1.98 16

11-déc

témoin 2.0 1.20 15

knop 4.7 1.13 15

10-3 19.8 1.10 15

10-5 11.3 0.35 15

10-7 22.0 3.32 15

10-8 9.0 0.40 15

12-déc

témoin 5.0 1.43 14

knop 0 0 14

10-3 33.3 1.20 14

10-5 23.0 0.81 14

10-7 14.7 1.23 14

10-8 12.0 1.20 14

15-déc

témoin 10.0 0.32 11

Knop 22.0 0.24 11

10-3 0 0 11

10-5 0 0 11

10-7 0 0 11

10-8 0 0 11

16-déc

Témoin 0 0 10

Knop 5.0 0.60 10

10-3 0 0 10

10-5 0 0 10

10-7 0 0 10

10-8 0 0 10

Tableau 4 : les boutures en différente milieux et séjour varié

Page 11: rapport les hormone vegetaux Auxine

10

17-déc

Témoin 0 0 9

knop 0 0 9

10-3 0 0 9

10-5 0 0 9

10-7 0 0 9

10-8 0 0 9

19-déc

témoin 13.5 0.40 7

knop 0 0 7

10-3 0 0 7

10-5 0 0 7

10-7 0 0 7

10-8 0 0 7

Ecartype moyenne entre les valeurs moyennes de taille des racines et de 0.59536648 y a pas

une différence significative entre la taille de ces racines.

d. Interprétation du tableau

D’après le tableau on constate qu’on a toujours l’apparition de racine avec des quantité élevée

au niveau de concentration 10-3 suivie de 10-5 puis 10-7 donc, plus que la concentration hormonale

diminue plus que la rhizogénèse est faible. Et on ne dit pas que les autres concentrations inhibent la

croissance mais ils ont initiés la croissance, parce que dès que on met les bouture dans l’eau

physiologique on observe la formation des racines après une durée déterminer sa dépend le type de

l’explant c'est-à-dire est ce que le rameau et végétative ou reproducteur.

Cette formation des racines est verrier selon le temps de séjours car on trouve que cette

formation aura lieu quand on a la durée de séjours dépasse au moins 10 jours a 18 jours.

On conclue d’après tout ça que la concentration10-3 d’AIB est la plus efficace pour la rhizogénèse.

0.0

2.0

4.0

6.0

8.0

10.0

12.0

14.0

16.0

18 17 16 15 14 11 10 7

no

mb

re d

e r

acin

es

temps de séjours (jours)

nombre moyenne des racines en fonction de temps de séjours

nombre de racines

Page 12: rapport les hormone vegetaux Auxine

11

e. Interprétation

D’après l’histogramme on constat que le temps de séjours joue un rôle important dans l’apparition des

racines car on observe que cette apparition est important au niveau des boutures mettes dans des

cultures pendant une durée important auprès 14jours à 18jours.

Les hormones de croissances ne sont pas les seuls facteurs qui provoquent la croissance des végétaux,

il faut exclure le rôle de la lumière.

V. La germination

a. Définition

Germination, reprise de la vie active d’un végétal après une période de repos, de durée variable, sous forme de graine.

b. Déroulement

La germination débute par une imbibition, c’est-à-dire l’absorption d’eau par la graine.

Cette hydratation induit des changements métaboliques au sein de la graine. Les réserves

contenues dans la graine sont lentement dégradées par des enzymes. Les nutriments sont

ensuite utilisés par les organes en croissance de l’embryon.

On fait imbiber des grain de blé dans des boite contenant un peu d’eau pour que les

autres fait étudier les coléoptiles que ces grains donnent après leur germination

Page 13: rapport les hormone vegetaux Auxine

12

VI. Conclusion générale

Il est parfois possible d’observer la néoformation des racines à partir d’entre-nœud de tige ou

d’autre fragment d’organe dépourvu de feuille et bourgeon. Cependant de nombreuse expérience ont

clairement montré l’influence stimulatrice déterminante des auxines sur la rhizogénèse, Les auxines

favorisant la rhizogénèse, il est destiné qu’une hormone de bouturage. Ils ont un rôle centrale dans le

déclenchement hormonale de la rhizogenése est suggéré à la fois par les applications d’auxine exogène

et par les dosages d’hormone.

L’auxine et l’un des facteurs de croissance qu’a un pouvoir rhizogénique très important. Mais

cette action est complexe. En effet, l’auxine induit dans un premier temps l’organogenèse, puis

s’oppose à leur élongation.

Page 14: rapport les hormone vegetaux Auxine

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VII. Références

BASE de la MULTIPLICATION VEGETATIVE (p78 ;p80), J.Margara Microsoft ® Encarta ® 2009. © 1993-2008 Microsoft Corporation Support du cour de croissances végétale, M SADKI Issam ; université ibn zohr Agadir