Quran Tentang Mineral + Laporan Biokimia

Al-Quran sangat banyak memuat ayat-ayat yang berhubungan dengan ilmu

pertambangan, memuat masalah bahan-bahan galian ataupun kandungan dalam bumi

yang manusia pijak ini. Bahan-bahan galian yang berupa mineral dan batuan merupakan

objek utama dalam dunia pertambangan yang memiliki nilai ekonomis dibutuhkan

manusia dalam menjalani hidupnya di dunia sebagai perhiasan, sebagaimana firman

Allah swt dalam Quran Surah Ali ‘Imran Ayat 14 yang artinya:

“Dijadikan indah pada (pandangan) manusia kecintaan kepada apa-apa yang

diingini, yaitu: wanita-wanita, anak-anak, harta yang banyak dari jenis emas,

perak, kuda pilihan, binatang-binatang ternak dan sawah ladang. Itulah

kesenangan hidup di dunia, dan di sisi Allah-lah tempat kembali yang baik

(surga)”. Ali ‘Imran Ayat 14

Pada ayat ini, Allah memberikan gambaran bahwa emas dan perak merupakan salah

satu keindahan dalam hidup manusia yang dicintai keberadaannya karena nilainya yang

tinggi. Emas dan perak merupakan salah satu bahan galian yang menjadi objek dalam

dunia pertambangan. Ini semua Allah ciptakan sebagai kesenangan hidup di dunia bagi

manusia. Dalam ayat lainnya seperti surah Al A’raaf, Ayat 148 yang artinya:

“Dan kaum Musa, setelah kepergian Musa ke gunung Thur membuat dari

perhiasan-perhiasan (emas) mereka anak lembu yang bertubuh dan bersuara.

Apakah mereka tidak mengetahui bahwa anak lembu itu tidak dapat berbicara

dengan mereka dan tidak dapat (pula) menunjukkan jalan kepada mereka?

Mereka menjadikannya (sebagai sembahan) dan mereka adalah orang-orang yang

zalim”

Kemudian juga dalam surah Ar Ra’d, Ayat 17 yang artinya:

“Allah telah menurunkan air (hujan) dari langit, maka mengalirlah air di lembah-

lembah menurut ukurannya, maka arus itu membawa buih yang mengembang.

Dan dari apa (logam) yang mereka lebur dalam api untuk membuat perhiasan

atau alat-alat, ada (pula) buihnya seperti buih arus itu. Demikianlah Allah

membuat perumpamaan (bagi) yang benar dan yang batil. Adapun buih itu, akan

hilang sebagai sesuatu yang tak ada harganya; adapun yang memberi manfaat

kepada manusia, maka ia tetap di bumi”

Keutamaan Nutrisi Bahan Pangan Dalam Al Quran

"Manusia itu belum melaksanakan apa yang diperintahkan Allah kepadanya,

makahendaklah manusia itu memperhatikan makanannya. Sesungguhnya Kami

benar-benar telah mencurahkan air dari langit, kemudian Kami belah bumi

dengan sebaik-baiknya, lalu Kami tumbuhkan biji-bijian di bumi itu, anggur dan

sayur-sayuran, zaitun dan kurma, kebun-kebun yang lebat, dan buah-buahan

serta rumput-rumputan, untuk kesenanganmu dan untuk binatang-

binatang."(Abasa (80), 23-32)

Dari perut lebah itu keluar minuman (madu) yang bermacam-macamwarnanya,

di dalamnya terdapat obat yang menyembuhkan bagi manusia.Sesungguhnya,

pada yang demikian itu benar-benar terdapat tanda (kebenaran)Tuhan bagi

orang-orang yang memikirkan. (an-Nahl [16]: 68-69)

Perintah untuk memperhatikan makanan yang kita konsumsi setiap hariternyata mengan

dung makna agar kualitas hidup umat muslim-pada khususnya-dapat meningkat. Karena

apa yang kita makan akan mempunyai efek bagi kesehatantubuh secara langsung. Allah

secara khusus menyebutkan keutamaan kurma, madu,dan juga jenis biji-bijian

(kacang).Penelitian telah menunjukkan keutamaan kandungan kurma dari segi

nutrisidibanding jenis buah yang lain di muka bumi ini. Kurma mengandung energi

yangcukup tinggi yakni sekitar 3000 Kcal/kg atau menyimpan energi sekitar 4 Kcal

per butirnya (asumsi per butir adalah 100 gr) dengan total gula antara 73.8 - 79.1 %

.

Kadar gula tersebut terdiri dari gula pereduksi sebesar 35 - 40.9 % berat kering

(bk) pada kurma yang dikeringkan dan kandungan sukrosa berkisar 32.1 - 45.0 %

Madu menjadi bahan makanan utama selanjutnya yang dianjurkan Allahuntuk mengkon

sumsinya. Madu beserta vitamin-vitamin dan mineral-mineral,sangatlah bermanfaat

bagi manusia. Ia mangandung gula (glukosa dan fruktosa), beragam mineral (kalsium,

potassium, magnesium, sodium klorin, sulfur, besi, danfosfor), dan vitamin-vitamin

(B1, B2, B3, B5, B6, dan C). Energi yang dihasilkan tiap100 g rata-rata 294-328

kalori. Nilai kalori 1 kg madu setara dengan 50 butir telur,24 buah pisang, 40 buah

jeruk, 5,7 liter susu, atau 1,68 kg daging (Rohadi, 2007).Selanjutnya adalah dari jenis

kacang-kacangan. Kacang tanah dalam hal inimemberikan sekitar 135 kkal per 100

gram bagian yang dapat dimakan (daging buah). Jika kita mengkonsumsi kacang-

kacangan sebanyak 100 gram (1 ons) saja,maka jumlah itu akan mencukupi sekitar 20

% kebutuhan protein dan 20 persenkebutuhan serat per hari. Kandungan nutrisi pada

tiap polong kacang tanah jugacukup tinggi, komposisi asam amino kacang tanah

diketahui mengandung asam

asamamino esensial seperti arginin (2,27%), fenilalanin (1,52%), histidin (0,51%),isoleu

sin (0,99%), leusin (1,92%), lisin (1,29%), methionin (0,33%), tripthopan(0,215%) dan

valin (1,33 %) (Ketaren, 1986).

http://sri-rahayu-kimia.blogspot.com/2012/04/laporan-praktikum-karbohidrat.htmlLaporan Praktikum Karbohidrat

Pendahuluan Didalam dunia hayati kita mengenal berbagai jenis karbohidrat, baik yang berfungsi sebagai pembangun struktur maupun yang berperan fungsional dalam proses metabilisme. Berbagai uji telah dikembangkan untuk analisis baik kualitatif maupun kuantitatif terhadap keberadaan karbohidrat. Mulai dari yang membedakan karbohidrat dari senyawa lain sampai pada yang mampu membedakan jenis-jenis karbohidrat secara spesifik. Uji molisch tidak spesifik terhadap karbohidrat, akan tetapi hasil yang negatif menunjukkan bahwa larutan yang diperiksa tidak mengandung karbohidrat. Pereaksi molisch terdiri dari larutan 5% ά-naftol dalam alkohol 95%. Pereaksi ini berdasarkan pembentukan furfural atau turunan-turunan dari karbohidrat yang dihedratasi oleh asam pekat. Reaksi yang terjadi dengan ά-naftol akan membentuk persenyawaan berwarna. Uji benedict merupakan larutan-larutan tembaga yang basa, yang bila direduksi oleh karbohidrat yang mempunyai gugus aldehid atau keton bebas akan membentuk kupri oksida. Pembentukan senyawa ini dapat dilihat pada pembentukan warna hasil reaksi. Uji barfoed digunakan untuk membedakan monosakarida dengan disakarida. Karbohirdrat didalam suasana asam lemah akan mengalami perubahan reaktivitas. Karbohidrat dengan reaktivitas rendah akan menghilangkan daya reduksinya, sedangkan karbohidrat dengan reaktivitas tinggi akan mempertahankan daya reduksinya. Uji fermentasi. Pada suasana anaerob, karbohidrat akan dicerna dan dirubah bentuknya menjadi etilalkohol (C2H5OH) dan gas karbondioksida (CO2) oleh ragi. Uji selliwanof spesifik untuk ketosa. Uji ini berdasarkan reaksi atas pembentukan 4-hidroksi metil furfural yang membentuk senyawa berwarna dengan adanya resorsionol atat 1.3-dihidroksi benzen. Uji osazon, Aldosa atau ketosa dapat bereaksi dengan hidrazin membentuk suatu hidrazon. Hidrazin yang berlebih dengan hidrazon akan membentuk suatu osazon. Uji tauber, pentosa dengan bendizin didalam asam asetat glasial akan membentuk suatu senyawa. Sedangkan pada uji iod. Iodium dengan pati dapat membentuk suatu ikatan kompleks yang berwarna biru.

http://sri-rahayu-kimia.blogspot.com/2012/04/laporan-praktikum-karbohidrat.html

Tujuan Percobaan Percobaan bertujuan untuk mengamati struktur beberapa karbohidrat melalui sifat reaksinya dengan beberapa reagen uji.

Alat dan Bahan Alat yang digunakan adalah tabung reaksi, pipet, pipet tetes, penangas air, mortar, tabung fermentasi, inkubator, papan uji dan mikroskop. Bahan yang digunakan adalah pereaksi molisch, pereaksi benedict, pereaksi barfoed, pereaksi selliwanof, fenil hidrazin Na asetat kering, pereaksi tauber, iod encer, larutan glukosa 1%, fruktosa 1%, sukrosa 1%, laktosa 1%, maltosa 1%, pati 2%, asam sulfat pekat, fosfomolibdat, ragi roti, NaOH 10%, arabinosa 1%, gum arab 1%, tepung gum arab dan tepung pati.

Metode Uji molisch dilakukan dengan cara mencampurkan 5 ml bahan yang akan diperiksa dengan 2 tetes pereaksi molisch, lalu diaduk kemudian ditambah 3 ml asam sulfat pekat melalui dinding tabung reaksi. Bahan diuji adalah larutan glukosa 1%, fruktosa 1%, sukrosa 1%, laktosa 1%, maltosa 1%, pati 2%. Uji benedict dilakukan dengan cara mula-mula dimasukkan 5 ml pereaksi benedict dalam tabung reaksi lalu ditambah dengan 8 tetes bahan yang akan diuji yang kemudian diaduk dan didihkan diatas penangas air selama 5 menit lalu didinginkan dan diamati endapan serta warna yang terjadi. Bahan diuji adalah larutan glukosa 1%, fruktosa 1%, sukrosa 1%, laktosa 1%, maltosa 1%, pati 2%. Uji barfoed dilakukan dengan cara mencampurkan 1 ml pereaksi barfoed dengan bahan yang akan diuji, lalu dipanaskan pada air mendidih selama 3 menit kemudian didinginkan dan ditambahkan 1 ml fosfomolibdat. Dikocok dan diamati warna yang terjadi. Bahan diuji adalah larutan glukosa 1%, fruktosa 1%, sukrosa 1%, laktosa 1%, maltosa 1%, pati 2%. Ui fermentasi. Mula-mula digerus campuran 20 ml larutan bahan dengan 2 gram ragi roti sampai terjadi suspensi yang homogen, kemudian suspensi teresbut dimasukkan dalam tabung fermentasi, lalu tabung tersebut dimasukkan dalam incubator dengan suhu 36oC dan diperiksa setiap selang 30 menit selama 3 kali. Bahan yang digunakan adalah larutan glukosa 1%, fruktosa 1%, sukrosa 1%, laktosa 1%, maltosa 1%, pati 2%. Uji selliwanof dilakukan dengan memasukkan 5 ml pereaksi selliwanof dalam tabung reaksi dan ditambahkan beberapa tetes bahan yang akan ditambah, lalu dididihkan selama 30 detik dan diamati warna yang terbentuk. Bahan yang diuji adalah larutan glukosa 1%, fruktosa 1%, sukrosa 1%, laktosa 1%, maltosa 1%, pati 2%.

Uji osazon dilakukan dengan mencampurkan fenil hidrazin Na asetat kering dengan 5 ml larutan percobaan, lalu dikocok dan dipanaskan didalam penangas air, kemudian didinginkan dan diperiksa endapan dibawah mikroskop. Larutan yang diuji adalah larutan glukosa 1%, fruktosa 1%, sukrosa 1%, laktosa 1%, maltosa 1%, pati 2%. Uji tauber dilakukan dengan memasukkan satu tetes larutan uji dan 2 ml pereaksi tauber, lalu dipanaskan sampai mendidih dan didinginkan dengan cara direndam dalam air dingin, kemudian ditambahkan sejumlah air untuk memperjelas warna. Larutan bahan yang diuji adalah glukosa 1%, fruktosa 1%, arabinosa 1% dan gum arab 1%. Uji pati dilakukan dengan memasukkan sedikit tepung pati dalam papan uji, kemudian ditambah sedikit larutan iod encer dan diamati warna yang terjadi. Uji ini juga dilakukan terhadap larutan gum arab.

Hasil PengamatanTabel 1. Hasil uji molisch terhadap beberapa jenis karbohidrat

Larutan Hasil Pengamatan Keterangan

Glukosa 1% Adanya cincin ungu muda +

Fruktosa 1% Adanya cincin ungu +

Sukrosa 1% Adanya cincin coklat +

Laktosa 1% Adanya cicin ungu merah +

Lanjutan tabel 1.

Maltosa 1% Adanya cincin ungu coklat +

Pati 1% Adanya cincin ungu +

Tabel 2. Hasil uji benedict terhadap beberapa jenis karbohidrat


Glukosa 1% Adanya endapan merah bata +

Fruktosa 1% Adanya endapan merah bata +

Sukrosa 1% Larutan berwarna biru kehijauan -

Laktosa 1% Adanya endapan merah bata +

Maltosa 1% Larutan tetap berwarna biru -

Pati 1% Larutan tidak berwarna -

Tabel 3. Hasil uji barfoed terhadap beberapa jenis karbohidrat


Glukosa 1% Larutan biru muda, endapan merah bata +

Fruktosa 1% Larutan biru pekat, endapan merah bata +

Sukrosa 1% Larutan menjadi biru pekat +

Laktosa 1% Larutan tetap berwarna biru muda -

Maltosa 1% Larutan menjadi biru muda +

Pati 1% Larutan menjadi biru muda +

Tabel 4. Hasil uji fermentasi terhadap beberapa jenis karbohidrat.

Larutan Panjang udara (cm) menit ke -

30 60 90

Glukosa 1% 6 9.5 10

Fruktosa 1% 0.5 3.5 7

Sukrosa 1% 3 9 10.5

Laktosa 1% 0.8 1.2 1.5

Maltosa 1% 0.8 1.6 2.1

Pati 1% 0.8 1.3 1.7

Tabel 5. Hasil uji selliwanof terhadap beberapa jenis karbohidrat


Glukosa 1% Larutan tetap tidak berwarna -

Fruktosa 1% Larutan menjadi merah muda +

Sukrosa 1% Larutan menjadi merah pudar +

Laktosa 1% Larutan menjadi merah muda +

Maltosa 1% Larutan tetap tidak berwarna -

Pati 1% Larutan tetap tidak berwarna -

Tabel 6. Hasil uji osazon terhadap beberapa jenis karbohidrat


Glukosa 1% Ada kristal +

Fruktosa 1% Ada kristal +

Sukrosa 1% Ada kristal +

Laktosa 1% Tidak ada kristal -

Maltosa 1% Ada kristal +

Pati 1% Ada kristal +

Tabel 7. Hasil uji tauber terhadap beberapa jenis karbohidrat.


Glukosa 1% Larutan berwarna kuning kecoklatan -

Fruktosa 1% Larutan berwarna kuning -

Arabinosa 1% Larutan berwarna merah ceri +

Gum arab 1% Larutan berwarna kuning -

Tabel 8. Hasil uji iod terhadap beberapa jenis karbohidrat.

Bahan Hasil Pengamatan Keterangan

Tepung pati Larutan kuning menjadi biru tua +

Larutan gum arab Larutan tidak berwarna menjadi kuning -

Pembahasan Karbohidrat adalah polihidroksi aldehid atau keton atau senyawa yang menghasilkan senyawa-senyawa ini bila dihidrolisa. Terdapat tiga golongan utama karbohidrat yaitu monosakarida, oligosakarida dan polisakarida.Monosakarida atau gula sederhana adalah karbohidrat yang tidak dapat dihihrolisis menjadi senyawa yang lebih sederhana.oligosakarida adalah karbohidrat yang terdiri dari rantai pendek unit monosakarida yang digabungkan bersama-sama oleh ikatan kovalen.dintaranya yang paling sederhana adalah disakarida. Polisakarida adalah rantai panjang yang mempunyai ratusan atau ribuan unit monosakarida. Pada percobaan ini akan diuji beberapa jenis karbohidrat untuk mengetahui sifat-sifat dari jenis karbohidrat tersebut. Karbohidrat yang akan diuji adalah glukosa dan fruktosa yang merupakan monosakarida, sukrosa, laktosa dan maltosa yang merupakan disakarida. Dan pati serta gum arab yang merupakan polisakarida. Uji molish dilakukan untuk mengetahui ada atau tidaknya karbohidrat pada suatu bahan. Meskipun uji ini tidak spesifik terhadap karbohidrat, tapi apabila hasil reaksi yang diperoleh adalah negatif menunjukkan bahwa tidak ada bahan yang diperiksa tidak mengandung karbohidrat. Pereaksi ini terdiri dari 5% ά-naftol dalam alkohol 95%. Uji ini harus ditambahkan asam sulfat pekat yang berfungsi untuk menghidrasi turunan-turunan karbohidrat atau membentuk furfural warna yang terjadi pada reaksi yang positif adalah warna ungu yang disebabkan kondensasi furfural atau derivat dengan alfa naftol. Glukosa 1%, fruktosa 1%, laktosa 1%, sukrosa 1%, maltosa 1% dan pati 2% memberikan hasil yang positif pada uji ini. Uji benedict akan mengoksidasi gula pada gugus karbonil, dan senyawa pengoksidasi akan menjadi reduksi. Monosakarida segera mereduksi senyawa-senyawa pengoksidasi seperti ferisianida, hidrogen peroksida atau ion kupri (Cu2+). Gula-gula yang mampu mereduksi senyawa pengoksidasi disebut gula pereduksi. Sifat ini berguna dalam analisa gula, dengan mengukur jumlah dari senyawa pengoksidasi yang tereduksi

oleh suatu gula tertentu, dapat menduga konsentrasi gula tersebut. Glukosa 1%, fruktosa 1% dan laktosa 1% memberikan hasil yang positif pada uji ini, hal tersebut menunjukkan bahwa pada glukosa, fruktosa dan laktosa terdapat gula pereduksi. Sedangkan pada sukrosa 1%, maltosa 1% dan pada uji ini menunjukkan hasil yang negatif yang menandakan tidak adanya gula pereduksi. Uji barfoed digunakan untuk membedakan monosakarida dari disakarida. Karbohidrat dalam asam lemah akan mengalami perubahan reaktivitas. Karbohidrat dengan reaktivitas rendah akan menurunkan daya reduksinya dan sebaliknya pada reaktivitas tinggi akan tetap mempertahankan daya reduksinya. Uji barfoed harus ditambahkan fosfomolibdat agar larutan berwarna biru. Glukosa 1%, fruktosa 1%, sukrosa, maltosa 1% dan pati 2% memberikan hasil yang positif pada percobaan ini, sedangkan laktosa 1% memberikan hasil yang negatif pada uji ini. Uji fermentasi. Karbohidrat akan dicerna dan diubah bentuknya menjadi etilalkohol (C2H5OH) dan gas karbondioksida (CO2) oleh ragi dalam keadaan anaerob. Karbondioksida merupakan produk sampingan dari reaksi karbohidrat dengan ragi, oleh karena itu pada percobaan, semakin banyak korbondioksida yang dihasilkan pada tabung, semakin besar pula kereaktifan karbohidrat tersebut dengan ragi. Menit ke 30 diperoleh bahwa kereaktifan glukosa sangat tinggi dengan ragi ditandakan dengan kadar CO2 pada tabung sebesar 6 cm. menit ke 60 diperoleh kadar tertinggi pada glukosa dan pada menit ke 90 diperoleh kadar CO2 tertinggi pada sukrosa. Uji selliwanof merupakan uji yang spesifik terhadap ketosa. Reaksi ini berdasarkan pembentukan 4 hidroksi metal fufural yang membentuk senyawa berwarna dengan adanya resorsionol atat 1.3-dihidroksi benzen. Jika reaksi ini menunjukkan hasil yang positif maka larutan akan berwarna merah. Fruktosa 1%, laktosa 1% dan sukrosa 1% memberikan hasil yang positif pada uji ini, ditunjukkan dengan larutan yang menjadi warna merah. Sedangkan glukosa 1%, maltosa 1% dan pati 2% menujukkan hasil yang negatif dengan larutan yang tidak berwarna. Uji osazon. Percobaan ini akan mengamati dengan mikroskop endapan karbohidrat yang terbentuk sesudah diatambahkan dengan fenil hidrazin Na-asetat yang berlebih. Ketosa akan bereaksi dengan hidrazin membentuk suatu hidrazon. Hidrazin yang berlebih dengan hidrazon akan membentuk suatu osazon. Fruktosa 1%, glukosa 1%, sukrosa 1%, maltosa 1% dan pati 2% menunjukkan hasil yang positif pada percobaan ditunjukkan terbentuknya kristal pada endapan karbohidrat yang diamati dengan mikroskop. Sedangkan laktosa 1% memberikan hasil yang negatif pada uji ini. Pentosa dengan bendizin membentuk suatu senyawa senyawa yang berwarna merah ceri. Arabinosa memberikan hasil yang positif pada uji ini dengan terbentunya larutan yang berwarna merah ceri, hal ini menunjukkan bahwa arabinosa merupakan suatu pentosa. Sedangkan glukosa 1%, fruktosa 1% dan gum arab menunjukkan hasil

yang negatif pada uji ini dengan warna larutan kuning, yang menunjukkan bahwa glukosa 1%, fruktosa 1% dan gum arab bukan merupakan pentosa. Pati tersusun dari unit-unit glukosa yang dihubungkan oleh ikatan 1.4 – ά – glikosida, walaupun rantai ini dapat pula mempunyai percabangan karena adanya ikatan 1.6- ά-glikosida. Hidrolisis parsial pati menghasilkan maltosa, dan hidrolisis selengkapnya akan memberikan D-glukosa. Pati menujukkan hasil yang positif pada uji iod. Pati dapat dipisahkan oleh macam-macam pelarut dan teknik pengendapan menjadi dua bagian yaitu amilosa dan amilopektin. Amilosa 20% dari unit penyusun pati, unit-unit glukosa (50-300) membentuk rantai lurus yang berikatan menurut ikatan 1.4 yang berbentuk heliks dalam larutan, karena adanya ikatan dengan konfigurasi alfa pada setiap unit glukosa. Bentuk ini dengan enam unit glukosa per putaran heliks menyebabkan amilosa membentuk kompleks dengan macam-macam molekul kecil yang dapat masuk ke dalam kumparannya. Pati yang membentuk kompleks berwarna biru tua merupakan contoh dari pembentukan kompleks tersebut. Sedangkan gum arab menunjukan hasil yang negatif pada uji iod.

Simpulan Uji iod, glukosa 1%, fruktosa 1%, sukrosa 1%, laktosa 1%, maltosa 1%, pati 2% meberikan hasil yang positif. Uji benedict, glukosa 1%, fruktosa 1% dan laktosa 1% memberikan hasil yang positif, sedangkan sukrosa 1%, maltosa 1% dan pati 2% memberikan hasil yang negatif. Uji barfoed, glukosa 1%, fruktosa 1%, maltosa 1%, sukrosa 1% dan pati 2% memberikan hasil yang positif sedangkan laktosa 1% memberikan hasil yang negatif uji fermentasi pada menit ke 30 diperoleh panjang gas CO2 pada tabung glukosa 1% 6 cm, fruktosa 1% 0.5 cm, laktosa 1%, maltosa 1% dan pati 2% masing-masing 0.8 cm dan sukrosa 1% 3 cm. menit ke 60 panjang gas CO 2pada tabung glukosa 1% 9.5 cm, fruktosa 1% 3.5 cm, sukrosa 1% 9 cm, laktosa 1% 1.2 cm, maltosa 1% 1.6 cm dan pati 2% 1.3 cm. menit ke 90 diperoleh panjang CO2 dalam tabung glukosa 1% 10 cm, fruktosa 1% 7 cm, laktosa 1% 1.5 cm, sukrosa 1% 10.5 cm, maltosa 1% 2.1 dan pati 2% 1.7 cm. Uji selliwanof, fruktosa 1%, laktosa 1% dan sukrosa 1% memberikan hasil yang positif, sedangkan glukosa 1%, maltosa 1% dan pati 2% memberikan hasil yang negative. Uji osazon, glukosa 1%, fruktosa 1%, maltosa 1%, sukrosa 1%, pati 2% memberikan hasil yang positif, sedangkan laktosa 1% memberikan hasil yang negative. Uji tauber, arabinosa 1% memberikan hasil yang positif, sedangkan glukosa 1%, fruktosa 1% dan gum arab 1% memberikan hasil yang negative. Dan uji iod, pati 2% memberikan hasil yang positif sedangkan larutan gum arab memberikan hasil yang negative.

Daftar Pustaka

Hart Harold. 1983. Kimia Organik. Achmadi S, Penerjemah; Jakarta: Erlangga. Terjemahan

dari: Organic Chemistry.

Koolman Jan. Klaus HR. 1994. Atlas Berwarna dan Teks Biokimia. Wanandi SI, Penerjemah;

Jakarta: Hipokrates. Terjemahan dari: Color Atlas Of Biochemistry.

Lehninger AL. 1982. Dasar-Dasar Biokimia. Thenawijaya M, Penerjemah; Jakarta: Erlangga.

Terjemahan dari:Principles Of Biochemistry.

http://kim-azil.blogspot.com/2011/11/laporan-praktikum-uji-karbohidrat.html

Laporan Praktikum Uji Karbohidrat

BAB I

PENDAHULUAN

I.1 LATAR BELAKANG

Karbohidrat merupakan salah satu senyawa organik biomakromolekul alam yang banyak ditemukan dalam makhluk hidup terutama tanaman. Pada tanaman yang berklorofil,karbohidrat dibentuk melalui reaksi antara karbondioksida dan molekul air dengan bantuan sinar matahari, disebut fotosientesis (Tim Dosen, 2010).

nCO2+ nH2O (CH2O)n + nO2

Karbohidrat memegang peranan penting dalam alam karena merupakan sumber energi utama bagi umat manusia dan hewan yang harganya relatif murah. Karbohidrat yang dihasilkan adalah karbohidrat sederhana glukosa. Di samping itu dihasilkan oksigen (O2) yang lepas di udara (Almatsier, 2010).



Karbohidrat merupakan bahan yang sangat diperlukan tubuh manusia, hewan dan tumbuhan di samping lemak dan protein. Senyawa ini dalam jaringan merupakan cadangan makanan atau energi yang disimpan dalam sel. Karbohidrat yang dihasilkan oleh tumbuhan merupakan cadangan makanan yang disimpan dalam akar, batang, dan biji sebagai pati (amilum). Karbohidrat dalam tubuh manusia dan hewan dibentuk dari beberapa asam amino, gliserol lemak, dan sebagian besar diperoleh dari makanan yang berasal dari tumbuh-tumbuhan (Sirajuddin dan Najamuddin, 2011).

Berdasarkan pernyataan di atas bahwa sebagian besar karbohidrat diperoleh dari makanan akan tetapi terkadang kita tidak mengetahui bahwa karbohidrat jenis apa yang kita makan dan bagaimana sifat-sifat serta fungsi dari karbohidrat tersebut. Oleh karena itu dilakukanlah percobaan mengenai karbohidrat ini.

I.2 TUJUAN PERCOBAAN

I.2.1 TUJUAN UMUM

1.Mengidentifikasi adanya karbohidrat dalam suatu bahan.

2.Mengetahui adanya reaksi-reaksi yang terjadi pada identifikasi

karbohidrat.

3. Mengetahui beberapa sifat kimia karbohidrat.

4. Mengetahui kadar gula pereduksi dalam suatu bahan.

I.2.2 TUJUAN KHUSUS

1. Uji Molisch

Untuk membuktikan adanya karbohidrat secara kualitatif.

2. Uji Iodium

Untuk menentukan polisakarida.

3. Uji Benedict

Membuktikan adanya gula reduksi.

4. Uji Barfoed

Membedakan antara monosakarida dan disakarida.

5. Uji Seliwanoff

Membuktikan adanya kentosa.

6. Uji Osazon

Membedakan bermacam-macam karbohidrat dari gambar kristalnya.

7. Uji Asam Musat

Membedakan antara glukosa dan galaktosa.

8. Hidrolisis Pati

Mengidentifikasi hasil hidrolisis Amilum (pati).

9. Hidrolisis Sukrosa

Mengidentifikasi hasil hidrolisis sukrosa.

I.3 PRINSIP PERCOBAAN

1. Uji Molisch

Dilakukan untuk menentukan karbohidrat secara kualitatif. Larutan uji dicampur dengan pereaksi Molisch kemudian dialirkan H2SO4 dengan hati-hati melalui dinding tabung agar tidak bercampur. Hasil positif ditunjukkan dengan terbentuknya cincin berwarna ungu pada batas antara kedua lapisan.

2. Uji Iodium

Dilakukan untuk menentukan polisakarida. Larutan uji dicampurkan dengan larutan iodium. Hasil positif ditandai dengan amilum dengan iodium berwarna biru, dan dekstrin dengan iodium berwarna merah anggur.

3. Uji Benedict

Dilakukan untuk membuktikan adanya gula pereduksi. Larutan uji dicampurkan dengan pereaksi Benedict kemudian dipanaskan. Hasil positif ditunjukkan dengan terbentuknya endapan berwarna biru kehijauan, merah, atau kuning tergantung kadar gula pereduksi yang ada.

4. Uji Barfoed

Dilakukan untuk membedakan antara monosakarida dan disakarida. Larutan uji dicampurkan dengan pereaksi Barfoed kemudian dipanaskan. Hasil positif ditunjukkan dengan monosakarida menghasilkan endapan Cu2O berwarna merah bata.

5. Uji Seliwanoff

Dilakukan untuk membuktikan adanya kentosa (fruktosa). Larutan uji dicampurkan dengan pereaksi Seliwanoff kemudian dipanaskan. Hasil positif ditunjukkan dengan terbentuknya larutan berwarna merah orange.

6. Uji Osazon

Semua karbohidrat yang mempunyai gugus aladehida atau keton bebas membentuk hidrazon atau osazon bila dipanaskan bersama fenilhidrazin berlebih. Osazon yang terjadi mempunyai bentuk kristal dan titik lebur yang spesifik. Osazon dari disakarida larut dalam air mendidih dan terbentuk kembali bila didinginkan. Namun, sukros tidak membentuk osazon karena gugus aldehida atau keton yang terikat pada monomernya sudah tidak bebas. Sebaliknya, osazon monosakarida tidak larut dalam air mendidih.

7. Uji Asam Musat

Dilakukan untuk membedakan antara glukosa dan galaktosa. Larutan uji dicampurkan dengan HNO3 pekat kemudian dipanaskan. Karbohidrat dengan asam nitrat pekat akan menghasilkan asam yang dapat larut. Namun, laktosa dan galaktosa menghasilkan asam musat yang dapat larut.

8. Hidrolisis Pati

Untuk mengidentifikasi hasil hidrolisis amilum digunakan larutan amilum 1%, larutan iodium, pereaksi Benedict, larutan HCl 2 N, Larutan NaOH 2%. Amilum ditambahkan dengan HCl lalu dipanaskan. Dilakukan uji iodium setiap 3 menit hingga warnanya berubah jadi kuning pucat. Kemudian larutan dihidrolisis lagi selama 5 menit lalu didinginkan dan dinetralkan dengan NaOH 2%,. Lalu diuji dengan pereaksi Benedict.


Untuk mengidentifikasi hasil hidrolisis sukrosa digunakan larutan sukrosa 1%, pereaksi Benedict, pereaksi Seliwanoff, pereaksi Barfoed, larutan HCl pekat, larutan NaOH 2% sebagai bahannya. larutan sukrosa ditambahkan dengan HCl pekat lalu dipanaskan selama 45 menit. Setelah didinginkan dinetralkan dengan NaOH 2%. Lalu diuji dengan pereaksiBenedict, Seliwanoff, dan Barfoed.

I.4 MANFAAT PERCOBAAN

1. Kita bisa membedakan jenis-jenis karbohidrat dengan sifat-sifatnya.

Dengan melakukan praktikum ini, diharapkan kita dapat mengetahui tentang karbohidrat, manfaatnya bagi mahluk hidup, dan sumber-sumber pangan yang mengandung karbohidrat.

Melalui praktikum ini kita mengetahui adanya gula reduksi yamg terkandung dalam suatu bahan.

Melalui praktikum ini kita mengetahui sifat-sifat karbohidrat.

BAB II

TINJAUAN PUSTAKA

Karbohidrat merupakan persenyawaan antara karbon, hidrogen, dan oksigen yang terdapat di alam dengan rumus empiris Cn(H2O)n. Melihat rumus empiris tersebut, maka senyawa ini pernah diduga sebagai ”hidrat dari karbon”, sehingga disebut sebagai karbohidrat. Sejak tahun 1880 telah disadari bahwa gagasan ”hidrat dari karbon” merupakan gagasan yang tidak benar. Hal ini karena ada beberapa senyawa yang mempunyai rumus empiris seperti karbohidrat tetapi bukan karbohidrat (Tim Dosen, 2010).

Asam asetat misalnya dapat ditulis (C2(H2O)2 dan formaldehid dengan rumus CH2O atau HCHO. Dengan demikian suatu senyawa termasuk karbohidrat tidak hanya ditinjau dari rumus empirisnya saja, tetapi yang paling penting ialah rumus strukturnya (Tim Dosen, 2010).

Dari rumus struktur akan terlihat bahwa ada gugus fungsi penting yang terdapat pada molekul karbohidrat yaitu gugus fungsi karbonil(aldehid dan keton). Gugus-gugus fungsi itulah yang menentukan sifat senyawa tersebut. Berdasarkan gugus yang ada pada molekul karbohidrat dapat didefinisikan sebagai polihidroksialdehida danpolihidroksiketon atau senyawa yang menghasilkannya pada proses hidrolisis (Tim Dosen, 2010).

Di negara-negara sedang berkembang kurang lebih 80% energi makanan berasal dari karbohidrat. Menurut Neraca Bahan Makanan 1990 yang dikeluarkan oleh Biro Pusat Statistik, di Indonesia energi berasal dari karbohidrat merupakan 72% jumlah energi rata-rata sehari yang dikonsumsi oleh penduduk. Di negara-negara maju seperti

AmerikaSerikat dan Eropa Barat, angka ini lebih rendah, yaitu rata-rata 50%. Nilai energi karbohidrat adalah 4 kkal per gram (Almatsier, 2010).

Karbohidrat yang penting dalam ilmu gizi dibagi dalam dua golongan, yaitu karbohidrat sederhana dan karbohidrat kompleks. Sesungguhnya semua jenis karbohidrat terdiri atas karbohidrat sederhana atau gula sederhana; karbohidrat kompleks mempunyai lebih dari dua unit gula sederhana dalam satu molekul (Almatsier, 2010).

Karbohidrat sederhana terdiri atas (Almatsier, 2010) :

Monosakarida yang terdiri atas jumlah atom C yang sama dengan molekul air, yaitu [C6(H2O)6] dan [C5(H2O)5];

Disakarida yang terdiri atas ikatan 2 monosakarida di mana untuk tiap 12 atom C ada 11 molekul air [C12(H2O)11];

Gula alkohol merupakan bentuk alkohol dari monosakarida

Oligosakarida adalah gula rantai pendek yang dibentuk oleh galaktosa, glukosa, dan fruktosa.

Monosakrida adalah karbohidrat yang tidak dapat dihidrolisis menjadi karbohidrat yang lebih sederhana. Monosakarida ini dapat diklasifikasikan sebagai triosa, tetrosa, pentosa, heksosa, atau heptosa, bergantung pada jumlah atom karbon; dan sebagai aldosa atau ketosa bergantung pada gugus aldehida atau keton yang dimilki senyawa tersebut (Murray dkk, 2009).

Gliseraldehid adalah aldosa yang paling sederhana, dan dihidroksiasetan adalah ketosa yang paling sederhana pula. Aldosa atau ketosa lainnya dapat diturunkan dari gliseraldehida atau dihidroksiaseton dengan cara menambahkan atom karbon, masing-masing membawa gugus hidroksil (Tim Dosen, 2010).

Sebagian besar monosakarida dikenal sebagai heksosa, karena terdiri atas 6-rantai atau cincin karbon. Atom-atom hidrogen dan oksigen terikat pada rantai atau cincin ini secara terpisah atau sebagai gugus hidroksil (OH). Ada tiga jenis heksosa yang penting dalam ilmu gizi, yaitu glukosa, fruktosa, dan galaktosa. Ketiga macam monosakarida ini mengandung jenis dan jumlah atom yang sama, yaitu 6 atom karbon, 12 atom hidrogen, dan 6 atom oksigen. Perbedaannya hanya terletak pada cara penyusunan atom-atom hidrogen dan oksigen di sekitar atom-atom karbon. Perbedaan dalam susunan atom inilah yang menyebabkan perbedaan dalam tingkat kemanisan, daya larut, dan sifat lain ketiga monosakarida tersebut (Almatsier, 2010).

Disakarida adalah produk kondensasi dua unit monosakarida. Ada empat jenis disakarida yaitu sukrosa atau sakarosa, maltosa, laktosa, dan trehalosa. Trehalosa tidak begitu penting dalam ilmu gizi. Kedua monosakarida yang saling mengikat berupa ikatan glikosidik melalui satu atom oksigen. Ikatan glikosidik ini biasanya terjadi antara atom C nomor 1 dengan atom C nomor 4 dan membentuk ikatan alfa, dengan melepaskan satu molekul. Hanya karbohidrat yang unit monosakaridanya terikat dalam bentuk alfa dapat dicernakan. Disakarida dapat dipecah kembali menjadi dua molekul monosakarida melalui hidrolisis. Glukosa terdapat pada empat jenis disakarida; monosakarida lainnya adalah fruktosa dan galaktosa (Almatsier, 2010).

Gula alkohol terdapat di dalam alam dan dapat pula dibuat secara sintetis. Ada empat jenis gula alkohol, yaitu sorbitol, manitol, dulsitol, dan inositol. Sorbitol terdapat di dalam beberapa jenis buah dan secara komersial dibuat dari glukosa. Sorbitol banyak digunakan dalam minuman dan makanan khusus pasien diabetes, seperti minuman ringan, selai dan kue-kue. Manitol dan dulsitol adalah alkohol yang dibuat dari monosakarida manosa dan galaktosa. Secara komersial, manitol diekstraksi dari sejenis rumput laut. Kedua jenis alkohol ini banyak digunakan dalam industri pangan. Sedangkan inositol merupakan alkohol siklis yang menyerupai glukosa. Inositol terdapat dalam banyak bahan makanan, terutama dalam sekam serealia. Bentuk esternya dengan asam fitat menghambat absorpsi kalsium dan zat besi dalam usus halus (Almatsier, 2010).

Oligosakarida adalah produk kondensasi tiga sampai sepuluh monosakarida. Sebagian besar oligosakarida tidak dicerna oleh enzim dalam tubuh manusia (Murray dkk, 2009).

Rafinosa, stakiosa, dan verbaskosa adalah oligosakarida yang terdiri atas unit-unit glukosa, fruktosa dan galaktosa. Ketiga jenis oligosakarida ini terdapat di dalam biji tumbuh-tumbuhan dan kacang-kacangan.seperti halnya polisakarida nonpati, oligosakarida ini di dalam usus besar mengalami fermentasi (Almatsier, 2010).

Untuk karbohidrat kompleks terdiri atas (Almatsier, 2010):

Polisakarida yang terdiri atas lebih dari dua ikatan monosakarida.

Serat yang dinamakan juga polisakarida nonpati.

Polisakarida tersusun dari banyak unit monosakarida yang terikat antara satu dengan yang lain melalui ikatan glikosida. Hidrolisis total dari polisakarida menghasilkan monosakarida (Tim Dosen, 2010).

Polisakarida dapat dihidrolisis oleh asam atau enzim tertentu yang kerjanya spesifik. Hidrolisis sebagian polisakarida menghasilkan oligosakarida dan dapat digunakan untuk menentukan struktur molekul polisakarida (Sirajuddin dan Najamuddin, 2011).

Karbohidrat kompleks ini dapat mengandung sampai tiga ribu unit gula sederhana yang tersusun dalam bentuk rantai panjang lurus atau bercaban. Gula sederhana ini terutama adalah glukosa. Jenis polisakarida yang penting dalam ilmu gizi adalah pati, dekstrin, glikogen, dan polisakarida nonpati (Almatsier, 2010).

Pati merupakan simpanan karbohidrat dalam tumbuh-tumbuhan dan merupakan karbohidrat utama yang dimakan manusia di seluruh dunia. Pati terutama terdapat dalam padi-padian, biji-bijian, dan umbi-umbian. Jumlah unit glukosa dan susunannya dalam satu jenis pati berbeda satu sama lain bergantung jenis tanaman asalnya. Rantai glukosa terikat satu sama lain melalui ikatan alfa yang dapat dipecah dalam proses pencernaan (Almatsier, 2010).

Dekstrin merupakan produk antara pada pencernaan pati atau dibentuk melalui hidrolisis parsial pati. Dekstrin merupakan sumber utama karbohidrat dalam makanan. Cairan glukosa dalam hal ini merupakan campuran dekstrin, maltosa, glukosa, dan air. Dekstrin maltosa, suatu produk hasil hidrolisis parsial pati, digunakan sebagai makanan bayi karena tidak mudah mengalami fermentasi dan mudah dicernakan (Almatsier, 2010).

Glikogen dinamakan juga pati hewan karena merupakan bentuk simpanan karbohidrat di dalam tubuh manusia dan hewan, yang terutama terdapat di dalam hati dan otot. Glikogen terdiri atas unit-unit glukosa dalam bentuk rantai lebih bercabang. Struktur yang lebih bercabang ini membuat glikogen lebih mudah dipecah. Glikogen dalam otot hanya dapat digunakan untuk keperluan energi di dalam otot tersebut, sedangkan glikogen dalam hati dapat digunakan sebagai sumber energi untuk keperluan semua sel tubuh. Kelebihan glukosa melampaui kemampuan menyimpannya dalam bentuk glikogen akan diubah menjadi lemak dan disimpan dalam jaringan lemak. Glikogen tidak merupakan sumber karbohidrat yang penting dalam bahan makanan, karena hanya terdapat di dalam makanan berasal dari hewani dalam jumlah terbatas (Almatsier, 2010).

Glikogen mempunyai struktur empiris yang serupa dengan amilum pada tumbuhan. Pada proses hidrolisis, glikogen menghasilkan pula glukosa karena baik amilum maupun glikogen, tersusun dari sejumlah satuan glukosa. Glikogen dalam air akan membentuk koloid dan memberikan warna merah dangan larutan iodium. Pembentukan glikogen dari glukosa dalam sel tubuh diatur oleh hormon insulin dan prosesnya disebut

glycogenesis. Sebaliknya, proses hidrolisis glikogen menjadi glukosa disebut glycogenolisis (Sirajuddin dan Najamuddin, 2011)

Mengenai penjelasan tentang serat, akhir-akhir ini banyak mendapat perhatian karena peranannya dalam mencegah berbagai penyakit. Definisi terakhir yang diberikan untuk serat makanan adalah polisakarida nonpati yang menyatakan polisakarida dinding sel. Ada dua golongan serat, yaitu yang tidak dapat larut dan yang dapat larut dalam air. Serat yang tidak dapat larut dalam air adalah selulosa, hemiselulosa, dan lignin. Serat yang larut dalam air adalah pektin, gum, mukilase, glukan dan algal (Almatsier, 2010).

Selulosa, hemiselulosa, dan lignin merupakan kerangka struktural semua tumbuh-tumbuhan. Selulosa merupakan bagian utama dinding sel tumbuh-tumbuhan yang terdiri atas polimer linier panjang hingga 10.000 unit glukosa terikat dalam bentuk ikatan beta. Polimer karbohidrat dalam bentuk ikatan beta tidak dapat dicernakan oleh enzim pencernaan manusia (Almatsier, 2010).

Pektin, gum, dan mukilase terdapat di sekeliling dan di dalam sel tumbuh-tumbuhan. Ikatan-ikatan ini larut atau mengembang di dalam air sehingga membentuk gel. Oleh karena itu, di dalam industri pangan digunakan sebagai bahan pengental, emulsifer,dan stabilizer (Almatsier, 2010).

Pada umumnya, karbohidrat berupa serbuk putih yang mempunyai sifat sukar larut dalam pelarut nonpolar, tetapi mudah larut dalam air. Kecuali polisakarida bersifat tidak larut dalam air. Amilum dengan air dingin akan membentuk suspensi dan bila dipanaskan akan terbentuk pembesaran berupa pasta dan bila didinginkan akan membentuk koloid yang kental semacam gel (Sirajuddin dan Najamuddin, 2011).

Adapun fungsi dari karbohidrat diantaranya (Almatsier, 2010):

Sumber energi : fungsi utama karbohidrat adalah menyediakan energi bagi tubuh. Karbohidrat merupakan sumber utama energi bagi penduduk di seluruh dunia, karena banyak didapat alam dan harganya relatif murah. Karbohidrat di dalam tubuh berada dalam sirkulasi darah sebagai glukosa untuk keperluan energi segera;sebagian disimpan sebagai glikogen dalam hati dan jaringan otot, dan sebagian diubah menjadi lemak untuk kemudian disimpan sebagai cadangan energi di dalam jaringan lemak.

Pemberi rasa manis pada makanan : karbohidrat memberi rasa manis pada makanan, khususnya mono dan disakarida. Sejak lahir manusia menyukai rasa manis. Alat kecapan pada ujung lidah merasakan rasa manis tersebut. Gula tidak mempunyai rasa manis yang sama. Fruktosa adalah gula paling manis.

Penghemat protein : bila karbohidrat makanan tidak mencukupi, maka protein akan digunakan untuk memenuhi kebutuhan energi, dengan mengalahkan fungsi utamanya

sebagai zat pembangun. Sebaliknya, bila karbohidrat makanan mencukupi, protein terutama akan digunakan sebagai zat pembangun.

Pengatur metabolisme lemak : karbohidrat mencegah terjadinya oksidasi lemak yang tidak sempurna, sehingga menghasilkan bahan-bahan keton berupa asam asetoasetat,aseton, dan asam beta-hidroksi-butirat.

Membantu pengeluaran feses : karbohidrat membantu pengeluaran feses dengan cara peristaltik usus dan memberi bentuk pada feses. Selulosa dalam serat makanan mengatur peristaltik usus,sedangkan hemiselulosa dan pektin mampu menyerap banyak air dalam usus besar sehingga memberi bentuk pada sisa makanan yang akan dikeluarkan.

Bila tidak ada karbohidrat, asam amino dan gliserol yang berasal dari lemak dapat diubah menjadi glukosa untuk keperluan energi otak dan sistem saraf pusat. Oleh sebab itu, tidak ada ketentuan tentang kebutuhan karbohidrat sehari untuk manusia. Untuk memelihara kesehatan, WHO (1990) menganjurkan agar 50-65% konsumsi energi total berasal dari karbohidrat kompleks dan paling banyak hanya 10% berasal dari gula sederhana (Almatsier, 2010).

BAB III

METODOLOGI PERCOBAAN

III. 1 ALAT DAN BAHAN

1. Uji Molisch

Alat yang digunakan dalam percobaan ini adalah tabung reaksi, rak tabung, dan pipet tetes.

Bahan yang digunakan adalah amilum, dekstrin, sukrosa, laktosa, maltosa, galaktosa, fruktosa, glukosa dan arabinosa masing-masing dalam larutan 1%, pereaksi Molisch, dan H2SO4 pekat.

2. Uji Iodium

Alat yang digunakan dalam percobaan ini adalah tabung reaksi, rak tabung, dan pipet tetes.

Bahan yang digunakan adalah amilum,dekstrin, sukrosa, laktosa, maltosa, galaktosa, fruktosa, glukosa dan arabinosa masing-masing dalam larutan 1%, dan larutan iodium.

3. Uji Benedict

Alat yang digunakan dalam percobaan ini adalah tabung reaksi, pipet tetes, alat pemanas atau penangas air, penjepit tabung, rak tabung, dan pengatur waktu.

Bahan yang digunakan adalah amilum, dekstrin, sukrosa, laktosa, maltosa, galaktosa, fruktosa, glukosa dan arabinosa masing-masing dalam larutan 1%, dan pereaksi Benedict.

4. Uji Barfoed

Alat yang digunakan dalam percobaan ini adalah tabung reaksi, pipet tetes, alat pemanas atau penangas air, pengatur waktu, rak tabung, dan penjepit tabung.

Bahan yang digunakan adalah sukrosa, laktosa, maltosa, galaktosa,

fruktosa, glukosa dan arabinosa masing-masing dalam larutan 1%, dan pereaksi Barfoed.

5. Uji Seliwanoff

Alat yang digunakan dalam percobaan ini adalah tabung reaksi, pipet tetes, alat pemanas atau penangas air, pengatur waktu, rak tabung, penjepit tabung.

Bahan yang digunakan adalah sukrosa, galatosa, fruktosa, glukosa, dan

arabinosa dalam larutan 1%, serta pereaksi Seliwanoff.

6. Uji Osazon

Alat yang digunakan dalam percobaan ini adalah mikroskop, alat pemanas, tabung reaksi, dan pipet ukur,spatula baja.

Bahan yang digunakan adalah sukrosa, maltosa, galaktosa, glukosa, fenilhidrazin-hidroklorida dan natrium asetat.

7. Uji Asam Musat

Alat yang digunakan dalam percobaan ini adalah tabung reaksi, pipet tetes, alat pemanas atau penangas air, mikroskop, pengatur waktu, dan penjepit tabung.

Bahan yang digunakan adalah sukrosa, laktosa, maltosa, galaktosa, glukosa, dan HNO3 pekat.

8. Hidrolisis Pati

Alat yang digunakan dalam percobaan ini adalah tabung reaksi, pipet tetes, pemanas air, penjepit tabung, pengatur waktu, dan rak tabung.

Bahan yang digunakan adalah larutan amilum 1%, larutan iodium, pereaksi Benedict, larutan HCl 2 N, larutan NaOH 2%, dan kertas lakmus.


Alat yang digunakan dalam percobaan ini adalah tabung reaksi, pipet tetes, alat pemanas air, penjepit tabung, pengatur waktu, dan rak tabung.

Bahan yang digunakan adalah larutan sukrosa 1%, pereaksi Benedict, pereaksi Seliwanoff, pereaksi Barfoed, larutan HCl pekat, larutan NaOH 2%, dan kertas lakmus.

III. 2 PROSEDUR PERCOBAAN

1. Uji Molisch

1. Dua tetes larutan uji, dimasukkan ke dalam tabung reaksi.

2. Kemudian ditambahkan 3 tetes pereaksi molisch. Dan dicampur dengan baik.

3. Tabung reaksi dimiringkan, kemudian dialirkan dengan hati-hati 1 ml H2SO4 pekat melalui dinding tabung agar tidak bercampur.

2. Uji Iodium

1. 2 ml larutan uji dimasukkan ke dalam tabung reaksi atau porselin tetes.

2. Kemudian ditambahkan dua tetes larutan iodium.

3. Kemudian warna spesifik yang tebentuk diamati.

3. Uji Benedict

1. 5 tetes larutan uji dimasukkan ke dalam tabung reaksi, kemudian ditambahkan 15 tetes pereaksi benedict. Campurlah dengan baik.

2. Didihkan di atas api kecil selama dua menit atau dimasukkan ke dalam pengagas air mendidih selama 5 menit.

3. Didinginkan perlahan-lahan.

4. Diperhatikan warna atau endapan yang terbentuk.

4. Uji Barfoed

1. 10 tetes larutan uji dimasukkan ke dalam tabung reaksi kemudian ditambahkan 10 tetes pereaksi berford. Campurkan dengan baik.

2. Kemudian dipanaskan di atas api kecil sampai mendidih selama satu menit atau dimasukkan ke dalam penangas air mendidih selama 5 menit.

3. Diperhatikan warna atau endapan yang terbentuk.

5. Uji Seliwanoff

1. 5 tetes larutan uji dan 15 tetes pereaksi seliwanoff dimasukkan ke dalam tabung reaksi.

2. Kemudian dididihkan di atas api kecil selama 30 detik atau dalam penangas air mendidih selama 1 menit.

3. Hasil positif ditandai terbentuknya larutan berwarna merah orange.

6. Uji Osazon

1. 2 ml larutan uji dimasukkan kedalam tabung reaksi.

2. Kemudian ditambahkan seujung spatel fenihidrasin-hidroklorida dan kristal natrium asetat.

3. Lalu dipanaskan dalam penangas air mendidih selama 20 menit.

4. Kemudian didinginkan perlahan-lahan di bawah air kran.

5. Diperhatikan kristal yang dibentuk kemudian diidentifikasi di bawah mikroskop.

7. Uji Asam Musat

1. 10 tetes larutan uji dan 2 tetes HNO3 pekat dimasukkan di dalam tabung reaksi.

2. Selanjutnya dipanaskan dalam penangas air mendidih sampai volumenya kira-kira tinggal 2-3 tetes.

3. Lalu didinginkan perlahan-lahan, dan perhatikan terbentuknya kristal-kristal keras seperti pasir.

4. Selanjutnya diamati di bawah mikroskop.

8. Uji Hidrolisis Pati

1. Amilum dengan volume 5 ml 1% dimasukkan ke dalam tabung reaksi, kemudian ditambahkan 2,5 ml HCL 2 N.

2. Kemudian dicampurkan dengan baik, lalu dimasukkan ke dalam penangas air mendidih.

3. Setelah 3 menit, diuji dengan iodium dengan mengambil 2 tetes larutan dalam porselin tetes. Kemudian dicatat perubahan warna yang terjadi.

4. Selanjutnya, dilakukan uji iodium setiap 3menit sampai hasilnya berwarna kuning pucat.

5. Lalu dilanjutkan hidrolisis selama 5 menit lagi.

6. Setelah didinginkan, diambil 2 ml larutan hidrolisis, dan dinetralkan dengan NaOH 2%. Diuji dengan kertas lakmus.

7. Selanjutnya, diuji dengan benedict (15 tetes benedict dan 5 tetes larutan).

8. Terakhir, hasil eksperimen hidrolisis pati disimpulkan.

9. Uji Hidrolisis Sukrosa

1. Sukrosa dengan volume 5 ml sukrosa 1 % kedalam tabung reaksi dan ditambahkan 5 tetes HCl pekat.

2. Dicampur dengan baik, lalu dipanaskan dengan penangas air mendidih selama 30 menit.

3. Setelah didinginkan, dinetralkan dengan NaOH 2 % dan diuji dengan kertas lakmus.

4. Selanjutnya, diuji dengan benedict, seliwanoff, dan berfoed.

5. Terakhir, disimpulkan hasil dari eksperimen hidrolisis sukrosa.

BAB IV

HASIL DAN PEMBAHASAN

IV. 1 HASIL PENGAMATAN

IV.1.1 TABEL

1. Uji Molisch

NO. ZAT UJI HASIL UJI MOLISCHKARBOHIDRAT (+/-)

1. Amilum 1% Terbentuk cincin ungu +

2. Dekstrin 1% Terbentuk cincin ungu +

3. Sukrosa 1% Terbentuk cincin ungu +

4. Maltosa 1% Terbentuk cincin ungu +

5. Galaktosa 1% Terbentuk cincin ungu +

6. Fruktosa 1% Terbentuk cincin ungu +

7. Glukosa 1% Terbentuk cincin ungu +

8. Arabinosa 1% Terbentuk cincin ungu +

2. Uji Iodium

NO. ZAT UJI HASIL UJI IODIUMPOLISAKARIDA (+/-)

1. Amilum 1% Biru +

2. Dekstrin 1% Merah anggur +

3. Sukrosa 1% Kuning -

4. Maltosa 1% Kuning -

5. Galaktosa 1% Kuning -

6. Fruktosa 1% Kuning -

7. Glukosa 1% Kuning -

8. Arabinosa 1% Kuning -

3. Uji Benedict

NO ZAT UJI HASIL UJI BENEDICTGULA REDUKSI

(+/-)

1. Amilum 1% Biru -

2. Dekstrin 1% Hijau -

3. Sukrosa 1% Endapan Merah Bata +

4. Maltosa 1% Endapan Merah Bata +

5. Galaktosa 1% Endapan Merah Bata +

6. Fruktosa 1% Endapan Merah Bata +

7. Glukosa 1% Endapan Merah Bata +

8. Arabinosa 1% Endapan Merah Bata +

4. Uji Barfoed

NO. ZAT UJI HASIL UJI BARFOEDMONOSAKARIDA (+/-)

1. Sukrosa 1% Biru +

2. Maltosa 1% Biru -

3. Galaktosa 1% Merah Bata +

4. Fruktosa 1%Orange (endapan merah bata)

+

5. Glukosa 1% Merah Bata +

6. Arabinosa 1% Merah Bata +

5. Uji Seliwanoff

NO. ZAT UJI HASIL UJI SELIWANOFF KETOSA (+/-)

1. Sukrosa 1% Kuning keorengan -

2. Galaktosa 1% Kuning Bening -

3. Fruktosa 1% Merah Orange +

4. Glukosa 1% Bening -

5. Arabinosa 1% Kuning -

6. Uji Osazon

NO ZAT UJI HASIL UJI OSAZON GAMBAR

1. Sukrosa Tidak terdapat kristal

2. Maltosa Ada kristal, namun jarang

3. Galaktosa Terdapat kristal, namun sedikit

4. Glukosa Terdapat kristal

7. Uji Asam Musat

NO ZAT UJI HASIL UJI ASAM MUSAT GAMBAR

1. Amilum Tidak terdapat kristal

2. Glikogen Tidak terdapat kristal

3. Galaktosa Terdapat kristal, namun sedikit

4. Fruktosa Tidak terdapat kristal

8. Hidrolisis Pati

NOHIDROLISIS (MENIT)

HASIL UJI IODIUM HASIL

1. 3 Biru kehitaman Amilosa

2. 6 Ungu Amilopektin

3. 9 Kuning coklat Akrodekstrin

4. 12 Kuning pucat Glukosa

Hasil akhir dengan uji Benedict : Terbentuk endapan merah bata


PERLAKUAN UJI HASIL UJI

5 tetes larutan Benedict Sebelum dipanaskan : biru muda

(dipanaskan) Setelah dipanaskan : merah bata

5 tetes larutan Seliwanoff Oranye

5 tetes larutanBarfoed

(dipanaskan)

Sebelum dipanaskan : biru muda

Setelah dipanaskan : biru muda

IV.1.2 PEMBAHASAN

1. Uji Molisch

Berdasarkan percobaan ini diperoleh data bahwa semua larutan uji ketika direaksikan dengan pereaksi Molisch, dapat membentuk kompleks cincin berwarna ungu. Dengan bahan yang diujikan adalah amilum, dekstrin, sukrosa, maltosa, galaktosa, fruktosa, glukosa, dan arabinosa semuanya menunjukkan hasil yang positif.Hal ini membuktikan adanya suatu karbohidrat dalam larutan tersebut. Larutan uji yang telah dicampurkan dengan pereaksi Molisch, dialirkan dengan larutan H2SO4 pekat dengan cara memiringkan tabung reaksi. Hal ini dilakukan agar larutan H2SO4 tidak bercampur dengan larutan yang ada dalam tabung, sehingga pada akhir reaksi diperoleh suatu pembentukan cincin berwarna ungu pada batas antara kedua lapisan larutan dalam tabung. Terbentuknya kompleks berwarna ungu ini karena pengaruh hasil dehidrasi monosakarida (furfural) dengan α-naftol dari pereaksi Molisch.

Reaksi yang berlangsung adalah sebagai berikut :

H O

│ ║

CH2OH—HCOH—HCOH—HCOH—C=O +H2SO4 → ─C—H +

│

OH

Pentosa Furfural α-naftol

H

│

CH2OH—HCOH—HCOH—HCOH—HCOH—C=O + H2SO4

Heksosa

O

║

→ H2C─ ─C—H +

│ │

OH OH

5-hidroksimetil furfural α-naftol

Rumus dari cincin ungu yang terbentuk adalah sebagai berikut:

O

║

║ __SO3H

H2C─ ─────C───── ─OH

Cincin ungu senyawa kompleks

2. Uji Iodium

Pada percobaan ini, suatu polisakarida dapat dibuktikan dengan

terbentuknya kompleks adsorpsi yang spesifik pada setiap jenis polisakarida ini. Di mana amilum dengan iodium menghasilkan larutan berwarna biru pekat dan dekstrin yang menghasilkan warna larutan merah anggur yang menandakan hasil positif terhadap kandungan polisakarida tetapi untuk larutan uji monosakarida dan disakarida tidak menghasilkan warna larutan yang spesifik, oleh karena itu hasil yang ditunjukkan negatif. Terbentuknya warna biru dan warna merah anggur ini disebabkan molekul amilosa dan amilopektin yang membentuk suatu molekul dengan molekul dari larutan iodium. Oleh karena itu, monosakarida dan disakarida tidak menghasilkan warna larutan yang spesifik karena tidak mengandung amilosa dan amilopektin.

3. Uji Benedict

Dalam uji ini, suatu gula reduksi dapat dibuktikan dengan terbentuknya endapan yang berwarna merah bata. Akan tetapi tidak selamanya warna larutan atau endapan yang terbentuk berwarna merah bata, hal ini bergantung pada konsentrasi atau kadar gula reduksi yang dikandung oleh tiap-tiap larutan uji . Dekstrin, maltosa, galaktosa, fruktosa, glukosa dan arabinosa menunjukkan hasil yang positif. Terbentuknya endapan merah bata ini sebagai hasil reduksi ion Cu2+ menjadi ion Cu+ oleh suatu gugus aldehid atau keton bebas yang terkandung dalam gula reduksi yang berlangsung dalam suasana alkalis (basa). Sifat basa yang dimilki oleh pereaksi Benedict ini dikarenakan adanya senyawa natrium karbonat. Selain itu, amilum dan sukrosa tidak membentuk endapan merah bata dan warna larutan setelah dipanaskan menjadi biru. Hal ini membuktikan amilum dan sukrosa tidak mengandung gula pereduksi, oleh karena itu amilum dan sukrosa memperlihatkan hasil yang negatif.

Berikut reaksi yang berlangsung:

O O

║ ║

R—C—H + Cu2+ 2OH- → R—C—OH + Cu2O(s) â + H2O

Gula Pereduksi Endapan Merah Bata

4. Uji Barfoed

Pada percobaan ini, diperoleh data bahwa suatu monosakarida dapat dibedakan dengan disakarida yang dapat diamati dari terbentuknya endapan merah bata pada senyawa glukosa, galaktosa, fruktosa dan arabinosa, sedangkan pada zat uji lainnya tidak terbentuk endapan merah bata, sehingga dianggap sebagai disakarida. Sama halnya dengan pereaksi Benedict, pereaksi Barfoed ini juga mereduksi ion Cu2+ menjadi ion Cu+ . Pada dasarnya, monosakarida dapat mereduksi lebih cepat dibandingkan dengan disakarida. Disakarida dengan konsentrasi rendah tidak memberikan hasil positif oleh karena itu, larutan uji disakarida tidak membentuk warna merah orange pada percobaan ini.

O O

║ Cu2+ asetat ║

R—C—H + ─────→ R—C—OH + Cu2O(s) â + CH3COOH

n-glukosa Kalor E.merah

monosakarida bata

5. Uji Seliwanoff

Pada uji ini diperoleh data bahwa hanya fruktosa yang menghasilkan warna larutan yang spesifik yakni warna merah orange yang mengidentifikasikan adanya kandungan ketosa dalam karbohidrat jenis monosakarida itu. HCl yang terkandung dalam pereaksi Seliwanoff ini mendehidrasi fruktosa menghasilkan hidroksifurfural sehingga furfural mengalami kondensasi setelah penambahan resorsinol membentuk larutan yang berwarna merah orange. Hal ini tidak dialami oleh zat uji yang lain di mana sukrosa, galaktosa, glukosa, dan arabinosa menunjukkan hasil negatif terhadap adanya ketosa. Akan tetapi sukrosa apabila dipanaskan terlalu lama dapat menunjukkan hasil yang positif terhadap pereaksi Seliwanoff. Hal ini terjadi karena adanya pemanasan berlebih menyebabkan sukrosa terhidrolisis menghasilkan fruktosa dan glukosa sehingga fruktosa inilah yang nantinya akan bereaksi dengan pereaksi Seliwanoff menghasilkan larutan berwarna merah orange.

Berikut reaksinya :

CH2OH OH O OH OH

+HCl ║ │ │

H CH2OH ───→ H2C— —C—H + → kompleks

│ berwarna

OH H OH merah jingga

5-hidroksimetil furfural resorsinol

6. Uji Osazon

Pada percobaan ini diperoleh data bahwa karbohidrat dapat dibedakan dari bermacam-macam gambar kristalnya. Hal ini dikarenakan semua karbohidrat yang mempunyai gugus aldehida atau keton bebas akan membentuk hidrazon atau oaszon bila dipanaskan bersama fenilhidrazin berlebih. Maltosa, fruktosa, dan glukosa pada reaksinya terbentuk kristal. Berbeda dengan sukrosa, ketika direaksikan tidak terbentuk kristal. Hal ini dikarenakan gugus aldehida atau keton yang terikat pada monomernya sudah tidak bebas.

7. Uji Asam Musat

Pada percobaan ini diperoleh data bahwa glukosa dan galaktosa dapat dibedakan berdasarkan bentuk kristalnya. Sukrosa memiliki kristal yang jarang-jarang, laktosa yang bertebaran seperti pasir, galaktosa memiliki kristal terpisah-pisah, dan glukosa yang sangat jarang. Galaktosa yang dioksidasi oleh asam nitrat pekat ( HNO3 ) menghasilkan asam musat yang kurang larut dalam air dibandingkan dengan glukosa dapat larut baik dengan air. Setelah larutan diamati dibawah mikroskop dan dengan penambahanMertion Oil yang berfungsi memperjelas gambar kristal di bawah mikroskop, maka diperoleh bentuk kristal glukosa sangat jarang dan sedikit sekali jika dibanding gambar kristal galaktosa yang cukup jarang namun tidak lebih sedikit jika dibanding dengan glukosa. Akibat dari kristal inilah sehingga asam musat glukosa lebih larut dalam air dibanding galaktosa.

8. Hidrolisis Pati

Berdasarkan percobaan hidrolisis pati ini, diperoleh data bahwa hasil hidrolisis pati dengan penambahan iodium tiap 3 menit menghasilkan warna larutan yang berbeda dari warna biru hingga larutan berwarna kuning pucat. Akan tetapi, hasil percobaan yang diperolah berbeda dengan dasar teori yang digunakan sebagai acuan. Di mana, setelah menit ke enam ternyata larutan yang diberi iodium tidak berubah menjadi berwarna ungu seperti yang ditunjukkan pada data acuan. Demikian pula pada menit-menit berikutnya hingga warna memperlihatkan kuning pucat. Hal ini mungkin disebabkan karena alat yang digunakan kurang steril dan masih terkontaminasi dengan senyawa lain, ketidaktelitian praktikan dalam mereaksikan sejumlah bahan yang seharusnya sesuai dengan prosedur kerja, dan pemanasan yang berlebihan sehingga mempengaruhi hasil reaksi. Adapun hasil hidrolisis setelah dinetralkan dengan NaOH, lalu diuji dengan pereaksi Benedict akan menghasilkan larutan yang memberntuk endapan merah bata.


Berdasarkan hasil percobaan hidrolisis sukrosa diperoleh data bahwa sukrosa yang ditambahkan HCl pekat dan dipanaskan serta dinetralkan dengan NaOH bila diambil beberapa tetes dan diuji dengan Benedict, sebelum dipanaskan berwarna biru ternyata setelah dipanaskan menghasilkan suatu endapan berwarna merah bata. Dengan uji Seliwanoff yang ditambah HCl pekat, sebelum dipanaskan berwarna kekuningan dan setelah dipanaskan berwarna orange. Uji seliwanoff ini menunjukkan hasil yang positif. Hal ini membuktikan bahwa pada sukrosa terkandung fruktosa setelah dihidrolisis. Sedangkan pada uji Barfoed yang sebelum dipanaskan berwarna biru bening namun setelah dipanaskan tetap berwarna biru bening. Ada beberapa faktor yang menyebabkan sukrosa tidak mengalami perubahan. Hal ini dikarenakan pada waktu percobaan, sukrosa belum terhidrolisis sempurna. Ketidaktelitian praktikan memicu tejadinya kesalahan pengamatan. Berdasarkan teori, sukrosa bereaksi postif terhadap pereaksi barfoed. Jika telah terhidrolisis sempurna menandakan bahwa sukrosa bila dipanaskan akan terhidrolisis menjadi dua senyawa monosakarida. Senyawa fruktosa dan glukosa. Monosakarida itulah yang menunjukkan reaksi dengan pereaksi tersebut.

SUKROSA + HCl GLUKOSA + FRUKTOSA

(disakarida) (monosakarida) (monosakarida)

BAB V

PENUTUP

V.1 KESIMPULAN

1. Suatu karbohidrat dapat dibuktikan dengan terbentuknya cincin berwarna ungu pada amilum, dekstrin, sukrosa, maltosa, galaktosa, fruktosa, glukosa dan arabinosa.

2. Polisakarida dibuktikan dengan terbentuknya kompleks berwarna spesifik, amilum berwarna biru dan dekstrin berwarna merah anggur sehingga menandakan polisakarida.

3. Gula reduksi pada suatu karbohidrat dapat dibuktikan dengan terbentuknya endapan berwarna merah bata pada maltosa, galatosa, fruktosa, glukosa dan arabinosa, hijau kekuningan pada dekstrin, dan jingga pada maltosa.

4. Monosakarida dan disakarida dapat dibedakan dengan terbentuknya endapan merah bata pada monosakarida sedangkan pada disakarida tidak terbentuk endapan merah bata.

5. Pada pengujian ketosa dibuktikan dengan terbentuknya senyawa kompleks berwarna merah orange pada fruktosa sehingga mengandung ketosa.

6. Karbohidrat tersebut dibedakan dari gambar kristalnya. Karbohidrat yang mempunyai gugus aldehida atau keton bebas akan membentuk hidrazon atau osazon. Sukrosa tidak membentuk osazon karena gugus aldehida atau keton yang terikat pada monomernya sudah tidak bebas.

7. Glukosa dan galaktosa dibedakan berdasarkan bentuk kristalnya, kristal glukosa bertebaran dan sangat jarang, sedangkan kristal galaktosa tepisah-pisah dan berjauhan.

8. Hasil hidrolisis amilum diidentifikasi dengan terbentuknya endapan merah bata dan warna larutan bening kebiruan.

9. Hasil hidrolisis sukrosa dengan pengujian Benedict menghasilkan endapan

merah bata, dengan Seliwanoff berwarna orange, dan dengan Barfoed tidak berubah warna.

V.2 SARAN

Laboratorium harus melengkapi sarana dan prasarana untuk kebutuhan praktikum karena ketidaklengkapan sarana dan prasarana dalam laboratorium akan menghambat berlangsungnya kegiatan praktikum.

DAFTAR PUSTAKA

Almatsier. S. 2010. Prinsip Dasar Ilmu Gizi. Jakarta : Gramedia Pustaka Utama

Murray, R. K. dkk. 2009. Biokimia Harper. Jakarta : Penerbit Buku Kedokteran

EGC

Sirajuddin, S dan Najamuddin, U. 2011. Penuntun Praktikum Biokimia. Makassar :

Fakultas Kesehatan Masyarakat Universitas Hasanuddin

Tim Dosen Kimia. 2010. Kimia Dasar. Makassar : UPT MKU

Tim Dosen Kimia. 2010. Kimia Dasar 2. Makassar : UPT MKU

Documents

Quran Tentang Mineral + Laporan Biokimia