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CITOMETRÍA DE FLUJO
CITOMETRÍA DE FLUJO
Técnica de análisis celular multiparametrico
Se basa en hacer pasar una suspensión celular de forma alineada y de a una celular por vez delante de un rayo laser focalizado
1) SISTEMA OPTICO
3) ELECTRONICA E
INTEGRACION DE LA SEñAL
FUENTE DE ILUMINACION: Lasers CONJUNTO DE LENTES, ESPEJOS Y FILTROS DETECTORES
2) FLUIDICA
GARANTIZA FLUJO LAMINAR
E HIDROENFOCADO DE LA
MTRA
4) SOFTWARE Y ANALISIS DE
DATOS
COMPONENTES DE UN CITOMETRO DE FLUJO
* FSC (Forward Scatter)luz dispersada a bajo ángulo (0-10º)proporcional al tamaño celular
* SSC (Side Scatter)luz dispersada a ángulo recto proporcional a la complejidad de la estructura interna
* Permite detectar señales de fluorescencia, utilizando Ac marcados con fluorocromos.
Señales
FluorescenciaDispersión
SEÑALES DETECTADAS
SEÑALES DETECTADAS
* SSC (Side Scatter)luz dispersada a ángulo recto 90 proporcional a la complejidad de la estructura interna
* FSC (Forward Scatter)luz dispersada a bajo ángulo (0-10º)proporcional al tamaño celular
SISTEMA OPTICO
SISTEMA OPTICO
CUANTIFICACIÓN DE UN PULSO DE VOLTAJE
VIDEO
FLUORESCENCIA
FLUORESCENCIA
DETECCIÓN DE FLUORESCENCIA
PerCP Cy5APC
FL-1 FL-2 FL-3 FL-4Detectores
Fluorocromos
MARCADORES Y SUBPOBLACIONES• CD3: linfocitos T
• CD4: linf. T helper, monocitos (tenue)
• CD8: linf. T supr./citotox., NK
• CD3/CD4: linfocitos T helper (Clase II)
• CD3/CD8: linfocitos T supr./citotox. (Clase I)
• CD56: NK (CD3-)
• CD19: linfocitos B
• CD14: monocitos, granulocitos (tenue)
• CD45: leucocitos
PRESENTACIÓN DE DATOS: HISTOGRAMAS
HISTOGRAMA:
Se representa:X: intensidad de fluorescenciaY: número de células que emiten a cada intensidad
HISTOGRAMASIntensidad de fluorescencia y sitios de unión
Intensidad de fluorescencia FITC
Número de eventos
FITC
FITC
FITC
FITC FITC
FITC
FITC
FITC FITC
Marcación con un solo Ac
Cada punto representa una célula
Posiciones de los puntos: intensidades relativas de los dos parámetros (tamaño y granularidad) medidos para tal evento.
DOT PLOT
DOT PLOT
++--
++--
FL-1
FL-2
Doble marcación:Se utilizan 2 fluorocromos con diferentes λ de emisiónEj: FITC (verde)
PE (naranja)
NK en sangre periferica: CD56lo-CD16hi
NK predominante en ganglios: CD56hi-CD16lo
Marcación con dos Ac
INMUNOFENOTIPIFICACIÓN
Persona Normal Paciente leucémico
* Células suspendidas en un medio líquido– Sangre– Cultivos celulares– Tejidos– Tumores sólidos– Alimentos (para estudio de contaminación
bacteriana)
* Las muestras sólidas se disgregan por digestión mecánica o enzimática
MUESTRASDebe encontrarse en forma de suspensión monodipersa
Citometría de flujo: protocolo de marcación
+ Ac control/es de isotipo*
+ Ac contra Ag a analizar
Incubar, lavar, resuspender
Incubar, lavar, resuspender
* ¿Qué es un “control de isotipo”? Es una inmunoglobulina de la misma especie y del mismo isotipo que el Ac que se está empleando para el análisis pero que carece de reactividad contra las células que se están empleando. De esta manera, la “marcación” con este Ac control de isotipo permite establecer cuál es el nivel basal “background” de fluorescencia que produce cualquier Ig en las células a estudiar y descontar esa fluorescencia basal de la fluorescencia producida por el Ac que se está empleando para el análisis.
Muestra
Muestra
•Autoflorescencia •Control de Isotipo •Control positivo •Bloqueo de receptores Fc
CITOMETRIA DE FLUJO CONTROLES:
Determinación de citoquinas por citometría
Determinación de citoquinas por citometría
FACS (FLUORESCENCE ACTIVATED CELL SORTER)
Separación de poblaciones se rompe la corriente que contiene las células en pequeñas gotas que se cargan eléctricamente. Con la aplicación de un campo eléctrico se desvía su trayectoria y se recogen las células en diversos recipientes.
APLICACIONES
Análisis y separación de subpoblaciones celularesMarcadores de superficieProteínas intracelularesCuantificación
Inmunotipificación
Experimental
1. Análisis de apoptosis2. Evaluación de la capacidad endocítica3. Evaluación de funcionalidad de bombas de
eflujo ATP-dependientes (Pgp)4. Determinación de citoquinas (CBA)
Ventajas
Marcaciones simultaneasAnaliza un alto número de células por segundo (5000
células/segundo)Cuantifica intensidad antigénicaMayor sensibilidad y objetividad que IFPosibilidad de analizar poblaciones minoritariasPermite almacenar la información
Desventajas
No se obtiene información sobre arquitectura de tejido