manual completo 2018-2019bct.facmed.unam.mx/wp-content/uploads/2018/07/manual-completo-2… · tejidos, órganos y sistemas del cuerpo ... de una serie de preparaciones histológicas

Diseño: Elihu C. Pérez

MANUALDEPRÁCTICAS

2018-2019

Autores

Dra. María Isabel García Peláez

Dr. César Eduardo Montalvo Arenas

Colaboradores

Dra. Sandra Acevedo Nava

Dra. Adriana Elizabeth González Villalva

Dra. Martha Luz Ustarroz Cano

Dra. Leticia Parra Gamez

Dra. Sinai Andrea Pineda Flores

M.C. Andrea López Salmerón

M.C. Aurea Escobar España

M.C. Juan Ángel Calixto Martínez

M.C. Rodrigo Castro Salinas

Prefacio

La asignatura de Biología Celular e Histología Médica tiene como objetivos generales el examinar, analizar e integrar la estructura microscópica y las funciones básicas de las células, tejidos, órganos y sistemas del cuerpo humano. La asociación de este conocimiento con los de las otras asignaturas básicas es fundamental para el entendimiento del cuerpo humano en su totalidad e imprescindible en la formación del médico.

En el proceso del aprendizaje de esta asignatura se requiere de la lectura y comprensión de textos especializados y la integración de este conocimiento teórico con la observación y análisis visual microscópico de una serie de preparaciones histológicas que ofrecen, al estudiante de medicina, imágenes de células, tejidos y órganos debidamente procesados a través de técnicas histológicas específicas; todo ello con la finalidad que adquiera el aprendizaje significativo de la estructura microscópica de los componentes morfológicos del cuerpo humano.

El presente manual de prácticas tiene como objetivo orientar en la observación microscópica de las preparaciones histológicas mediante una breve descripción de los campos histológicos e indicaciones precisas de las estructuras a identificar.

El manual está en formato digital en la página web del Departamento de Biología Celular y Tisular. Los alumnos pueden trabajar el manual en el mismo formato digital o imprimirlo para tenerlo en un formato físico. En el formato impreso pueden dibujar las observaciones a través del microscopio y en el formato digital pueden pegar las imágenes capturadas por los alumnos a través de sus dispositivos. También los alumnos pueden buscar imágenes en el Atlas Digital del Departamento o en los bancos de imágenes de internet e incorporarlas en el manual físico o digital. Los profesores de acuerdo a su experiencia y estilo de enseñanza pueden utilizar el manual en la forma que mejor consideren.

Este manual está a su consideración y todas las observaciones son bien recibidas. Su colaboración va a permitir tener un manual que nos facilite a todos, profesores y alumnos, la realización de la actividad práctica de la asignatura.

María Isabel García Peláez Jefa del Departamento de Biología Celular y Tisular

Todo lo que se desarrolla comienza por ser pequeño. Es al alimentarse gradualmente como, con constantes progresos,

llega a hacerse grande.

Ruy Pérez Tamayo

ÍNDICE

Práctica Página PRÁCTICA 1. Conocimiento, manejo y uso del microscopio fotónico

1

PRÁCTICA 2. Técnica histológica

4

PRÁCTICA 3. Biología celular I. Organelos celulares

5

PRÁCTICA 4. Biología celular II. Inclusiones citoplasmáticas

9

PRÁCTICA 5. Tejido epitelial de revestimiento

11

PRÁCTICA 6. Tejido epitelial secretor o glandular

17

PRÁCTICA 7. Tejido conjuntivo

20

PRÁCTICA 8. Tejido adiposo

25

PRÁCTICA 9. Tejido cartilaginoso

26

PRÁCTICA 10. Tejido óseo

29

PRÁCTICA 11. Tejido muscular

33

PRÁCTICA 12. Tejido y sistema nervioso

36

PRÁCTICA 13. Sistema nervioso central y sistema nervioso periférico

42

PRÁCTICA 14. Ojo (globo ocular)

48

PRÁCTICA 15. Tejido sanguíneo (sangre)

54

PRÁCTICA 16. Tejido y órganos linfoides

56

PRÁCTICA 17. Sistema cardiovascular I. Corazón y sistema de conducción cardiaca

62

PRÁCTICA 18. Sistema cardiovascular II. Vasos sanguíneos

66

ÍNDICE

Práctica Página PRÁCTICA 19. Sistema respiratorio

68

PRÁCTICA 20. Sistema tegumentario

74

PRÁCTICA 21. Sistema endocrino

77

PRÁCTICA 22. Sistema digestivo I. Cavidad oral

83

PRÁCTICA 23. Sistema digestivo II. Tubo digestivo 88

PRÁCTICA 24. Sistema digestivo III. Hígado, vesícula biliar y páncreas 94

PRÁCTICA 25. Sistema urinario

97

PRÁCTICA 26. Sistema genital masculino

100

PRÁCTICA 27. Sistema genital femenino 104

BLOQUE 1

1

PRÁCTICA 1. Conocimiento, manejo y uso del microscopio fotónico

Objetivos 1. Conocer los 10 pasos para el buen uso del microscopio fotónico del aula-

laboratorio:

PASO 1. Preparar el espacio físico para el uso del microscopio.

PASO 2. Preparar el material de trabajo para la realización de la práctica.

PASO 3. Revisar que el microscopio esté en condiciones aptas para el trabajo*

PASO 4. Solicitar la preparación histológica al responsable de sección.

PASO 5. Realizar la práctica indicada.

PASO 6. Regresar la preparación histológica al responsable de sección**

PASO 7. Revisar que el microscopio se deje en condiciones aptas para que pueda ser utilizado por otros compañeros***

PASO 8. Limpiar el área donde se realizó la práctica.

PASO 9. Entregar la práctica en el tiempo y forma que que el profesor le indique.

PASO 10. Guardar la práctica siguiendo las instrucciones del profesor.

*Si el microscopio no está en condiciones aptas para su uso (limpieza y funcionalidad) se deberá reportar inmediatamente a los profesores responsables de la práctica en el aula-laboratorio.

**Los pasos 4, 5 y 6 se realizarán el número de veces que sea necesario hasta cumplir los objetivos de la práctica y con la observación del total de preparaciones histológicas asignadas en cada una de ellas.

***Si el microscopio no está en condiciones aptas para su uso posterior, se deberá reportar inmediatamente a los profesores responsables de la práctica en el aula-laboratorio.

2

2. Identificar los componentes del microscopio fotónico de campo claro. Tomar una fotografía o hacer un dibujo del microscopio e indicar sus componentes.

3

3. Analizar las características de la imagen observada a través del microscopio fotónico de campo claro.

Preparación histológica: Letras Observe la preparación histológica de letras al microscopio utilizando los objetivos de 4x, 10x y 40x. Las letras se ven invertidas. En el mismo campo identifique cómo el área observada se va reduciendo a medida que aumenta la imagen y ofrece una mejor resolución.

Objetivo de 4x

Objetivo de 10x

Objetivo de 40x

4

PRÁCTICA 2. Técnica histológica Objetivo: Reconocer la importancia de la fijación e identificar la tinción.

Preparación histológica: Riñón fijado y no fijado. Observar las diferencias en coloración y estructura morfológica entre las dos muestras de riñón.

Tinción: Riñón fijado

Objetivo de 10x Objetivo de 40x Riñón no fijado Objetivo de 10x Objetivo de 40x

5

PRÁCTICA 3. Biología celular I. Organelos celulares Objetivo: Identificar la ultraestructura de cada organelo celular.

Actividad sin preparación histológica. Tomar una fotografía o hacer un dibujo de los organelos celulares que se mencionan en los siguientes recuadros.

1. Membrana celular o plasmalema con microscopía electrónica de transmisión.

Espacio extracelular

Glucocálix

Lámina electrondensa externa

Lámina electronlúcida central

Lámina electrondensa interna

Espacio citoplasmático

2. Esquema de la membrana celular mostrando sus componentes moleculares.

Proteínas integrales

Moléculas de carbohidratos

Cabezas de fosfolípidos

Moléculas de colesterol

Colas de fosfolípidos

Proteínas periféricas

6

3. Retículo endoplásmico rugoso (RER) con microscopía electrónica de transmisión.

Citoplasma

Ribosomas

Cisternas membranales

Espacios de las cisternas

4. Retículo endoplásmico liso (REL) con microscopía electrónica de transmisión

Citoplasma

Túbulos anastomosados

Luz de túbulos anastomosados

7

5. Aparato de Golgi con microscopía electrónica de transmisión. Gránulos de secreción

Red trans de Golgi

Cisternas trans

Cisternas mediales

Cisternas cis

Red cis Golgi

Vesículas de transferencia

6. Mitocondria con microscopía electrónica de transmisión.

Membrana mitocondrial externa

Espacio interrmembranal

Membrana mitocondrial interna

Crestas mitocondriales

Matriz mitocondrial

Cuerpos densos

8

7. Lisosomas y cuerpos residuales con microscopía electrónica de transmisión.

Lisosoma: - Membrana lisosomal

- Contenido lisosomal Cuerpo residual: - Contenido del cuerpo residual

8. Peroxisomas con microscopía electrónica de transmisión.

Membrana del peroxisoma

Contenido del peroxisoma

Cristales de urato-oxidasa

9

PRÁCTICA 4. Biología celular II.Inclusiones citoplasmáticas Objetivo: Identificar los diferentes tipos de inclusiones citoplasmáticas. 1. Preparación histológica: Hígado con glucógeno

Observar el glucógeno en el citoplasma de los hepatocitos.

2. Preparación histológica: Ganglio linfático intertraqueobronquial (ganglio

traqueal con antracosis). Observar pigmento exógeno fagocitado (carbón) en el interior de macrófagos.

Tinción:

Hepatocitos

Presencia de núcleos y posición en las células

Presencia de partículas de glucógeno

Objetivo de 40x

Tinción:

Macrófagos con partículas de carbón

Objetivo de 40x

10

3. Preparación histológica: Mesencéfalo Observar el pigmento endógeno de neuromelanina (partículas de color negro) en el citoplasma de las neuronas situadas en la sustancia nigra.

4. Preparación histológica: Miocardio Observar el pigmento de lipofucsina o pigmento de desgaste, de color pardo amarillento o rojo magenta, en las células musculares (miocardiocitos) del corazón. Se sitúa preferentemente en los espacios relacionados con los polos de los núcleos.

Tinción:

Neuromelanina en el citoplasma de las neuronas

Objetivo de 40x

Tinción:

Miocardiocitos en sección longitudinal Núcleos

Pigmentos de lipofucsina

Objetivo de 40x

11

PRÁCTICA 5. Tejido epitelial de revestimiento Objetivo: Identificar las características histológicas de cada epitelio: número de estratos, formas celulares, forma y posición del núcleo, así como las especializaciones de membrana. 1. Preparación histológica: Vejiga urinaria

Observar el epitelio de transición o transicional, mixto, polimorfo, globoso o urotelio. Las células superficiales son de mayor tamaño, algunas de ellas poseen dos núcleos y muestran un contorno superficial ligeramente convexo. Debajo de la superficie apical celular se distingue una pequeña zona más coloreada que corresponde a la presencia de las placas membranales.

Tinción:

Pliegues tisulares de la vejiga vacía

Epitelio de transición o urotelio

Tejido conjuntivo subepitelial

Objetivo de 10x Capa superficial de células

globosas Célula superficial binucleada

Membrana basal


Objetivo de 40x

12

2. Preparación histológica: Piel gruesa Observar el epitelio plano estratificado con estrato córneo. Está formado por numerosas capas de células de diferentes formas. En el estrato más superficial se observan células planas que carecen de núcleos.

3. Preparación histológica: Esófago o vagina

Observar el epitelio plano estratificado sin estrato córneo. Las células epiteliales más superficiales aún conservan los núcleos ya que carece de estrato córneo.

Tinción: Epitelio plano estratificado

con estrato córneo


Objetivo de 10x

Tinción:

Epitelio plano estratificado sin estrato córneo

Membrana basal


Objetivo de 40x

13

4. Preparación histológica: Tráquea Observar el epitelio pseudoestratificado cilíndrico ciliado con células caliciformes. Todas las células se apoyan sobre la membrana basal pero no todas ellas llegan a la superficie apical por lo que los núcleos se disponen en diversos niveles dando el aspecto de un epitelio estratificado. En la superficie del epitelio se observan los cilios.

Tinción: Cilios en la superficie apical

Posición media o basal de los núcleos

Células epiteliales

Células caliciformes

Membrana basal


Objetivo de 40x

14

5. Preparación histológica: Intestino delgado Observar epitelio cilíndrico simple con microvellosidades y células caliciformes. La altura de las células predominan sobre el ancho y grosor de las mismas. El núcleo es ovalado y ocupa una posición media o basal. En el borde apical se observan microvellosidades.Las células caliciformes son redondeadas con citoplasma claro y núcleo basal.

Tinción:

Microvellosidades en la superficie apical

Células cilíndricas


Membrana basal


Objetivo de 40x

15

6. Preparación histológica:Plexos coroides

Observar el epitelio cúbico simple en la superficie de las vellosidades coroideas. Dicho epitelio está formado por células cúbicas con un núcleo esférico de posición central o ligeramente basal. En el interior de la vellosidad se observan capilares y vénulas revestidos de epitelio plano simple, rodeados de tejido conjuntivo. Las células de este epitelio son delgadas con núcleos alargados y ovalados que sobresalen del grosor de las células.

Tinción:

Epitelio cúbico simple:

- Núcleos Capilares:

- Epitelio plano simple con núcleos alargados

- Eritrocitos Tejido conjuntivo laxo

Objetivo de 40x

16

7. Cuello uterino o cérvix Observar en la superficie una transición de epitelios, de plano estratificado sin estrato córneo (exocérvix) a un epitelio cilíndrico simple secretor (endocérvix).

Tinción:


Zona de transición de epitelios

Epitelio cilíndrico simple secretor

Membrana basal


Objetivo de 40x

17

PRÁCTICA 6. Tejido epitelial secretor o glandular Objetivo: Reconocer las unidades epiteliales secretoras o glandulares que identifican las diversas modalidades morfológicas y funcionales del tejido epitelial secretor.

1. Preparación histológica: Páncreas

Observar las unidades secretoras serosas en las cuales las células que las integran muestran una forma piramidal, con un núcleo esférico situado en el tercio basal. Distinguir la basofilia basal rodeando al núcleo y la presencia de gránulos de secreción acidófila en la porción apical.

Tinción:

Acinos pancreáticos

- Acidofilia apical (secreción serosa)

- Basofilia basal

- Núcleos

Objetivo de 40x

18

2. Preparación histológica: Piel de axila Observar las glándulas sudoríparas tubulares simples glomerulares ecrinas o merocrinas y sus conductos de secreción con epitelio cúbico estratificado. La luz de la porción secretora es pequeña. Los núcleos son esféricos y de posición central.

Observar las glándulas sudoríparas tubulares glomerulares apocrinas y/o sus conductos de secreción con epitelio cúbico estratificado. La luz de la porción secretora es amplia. Las células con secreción apocrina se distinguen porque el borde apical muestra una serie de evaginaciones esféricas u ovaladas. Los núcleos son esféricos y de posición en el tercio medio.

Tinción: Glándulas sudoríparas apocrinas

-Secciones del conducto de secreción - Secciones transversales y oblicuas de la porción secretora - Superficie apical con secreción apocrina - Células mioepiteliales

Objetivo de 40x

Tinción: Glándulas sudoríparas ecrinas o merocrinas

- Secciones del conducto de secreción

- Secciones transversales y

oblicuas de la porción secretora

- Células mioepiteliales

Objetivo de 40x

19

Observar las glándulas saculares holocrinas. Muestran un límite basal formado por células germinativas con algunas figuras de mitosis; el sáculo está ocupado por células poliédricas cuyo citoplasma presenta una serie de vesículas ocupadas por lípidos y núcleos en diversas etapas de picnosis, cariorrexis y cariolisis.

3. Preparación histológica: Esófago o glándula sublingual Observar las unidades (adenómeros) mucosas formadas por células piramidales truncas, con los núcleos aplanados rechazados a la base de la célula y el resto del citoplasma ocupado por la secreción mucosa de aspecto espumoso.

Tinción:

Adenómeros mucosos Contenido mucoso citoplasmático

Forma y posición de los núcleos

Objetivo de 40x

Tinción:

Conducto de la glándula sacular holocrina

Porción secretora del sáculo

Células productoras de sebo (en picnosis, cariorrexis y cariolisis)

Epitelio basal o germinativo

Objetivo de 40x

20

PRÁCTICA 7. Tejido conjuntivo Objetivo: Identificar las características histológicas básicas del tejido conjuntivo, así como reconocer las diversas células fijas y migrantes o móviles integrantes del mismo.

1. Preparación histológica: Piel con granuloma

Observar fibroblastos y fibrocitos que son células alargadas fusiformes con núcleos alargados. Fibras de colágena aisladas o formando haces. Células adiposas uniloculares aisladas o integrando lobulillos. Células gigantes de reacción a cuerpo extraño: son células multinucleadas, formadas por la fusión de pocos o numerosos macrófagos con diámetros de 30 a 50 micrómetros de diámetro.

Tinción:

Fibroblastos y fibrocitos (núcleos)

Fibras de colágena formando haces

Células adiposas (adipocitos)

Células gigantes de reacción a cuerpo extraño

Objetivo de 40x

21

2. Preparación histológica: Tumor cutáneo con células plasmáticas Observar células plasmáticas o plasmocitos. Son células redondeadas u ovaladas, con núcleo excéntrico y grumos cromatínicos dispuestos radialmente y citoplasma basófilo. En un polo del núcleo se visualiza la imagen negativa del aparato de Golgi.

Tinción:

Célula plasmática

- Citoplasma basófilo

- Imagen negativa del aparato de Golgi - Núcleo excéntrico con cromatina radiada

Objetivo de 40x o 100x

22

3. Preparación histológica: Cordón espermático Observar haces de fibras de colágena, fibroblastos y células cebadas o mastocitos, que se identifican por su citoplasma granular.

4. Preparación histológica: Aorta

Observar las fibras elásticas en secciones longitudinales y/o transversales. Distinguir su recorrido sinuoso u ondulante (secciones longitudinales), de color negro o morado y como pequeños puntitos de color negro o morado (secciones transversales) dependiendo de la tinción.

Tinción:

Haces de fibras de colágena

Fibroblastos y fibrocitos

Células cebadas o mastocitos


Tinción:

Fibras elásticas en corte longitudinal

Fibras elásticas en corte transversal

Objetivo de 40x

23

5. Preparación histológica: Hígado o ganglio linfático Observar las fibras reticulares (colágena tipo III) de grosor muy delgado, dispuestas en todas las direcciones del espacio e integrando redes sumamente finas (estroma fino) que sirven de soporte a las células parenquimatosas.

6. Preparación histológica: Piel delgada Observar los diversos componentes tisulares del tejido conjuntivo laxo y denso irregular que integran la dermis de la piel. Diferenciar la presencia y cantidad de las células conjuntivas (fibroblastos y fibrocitos), de la matriz amorfa y la matriz fibrilar, principalmente haces de fibras de colágena.

Tinción:

Fibras reticulares (forman redes)

Objetivo de 40x

Tinción:

Tejido conjuntivo laxo

Células conjuntivas

Tejido conjuntivo denso irregular

Objetivo de 40x

24

7. Preparación histológica: Tendón Observar la disposición longitudinal y paralela de los haces de fibras de colágena cuya presencia es notoriamente mayor que las células (fibrocitos o tenocitos) y de la sustancia amorfa, casi inexistente, del tejido conjuntivo denso regular, modelado o tendinoso.

Tinción:

Haces de fibras longitudinales

Núcleos de los fibrocitos o tenocitos

Objetivo de 40x

25

PRÁCTICA 8. Tejido adiposo Objetivo: Identificar las diferencias morfológicas entre grasa parda y grasa blanca.

1. Preparación histológica: Grasa parda

Observar en la grasa perirrenal los dos tipos de tejido adiposo: unilocular o grasa blanca y multilocular o grasa parda. Los adipocitos uniloculares se distinguen por ser células voluminosas, de 50 a 100µm, esféricas y totalmente vacías con un núcleo dispuesto en la periferia. Los adipocitos de grasa parda se reconocen por exhibir formas poliédricas, de menor tamaño, de 30 a 40 µm, con un núcleo esférico y central. El citoplasma es acidófilo debido a la presencia de numerosas mitocondrias, con pequeños espacios redondeados vacíos.

Tinción:

Adipocitos de grasa blanca o uniloculares:

- Espacio en el citoplasma que ocupaba la gota de grasa

- Núcleo periférico Objetivo de 40x Adipocitos de grasa parda o multiloculares:

- Espacios en el citoplasma que ocupabanlasgotitas de grasa

- Núcleo central

Objetivo de 40x

26

PRÁCTICA 9. Tejido cartilaginoso Objetivo: Identificar las diferencias entre el cartílago hialino, elástico y fibroso con base en a los diferentes componentes de la matriz extracelular. 1. Preparación histológica: Tráquea

Observar los diversos componentes tisulares y celulares del cartílago hialino: pericondrio, condroblastos, condrocitos y grupos isógenos. En la matriz amorfa, distinguir la matriz territorial e interterritorial.

Tinción:

Pericondrio

Condroblastos

Condrocitos

Matriz territorial Grupos isógenos Matriz interterritorial Objetivo de 10x

27

2. Preparación histológica: Epiglotis Observar en el cartílago elástico el pericondrio que contiene fibras elásticas. Los condroblastos, condrocitos y grupos isógenos son más abundantes, por unidad de superficie, que en el cartílago hialino. La matriz fibrilar posee abundantes haces de fibras elásticas.

Tinción:

Pericondrio con fibras elásticas

Matriz amorfa con abundantes fibras elásticas

Condrocitos

Grupos isógenos

Objetivo de 10x

28

3. Preparación histológica: Columna vertebral Observar el cartílago fibroso uniendo a dos cuerpos vertebrales. Identificar el núcleo pulposo rodeado de cartílago fibroso que se observa formado por haces paralelos de fibras de colágena tipo I y entre ellas la presencia de condrocitos alargados, situados unos detrás de otros.

Tinción: Núcleo pulposo

Cartílago fibroso:

-Haces paralelos de colágena tipo I

- Núcleos de los condrocitos

-Escasa presencia de matriz amorfa Cartílago hialino Objetivo de 10x

29

PRÁCTICA 10. Tejido óseo Objetivo: Identificar los componentes histológicos del hueso compacto y del hueso esponjoso, así como las diferencias histológicas entre osificación intramembranosa y endocondral. 1. Preparación histológica: Hueso lijado (hueso compacto).

Observar secciones transversales y longitudinales de las osteonas o sistemas de Havers constituidos por laminillas concéntricas de matriz ósea y entre ellas espacios de forma estrellada o “lagunas óseas” que alojan a los osteocitos. En la parte central de la osteona se distinguen los conductos de Havers. Entre dos conductos de Havers se disponen los conductos de Volkmann o perforantes que comunican osteonas de manera perpendicular.

Tinción:

Osteonas o sistemas de Havers: - Laminillas de las osteonas

- Lagunas óseas

- Canalículos óseos

- Conducto de Havers Conductos de Volkmann o perforantes Objetivo de 40x

30

2. Preparación histológica: Cara o fosas nasales de feto / Calota de feto Observar las características de la osificación intramembranosa y su contenido: tejido mesenquimatoso, células osteógenas sintetizando y liberando matriz amorfa y fibrilar (osteoide) y la transformación de las células osteógenas en osteoblastos localizados en los bordes del osteoide. En el interior de este esbozo, trabécula ósea en formación, se observan los osteocitos en su laguna y rodeados de matriz orgánica. El tejido circundante alberga abundantes vasos sanguíneos.

Tinción: Tejido mesenquimatoso

Células osteógenas

Vasos sanguíneos

Trabécula:

- Osteoide

- Osteoblastos

- Osteocitos

Objetivo de 40x

31

3. Preparación histológica: Pie o mano de feto Observar secciones longitudinales de los moldes cartilaginosos de los huesos carpales (mano) o tarsales (pie) para distinguir los procesos iniciales de osificación cartilaginosa o endocondral. Se visualiza el endostio atravesado por vasos sanguíneos y el punto de osificación endocondral en la parte media del molde cartilaginoso.

Tinción: Centro de osificación

Pericondrio

Molde de cartílago

Vasos sanguíneos

Zona de cartílago hipertrófico

Objetivo de 40x

32

4. Preparación histológica: Tibia de feto Observar la placa o disco epifisiario de un hueso largo. Diferenciar las cinco zonas de la osificación endocondral: zona de reserva o reposo, zona de cartílago de proliferación, zona de maduración o hipertrofia, zona de calcificación y zona de osificación o resorción.

Tinción:

Tejido epifisiario

Placa o disco epifisiario

Tejido óseo diafisiario

Objetivo de 10x Zona de reserva

Zona de proliferación

Zona de hipertrofia

Zona de calcificación

Zona de osificación o resorción

Objetivo de 40x

BLOQUE 2

33

PRÁCTICA 11. Tejido muscular Objetivo: Distinguir las características morfológicas y estructurales de cada variedad de tejido muscular. 1. Preparación histológica: Lengua

Observar las secciones longitudinales, oblicuas y transversales de las fibras musculares estriadas esqueléticas; distinguir las estriaciones claras y oscuras y el número de núcleos dispuestos en la periferia de las fibras (multinucleadas).

Tinción: Haces de fibras musculares

Fibras musculares en secciones longitudinales

Fibras musculares en secciones transversales

Fibras musculares en secciones oblicuas

Tejido conjuntivo (perimisio)

Núcleos

Objetivo de 10x Fibras musculares en cortes

longitudinales:

- Estriaciones claras y oscuras

- Núcleos

- Endomisio

Fibras musculares en cortes transversales:

- Endomisio

- Núcleos Objetivo de 40x - Miofibrillas

34

2. Preparación histológica: Miocardio Observar la disposición de las fibras musculares estriadas cardiacas en secciones longitudinales integrando un sincitio tridimensional y reticular. Distinguir la unión termino-terminal de los miocardiocitos constituyendo los discos intercalares y, en algunos casos, la disposición “apantalonada” que exhibe la relación de dos o tres miocardiocitos unidos por sus extremos. Observar las estriaciones de bandas claras y oscuras y la presencia de un núcleo de posición central. En las secciones transversales diferenciar las miofibrillas como puntos acidófilos y el núcleo central. Es probable observar el pigmento de lipofucsina en el citoplasma cerca de los polos nucleares.

Tinción:

Haces de miocardiocitos en secciones longitudinales

Tejido conjuntivo interfascicular

Haces de miocardiocitos en secciones transversales

Objetivo de 10x

Miocardiocitos o células “apantalonadas”

-Núcleos centrales en secciones longitudinales y transversales

-Estriaciones claras y oscuras

-Discos intercalares

-Pigmento de lipofucsina

Capilares interfasciculares

Miofibrillas en secciones transversales


35

3. Preparación histológica: Intestino delgado o uréter Observar las formas ahusadas de las fibras musculares lisas en secciones longitudinales del tejido. En el centro de la fibra, cuyo diámetro es mayor que el resto de la misma, se localiza el núcleo alargado de bordes sinuosos. Esta diferencia en grosores se distingue con nitidez en secciones transversales de varias fibras. 0

Tinción:

Fibras musculares lisas en secciones longitudinales:

- Núcleos centrales alargados

Fibras musculares lisas en secciones transversales:

- Núcleos centrales de contorno redondeado

Objetivo de 10x

Fibras musculares lisas

- Núcleos centrales

Objetivo de 40x

36

PRÁCTICA 12. Tejido y sistema nervioso Objetivo: Observar en impregnaciones metálicas las características morfológicas de los principales tipos celulares del tejido nervioso: somas neuronales, prolongaciones neuronales (dendritas y axón) y células gliales. Preparaciones con impregnaciones metálicas. En la colección de laminillas se encuentran estas preparaciones, pero no en el número suficiente, por lo que se recomienda dejar campos fijos en los microscopios y/o utilizar el microscopio virtual o atlas. En estas laminillas se pueden reconocer algunas formas de neuronas como las piramidales de la corteza cerebral, las neuronas de Purkinje en el cerebelo o las neuronas motoras de la médula espinal. También se pueden utilizar estas preparaciones para diferenciar e identificar las células de la glia: astrocitos fibrosos y protoplasmáticos, oligodendrocitos y células de la microglia. 1. Preparación histológica: Médula espinal. Neurona motora multipolar

(laminillas 3 y 4) Observar en las astas anteriores o ventrales la forma estrellada de las neuronas motoras con sus prolongaciones dendríticas y axónica.

Tinción:

Somas de neuronas multipolares

Prolongaciones dendríticas

Prolongación axónica

Objetivo de 40x

37

2. Preparación histológica: Corteza cerebral. Neuronas piramidales (laminilla 6)

Reconocer el contorno triangular de la neurona y sus prolongaciones dendríticas y observar, en algunas de ellas, el axón que se desprende de la base celular. A mayor aumento distinguir en las ramificaciones dendríticas las espinas dendríticas (lugar de las sinapsis).

Tinción:

Neuronas piramidales:

- Dendritas

- Somas

- Axones

Objetivo de 10x

Dendritas de las neuronas piramidales:

- Espinas

- Ramificaciones


38

3. Preparación histológica: Corteza cerebelosa. Neurona piriforme de Purkinje

Observar el soma piriforme de las neuronas de Purkinje en la segunda capa de la sustancia gris del cerebelo; del soma se originan abundantes ramificaciones dendríticas que se proyectan hacia la capa molecular, pero solamente en un plano. El axón se forma en la base de la neurona y se dirige hacia la capa granulosa.

Tinción:

Neuronas de Purkinje: - Somas

- Ramificaciones dendríticas

- Axones

Objetivo de 10x

Ramificaciones dendríticas

Espinas dendríticas

Objetivo de 40x

39

4. Preparación histológica: Cerebro de perro. Astrocitos fibrosos (laminillas 1 y 2) Cerebro de humano. Astrocitos fibrosos (laminilla 15)

Observar los astrocitos fibrosos ubicados en la sustancia blanca del sistema nervioso los cuales poseen prolongaciones largas y poco ramificadas. También se puede apreciar el estrecho contacto de los pies perivasculares de sus largas prolongaciones con los capilares continuos (barrera hematoencefálica).

Tinción:

Prolongaciones de los astrocitos fibrosos

Somas de los astrocitos fibrosos

Pie perivascular

Capilares sanguíneos Objetivo de 40x

40

5. Preparación histológica: Cerebro de humano. Astrocitos fibrosos y protoplasmáticos (laminilla 15)

Observar tanto los astrocitos protoplásmaticos ubicados en la sustancia gris, como los astrocitos fibrosos ubicados en la sustancia blanca. A diferencia de los astrocitos fibrosos, los astrocitos protoplasmáticos poseen prolongaciones cortas y muy ramificadas. También se pueden apreciar los componentes de la barrera hematoencefálica.

Tinción:

Astrocitos protoplasmáticos

Astrocitos fibrosos

Pie perivascular

Capilar sanguíneo Objetivo de 40x

41

6. Preparación histológica: Mesencéfalo. Oligodendrocitos y microglia (laminilla 18)

Observar los oligodendrocitos los cuales poseen un cuerpo poligonal del cual emergen prolongaciones cortas y escasas. Por otra parte, la microglia presenta un cuerpo celular ovalado y alargado, y de sus vértices se extienden una serie de prolongaciones ramificadas que se dirigen casi en línea recta y terminan en pequeños ganchos.

Tinción:

Oligodendrocito:

- Soma

- Prolongaciones Microglia: - Soma

- Prolongaciones

Objetivo de 40x

42

PRÁCTICA 13. Sistema nervioso central y sistema nervioso periférico Objetivo: Reconocer en tinciones anilínicas las características histológicas de los principales órganos y estructuras del sistema nervioso central y periférico. 1. Preparación histológica: Corteza cerebral

Observar la sustancia gris con su estructura en capas que se diferencia de la sustancia blanca en la que no se localizan somas neuronales. En la corteza se pueden identificar las neuronas piramidales.

Tinción:

Sustancia gris

Sustancia blanca

Objetivo de 10x

Neuronas piramidales

Objetivo de 40x

43

2. Preparación histológica: Cerebelo Observar las tres capas de la sustancia gris del cerebelo y la relación que guarda con la sustancia blanca. Con el objetivo de 10x se distingue en un corte transversal del cerebelo uno o dos pliegues u hojas del árbol cerebeloso. Se visualiza la piamadre muy vascularizada recubriendo la superficie de cada pliegue u hoja. En la parte central de cada una de ellas se distinguen las fibras mielinizadas de la sustancia blanca. En el objetivo de 40x se observan las tres capas de la corteza cerebelosa: molecular, de Purkinje y granulosa.

Tinción:

Pliegue del cerebelo

Piamadre

Sustancia gris

Sustancia blanca

Objetivo de 10x Corteza cerebelosa:

- Capa molecular

- Capa de las neuronas de Purkinje

- Capa granulosa

Sustancia blanca

Objetivo de 40x

44

3. Preparación histológica: Médula espinal A simple vista se observa en el centro de la muestra la sustancia gris en forma de “H”. Observar con el objetivo de 4x o 10x los componentes de las envolturas meníngeas, los cordones de la sustancia blanca y las astas sensitivas y motoras de la sustancia gris de la médula espinal. En el centro de la estructura localizar el conducto del epéndimo. Distinguir el surco ventral y el septo dorsal de la sustancia blanca recubiertos por piamadre. Observar la forma de las neuronas del asta sensitiva y motora, la posición del núcleo y la distribución de la sustancia de Nissl en ambos tipos de neuronas de las astas.

Tinción:

Meninges

Septo dorsal

Septo ventral

Sustancia gris: - Astas ventrales

- Astas dorsales

Sustancia blanca

Conducto ependimario


Neuronas sensitivas (astas dorsales) Epitelio del conducto ependimario

Objetivo de 40x

45

4. Preparación histológica: Ganglio raquídeo

En el ganglio raquídeo (ganglio de la raíz dorsal) se distinguen el soma redondeado de las neuronas monopolares (seudounipolares), las células satélite o anficitos rodeando el soma de las neuronas, las fibras nerviosas y el tejido conjuntivo.

Tinción:

Neuronas motoras (astas ventrales)

Objetivo de 40x

Tinción: Células satélites o anficitos

Neuronas monopolares:

- Soma - Núcleos

Fibras nerviosas

Tejido conjuntivo Objetivo de 40x

46

5. Preparación histológica: Ganglio simpático En el gánglio simpático se distinguen el soma de las neuronas multipolares, las células satélite (anficitos) rodeando el soma de las neuronas, las fibras nerviosas y el tejido conjuntivo que es más abundante que en el ganglio raquídeo.

6. Preparación histológica: Esófago o intestino delgado

Observar los componentes del ganglio visceral, intramural o parasimpático entre las dos capas de la túnica muscular externa.


Somas neuronales

Núcleos de las neuronas Fibras nerviosas

Tejido conjuntivo Objetivo de 40x


Somas de neuronas multipolares

Núcleos de las neuronas Fibras nerviosas

Objetivo de 40x

47

7. Preparación histológica: Nervio periférico Observar las envolturas conjuntivas que integran un nervio: epineuro, perineuro y endoneuro en un corte transversal, así como las prolongaciones nerviosas: axones rodeados por las vainas de mielina. En el corte longitudinal observar las fibras nerviosas onduladas y los núcleos alargados de las células de Schwan.

8. Preparación histológica: Plexos coroides Observar el epitelio cúbico simple y el tejido conectivo en el que se localizan los capilares sanguíneos

Tinción: Epineuro Perineuro Endoneuro

Axones Vainas de mielina

Nécleos de células de Schwan Objetivo de 40x

Tinción: Epitelio cúbico simple Capilares Endotelio de los capilares

Tejido conjuntivo laxo

Objetivo de 40x

48

PRÁCTICA 14. Ojo (globo ocular) Objetivo: Reconocer las estructuras básicas y compartimientos del globo ocular desde el punto de vista histológico.

1. Preparación histológica: Ojo (córnea)

La córnea forma parte de la túnica fibrosa o externa y se encuentra ubicada en la parte anterior del mismo. Observar los componentes epiteliales y conjuntivos de la córnea.

Tinción:

Epitelio anterior (plano estratificado sin estrato córneo)

Membrana de Bowman Estroma corneal

Membrana de Descemet Endotelio corneal o posterior

Cámara anterior y posterior Objetivo de 40x

49

2. Preparación histológica: Ojo (limbo esclerocorneal) Observar la transición del epitelio corneal que es plano estratificado sin estrato córneo, al epitelio conjuntival que es cilíndrico estratificado; en ese lugar existen células madres corneales. Debajo del epitelio conjuntival se sitúa una lámina propia o corion de tejido conjuntivo denso con abundantes capilares.

3. Preparación histológica: Ojo (procesos ciliares y cuerpo ciliar)

Es otro componente de la coroides. Se localiza entre la raíz del iris y la ora serrata. Posee tres grupos de fibras musculares lisas y un conjunto de evaginaciones, los procesos ciliares.

Tinción: Epitelio conjuntival Limbo esclerocorneal Epitelio corneal

Tejido conjuntivo escleral Capilares esclerales

Objetivo de 40x

Tinción: Cuerpo ciliar Epitelio pigmentario Procesos ciliares Fibras musculares lisas Tejido conjuntivo laxo

Región vascular interna Vasos sanguíneos

Objetivo de 40x

50

4. Preparación histológico: Ojo (iris) Se origina a partir de la superficie anterior del cuerpo ciliar. El iris se adhiere a la esclerótica a unos 2 mm del límite esclero-corneal. Limita la cámara anterior y posterior, ambas cámaras contienen al humor acuoso. Posee dos superficies y, entre ellas, se sitúa un tejido conjuntivo laxo muy vascularizado. La superficie posterior posee dos epitelios, el pigmentario posterior con abundantes gránulos de melanina y el epitelio anterior consta de células mioepiteliales contráctiles: forman el músculo dilatador de la pupila; alrededor de la pupila existen fibras musculares lisas, de origen ectodermal, que integran el músculo constrictor o esfínter de la pupila.

Tinción: Estroma conjuntivo laxo Músculo constrictor o esfínter

del iris Epitelio anterior: - Fibras mioepiteliales

dilatadoras

Epitelio pigmentario posterior Objetivo de 40x

51

5. Preparación histológica: Ojo (ángulo iridocorneal) Observar la parte periférica de la córnea–esclerótica con sus componentes tisulares conjuntivos: red o malla trabecular, espacios de Fontana confluyendo en el conducto de Schlemm y la relación existente con el inicio o nacimiento del iris, componente de la coroides.

6. Preparación histológica: Ojo (retina y coroides) Observar los diversos componentes tisulares: conjuntivos, vasculares y epiteliales de la coroides y de la retina. Reconocer las 10 capas de las cuales consta la retina.

Tinción:

Coroides:

- Células pigmentarias

(coroides)

- Vasos sanguíneos (coroides) Retina

Objetivo de 10x

Tinción: Límite córnea-esclerótica Red o malla trabecular Conducto de Schlemm Tejido conjuntival escleral

Objetivo de 40x

52

Tinción:

Epitelio pigmentario

Capa de conos y bastones Membrana limitante externa Capa nuclear externa Capa plexiforme externa Capa nuclear interna Capa plexiforme interna

Capa ganglionar Capa de los axones del nervio óptico

Membrana limitante interna Objetivo de 40x

53

7. Preparación histológica: Ojo (nervio óptico/punto ciego) Observar la leve invaginación o depresión producida en la retina, coroides y la esclerótica al penetrar el conjunto de axones que constituyen el nervio óptico. Esta zona corresponde a la papila óptica

8. Preparación histológica: Ojo (cristalino)

El cristalino se ubica entre la cámara posterior y la cámara vítrea y se sostiene a partir del ligamento suspensorio del cristalino o zónula de Zinn que emerge de los procesos ciliares del cuerpo ciliar. Rodeando a todo el cristalino se encuentra la cápsula. En el polo anterior se localiza el epitelio del cristalino. El cristalino se encuentra constituido en su mayor parte por fibras que son células que se originan del epitelio situado en la zona del ecuador.

Tinción: Esclerótica Coroides Retina Axones Nervio óptico

Objetivo de 40x

Tinción: Cápsula del cristalino Epitelio superficial cúbico simple

Fibras del cristalino Núcleos de las fibras del cristalino Ligamento suspensorio del cristalino

Objetivo de 40x

54

PRÁCTICA 15. Tejido sanguíneo (sangre)Objetivo: Identificar las diferentes células del tejido sanguíneo circulante, sangre periférica, por sus características morfológicas: tamaño, contenido y coloración del citoplasma, y la forma de los núcleos; así como las plaquetas. Preparación histológica: Frotis de sangre periférica

Tinción:

Plaquetas

Eritrocitos

Neutrófilo:

- Núcleo multilobulado

- Gránulos específicos del neutrófilo

Objetivo de 40x o 100 x

Eritrocitos Eosinófilo:

- Núcleo bilobulado

- Gránulos específicos del eosinófilo


55

Tinción:

Eritrocitos

Basófilo:

- Núcleo (generalmente oculto por los gránulos)

- Gránulos específicos del basófilo

Objetivo de 40x o 100 x Eritrocitos Linfocito:

- Núcleo esférico y grande

- Reborde citoplasmático Objetivo de 40x o 100x Eritrocitos Monocito:

- Núcleo excéntrico, con hendidura central (arriñonado)

Objetivo de 40x o 100 x

56

PRÁCTICA 16. Tejido y órganos linfoides

Objetivo:Identificar en el microscopio óptico las características histológicas de la amígdala y el apéndice, así como de los órganos linfoides encapsulados: timo, bazo y ganglios linfáticos o linfonodos. 1. Preparación histológica: Amígdala palatina

Observar que el parénquima carece de cápsula. Los componentes tisulares linfoides están recubiertos por un epitelio plano estratificado sin estrato córneo. Existe una lámina propia de tejido conjuntivo denso, invadido por cantidades variables de linfocitos. El epitelio y la lámina propia se invaginan para constituir las criptas tonsilares o amigdalinas. El parénquima subepitelial está integrado por folículos linfoides secundarios y tejido linfoide denso interfolicular. En las zonas más profundas suelen observarse glándulas seromucosas y/o fibras musculares estriadas esqueléticas.

Tinción: Epitelio plano estratificado sin estrato córneo Criptas tonsilares o amigdalinas

Lámina propia con linfocitos Folículos linfoides secundarios:

- Centro germinativo

- Zona del manto Tejido linfoide interfolicular Tejido conjuntivo y vasos Sanguíneos

Objetivo de 10x

57

2. Preparación histológica: Apéndice humano Observar epitelio cilíndrico simple con abundantes células caliciformes que se invagina para formar glándulas intestinales (tubulares rectas), lámina propia escasa y en la submucosa se visualizan varios folículos linfáticos secundarios y tejido linfático difuso.

Tinción:

Epitelio intestinal


Glándulas tubulares rectas

Folículos linfáticos secundarios: - Centro germinativo

- Zona del manto

Tejido linfático difuso


Secciones de glándulas intestinales Folículos linfáticos secundarios:

- Centro germinativo

- Zona del manto

Tejido linfático interfolicular Objetivo 40x

58

3. Preparación histológica: Ganglio linfático Observar las principales características de una sección longitudinal o trasversal de un ganglio linfático. Distinguir el parénquima de la corteza y la médula. Reconocer la cápsula y trabéculas conjuntivas densas irregulares, los senos linfáticos subcapsulares y los senos linfáticos trabeculares. En la corteza identificar los folículos linfoides secundarios y el tejido linfoide de la paracorteza. En la médula el tejido linfoide en cordones y difuso; y los senos linfáticos medulares.

Tinción:

Cápsula y trabéculas

Corteza

Paracorteza

Nódulos o folículos linfoides

Médula


Cápsula Corteza linfática:

- Vasos linfáticos aferentes

- Seno linfático marginal / subcapsular

- Trabéculas conjuntivas corticales

- Seno linfático trabecular

- Folículos linfoides secundarios: • Centro germinativo • Zona del manto

Objetivo 40x

59

4. Preparación histológica: Timo Observar la cápsula muy fina de tejido conjuntivo laxo que emite trabéculas delgadas que individualizan parcialmente a un conjunto de lobulillos tímicos integrados por una corteza basófila y una médula ligeramente acidófila. En la corteza se observan abundantes linfocitos. En la médula existe menos cantidad de linfocitos, en comparación con la corteza. En la médula se observan los corpúsculos tímicos o de Hassall muy acidófilos, con algunas células que exhiben signos de queratinización por la presencia de gránulos basófilos de queratohialina.

Tinción:

Cápsula tímica

Trabéculas de tejido conjuntivo

Lobulillos

Corteza

Médula


Médula:

- Corpúsculo de Hassall

Objetivo 40x

60

5. Preparación histológica: Bazo Observar los componentes tisulares y celulares del parénquima esplénico. El órgano muestra una cápsula gruesa y muy acidófila. Distinguir el origen, desde la cápsula, de trabéculas que ingresan y se distribuyen entre el parénquima. En un inicio se visualizan las trabéculas gruesas, las cuales conforme penetran al parénquima se ramifican hasta culminar, de manera general, en el retículo fibrocelular linfático. En el interior de las trabéculas se visualizan vasos sanguíneos arteriales y venosos, y vasos linfáticos. Diferenciar los componentes del parénquima esplénico: pulpa roja con eritrocitos en el interior de senos venosos y capilares sinusoidales; y pulpa blanca, constituida por folículos linfoides secundarios y las vainas linfáticas periarteriales. Distinguir, en la capa del manto de los folículos, la presencia de la arteriola folicular o arteriola central.

Tinción: Cápsula

Trabéculas con vasos sanguíneos

Pulpa blanca Pulpa roja


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Tinción: Pulpa blanca:

- Folículos linfoides:

• Centro germinativo • Arteriola folicular o central • Capa del manto

- Vainas periarteriales:

• Ramas de la arteria esplénica

• Linfocitos T

Pulpa roja • Capilares sinusoidales • Eritrocitos


62

PRÁCTICA 17. Sistema cardiovascular I. Corazón y sistema de conducción cardiaca

Objetivo: Identificar las características histológicas del sistema de conducción: nodo sinoatrial, nodo atrioventricular y fibras de Purkinje. En la preparación de fibras de Purkinje observar las características histológicas del epicardio, miocardio, endocardio.

1. Preparación histológica: Nodo atrioventricular

Observar y diferenciar, a menor aumento o a simple vista, el tabique interatrial y el tabique interventricular; entre ambos conglomerados musculares se distingue una zona menos coloreada, es el tabique conjuntivo atrio-ventricular. En el centro del tabique se visualiza una zona ligeramente acidófila con las fibras musculares modificadas del nodo atrioventricular con las características microscópicas de fibras musculares más pequeñas y con menos cantidad de miofibrillas por lo que se ven más pálidas.

Tinción: Miocardiocitos atriales Miocardiocitos ventriculares

Tejido conjuntivo denso Nodo atrioventricular: - Miocardiocitos nodales


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2. Preparación histológica: Nodo sinoatrial Observar la pared cardiaca del atrio derecho. Se distinguen: la pared de la vena cava y su relación con el epicardio del atrio. A menor aumento, se diferencian las fibras musculares atriales de los miocardiocitos modificados del nodo porque las atriales se colorean con mayor intensidad que las del nodo. Así mismo el diámetro de las fibras atriales es ligeramente mayor que los del nodo. Con el objetivo de 40 x, se observa que las fibras nodales poseen un núcleo central, voluminoso, rodeado por un espacio en el cual no se observan miofibrillas, las cuales se disponen solamente en la periferia de las fibras.

Tinción:

Pared de la vena cava

Epicardio atrial

Miocardiocitos modificados del nodo

Miocardiocitos atriales


Miocardiocitos modificados del nodo Miocardiocitos atriales

Objetivo 40x

64

3. Preparación histológica: Red de Purkinje Observar en el epicardio el mesotelio, el tejido conjuntivo, los vasos vasculares y los adipocitos. En el miocardio distinguir las características morfológicas de secciones longitudinales y transversales de las fibras musculares estriadas cardiacas o miocardiocitos. En el endocardio observar el endotelio y el tejido conjuntivo en el cual se identifican las fibras de Purkinje que corresponden a células musculares cardiacas modificadas que poseen de cinco a seis veces mayor volumen que las fibras miocárdicas. Poseen un núcleo esférico y central, el citoplasma es pálido por la presencia de miofibrillas escasas y dispuestas en la periferia. El resto del citoplasma está ocupado por abundante cantidad de glucógeno. También se bifurcan y se unen a otras fibras de Purkinje mediante discos intercalares.

Tinción: Epicardio:

- Mesotelio

- Tejido conjuntivo laxo y adipocitos

- Vasos sanguíneos

(ramificaciones coronarias)

Miocardio:

- Vasos sanguíneos

- Tejido conjuntivo

- Miocardiocitos

Endocardio: Objetivo de 4x o 10x

- Endotelio

- Tejido conjuntivo subendotelial

65

Tinción: Endocardio:

- Endotelio

- Tejido conjuntivo subendotelial

- Fibras de Purkinje

Objetivo de 40x

66

PRÁCTICA 18. Sistema cardiovascular II. Vasos sanguíneos

Objetivo: Identificar en el microscopio óptico las características histológicas de las arterias, venas y capilares. 1. Preparación histológica: Aorta

Observar las tres capas o túnicas vasculares de la aorta (arteria de gran calibre, arteria elástica o de conducción): íntima o interna, media y adventicia. Reconocer en la íntima el endotelio y el tejido conjuntivo subendotelial. En la túnica media, la gran cantidad de membranas onduladas elásticas fenestradas y núcleos alargados de las fibras musculares lisas. En la túnica externa o adventicia, el tejido conjuntivo laxo y la presencia de vasos arteriales y venosos.

Tinción: Túnica íntima:

- Endotelio

- Tejido conjuntivo Túnica media:

- Membranas elásticas

- Fibras musculares lisas Túnica adventicia:

- Tejido conjuntivo laxo

- Arteriolas, vénulas y nervios

Objetivo de 10x

67

2. Preparación histológica: Cordón espermático

Observar varios componentes vasculares: a) arterias medianas o musculares o de distribución en la cuales observamos una luz regular (circular), la túnica media muestra abundantes fibras musculares lisas, limitadas por las láminas elásticas interna y externa; b) venas medianas en las que se oberva una luz irregular, con la pared delgada con respecto a las arterias, con una adventicia muy notoria; y c) arteriolas y capilares.

Tinción: Venas medianas:

- Túnica íntima

- Túnica media

- Túnica adventicia Arterias medianas o

musculares: - Túnica íntima

- Túnica media

- Túnica adventicia

Arteriolas Capilares

Objetivo de 40x

33

BLOQUE 3

68

PRÁCTICA 19. Sistema respiratorio

Objetivo: Identificar las características histológicas de los componentes del sistema respiratorio.

1. Preparación histológica: Epiglotis Observar que la epiglotis está formada por un cartílago elástico central revestido, en su superficie anterior, por mucosa de la orofaringe formada por epitelio plano estratificado sin estrato córneo y lámina propia de tejido conjuntivo que se continúa con el pericondrio. En su superficie posterior está revestida por mucosa respiratoria formada por epitelio respiratorio y lámina propia de tejido conjuntivo que se continúa con el pericondrio.

Tinción:

Mucosa de la orofaringe: - Epitelio

- Lámina propia

Cartílago elástico

Mucosa respiratoria:

- Epitelio respiratorio

- Glándulas seromucosas de la lámina propia


Epitelio respiratorio Lámina propia Glándulas seromucosas Cartílago elástico

Objetivo de 40x

69

2. Preparación histológica: Laringe Observar las cuerdas o pliegues vocales: las falsas, vestibulares o superiores, y las verdaderas, vocales o inferiores. La superficie de las cuerdas vocales está tapizada por dos tipos de epitelios, plano estratificado sin estrato córneo en las cuerdas vocales y epitelio respiratorio en las cuerdas vestibulares. Las cuerdas vestibulares se reconocen porque en la lámina propia existen glándulas seromucosas; por el contrario en las cuerdas vocales, la lámina propia alberga abundantes haces de fibras musculares estriadas esqueléticas.

Tinción:

Cuerdas vestibulares: - Epitelio respiratorio

- Glándulas seromucosas

Ventrículo

Cuerdas vocales:

- Epitelio plano estratificado

- Músculo vocal (esquelético)

Objetivo de 10x

Cuerda vestibular:

- Tejido conjuntivo denso


Objetivo 40x

70

Tinción: Cuerda vocal:

- Epitelio plano estratificado sin estrato córneo

- Tejido conjuntivo

- Músculo esquelético

Objetivo de 40x

71

3. Preparación histológica: Tráquea Observar los componentes tisulares de la tráquea: 1) mucosa formada por epitelio respiratorio, membrana basal gruesa y lámina propia de tejido conjuntivo fibroelástico y laxo; 2) submucosa de tejido conjuntivo con glándulas seromucosas; 3) cartílago hialino en forma de "C"; 4) fibras musculares lisas que forman el músculo traqueal que está situado entre los extremos libres de los cartílagos y 5) adventicia formada por tejido conjuntivo.

Tinción: Mucosa:


- Lámina propia Submucosa:

- Tejido conjuntivo

- Glándulas seromucosas Anillo cartilaginoso Adventicia: Objetivo de 4x o 10x

- Tejido conjuntivo

Mucosa:


- Lámina propia

Submucosa: - Tejido conjuntivo

- Vasos sanguíneos


Objetivo de 40x

72

4. Preparación histológica: Pulmón Bronquio intrapulmonar: Observar sus componentes tisulares, los cuales son más o menos semejantes a los de la tráquea pero existen dos diferencias: la presencia de haces musculares lisos debajo de la lámina propia y que rodeando a los bronquios, se observan alvéolos pulmonares.

Tinción: Mucosa:


- Lámina propia

- Haces musculares lisos Submucosa:

- Tejido conjuntivo

- Glándulas seromucosas Placas cartilaginosas Adventicia:

- Tejido conjuntivo

Alvéolos pulmonares

Objetivo de 10x

73

Bronquiolos: En los bronquiolos se encuentra epitelio de tipo respiratorio que se va transformando a medida que los bronquiolos se hacen más pequeños, en epitelio cilíndrico simple a cúbico simple. Sus células caliciformes disminuyen de manera notable hasta dejar de estar presentes en los bronquiolos de menor diámetro. En el epitelio se distinguen las Células de Clara, que no presentan cilios. En la lámina propia los haces de fibras musculares persisten y forman anillos completos. La submucosa carece de glándulas y de cartílago. La adventicia está en contacto directo con los alvéolos pulmonares.

Observar una sección longitudinal de un bronquiolo respiratorio con epitelio cúbico simple cuya pared presenta evaginaciones que corresponden a los alvéolos. El bronquiolo respiratorio se abre en los conductos alveolares y estos a su vez se abren en espacios llamados sacos alveolares formados por alvéolos.

Tinción: Epitelio Lámina propia Fibras musculares lisas Submucosa y adventicia Vasos sanguíneos Alvéolos pulmonares Objetivo de 10x

Tinción: Epitelio cúbico simple Lámina propia Fibras musculares lisas Submucosa y adventicia Vasos sanguíneos Alvéolos pulmonares Objetivo de 10x

74

PRÁCTICA 20. Sistema tegumentario

Objetivo: Identificar los componentes celulares y tisulares de la piel: epidermis y sus estratos, dermis (papilar y reticular) e hipodermis tanto de piel gruesa como delgada. Identificar los anexos cutáneos en piel cabelluda y piel de axila: folículos pilosos, glándulas sudoríparas, merocrinas y apocrinas, y glándulas sebáceas. 1. Preparación histológica: Piel gruesa

Observar en la epidermis la gran cantidad de estrato córneo (50 a 60 capas de queratinocitos sin núcleos); estrato lúcido con células transparentes y ligeramente acidófilas; estrato granuloso identificado por sus células con gránulos basófilos; el estrato espinoso con células poliédricas o romboidales unidas entre sí por “espinas” y el estrato basal o germinativo, constituido por una sola capa de células cúbicas o cilíndricas.

Tinción: Estrato córneo Estrato lúcido Estrato granuloso Estrato espinoso Estrato germinativo o basal

Objetivo de 10x

75

2. Preparación histológica: Piel delgada Observar que la epidermis tiene cuatro estratos. El más profundo es el germinativo o basal, se continúa con el estrato espinoso, sigue el estrato granuloso y por último el estrato córneo. Carece de estrato lúcido. Diferenciar la dermis papilar y la reticular. Reconocer los tejidos integrantes de la hipodermis o tejido subcutáneo.

Tinción: Epidermis:

- Epitelio plano estratificado con estrato córneo

- Crestas epidérmicas

Dermis: - Dermis papilar

• Papilas dérmicas

- Dermis reticular • Haces gruesos de fibras

de colágena

Hipodermis:

- Tejido conjuntivo laxo Objetivo de 10x

- Vasos sanguíneos

- Tejido adiposo

Epidermis:

- Estrato córneo

- Estrato granuloso

- Estrato espinoso

- Estrato basal Objetivo 40x

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3. Preparación histológica: Piel de axila Observar las glándulas sebáceas (holocrinas) relacionadas con los folículos pilosos. En ocasiones, se observa el músculo (liso) erector del pelo junto al folículo piloso. En la dermis profunda se distinguen unidades glandulares tubulares glomerulares correspondientes a glándulas sudoríparas ecrinas y apocrinas. Las porciones secretoras de las glándulas sudoríparas apocrinas se diferencian de las ecrinas porque tienen la luz más grande. Las porciones secretoras suelen localizarse en el tejido subcutáneo.

Tinción: Epidermis Dermis Folículo piloso Conductos secretores Músculo piloerector Glándula sebácea Glándula sudorípara:

- Ecrina

- Apocrina

Objetivo 10x

77

PRÁCTICA 21. Sistema endocrino

Objetivo: Reconocer las características histológicas y tintoriales de las glándulas endocrinas: hipófisis, pineal o epífisis, tiroides, paratiroides, suprarrenales e islotes pancreáticos o de Langerhans. 1. Preparación histológica: Hipófisis

Observar las características tisulares de los componentes de la hipófisis: parte distal y parte intermedia de la adenohipófisis y la parte nerviosa de la neurohipófisis. En la parte distal reconocer las células acidófilas, basófilas y cromófobas y sus relaciones con el estroma fino y los capilares sinusoidales. En la parte intermedia distinguir células levemente basófilas y la presencia de folículos epiteliales llenos de una sustancia coloidal llamados quistes de Rathke. En la parte nerviosa observar la estructura filamentosa constituida por axones sin mielina y rodeando a los axones se localizan los pituicitos. Las terminaciones nerviosas presentan unas dilataciones que se denominan los cuerpos de Herring que almacenan los gránulos neurosecretores.

Tinción: Pars distal Pars intermedia Pars nerviosa

Objetivo 10x

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Tinción:

Adenohipofisis: -Células acidófilas -Células basófilas -Células cromófobas -Capilares -Estroma


Neurohipofisis:

-Axones -Cuerpos de Herring -Pituicitos -Capilares


79

2. Preparación histológica: Glándula suprarrenal Observar la organización microscópica general de la glándula suprarrenal formada por corteza y médula. La corteza, integrada por la cápsula y las zonas: glomerular, fasciculada y reticular. En la zona glomerular se distinguen células cilíndricas o piramidales que se agrupan en cordones curvos o cúmulos ovoides. En la zona fascicular sus células son poliédricas y se agrupan en cordones rectos, formando columnas entre las que se disponen capilares sinusoidales, estas células son grandes con un citoplasma ligeramente eosinófilo y lleno de gotas de lípidos que le dan un aspecto vacuolado por lo que se denominan espongiocitos. En la zona reticular sus células se agrupan en cordones anastomosados separados por capilares fenestrados. La médula está formada por células cromafines, células ganglionares simpáticas, tejido conectivo, capilares sinusoidales y fibras nerviosas. Las células cromafines son células de aspecto epitelial que se agrupan en cúmulos ovoides y cordones anastomosados.

Tinción:

Cápsula conjuntiva

Corteza Médula


Corteza suprarrenal:

- Zona glomerular

- Zona fasciculada (espongiocitos)

- Zona reticular

- Capilares

Objetivo 10x o 40x

80

3. Preparación histológica: Paratiroides Observar que la glándula paratiroides está rodeada de una cápsula muy fina que ingresa al parénquima y forma lobulillos poco definidos integrados por dos tipos celulares: las células principales y las células oxífilas. Las células principales son pequeñas, de citoplasma rosa pálido y con núcleos centrales y esféricos. Se disponen en cordones irregulares relacionados con capilares sanguíneos. Las células oxífilas se reconocen porque se organizan en pequeños grupos. Son células de mayor tamaño, 15 a 20 micrómetros de diámetro, con un citoplasma acidófilo y núcleos esféricos. Entre ambos tipos celulares suelen observarse adipocitos y capilares sanguíneos.

Tinción: Médula suprarrenal:

- Grupos y cordones medulares

- Células cromafines

- Células ganglionares


Tinción: Cápsula conjuntiva muy delgada

Cordones de células principales Capilares sanguíneos Tabiques delgados de tejido conjuntivo Agrupaciones de adipocitos Grupos de células oxífilas


81

4. Preparación histológica: Tiroides Observar el parénquima tiroideo constituido por folículos formados por un epitelio cúbico simple o cilíndrico bajo que contienen, en su interior, el coloide tiroideo. Cada folículo está rodeado por un estroma fino colagenoso. Entre la membrana basal y las células foliculares se pueden visualizar células de citoplasma claro y núcleos esféricos voluminosos que son las células “claras” o parafoliculares o células “C”. Entre los folículos tiroideos existen numerosos capilares sanguíneos.

5. Preparación histológica: Páncreas Observar en el corte histológico de páncreas los islotes pancreáticos o de Langerhans. Se distinguen porque son grupos de células poliédricas con citoplasma claro que forman cordones cortos y que se diferencian fácilmente de los acinos pancreáticos.

Tinción: Folículos tiroideos Epitelio cúbico simple Coloide tiroideo Células parafoliculares o “C” Tejido conjuntivo interfolicular Capilares sanguíneos


Tinción:

Islote pancreático o de Langerhans


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6. Preparación histológica: Glándula pineal Observar el aspecto nervioso de sus componentes celulares y fibrilares. Se reconocen los dos tipos celulares que la integran: los pinealocitos y las células intersticiales, gliales o de sostén. Los pinealocitos son células de citoplasma pálido y escaso, con un núcleo esférico y voluminoso. Las células gliales son más pequeñas, con un núcleo heterocromático y ligeramente alargado. Entre el conjunto de células se observan unas concreciones calcáreas, muy basófilas, denominadas arenilla cerebral o acérvulos cerebrales, que es característico de esta glándula.

Tinción: Pinealocitos Células intersticiales Arenilla cerebral


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PRÁCTICA 22. Sistema digestivo I. Cavidad oral Objetivo: Reconocer los componentes tisulares de la lengua y las estructuras epiteliales, conjuntivas y sensoriales de las papilas linguales, así como diferenciar las unidades glandulares secretoras de las glándulas salivales mayores. 1. Preparación histológica: Lengua

Observar la estructura de la lengua que presenta en su superficie dorsal una serie de evaginaciones o repliegues de la mucosa lingual que son las papilas gustativas. Se distinguen las papilas filiformes que muestran forma cónica con el extremo apical ligeramente inclinado hacia atrás y la papila fungiforme de aspecto redondeado, con una base menos gruesa (forma de hongo). Ambas papilas están formadas por un epitelio plano estratificado sin estrato córneo las papilas fungiformes y con estrato córneo las filiformes. Las papilas fungiformes poseen en el epitelio apical yemas, botones o corpúsculos gustativos. La superficie ventral de la lengua no presenta papilas y su epitelio es plano estratificado sin estrato córneo. Entre las mucosas dorsal y ventral se observan haces de fibras musculares esqueléticas separados por tabiques de tejido conjuntivo.

Tinción:

Papilas filiformes

Papila fungiforme Botón o yema gustativa Fibras musculares esqueléticas Epitelio plano estratificado de la superficie ventral


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2. Preparación histológica: Lengua, papilas caliciformes Observar la papila caliciforme o circunvalada rodeada por el surco gustativo. Distinguir en las paredes epiteliales la presencia de corpúsculos o botones gustativos. Reconocer, en la lámina propia, abundante vascularización y más profundamente, unidades glandulares salivales serosas (glándulas de Von Ebner) cuyos conductos de secreción drenan en el fondo del surco gustativo. Estas glándulas también existen entre los haces musculares estriados esqueléticos que integran el soporte muscular de la raíz de la lengua.

Tinción: Epitelio plano estratificado sin estrato córneo Papila caliciforme Surco gustativo Corpúsculo gustativo

Unidades glandulares serosas Conducto de secreción

Haces de fibras musculares esqueléticas

Objetivo de 10x

85

3. Preparación histológica: Papilas foliadas Observar, a menor aumento, la presencia de varias papilas foliadas y separadas por surcos o hendiduras estrechas y profundas. En este epitelio lateral plano estratificado existen abundantes yemas o botones gustativos; el soporte es un tejido conjuntivo laxo que alberga varias unidades salivales serosas. En el fondo de los surcos o hendiduras desembocan conductos secretores de glándulas serosas. El epitelio superficial apical carece de células cornificadas. Más profundamente se visualizan haces de fibras musculares estriadas esqueléticas que se entremezclan con pequeños lobulillos de unidades salivales serosas.

Tinción: Papilas foliadas:


- Surcos gustativos

- Corpúsculo gustativo

- Conducto de secreción

Lámina propia Fibras musculares esqueléticas Unidades salivales serosas


86

4. Preparación histológica: Glándula parótida Observar las unidades glandulares serosas. Distinguir el sistema de conductos secretores. Visualizar la presencia de células adiposas entremezcladas con los acinos glandulares serosos.

5. Preparación histológica: Glándula submaxilar Observar unidades glandulares mixtas con porción mucosa y serosa (semilunas serosas). Distinguir las unidades mucosas y diferenciarlas de las unidades puramente serosas. Reconocer los conductos. Observar la presencia de vasos sanguíneos arteriales y venosos en el tejido conjuntivo interlobulillar, así como linfocitos y células plasmáticas.

Tinción: Acino glandular seroso Conductos Tejido conjuntivo interlobulillar Adipocitos

Objetivo de 10x

Tinción: Adenómeros mixtos:

- Células mucosas

- Semilunas serosas

Adenómeros mucosos

Adenómeros serosos Conductos Tejido conjuntivo interlobulillar Objetivo de 10x

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6. Preparación histológica: Glándula sublingual Observar la presencia de acinos mayoritariamente mucosos; también se distinguen acinos mixtos. En los acinos mucosos se reconoce la posición basal de los núcleos de aspecto aplanado. No es fácil diferenciar los conductos intercalares y los estriados, en cambio se observan conductos interlobulillares en el tejido conjuntivo interlobulillar, células plasmáticas y linfocitos.

Tinción: Acinos mucosos:

- Citoplasma de aspecto espumoso

- Núcleos aplanados y basales

Acinos mixtos Conductos interlobulillares Tejido conjuntivo interlobulillar Objetivo de 10x o 40x

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PRÁCTICA 23. Sistema digestivo II. Tubo digestivo

Objetivos: 1. Observar los componentes estructurales: mucosa, submucosa, muscular

externa y serosa o adventicia. 2. Distinguir los tipos de epitelios que recubren a la mucosa de cada componente

anatómico del tubo digestivo y sus diversos componentes glandulares que integran a estos.

3. Diferenciar el tipo de tejido muscular y la disposición del mismo en los diversos segmentos.

4. Observar la distribución de neuronas y prolongaciones neuronales que integran su inervación.

1. Preparación histológica: Esófago

Observar la mucosa formada por el epitelio plano estratificado sin estrato córneo, la lámina propia y la muscular de la mucosa. Reconocer el tejido conjuntivo de la submucosa así como las glándulas de secreción mucosa y la existencia de vasos sanguíneos, tejido linfático difuso y, en algunas preparaciones, pequeños ganglios nerviosos que constituyen el plexo submucoso o de Meissner. Distinguir la posición de las dos capas de fibras musculares de la túnica muscular: circular interna y longitudinal externa; entre ellas la presencia de ganglios nerviosos y prolongaciones neuronales que integran el plexo mioentérico o de Aüerbach. Identificar la adventicia que es la capa o túnica más externa.

Tinción: Mucosa:


- Lámina propia Glándulas cardiales - Muscular de la mucosa

Submucosa:

- Glándulas esofágicas mucosas Muscular externa:

- Circular interna

- Plexo mientérico Objetivo de 4x o 10x

- Longitudinal externa Adventicia

89

2. Preparación histológica: Estómago Observar la mucosa gástrica recubierta por epitelio cilíndrico simple secretor de mucina (moco); distinguir la invaginación de este epitelio (fositas gástricas) para formar las glándulas gástricas que son tubulares simples ramificadas. Reconocer la escasa cantidad del tejido conjuntivo, de la lámina propia, localizado entre las glándulas gástricas. Observar la muscular de la mucosa que separa la mucosa de la submucosa. La submucosa formada por tejido conjuntivo y la túnica muscular constituida por tres estratos de fibras musculares lisas. Todos estos tejidos están rodeados por la serosa que es la capa más externa.

Tinción: Mucosa:

- Epitelio cilíndrico simple secretor

- Fositas gástricas

- Glándulas gástricas - Lámina propia - Muscular de la mucosa Submucosa Muscular externa Serosa


Mucosa:

- Epitelio cilíndrico simple secretor - Células secretoras de moco de

las fositas gástricas

- Células principales

- Células parietales - Lámina propia Objetivo 40x

90

3. Preparación histológica: Duodeno Observar la mucosa intestinal duodenal integrada por válvulas coniventes o de Kerckring (mucosa + submucosa), vellosidades intestinales, glándulas intestinales o criptas de Lieberkhün y las glándulas duodenales o de Brunner en la submucosa. El epitelio superficial es cilíndrico simple en el que se observan los enterocitos (células cilíndricas de absorción con microvellosidades) y células caliciformes. Reconocer la túnica muscular con sus dos capas: circular interna y longitudinal externa de fibras musculares lisas y distinguir la capa serosa.

Tinción:

Válvulas coniventes

Mucosa:

- Vellosidades intestinales

- Epitelio superficial - Lámina propia - Glándulas

intestinales/Lieberkühn - Muscular de la mucosa Submucosa:

Objetivo de 4x o 10x - Glándulas duodenales/Brunner Muscular externa

91

Tinción: Mucosa:

- Vellosidad intestinal

- Enterocitos

- Células caliciformes

- Lámina propia

- Glándulas intestinales

- Células de Paneth

- Muscular de la mucosa

Objetivo 40x Submucosa:

- Glándulas de Brunner

92

4. Preparación histológica: Intestino delgado Observar las vellosidades intestinales, el epitelio intestinal y las glándulas intestinales en cuya base se visualizan las células de Paneth. Diferenciar la lámina propia, en la cual se identifican las glándulas intestinales. En ciertos casos en el centro de la lámina propia suele reconocerse un vaso linfático. Distinguir la muscular de la mucosa y después la submucosa. El yeyuno y el íleon carecen de glándulas en la submucosa. Entre las capas musculares de la túnica muscular se visualizan ganglios nerviosos del plexo mioentérico o de Aüerbach. La capa serosa es la más externa.

Tinción: Mucosa:

-Vellosidades intestinales

-Epitelio intestinal -Lámina propia -Glándulas intestinales/Lieberkühn -Muscular de la mucosa Submucosa Muscular externa (circular interna y longitudinal externa)

Objetivo de 4x o 10x Serosa

Mucosa:

-Enterocitos -Borde en cepillo (microvellosidades) -Células caliciformes -Glándula intestinal/Lieberkühn

-Células de Paneth

-Muscular de la mucosa

Objetivo 40x

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5. Preparación histológica: Colon Observar que la mucosa no forma vellosidades intestinales. Su epitelio está constituido por abundantes células caliciformes y células cilíndricas de absorción. En la lámina propia reconocer glándulas intestinales tubulares rectas integradas principalmente por células caliciformes y sin células de Paneth. A continuación una muscular de la mucosa y en la submucosa tejido linfático difuso o folicular. La túnica muscular se caracteriza porque la capa longitudinal externa forma las “tenias” del colon.

Tinción:

Mucosa:

- Epitelio intestinal

- Lámina propia - Glándulas intestinales - Muscular de la mucosa Submucosa Muscular externa (circular interna y longitudinal externa)


Mucosa:

- Enterocitos

- Células caliciformes

- Glándula intestinal

- Muscular de la mucosa

Objetivo 40x

94

PRÁCTICA 24. Sistema digestivo III. Hígado, vesícula biliar y páncreas Objetivos: 1. Reconocer los componentes celulares y tisulares del parénquima y estroma

del hígado, vesícula biliar y páncreas.

1. Preparación histológica: Hígado de cerdo Observar la disposición del tejido conjuntivo alrededor del parénquima hepático para formar lobulillos hepáticos clásicos. Distinguir las relaciones microscópicas existentes entre los cordones o láminas de hepatocitos y el sistema vascular sanguíneo (capilares sinusoidales). Reconocer las estructuras epiteliales y vasculares de la triada hepática y de la vena centrolobulillar.

Tinción: Lobulillo hepático clásico Tejido conjuntivo lobulillar

Cordones de hepatocitos Vena centrolobulillar Triada hepática en espacio portal

Objetivo de 10x

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2. Preparación histológica: Hígado de humano No se observa con tanta claridad el límite de los lobulillos hepáticos clásicos debido a que no hay tanto tejido conjuntivo. Distinguir las relaciones microscópicas existentes entre los cordones o láminas de hepatocitos y el sistema vascular sanguíneo (capilares sinusoidales). Reconocer las estructuras epiteliales y vasculares de la triada hepática y de la vena centrolobulillar.

3. Preparación histológica: Vesícula biliar Observar y diferenciar los componentes tisulares de la vesícula biliar vacía. La mucosa integrada por pliegues recubiertos por epitelio cilíndrico simple; la lámina propia ocupada por los senos de Rokitansky-Aschoff. No tiene muscular de la mucosa ni submucosa. La túnica muscular está integrada por haces de fibras musculares lisas. La capa más externa es una serosa o adventicia.

Tinción:

Pliegues de la mucosa vesicular:

- Epitelio cilíndrico simple - Lámina propia con senos de Rokitansky-Aschoff Muscular

Adventicia o serosa Objetivo de 10x

Tinción:

Cordones de hepatocitos Vena centrolobulillar Triada hepática en espacio portal

Objetivo de 10x

96

4. Preparación histológica: Páncreas Observar los acinos pancreáticos serosos constituidos por células piramidales las cuales presentan un núcleo esférico de posición basal, rodeado por citoplasma basófilo. La porción apical de la célula muestra gránulos de secreción acidófilos. En la luz del acino pueden observarse las células centroacinares. Distinguir los conductos pancreáticos. Entre los acinos se ven los islotes de Langerhans que fueron revisados en la práctica de endocrino.

Tinción: Acinos serosos pancreáticos:

- Células acinares:

• Núcleos esféricos

• Ápice con gránulos

acidófilos

• Tercio basal basófilo Conductos


97

PRÁCTICA 25. Sistema urinario

Objetivos: 1. Observar las diferencias microscópicas entre los componentes de la corteza

y la médula renal. 2. Distinguir los componentes del corpúsculo renal y del aparato

yuxtaglomerular. 3. Reconocer las diferencias microscópicas del sistema tubular renal. 4. Diferenciar las características histológicas del uretero, vejiga urinaria y la

uretra. 1. Preparación histológica: Riñón

Reconocer los componentes histológicos de la cápsula renal, la corteza renal: corpúsculos renales y túbulos de la nefrona; y de la médula renal: asas de Henle y tubos colectores. Observar los componentes del corpúsculo renal: glomérulo y cápsula de Bowman. Diferenciar las imágenes de los túbulos contorneados proximales y distales. Identificar el aparato yuxtaglomerular: el polo vascular, la mácula densa y el mesangio extraglomerular.

Tinción: Cápsula renal Corteza renal:

- Corpúsculos renales

- Túbulos renales

- Vasos sanguíneos

Médula renal: - Asas de Henle

- Túbulos colectores

- Capilares sanguíneos

- Papila renal y área cribosa

Objetivo de 10x o 40x Cáliz renal

98

2. Preparación histológica: Uréter Observar los componentes histológicos de la mucosa: epitelio de transición o urotelio y lámina propia. Diferenciar en la túnica muscular de fibras musculares lisas la longitudinal interna de la circular externa. Reconocer la adventicia de tejido conjuntivo laxo con vasos sanguíneos y linfáticos.

Tinción: Corpúsculo renal:

- Glomérulo renal

- Cápsula de Bowman Polo urinario Polo vascular Mácula densa Mesangio extracelular

Objetivo de 40x

Tinción:

Mucosa ureteral: - Urotelio

- Lámina propia

Muscular:

- Longitudinal interna

- Circular externa

Adventicia

Objetivo de 10x

99

3. Preparación histológica: Vejiga urinaria Observar los componentes histológicos de la mucosa, semejantes a los del uretero. La túnica muscular está integrada por haces de fibras musculares lisas: longitudinal interna, circular media y oblicua externa. En la superficie más externa se observa una serosa o una adventicia.

4. Preparación histológica: Pene Observar en el cuerpo esponjoso del pene la presencia de la uretra masculina en la que se identifica, en la mayor parte, epitelio estratificado cilíndrico con glándulas mucosas intraepiteliales. La lámina propia muy vascularizada que posee adenómeros mucosos denominados glándulas uretrales o de Littré. Distinguir en la porción externa de la lámina propia una gran cantidad de vasos sanguíneos que integran el cuerpo esponjoso del pene.

Tinción: Mucosa vesical con pliegues:

- Urotelio

- Lámina propia

Muscular:

- Haces de fibras musculares lisas

Adventicia o serosa


Tinción:

Uretra:

- Epitelio

- Glándulas intraepiteliales Mucosas

- Lámina propia Vasos sanguíneos uretrales Cuerpo esponjoso


100

PRÁCTICA 26. Sistema genital masculino

Objetivos: 1. Identificar los componentes microscópicos principales del testículo,

epidídimo y del conducto deferente. 2. Reconocer la morfología microscópica básica de la próstata y la vesícula

seminal. 3. Observar los componentes tisulares del pene.

1. Preparación histológica: Testículo adulto

Distinguir la túnica albugínea, los septos testiculares y la presencia de secciones transversales, oblicuas y longitudinales de los túbulos seminíferos. A mayor aumento reconocer el conjunto de células que constituyen el epitelio seminífero: las células de Sertoli y las células espermatogénicas. En el compartimento basal del tubo seminífero se observan las espermatogonias, los espermatocitos primarios y los núcleos claros de las células de Sertoli; mientras que en el compartimento adluminal se observan los espermatocitos secundarios y las espermátides. Las células intersticiales o de Leydig se localizan fuera del túbulo seminífero. El epidídimo tiene un epitelio cilíndrico seudoestratificado con células basales y principales con estereocilios.

Tinción:

Túnica albugínea testicular Septos testiculares Túbulos seminíferos Células de Leydig


101

Tinción:

Túbulo seminífero:

- Células espermatogénicas - Células de Sertoli

Células de Leydig

Objetivo 40x Conducto del epidídimo:

- Epitelio

- Capa de músculo liso

- Tejido conjuntivo intersticial

Objetivo de 40x

102

2. Preparación histológica: Cordón espermático Observar en el cordón espermático los componentes histológicos que constituyen el conducto deferente: la mucosa integrada por epitelio cilíndrico seudoestratificado con estereocilios. Túnica muscular lisa con tres capas: longitudinal interna, circular media y longitudinal externa y la capa adventicia. Observa que la túnica muscular proporcionalmente es muy gruesa en comparación con el diámetro de la luz.

Tinción:

Mucosa: - Epitelio

- Lámina propia

Muscular Adventicia

Objetivo de 10x

103

3. Preparación histológica: Próstata Distinguir las unidades glandulares revestidas por un epitelio cilíndrico seudoestratificado. En el interior de los adenómeros túbulo-alveolares se observan los cuerpos amiláceos. Las unidades glandulares, lobulillos y adenómeros, están soportados por tabiques o septos fibromusculares integrados por fibras colágenas y haces de fibras musculares lisas.

4. Preparación histológica: Vesículas seminales Observar los repliegues de la mucosa que están revestidos por un epitelio cilíndrico bajo o cúbico alto seudoestratificado sustentado por una lámina propia con escasa fibras de colágena y haces de fibras musculares lisas. La secreción es acidófila.

Tinción: Tabiques o septos fibromusculares: - Fibras colágenas y

musculares Adenómeros tubuloalveolares:

- Epitelio seudoestratificado cilíndrico - Concreciones o cuerpos

amiláceos

Objetivo de 40x

Tinción:

Pliegues de la mucosa:

- Epitelio secretor

- Lámina propia Células musculares lisas Secreción acidófila

Objetivo de 40x

104

PRÁCTICA 27. Sistema genital femenino

Objetivos: 1. Identificar las características histológicas del ovario; diferenciar los estadios

de los folículos ováricos y el cuerpo lúteo. 2. Reconocer los componentes histológicos de la tuba uterina, cérvix y

vagina. 3. Identificar la microestructura que componen a la mama en reposo, así como

las modificaciones microscópicas parenquimatosas y estromales que ocurren en su etapa lactante.

1. Preparación histológica: Ovario de adulta Reconocer el “epitelio germinativo” que es un epitelio cúbico simple y la túnica albugínea ovárica formada por tejido conjuntivo. Diferenciar el desarrollo de los folículos. Los folículos primordiales contienen el ovocito primario en la porción central rodeado por células foliculares que forman un epitelio plano simple. Los folículos primarios unilaminares en los que las células foliculares forman un epitelio cúbico simple. Los folículos primarios multilaminares que en su centro se observa el ovocito primario rodeado por la zona pelúcida, las células foliculares forman varias capas y forman la granulosa rodeada por las células de la teca. Reconocer los folículos ováricos secundarios que se distinguen porque en la granulosa se observan los espacios antrales. En el folículo terciario se observa un único espacio antral y en el centro el ovocito rodeado por la zona pelúcida y células de la granulosa que forman la corona radiada y un grupo de células foliculares (el cúmulo oóforo) que los unen a la capa granulosa. Reconocer los folículos atrésicos.

Tinción: Epitelio germinativo

Túnica albugínea ovárica

Folículo ovárico primordial: - Ovocito - Células foliculares

Folículo ovárico primario unilaminar:

- Ovocito - Células foliculares

Folículo ovárico primario Multilaminar: - Ovocito - Zona pelúcida - Células foliculares

Objetivo de 10x - Células de la teca

105

Tinción:

Folículo secundario: - Ovocito

- Zona pelúcida

- Células de la granulosa

- Espacios antrales

- Teca interna

- Teca externa

Folículo atrésico

Objetivo de 10x

Folículo terciario:

- Ovocito

- Zona pelúcida

- Corona radiada

- Cúmulo oórofo

- Antro

- Teca interna

- Teca externa

Objetivo 4x o 10x

106

2. Preparación histológica: ovario cuerpo amarillo Observar, el cuerpo amarillo y reconocer las células luteínicas de la capa granulosa y las células luteínicas tecales.

3. Preparación histológica: Tuba uterina Observar los componentes histológicos de la tuba uterina: mucosa con pliegues primarios, secundarios y terciarios recubiertos por un epitelio cilíndrico simple ciliado y secretor y una lámina propia muy vascularizada. La túnica muscular de fibras musculares lisas. Una serosa con abundantes vasos sanguíneos arteriales y venosos.

Tinción:

Cuerpo amarillo:

- Células luteínicas de la teca

- Células luteínicas de la granulosa


Tinción:

Luz de la tuba uterina

Pliegues de la mucosa: - Epitelio - Lámina propia Muscular Serosa

Objetivo de 10x

107

4. Preparación histológica: Cuello uterino Observar la transición de epitelios de plano estratificado sin estrato córneo (superficie vaginal o exocérvix) a epitelio cilíndrico simple secretor (superficie uterina o endocérvix). Por debajo del epitelio cervical se dispone un conjunto de haces de fibras de colágena y en la parte más profunda fibras musculares lisas. En el endocérvix se observan las glándulas cervicales.

Tinción:

Luz de la tuba uterina

Epitelio:

- Células ciliadas

- Células secretoras Lámina propia

Vasos sanguíneos Objetivo de 40x

Tinción: Epitelio plano estratificado sin estrato córneo

Zona de transición de epitelios

Epitelio cilíndrico simple secretor Tejido conjuntivo subepitelial

Glándulas cervicales Objetivo de 4x o 10x

108

5. Preparación histológica: Vagina Se observa un epitelio plano estratificado sin estrato córneo. Las capas epiteliales más profundas muestran un citoplasma claro que corresponde al espacio que ocupa el glucógeno. La lámina propia está constituida por tejido conjuntivo denso muy vascularizado sin glándulas. En la parte más profunda se distinguen haces gruesos de fibras musculares lisas que se entrecruzan.

6. Preparación histológica: Mama en reposo Observar conductos lobulillares rodeados por tejido conjuntivo laxo intralobulillar, tejido conjuntivo denso interlobulillar y abundantes células adiposas.

Tinción:


Lámina propia

Haces de fibras musculares lisas Objetivo de 10x

Tinción:

Tejido conjuntivo denso interlobulillar Tejido conjuntivo laxo intralobulillar Conductos lobulillares

Adipocitos Objetivo de 10x

109

7. Preparación histológica: Mama lactante Observar los alvéolos mamarios y los conductos. Distinguir que los alvéolos están constituidos por epitelio cúbico simple y en la luz se visualiza un contenido acidófilo que es la secreción láctea. Se diferencian conductos integrados por epitelio cúbico simple o estratificado. El estroma está disminuido en comparación con la mama en reposo.

Tinción:

Estroma Lobulillos glandulares mamarios: - Alvéolos mamarios

- Secreción láctea

- Conducto glandular mamario

Objetivo de 10x

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manual completo 2018-2019bct.facmed.unam.mx/wp-content/uploads/2018/07/manual-completo-2… · tejidos, órganos y sistemas del cuerpo ... de una serie de preparaciones histológicas